Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Enregistrement électrophysiologique sans fil des neurones par les tetrodes mobiles dans les poissons nageant librement

8.8K vues

⸱

DOI :

10.3791/60524

⸱

26 novembre 2019

 ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Une nouvelle technique sans fil pour enregistrer les signaux neuronaux extracellulaires du cerveau des poissons rouges nageant librement est présentée. Le dispositif d'enregistrement est composé de deux tétrodes, un microdrive, un enregistreur de données neuronales et un boîtier étanche. Toutes les pièces sont faites sur mesure, sauf pour l'enregistreur de données et son connecteur.

Résumé

Les mécanismes neuronaux régissant le comportement des poissons restent pour la plupart inconnus, bien que les poissons constituent la majorité de tous les vertébrés. La capacité d'enregistrer l'activité cérébrale des poissons en mouvement libre ferait avancer la recherche sur la base neuronale du comportement des poissons considérablement. En outre, le contrôle précis de l'emplacement d'enregistrement dans le cerveau est essentiel à l'étude de l'activité neuronale coordonnée à travers les régions dans le cerveau des poissons. Ici, nous présentons une technique qui enregistre sans fil à partir du cerveau des poissons nageant librement tout en contrôlant la profondeur de l'emplacement d'enregistrement. Le système est basé sur un enregistreur neuronal associé à un nouvel implant compatible avec l'eau qui peut ajuster l'emplacement de l'enregistrement par des tétrodes contrôlées par micropropulsion. Les capacités du système sont illustrées par des enregistrements du ténencéphale du poisson rouge.

Introduction

Les poissons sont le groupe de vertébrés le plus grand et le plus diversifié, et comme les autres vertébrés, ils présentent des capacités cognitives complexes telles que la navigation, la socialisation, le sommeil, la chasse, etc. Néanmoins, les mécanismes neuronaux régissant le comportement des poissons restent pour la plupart inconnus.

Au cours des dernières décennies, les enregistrements extracellulaires de poissons immobilisés ont principalement été mis en œuvre pour étudier différents aspects de la base neuronale du comportement1,2. Bien que cette technique soit appropriée pour....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Toutes les interventions chirurgicales doivent être approuvées par les comités d'éthique locaux sur le bien-être animal (p. ex., l'IACUC).

1. Construction du microdrive Housing

  1. Pour construire le boîtier, couper une plaque en laiton de 1 mm de large dans une plaque de 19 mm x 29 mm x 1 mm à l'aide d'une scie. Couper deux fentes de 5,5 mm sur chacun des longs côtés perpendiculaires au bord, de sorte que chaque fente est de 6,5 mm des côtés étroits (Figure 2A).
  2. À l'aide de pinces, pliez la zone entre les fentes sur les longs côtés vers l'intérieur, puis pliez la partie inférie....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Au cours d'une session d'enregistrement, le poisson rouge nageait librement dans un réservoir d'eau carré tandis que l'activité neuronale dans son telencephalon était enregistrée. Le but de ces expériences était d'étudier comment l'activité neuronale des cellules individuelles détermine le comportement du poisson. Pour ce faire, l'activité de pointe devait être identifiée dans les données enregistrées. L'activité cérébrale, pendant qu'elle était enregistrée, a été numérisée à 31 250 Hz et.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Ce protocole détaille les étapes impliquées dans l'implantation d'un tableau de tétrodes dans le téencéphale du poisson rouge nageant librement. Cette technique met en œuvre un enregistreur neuronal qui amplifie et enregistre les signaux acquis à partir de jusqu'à 16 canaux avec un microdrive qui peut ajuster la position du tétrode dans le cerveau. Le micropropulsion permet d'ajuster la position dans le cerveau pour optimiser l'enregistrement.

Ce protocole peut facilement être modifié pour l'e.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

Nous sommes reconnaissants à Nachum Ulanovsky et aux membres du laboratoire Oulanovsky pour toute leur aide. De plus, nous sommes reconnaissants à Tal Novoplansky-Tzur pour son assistance technique utile. Nous remercions le soutien financier de THE ISRAEL SCIENCE FOUNDATION - FIRST Program (grant no 281/15), et du Helmsley Charitable Trust par l'intermédiaire de l'Initiative de robotique agricole, biologique et cognitive de l'Université Ben-Gourion du Néguev.

