Summary

Estimulación in Vitro y visualización de la liberación de trampas extracelulares en macrófagos derivados de monocitos humanos diferenciados

Published: November 01, 2019
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Summary

Aquí se presenta un protocolo para detectar la producción de trampaextracelular de macrófagos (MET) en el cultivo de células vivas mediante microscopía y tinción de fluorescencia. Este protocolo se puede ampliar aún más para examinar marcadores específicos de proteína MET mediante la tinción de inmunofluorescencia.

Abstract

La liberación de trampas extracelulares (ET) por neutrófilos se ha identificado como un factor que contribuye al desarrollo de enfermedades relacionadas con la inflamación crónica. Las ET de neutrófilos (NET) consisten en una malla de ADN, proteínas de histona y varias proteínas de gránulos (es decir, mieloperoxidasa, elastasa y catepsina G). Otras células inmunitarias, incluidos los macrófagos, también pueden producir ETs; sin embargo, en qué medida esto ocurre in vivo y si las trampas extracelulares de macrófagos (MET) desempeñan un papel en los mecanismos patológicos no se han examinado en detalle. Para comprender mejor el papel de los MET en las patologías inflamatorias, se desarrolló un protocolo para visualizar la liberación de MET de los macrófagos humanos primarios in vitro, que también se puede explotar en experimentos de inmunofluorescencia. Esto permite una mayor caracterización de estas estructuras y su comparación con los ET liberados de neutrófilos. Los macrófagos derivados de monocitos humanos (HMDM) producen MET al exponerse a diferentes estímulos inflamatorios después de la diferenciación al fenotipo proinflamatorio M1. La liberación de METs se puede visualizar mediante microscopía utilizando una mancha de ácido nucleico fluorescente verde que está impermeant a las células vivas (por ejemplo, SYTOX verde). El uso de macrófagos primarios recién aislados, como el MMDM, es ventajoso en el modelado de eventos inflamatorios in vivo que son relevantes para posibles aplicaciones clínicas. Este protocolo también se puede utilizar para estudiar la liberación de MET de las líneas celulares de monocitos humanos (por ejemplo, THP-1) después de la diferenciación en macrófagos con acetato de mirista phorbol u otras líneas celulares de macrófagos (por ejemplo, las células J774A.1 similares a los macrófagos murinos).

Introduction

La liberación de ETs de neutrófilos se identificó por primera vez como una respuesta inmune innata desencadenada por una infección bacteriana1. Consisten en una columna vertebral del ADN a la que se unen varias proteínas de gránulos con propiedades antibacterianas, incluyendo la aslastasa de neutrófilos y mieloperoxidasa2. El papel principal de las ET de neutrófilos (NET) es capturar patógenos y facilitar su eliminación3. Sin embargo, además del papel protector de las ET en la defensa inmunitaria, un número cada vez mayor de estudios también han descubierto un papel en la patogénesis de la enfermedad, particularmente durante el desarrollo de enfermedades impulsadas por la inflamación (es decir, artritis reumatoide y aterosclerosis4). La liberación de ETs puede ser desencadenada por varias citoquinas proinflamatorias incluyendo interleucina 8 (IL-8) y factor de necrosis tumoral alfa (TNF)5,6, y la acumulación localizada de ETs puede aumentar el daño tisular y evocar una respuesta proinflamatoria7. Por ejemplo, las ET se han implicado como un papel causal en el desarrollo de la aterosclerosis8,promoviendo la trombosis9, y prediciendo el riesgo cardiovascular10.

Ahora se reconoce que, además de los neutrófilos, otras células inmunitarias (es decir, células de mástil, eosinófilos y macrófagos) también pueden liberar ET en la exposición a la estimulación microbiana o proinflamatoria11,12. Esto puede ser particularmente significativo en el caso de los macrófagos, teniendo en cuenta su papel clave en el desarrollo, la regulación y la resolución de enfermedades inflamatorias crónicas. Por lo tanto, es importante obtener una mayor comprensión de la relación potencial entre la liberación ET de los macrófagos y el desarrollo de enfermedades relacionadas con la inflamación. Estudios recientes han demostrado la presencia de MET y NETs en placas ateroscleróticas humanas intactas y trombos organizados13. Del mismo modo, los MET se han implicado en la conducción de lesiones renales a través de la regulación de las respuestas inflamatorias14. Sin embargo, a diferencia de los neutrófilos, hay datos limitados sobre los mecanismos de formación de MET a partir de macrófagos. Estudios recientes que utilizan modelos in vitro humanos de formación MET muestran algunas diferencias en las vías involucradas en cada tipo de célula (es decir, con respecto a la ausencia de citrulinación histona con macrófagos)6. Sin embargo, algunos han demostrado que la versión NET también puede ocurrir en ausencia de histona citrullination15.

El objetivo general de este protocolo es proporcionar un método simple y directo para evaluar la liberación de MET en un modelo de macrófagos clínicamente relevante. Hay una serie de diferentes modelos de células de macrófagos in vitro que se han utilizado para estudiar los MET (es decir, la línea celular de monocitos humanos THP-1 y varias líneas celulares de macrófagos murinos)16. Hay algunas limitaciones asociadas con estos modelos. Por ejemplo, la diferenciación de los monocitos THP-1 a los macrófagos generalmente requiere un paso de cebado, como la adición de acetato de mirista phorbol (PMA), que a su vez activa las vías dependientes de la proteína quinasa C (PKC). Este proceso es conocido por desencadenar la liberación de ET4 y da como resultado una liberación basal baja de MET de las células THP-1. Otros estudios han puesto de relieve algunas diferencias en la bioactividad y las respuestas inflamatorias montadas por los macrófagos in vivo en comparación con las células THP-1 tratadas con PMA17.

