Summary
이 프로토콜은 임상 및 생리병리학 적 모델에서 가능한 적용을위한 그들의 이질성 및 기능적 특성을 결정하기 위해 인간 양막의 상이한 해부학 적 영역에서 상피 세포의 분리를 설명합니다.
Abstract
몇몇 프로토콜은 인간 양수 상피 세포의 분리 및 배양에 대한 문헌에서 보고되었다(HAEC). 그러나, 이들은 양상상피가 균질한 층이라고 가정합니다. 인간 양막은 반사, 태반 및 배꼽의 세 가지 해부학 영역으로 나눌 수 있습니다. 각 지역은 병리학 적 조건에서와 같은 다른 생리적 역할을 가지고 있습니다. 여기서, 우리는 3개의 단면도에서 인간 양수 조직을 해부하고 시험관내에서 유지하는 프로토콜을 기술한다. 배양에서, 반사된 양막에서 유래된 세포는 입방체 형태를 나타내었고, 태반 및 배꼽 영역 모두에서 세포는 편평상피였다. 그럼에도 불구하고, 수득된 모든 세포는 상피 표현형을 가지며, E-카데린의 면역 검출에 의해 입증되었다. 따라서, 자리에서 태반 및 반사 된 영역은 세포 구성 요소와 분자 기능이 다르기 때문에, HAEC의 사용에 대한 생리적 영향을 가질 수 있기 때문에 시험관 내 연구에서 이러한 차이를 고려해야 할 수도 있습니다. 생물 의학 연구 및 재생 의학에서 이러한 세포의 유망한 응용 프로그램.
Introduction
인간 양수 상피 세포 (HAEC)는 배아 발달의 초기 단계 동안, 약 8 일 후 추론에서 발생합니다. 그들은 양막1의가장 안쪽 층에서 파생되는 상피 세포의 편평상피 세포 집단에서 발생합니다. 따라서, HAEC는 배아2의3개의 생식층으로 분화할 수 있는 잠재력을 가진 에피블라스트로부터 다능성 세포의 잔재로 간주된다. 지난 10년간, 다양한 연구그룹은 임신 기간 동안 양막으로부터 이들 세포를 분리하는 방법을 개발하여 시험관 내 배양 모델에서 그들의 추정 다능성 관련 특성을 특성화하였다3,4.
따라서, HAEC는 표면 항원 SSEA-3, SSEA-4, TRA 1-60, TRA 1-81과 같은 인간 다능성 줄기 세포(HPSC)의 특성특성이 있음을 알 수 있다; 다능 전사 인자 OCT4, SOX2, 및 NANOG의 핵심; 및 증식 마커 KI67, 그들은 자기 갱신 제안5,6,7. 더욱이, 이들 세포는 인간 질병의 동물 모델뿐만 아니라 3개의 생식층(ectoderm, mesoderm, 및내배엽)의계보 특이적 마커에 대해 양성 세포를 얻기 위해 분화 프로토콜을 사용하여 도전해 왔다. 마지막으로, HAEC는 HPSC5,9와같은 상피 성질을 유지한다는 것을 입증하는 E-cadherin을 표현합니다.
그들의 배아 기원 에서, HAEC는 항염증 및 항균 분자의분비10,11,성장 인자 및 사이토카인 방출12,면역 결핍 마우스로 이식될 때 기형종의 형성이 없고, HPSC2와대조적으로 면역 결핍 마우스로 이식될 때, 그리고 HLA 를 발현하기 때문에 면역 학적 내성, 그리고 면역 학적 내성을 표현하기 때문에 면역 학적 내성, 및 면역 학적 내성과 같은 다른 임상 응용 프로그램에 적합하게하는 다른 본질적 특성을 가지고 있습니다. 이식13.