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Mèches rondesCompatible avec la perceuse.
Scalpel à 15 lamesSigma-Aldrich
Carte PCB 16 canauxNeurlynxEIB-16
1x3M visAcier inoxydable. Tout type.
1x3M visen acier inoxydable. Tout type.
en laiton de 27 cm x 19 cm x 1 mmVoir la figure 2
visen acier inoxydable. Tout type.
3140 Revêtement RTVDow Crowning2767996
75 & micro ; m Fil d’argentA-M Systems
Vis à métaux en laiton #00-90947-1006
Plaques en laiton 7,5 mm x 2,5 mm x 0,6 mmUn dessin 3D est fourni. Voir supplémentaire 1
fil de tungstène enduit 25µ ; mCalifornia Fine Wire Company5000160Selon l’application, les tétrodes peuvent être fabriquées à partir de n’importe quel type de fil. Les fils populaires sont des fils nicrome que l’on peut trouver avec des diamètres inférieurs (par exemple. A-M systems, 762000)
Fil de tungstène revêtu 50 µ ; mA-M Systems795500Peut être remplacé par n’importe quel autre fil à faible impédance
Colle
Burnisherdentaire ComDent UKN’importe quel petit outil stérile en acier inoxydable fera l’affaire.
Ciment dentaire - GCFujiPLUSGC431011D’autres ciments dentaires fonctionneraient probablement aussi bien, bien que nous n’en ayons jamais essayé d’autres.
Foret dentaire ou foretforets dentaires sont chers, une forceuse à vernis à ongles peut être un remplacement bon marché.
Mèche #65947-65
à durcissement rapide N’importequel époxy à durcissement de 5 minutes peut être utilisé ici.
Boîte d’enregistrement avec jointUn dessin 3D est fourni. Voir les questions supplémentaires 1-3. La boîte doit être fabriquée à la machine (n’utilisez pas d’imprimantes 3D). Utilisez un matériau transparent pour pouvoir voir les LED indicatrices sur l’enregistreur.
de retournement motoriséFabriqué sur mesure comme décrit sur le site « open ephys ». Peut également être acheté à neurolynx (« Tetrode Spinner 2.0 ») ou bulit par d’autres moyens.
Mouselog-16 Neural loggerDeuteron Technologies LtdIl existe plusieurs enregistreurs neuronaux disponibles sur le marché, notamment : SpikeGadget (UH32 32 canaux) et Neurologger 2/2A/2B d’Alexei Vyssotski. Il convient de noter que le poids n’est pas un obstacle majeur puisqu’il peut être contrebalancé par de la mousse de polystyrène flottante
MS-222Sigma AldrichE10521Ethtl 3-aminobenzoate méthanesulfonate 98 %
Nano-Z placageWhite Matter LLCLe nano-Z peut être acheté auprès de plusieurs fournisseurs. N’importe quel impédancemètre peut être utilisé, par exemple IMP-1 / 6662 / 2788, BAK Electronics.
Broches PCBNeurlynxNeuralynx Broches EIB Polymide
tubing 250 µ ; mA-M Systems822000
BatterieBatterie 3.7 Lipo, 370 mAh. Contient environ 6 heures d’enregistrement. Des batteries plus petites ou plus grandes peuvent être utilisées pour réduire le poids ou prolonger le temps d’enregistrement.
Tube en silicone 0,64 mmA-M Systems806100
Acier inoxydable 1,5 mmA-M Systems846000
Sudium BicarbonateSigma AldrichS9625
Robinet #00-90947-1301
VaselineTout type de protecteur cutané doux en pétrole peut être utilisé ici.
de 0,7 mm à tête plate Phillips cruciformes à tête ronde Plaque cruciformes 2x6M à tête plate cyanoacrilique à vernis à ongles Les Époxy torique Dispositif rechargeable

Références

  1. Jacobson, M., Gaze, R. M. Types of visual response from single units in the optic tectum and optic nerve of the goldfish. Quarterly Journal of Experimental Physiology and Cognate Medical Sciences. 49 (2), 199-209 (1964).
  2. Ben-Tov, M., Donchin, O., Ben-Shahar, O., Segev, R.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Enregistreur neuronalimplant compatible avec l'eautétrodes contrôlées par micro-actionneurenregistrements du télencéphaleactivité cérébrale du poisson rougesignaux neuraux extracellulairescontrôle de la localisation cérébrale