Del mismo modo, el comportamiento y las respuestas inflamatorias de diferentes líneas celulares similares a macrófagos murinos no representan completamente el espectro de respuesta de los macrófagos humanos primarios18. Por lo tanto, con el fin de investigar la formación de ET de macrófagos en el entorno clínico, se cree que los macrófagos derivados de monocitos humanos primarios (HMM) son un modelo más relevante en lugar de líneas celulares monocíticas o similares a la murina.

La liberación de ET de los HMMAM polarizados M1 se ha demostrado después de la exposición de estas células a una serie de diferentes estímulos inflamatorios, incluyendo el ácido hipocloroso oxidante derivado de mieloperoxidasa (HOCl), PMA, TNF, e IL-86. Aquí se describe un protocolo para polarizar los HMMAM al fenotipo M1 y visualizar la posterior liberación de MET tras la exposición a estos estímulos inflamatorios. PMA se utiliza como un estímulo de la liberación de MET para facilitar las comparaciones con estudios anteriores que han utilizado neutrófilos. Es importante destacar que HOCl, IL-8 y TNF también se utilizan para estimular la liberación de MET, que se cree que son mejores modelos del ambiente inflamatorio in vivo. El método microscópico para la visualización de la liberación de ET consiste en tinchar el ADN extracelular en cultivos de células vivas utilizando SYTOX green, una mancha de ácido nucleico verde fluorescente impermeable que se ha aplicado con éxito en estudios anteriores de neutrófilos. Este método permite una evaluación rápida y cualitativa de la versión ET, pero no es apropiado como método independiente para la cuantificación de la extensión de liberación ET. Se debe utilizar una metodología alternativa si se requiere cuantificación para comparar el alcance de la liberación de ET resultante de diferentes condiciones o intervenciones de tratamiento.

Protocol

Los HMDM fueron aislados de los preparados de capa buffy humana suministradas por el banco de sangre con la aprobación ética del Distrito de Salud Local de Sídney. 1. Cultura HMDM Aislar a los monocitos de las preparaciones de capa buffy preparadas a partir de la sangre periférica de donantes humanos sanos utilizando una preparación disponible comercialmente para aislar linfocitos, seguida de la elutriación centrífuga centrífuga contracorriente19,…

Representative Results

Las imágenes de Brightfield que muestran los cambios morfológicos de la MMDM en respuesta a los estímulos para la diferenciación celular se muestran en la Figura 1. Los macrófagos polarizados M1 de experimentos con HMDM expuestos a IFN y LPS mostraron una forma celular alargada y similar al husillo, como lo indican las flechas negras de la Figura 1 (panel medio). A modo de comparación, la morfología de los macrófagos polarizados M2 después de la exposic…

Discussion

La generación y visualización de la formación met utilizando HMMam diferenciados M1 representa un nuevo modelo in vitro que puede ser útil para investigar el papel patológico potencial de estas estructuras de macrófagos, particularmente bajo inflamatoriocrónico Condiciones. Proporciona un protocolo robusto para la estimulación de macrófagos humanos primarios para liberar MET, que también se puede utilizar en estudios relacionados con monocitos humanos o líneas celulares de macrófagos murinos. La implementaci?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por una Beca Perpetua IMPACT (IPAP201601422) y la Beca de Proyecto Biomédico de la Fundación Novo Nordisk (NNF17OC0028990). YZ también reconoce la recepción de un Premio de Posgrado Australiano de la Universidad de Sídney. Nos gustaría dar las gracias al Sr. Pat Pisansarakit y a la Sra. Morgan Jones por la asistencia en el aislamiento de monocitos y el cultivo de tejidos.

Materials

120Q broad spectrum fluorescent light source EXFO Photonic Solutions, Toronto, Canada x-cite series
Corning CellBIND Multiple Well Plate (12 wells) Sigma-Aldrich CLS3336 For cell culture
Differential Quik Stain Kit (Modified Giemsa) Polysciences Inc. 24606 Characterisation of monocytes
Hanks balanced salt solution (HBSS) Thermo-Fisher 14025050 For washing steps and HOCl treatment
Hypochlorous acid (HOCl) Sigma-Aldrich 320331 For MET stimulation
Interferon gamma Thermo-Fisher PMC4031 For M1 priming
Interleukin 4 Integrated Sciences rhil-4 For M2 priming
Interleukin 8 Miltenyl Biotec 130-093-943 For MET stimulation
L-Glutamine Sigma-Aldrich 59202C Added to culture media
Lipopolysaccharide Integrated Sciences tlrl-eblps For M1 priming
Lymphoprep Axis-Shield PoC AS 1114544 For isolation of monocytes
Olympus IX71 inverted microscope Olympus, Tokyo, Japan
Phorbol 12- myristate 13-acetate (PMA) Sigma-Aldrich P8139 For MET stimulation
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich D5652 For washing steps
RPMI-1640 media Sigma-Aldrich R8758 For cell culture
SYTOX green Life Technologies S7020 For MET visulaization
TH4-200 brightfield light source Olympus, Tokyo, Japan x-cite series
Tumor necrosis factor alpha Lonza 300-01A-50 For MET stimulation

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Zhang, Y., Rayner, B. S., Jensen, M., Hawkins, C. L. In Vitro Stimulation and Visualization of Extracellular Trap Release in Differentiated Human Monocyte-derived Macrophages. J. Vis. Exp. (153), e60541, doi:10.3791/60541 (2019).

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