그러나, 이전 보고는 인간 양막이 해부학적으로 생리적으로 세 가지 영역으로 나눌 수 있다는 것을 고려하지 않고 균질한 막이라고 가정했습니다: 태반 (데시두아 기저를덮는 양막), 탯줄 (탯줄을 감싸는 부분), 및 반영 (태반에 부착되지 않은 막의 나머지 부분)14. 양수의 태반 및 반사 부위는 형태, 미토콘드리아 활성, 반응성 산소 종15의검출, miRNA 발현16,및 신호 경로(17)의 활성화에서 차이를 나타낸다. 이 결과는 인간 양박이 상이체 또는 시험관 내 모델에서 수행된 추가 연구를 위해 고려되어야 하는 다른 기능을 가진 이기종 인구에 의해 통합된다는 것을 건의합니다. 다른 실험실은 전체 막에서 HAEC의 격리를 위한 프로토콜을 설계하는 동안, 우리의 실험실은 다른 해부학 적인 지구에서 세포를 격리하고, 배양하고, 특성화하는 프로토콜을 설치했습니다.
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Protocol
이 프로토콜은 멕시코 시티의 인스티투토 나시오날 드 페리나토로지아의 윤리위원회에 의해 승인되었습니다 (레지스트리 번호 212250-21041). 이러한 연구에서 수행된 모든 절차는 Instituto Nacional de Perinatología, 헬싱키 선언 및 보건부의 공식 멕시코 표준에 명시된 지침의 윤리적 기준에 따라 수행되었습니다.
1. 준비
- EDTA를 통해 1x PBS 솔루션을 준비합니다. 이렇게 하려면 0.5 m M EDTA 스톡 500 μL을 1x PBS의 500 mL에 추가하여 0.5 mM EDTA의 최종 농도를 조사합니다.
- HAEC의 배양 매체를 준비합니다. 450 mL의 높은 포도당-DMEM을 복용, 나트륨 피루브산나트륨 5 mL (100 mM), 줄기 세포에 대한 자격을 갖춘 열 비활성 태아 소 혈청 50 mL, 불필요한 아미노산 5 mL (100x), 항생제 항 미신 (100x) 5 mL, L-글루타민 5 mL로 보충하십시오. 500 μL의 메르카포에탄올 (1,000x).
- 조직을 운반하고 처리하기위한 용기를 살균 : 수술실에서 실험실로 전체 태반을 운반하는 뚜껑이있는 스테인레스 스틸 용기, 트레이 (20cm x 30cm x 8cm) 전에 전체 태반에서 혈액을 씻고 제거하십시오. 양막의 해부, 및 양막을 세 영역으로 분리하는 플라스틱 도마.
- 수술 기구(메스, 가위, 집게 및 클램프), 500 mL 비커, 면 거즈 및 식염수 용액을 살균합니다.
2. 태반 조직 얻기
참고 : 양막은 활성 노동의 증거없이, 그리고 감염의 미생물 학적 특성없이, 제왕 절개 배달의 표시하에, 전체 기간 임신 (37-40 주)에서 여성에서 얻어졌다. 완전한 격리 및 배양 절차는 멸균 조건하에서 생체 보안 캐비닛 내에서 수행되었습니다.
- 수술실에서 탯줄을 고정하여 조직의 나머지 부분으로의 혈류를 방지합니다. 멸균 용기에 고정 된 탯줄로 태반 전체를 수집하십시오.
- 용기에 식염수 500mL를 추가하여 태반에 수분을 공급합니다.
- 용기를 닫고 실온에서 실험실로 조직을 운반하십시오.
- 생체 보안 캐비닛 안에 태반이있는 용기를 넣습니다.
참고 : 해부가 태반을 수집 한 후 15 분 이내에 수행되지 않는 경우, 처리 될 때까지 얼음에 태반과 용기를 저장합니다. 태반을 얻고 해부의 시작 사이 경과 시간의 1 시간 이상을 피하십시오.
3. 양막의 영역당 기계적 분리
참고 : 절차는 멸균 조건과 실온에서 생체 보안 캐비닛 내에서 수행해야합니다.
- 용기에서 태반 전체를 제거하고 탯줄이 위쪽을 향하여 트레이에 놓습니다.
- 멸균 면 거즈를 사용하여 태반을 덮는 융상 양막 표면에서 혈전을 청소하십시오.
- 막의 세 가지 영역을 식별: 탯줄을 둘러싸는 탯줄, 데시두아 기저를 덮는 태반 양막, 및 태반에 부착되지 않은 양막의 나머지 부분인 반사 된 영역(그림 1).
- 배꼽 양막 영역을 해부(그림 2A).
- 해부 집게를 사용하여 태반과 탯줄의 접합을 덮는 양막 부분을 잡습니다.
- 메스로, 코와 를 분리 스트레칭하는 동안 코드를 둘러싸는 영역을 해부.
- 분리된 조직을 100 mL의 식염수 로 표지된 비커에 적착시.
- 태반 양축하 부위를 해부(그림 2B).
- 멸균 면 거즈로 태반을 덮는 융상 양막 표면에서 혈전을 제거하십시오.
- 해부 집게와 태반과 반사 된 영역 사이의 경계에 막을 개최.
- 태반의 둘레를 메스로 잘라냅니다.
- 태반에서 어떤 혈관을 절단하지 않도록주의, 융자에서 태반 양막을 분리합니다.
- 분리된 조직을 식염수 300 mL로 다른 표지된 비커에 놓습니다.
- 태반에 부착되지 않은 양막의 나머지 부분(즉, 반사된 부분)을 융자로부터 분리한다(도2C).
- 300 mL의 식염수 용액으로 다른 라벨이 붙은 비커에서 반사 된 영역을 수집합니다.
참고: 해부 중에 식염수 용액을 지속적으로 첨가하여 조직이 건조해지는 것을 방지하십시오.
- 300 mL의 식염수 용액으로 다른 라벨이 붙은 비커에서 반사 된 영역을 수집합니다.
4. 멤브레인 세척
참고 : 절차는 실온에서 멸균 조건하에서 생체 보안 캐비닛 내에서 수행되어야합니다.
- 각 멤브레인 영역의 식염수 용액을 별도로 폐기하십시오.
- 배꼽 부위에 신선한 식염수 100mL를 추가합니다.
- 태반과 반사 부위에 신선한 식염수 300mL를 각각 추가합니다.
- 혈액 잔류물을 제거하기 위해 집게를 해부하는 도움으로 막을 저어.
- 식염수 용액을 폐기합니다.
- 멤브레인이 반투명 할 때까지 적어도 3 배의 세안과 동요를 반복하십시오.
- 세척으로 제거되지 않은 혈전을 멸균 거즈로 청소하기 위해 보드에 멤브레인을 놓고 확장하십시오.
참고: 그들의 존재는 트립신 기능 및 후속 세포 배양의 생존에 영향을 미치기 때문에 가능한 한 많은 적혈구를 제거하는 것이 매우 중요합니다.
5. 다른 지역에서 막의 효소 소화
참고 : 절차는 멸균 조건하에서 생체 보안 캐비닛 내에서 수행되어야합니다.
- 반사된 영역과 태반 영역을 두개 또는 세 개의 조각으로 자른다.
- 탯줄 영역을 잘라내지 마십시오.
- 각 영역의 조각을 원심분리기 튜브에 놓습니다. 반사 및 태반 부위에 0.5% 트립신/EDTA 의 20 mL을 추가하고 배꼽 부위에 0.5% 트립신/EDTA의 5 mL을 각각 추가합니다.
참고: 트립신 용액에 완전히 몰입해야 하기 때문에 반사된 부위와 태반 영역을 더 작은 조각으로 자르는 것이 중요합니다. - 원심 분리기 튜브를 가볍게 흔들어 30초 동안 트립신을 버리십시오.
- 추가 30 새로운 0.5% 트립신/EDTA의 새로운 0.5% 트립신/EDTA 의 반사 및 태반 지역에 및 15 mL의 새로운 0.5% 트립신/EDTA의 새로운 0.5% 트립신/EDTA, 각각.
- 튜브를 인큐베이터 내부의 회전자에 넣습니다.
- 37 °C에서 40 분 동안 회전 (20 rpm)으로 배양하십시오.
참고: 튜브 회전을 사용할 수 없는 경우 10분마다 튜브를 가볍게 흔들어 주세요. - 각 지역의 트립신/셀 솔루션을 새로운 원심분리기 튜브로 옮김을 옮김을 옮김으로 옮김을 옮김을 넣습니다.
- 효소를 비활성화하기 위해 튜브 당 37 °C에서 미리 따뜻해진 HAEC 매체의 2배 부피를 추가합니다.
- 첫 번째 소화를 얼음에 보관하십시오.
- 두 번째 소화 기간 동안 5.6-5.8 단계를 반복합니다.
- 각 영역에 대해, 해부 집게를 사용하여 양막 부분의 한쪽 끝을 잡고, 다른 쌍으로 이전 잠복기 동안 완전히 벗겨지지 않은 상피 세포의 행을 제거하기 위해 조직을 따라 짜내.
- 두 번째 소화를 다른 원심 분리기 튜브 세트로 수집하고 HAEC 용지의 2배 부피로 비활성화합니다.
- 소화된 멤브레인을 생물학적 위험 용기에 버리십시오.
6. HAEC의 격리
참고 : 절차는 멸균 조건하에서 생체 보안 캐비닛 내에서 수행되어야합니다.
- 원심분리기 는 4 °C에서 10 분 동안 200 x g의 모든 튜브를.
- 상온액을 버리고 각 펠릿을 분해하기 위해 튜브 및 파이펫당 미리 따뜻해진 HAEC 매질 10 mL(37°C)를 부드럽게 첨가합니다.
- 각 막 영역에 대한 개별 튜브에 두 소화의 세포 현탁액을 결합.
- 100 μm 셀 스트레이너를 사용하여 세포 현탁액을 필터링하여 세포외 매트릭스 파편을 제거하고 단일 세포를 얻습니다.
- 미세 원심 분리튜브에 90 μL의 트라이판 블루로 3개의 알리쿼트를 준비합니다.
- 막 부위당 각 세포 현탁액의 10 μL을 미세 원심 분리튜브에 넣고 섞습니다.
- 광야 현미경으로 혈세포계로 세포를 세습니다.
7. 해경문화
- 3°F의 밀도에서 3×104 세포/cm2의 밀도에서 별도로 HAEC를 종자하고, 인간 표피 성장 인자(EGF)의 10 ng/mL로 보충하였다.
- 면역 화학 분석을 위해 시험관 내 또는 24 웰 플레이트에서 세포를 100 mm 플레이트에 시드합니다.
- 가습 된 인큐베이터에서 노르목 조건 (5 %CO2)에서37 °C에서 접시를 배양하십시오.
- 매일 EGF를 추가하고 3 일마다 매체를 변경합니다.
참고 : 세포는 4-6 일 후에 수렴됩니다. - 종래의 면역포도화학, 세포 선별 분석, 저온 보존, RNA 및 단백질 추출을 위해 세포를 사용하거나, 또는 통로를 계속한다.
8. 해경 통로
- HAEC 배지를 제거하고 PBS/EDTA 0.01M 용액으로 2x 세척합니다.
- 37°C에서 15분 동안 PBS/EDTA 0.01M 용액으로 배양합니다.
- PBS/EDTA를 제거하고 0.5% 트립신/EDTA의 1.5 mL를 추가합니다.
- 37 °C에서 5-8 분 동안 배양하십시오.
- HAEC 매체의 2개의 부양으로 효소를 비활성화합니다.
- 혼합 용액과 원심 분리기를 200 x g에서5 분 동안 수집합니다.
- 세포를 계산하고 다음 구절을 계속하거나 추가 분석을 위해 세포를 사용합니다.
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Representative Results
HAEC는 양막의 3개의 해부학적 영역 각각으로부터 분리되었고 개별적으로 시험관내에서 배양하였다. 배양 48시간 후, 상피 표현형을 가진 세포는 플레이트의 표면에 부착되었지만, 배지가 변경되면 제거된 세포 파편 및 부유 세포도 포함되어있지만(도 3).
1 차 배양 (passage zero, P0)의 처리 동안, 실험 데이터 분석을 방해 할 수있는 몇 가지 합병증이 발생할 수 있습니다(도 4): 시약의 오염 또는 격리 과정 동안 박테리아의 존재를 식별시 배양을 폐기하고 다른 멤브레인을 처리하는 것이 좋습니다(도 4A); 막의 불충분 한 세척으로 인해 과도 한 적혈구(그림 4B); 플레이트에 세포의 결핍 또는 유착 없음(그림 4C); 또는 섬유아세포 형태를 가진세포(도 4D)는인간 양수 중간엽 세포(HAMC)가 HAEC 대신에 단리되었다는 것을 시사한다.
HAEC 형태는 이들 세포의 기원에 달려 있습니다: 반사된 영역에서의 세포는 입방체 형태를 가지고 있고, 평평하고 편평한 태반 및 배꼽 지구의 세포와는 달리 자갈이 깔린 단층에서 자랍니다(그림5). 이들 데이터는 양막으로부터의 상피층이 막 전체에 균일하지 않다는 것을 뒷받침한다. 대류 동안 모든 부위의 세포 크기가 증가하지만 상피 성질을 유지하고 섬유 아세포 형태를 획득하지 않습니다. 실제로, E-cadherin에 대한 면역형광은 1차 배양(P0) 및 하위 배양(P1-P2)이 그들의 상피 표현형을 유지하는 것으로나타났다(그림 6),중간엽 기질 세포, 또는 상피-중간엽 전이와 같은 다른 세포 유형의 오염이 없음을 시사한다. 또한, 이들 세포는 TUNEL분석(보충도 1)에따른 세포 사멸의 증거를 보여주지 않지만 KI-67 증식 마커에 대해 양성(도6)그러나 우리의 이전 결과는 각 계측기 들 사이에 이 마커에 대해 유의한 차이를 발견하지 못했다5.
수득된 세포의 수는 지역에 따라 다릅니다: 반사 및 태반 영역으로부터의 61.6 x 106 및 71.8 x 106 세포는 각각, 및 배꼽 영역으로부터의 샘플당 1 x 106 미만이다(표1). 이 프로토콜을 통해 태반 및 배꼽 영역은 반사 및 태반 영역과 는 달리, 특히 RNA-seq6을통한 ECM 수용체 상호작용, 초점 접착 및 PI3K-Akt 신호 전달 경로에 참여하는 유전자에서 그들의 발현 프로파일에서 매우 유사하다고 보고되었다. 합의에서, 이전 연구는 미토겐 활성화 단백질 키나아제의 차동 발현을 보고하고 성장 인자 베타 경로를 변화시키고, 두 지역 둘 다 사이전염증성 사이토카인뿐만 아니라17.
증거는 양막에서 소집단이 그들의 형태및 생리적 특성이 다르다는 것을 보여주었지만, 우리는 이전에 다능성 인자의 핵의 발현 및 존재가 태반 및 반사 부위로부터 유래된 HAEC에서 변하지 않는다는 것을 입증했다6. 이러한 맥락에서, 배꼽 영역에서 상대적으로 제한된 수의 세포 이외에, 후속 연구는 생리학적 의미를 고려하여 태반으로부터 분리된 HAEC에 초점을 맞추어야 하며, 생리학적 의미를 고려할 때, 상이한 하위 집단은 노동 기간 동안 장기간 임신 또는 염증 과정과 같은 특정 사건에 동등하게 반응하지 않을 것이기 때문에, 주요 다능성 마커에 대한 특정 양성 세포는없다(그림 7).
그림 1: 양막으로부터의 해부학적 영역을 용어로 한다. 탯줄 양막 (노란색), 태반 양막 (흰색), 및 반영 양막 (검정). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 양막의 기계적 해부. (A)배꼽 영역,(B)태반 영역 및(C)반사 된 영역. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 3: 양막으로부터 유래된 HAEC의 대표적인 1차 배양. 배양 48 시간 후 분리(A)및(B)배지의 변화. 배율 막대 = 50 μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 4: HAEC의 1차 배양에 대한 부정적인 결과의 대표적인 현미경. (A)적혈구의 과잉. (B)세균 오염. (C)HAEC는 48시간 의 격리 후 부착되지 않습니다. (D)섬유아세포 형태를 가진 세포로 구성된 1차 배양. 배율 막대 = 200 μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5: 시험관 내 상이한 해부학적 영역에서 HAEC의 형태. P0−P2를 통해 배양된 반사(상부 패널), 태반(중간 패널), 배꼽(하부 패널) 영역으로부터의 CONFLUENT HAEC의 대표적인 현미경 그래프. 배율 늘이 줄 200 = μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 6: HAEC에서 E-카데린과 KI-67의 표현. P0−P2를 통해 배양된 E-카데린+및 KI-67+ HAEC의 대표적인 상피 현미경 이미지(왼쪽 패널) 및 태반(오른쪽 패널) 양막에서. 배율 막대 = 100 μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 7: 상이한 해부학 적 영역에서의 HAEC는 다능 마커 패널을 표시한다. TRA-1-60을 가진 NANOG를 위한 이중 면역형광 양님의 대표적인 공초점 현미경 심상, E-cadherin를 가진 OCT4 및 HaeC에 있는 SSEA-4를 가진 SOX2 (상부 패널) 및 태반 (하부 패널) 지구. 배율 막대 = 100 μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
| # 멤브레인 | 반영 | 태 반 | 탯 줄 | 완전한 멤브레인 |
| 1 | 75 X 106 | 130 X 106 | 0.2 X 106 | 205.2 X 106 |
| 2 | 38.5 X 106 | 52 X 106 | 0.53 X 106 | 91.03 X 106 |
| 3 | 59 X 106 | 53 X 106 | 0.2 X 106 | 112.2 X 106 |
| 4 | 42 X 106 | 27 X 106 | 0.36 X 106 | 69.36 X 106 |
| 5 | 44.8 X 106 | 22.3 X 106 | Np | 76.1 X 106 |
| 6 | 100 X 106 | 140 X 106 | 1 X 106 | 241 X 106 |
| 7 | 72 X 106 | 78 X 106 | Np | 150 X 106 |
| 평균 | 61.6 X 106 | 71.8 X 106 | 0.45 X 106 | 133.8 X 106 |
표 1: 양막으로부터 지역당 분리된 HAEC의 수. (NP = 처리되지 않음).
보조 그림 1: HAEC (passage 2)에서 TUNEL 염색 반사 된 영역 및 양성 대조군 세포 (HL-60 세포는 캄토테신으로 처리)에서. 배율 막대 = 50 μm. 이 그림을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
우리는 용어 막에서 HAEC를 격리하는 새로운 프로토콜을 구현했습니다. 각 막은 각 세포에서 세포를 분석하기 위해 격리되기 전에 세 가지 해부학 영역으로 분할되었다는 점에서 이전 보고서와 다릅니다.
프로토콜에서 가장 중요한 단계 중 하나는 상피 세포를 분리 할 때 트립신의 활성을 방해 할 수 있기 때문에 모든 혈전을 제거하는 멤브레인의 세척입니다. 이 단계를 제대로 수행하지 못하면 과도한 적혈구와 몇 가지 부착 상피 세포가있는 1 차 배양을 얻을 수 있습니다. 세포를 파종 한 후 처음 24-48 시간에서 부착이 관찰되지 않으면 배양을 폐기하는 것이 좋습니다. 또 다른 중요한 점은 효소 소화를 위한 인큐베이션 시간입니다. 잠복기가 너무 길면, 세포 생존율이 감소할 수 있고/또는 상피 형태 대신 중간엽을 가진 세포 배양이 얻어질 수있다(도 4). 또한 막 소화가 적절한 교반으로 이루어지지 않으면 막 당 적은 수의 세포를 얻을 확률이 높아진다.
이 프로토콜에서, 우리는 대패를 따라 대부분의 세포에 대한 특정 상피 세포 마커 E-cadherin의 존재에 의해 입증된 바와 같이, 그들의 상피 표현형을 잃지 않고 시험관내 HAEC의 집단을 유지할 수있다(도 6). 그러나, 우리의 경험에서 HAEC는 세 구절 (P1−P3)에 대해서만 확장 될 수있다. 제한된 수의 구절은 오랜 기간 의 배양 또는 여러 구절을 필요로하는 실험에 대해 고려되어야한다. 또한, P3 이후 세포가 그들의 형태를 변화시키고 E-카데린의 발현을 감소시키기 시작하여, 장기간 배양이 상피-중간엽 전이(EMT)18을유도할 수 있다고 보고되었다. 최근, 프로게스테론이 오빈 양수 상피세포19,20에서EMT를 예방하는 것으로 입증되었으며, 따라서 제3 항계 후 중간엽 표현형을 피하기 위해 HAEC 배양 배지에서 프로게스테론의 상이한 농도의 효과를 분석하는 것이 흥미로워질 것이다.
HAEC가 고립된 모든 이전 보고에서, 양막은 전체 막을 구성하는 상피 집단의 가능한 이질성에도 불구하고 균일한 조직으로 가정되었다. 대조적으로, 이 프로토콜은 기능적 차이를 제안하는 이전의 형태학적 및 유전자 발현 보고서를 고려하여 HAEC를 별도로 분리하고 배양하는 세 가지 해부학 영역으로 막을 분할한다. 또한 P2까지 대계 동안 E-카데린 마커의 검출에 의해 입증된 바와 같이, 상피 집단만을 얻기 위해 세포 선별을 통해 정화하는 것은 불필요하다.
각 막 영역에서 분리된 HAEC는 다능성 코어의 유사한 발현을 가지며, 줄기를 가진 세포의 잠복 저장소가 되는 것으로 나타났다. 이러한 맥락에서, 이들 세포는 시험관 내에서 다능성 관련 전사 인자의 동적 국소화 또는 암 관련 유전자를 발현에도 불구하고 정지 상태를 유지하는 능력과 같은 분자 메커니즘을 연구하기 위해 시험관 내에서 사용될 수 있습니다. 그러나, 미래 연구는 각 지역 사이 보고된 분자 다름 (글로벌 발현 유전자, 신진 대사 활동, 신호 통로)를 고려해야 합니다, 이는 재생 의학에서 그들의 적용을 위한 파급효과가 있을 것입니다. 우리는 이전에 RNA-seq6에의해 상이한 양수 지구 사이 PI3K/AKT 및 초점 접착 신호 통로에 관여하는 유전자의 다른 발현을 보고했다. PI3K/AKT는 자체 갱신을 조절하고 HPSC에서 다능성을 유지하며, 초점 접착 키나아제의 활성화는 그들의 분화를 촉진한다21,22. 따라서, 우리는 계보 특이적 분화 프로토콜 동안 상이한 해부학 적 영역에서 분리된 HAEC에서 두 경로의 역할을 특성화할 것을 제안한다. 추가, 여러 연구는 세포 구성 요소에 관한 두 지역 간의 차이 보여, 분자 기능, 그리고 생물 학적 과정. 예를 들어, 아쿠포린의 영역 특이적 유전자 발현 및 단백질 분포는, 인트라엠브라누스 흡수의 수송 과정에 관여하는,23에보고되었다. 또 다른 연구는 miR-145 및 miR-143의 영역별 발현을 보여주는 마이크로어레이에 의한 miRNome을 비교하였고, 후자는16학기노동과 같은 특정 조건 하에서 프로스타글란딘-엔도페록시다제 신타제 2를 사후 조절할 수 있게 된다. 더욱이, 태반 영역은반사조직(15)과비교하여 더 높은 미토콘드리아 호흡을 제시하지만 반응성 산소 종 검출은 낮다. 반영 및 태반 영역에서 양축을 해부하는 것은 HAEC를 분리하고 성장 인자 및 사이토카인의 방출, 낮은 면역 원성, 세포 외 매트릭스의 생산, 다른 세포 유형과의 공동 배양에서의 조절 된 배지의 효과 및 피더 층2와같은 HPSC 라인을 유지하는 능력과 같은 새로운 기능과 같은 그들의 특이한 특성을 별도로 분석하는 것이 좋습니다.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없다.
Acknowledgments
우리의 연구는 인스티투토 나시오날 드 페리나토로지아 데 멕시코 (21041 및 21081) 및 CONACYT (A1-S-8450 및 252756)의 보조금에 의해 지원되었습니다. 기술 지원을 위해 제시카 곤잘레스 노리스와 리디아 유리리아 파레데스 비바스에게 감사드립니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Culture reagents | |||
| 2-Mercaptoethanol | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 21985023 | 55 mM |
| Animal-Free Recombinant Human EGF | Peprotech | AF-100-15 | |
| Antibiotic-Antimycotic | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 15240062 | 100X |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 12430054 | Supplemented with high glucose and HEPES |
| EDTA | Thermo Fisher Scientific/Ambion | AM9260G | 0.5 M |
| Embryonic stem-cell FBS, qualified | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 10439024 | |
| Non-Essential Amino Acids | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 11140050 | 100X |
| Paraformaldehyde | any brand | ||
| Phosphate-Buffered Saline | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 10010023 | 1X |
| Saline solution (sodium chloride 0.9%) | any brand | ||
| Sodium Pyruvate | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 11360070 | 100 mM |
| Trypsin/EDTA 0.05% | Thermo Fisher Scientific/Gibco | 25300054 | |
| Disposable material | |||
| 100 µm Cell Strainer | Corning/Falcon | 352360 | |
| 100 mm TC-Treated Culture Dish | Corning | 430167 | |
| 24-well Clear TC-treated Multiple Well Plates | Corning/Costar | 3526 | |
| 6-well Clear TC-treated Multiple Well Plates | Corning/Costar | 3516 | |
| Non-Pyrogenic Sterile Centrifuge Tube | any brand | with conical bottom | |
| Non-Pyrogenic sterile tips of 1,000 µl, 200 µl and 10 µl. | |||
| Sterile cotton gauzes | |||
| Sterile serological pipettes of 5, 10 and 25 mL | any brand | ||
| Sterile surgical gloves | any brand | ||
| Equipment | |||
| Biological safety cabinet | |||
| Centrifuge | |||
| Micropipettes | |||
| Motorized Pipet Filler/Dispenser | |||
| Sterile beakers of 500 mL | |||
| Sterile plastic cutting board | |||
| Sterile scalpels, scissors, forceps, clamps | |||
| Sterile stainless steel container | |||
| Sterile tray | |||
| Tube Rotator | MaCSmix | ||
| Antibodies and Kits | Antibody ID | ||
| Anti-E-cadherin | BD Biosciences | 610181 | RRID:AB_3975 |
| Anti-KI67 | Santa Cruz | 23900 | RRID:AB_627859) |
| Anti-NANOG | Peprotech | 500-P236 | RRID:AB_1268274 |
| Anti-OCT4 | Abcam | ab19857 | RRID:AB_44517 |
| Anti-SOX2 | Millipore | AB5603 | RRID:AB_2286686 |
| Anti-SSEA-4 | Cell Signaling | 4755 | RRID:AB_1264259 |
| Anti-TRA-1-60 | Cell Signaling | 4746 | RRID:AB_2119059 |
| Goat Anti-Mouse Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher Scientific | A-11029 | RRID:AB_2534088 |
| Goat Anti-Rabbit Alexa Fluor 568 | Thermo Fisher Scientific | A-11036 | RRID:AB_10563566 |
| Tunel Assay Kit | Abcam | 66110 |
References
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