Summary
Представлен протокол для записи циклов восстановления мышечной скорости (MVRCs), новый метод изучения свойств мышечной мембраны. MVRCs позволяют in vivo оценку потенциала мышечной мембраны и изменения в функции ионного канала мышц в связи с патологией, и это позволяет демонстрацию деполяризации мышц в нейрогенных мышц.
Abstract
Хотя обычные исследования нервной проводимости (NCS) и электромиографии (ЭМГ) подходят для диагностики нервно-мышечных расстройств, они предоставляют ограниченную информацию о свойствах мембраны мышечного волокна и основных механизмах заболевания. Циклы восстановления мышечной скорости (MVRCs) иллюстрируют, как скорость потенциала мышечного действия зависит от времени после предыдущего потенциала действия. MVRCs тесно связаны с изменениями в мембранном потенциале, которые следуют потенциал действия, тем самым предоставляя информацию о свойствах мембраны мышечного волокна. MVRCs могут быть записаны быстро и легко путем прямой стимуляции и записи из нескольких волоконных расслоений in vivo. MVRCs были полезны в понимании механизмов болезни в нескольких нервно-мышечных расстройств. Исследования у пациентов с channelopathies продемонстрировали различные эффекты конкретных мутаций ионного канала на возбудимость мышц. MVRCs были ранее протестированы у пациентов с нейрогенными мышцами. В этом предыдущем исследовании, период относительной преломления мышц (MRRP) был продлен, и ранние сверхнормальные (ESN) и поздней супернормальности (LSN) были сокращены у пациентов по сравнению со здоровым ими контроля. Таким образом, MVRCs может обеспечить in vivo доказательства деполяризации мембраны в нетронутых человеческих мышечных волокон, которые лежат в основе их снижение возбудимости. Представленный здесь протокол описывает, как записывать MVRCs и анализировать записи. MVRCs может служить в качестве быстрого, простого и полезного метода для выявления механизмов заболевания в широком диапазоне нервно-мышечных расстройств.
Introduction
Исследования нервной проводимости (NCS) и электромиографии (ЕМГ) являются обычными электрофизиологическими методами, используемыми для диагностики нервно-мышечных расстройств. NCS позволяет обнаружить аксональной потери и демиелинизм в нервах1, в то время как ЭМГ может дифференцировать ли миопатия или нейрогенные изменения присутствуют в мышце из-за повреждения нерва. Тем не менее, NCS или EMG предоставляют ограниченную информацию о свойствах мембраны мышечного волокна и основных механизмов заболевания. Эта информация может быть достигнута с помощью внутриклеточных электродов в изолированных мышцах от биопсии мышц2,3,4. Тем не менее, это имеет клиническое значение для использования методологий с использованием записей из нетронутых мышц у пациентов.
Скорость второго действия мышечного волокна потенциальноизменения в качестве функции задержки после первых5, и эта функция восстановления скорости (или цикл восстановления) было показано, что изменения в дистрофических или деверватированных мышц. Выход таких записей из одномышечных волокон был, однако, слишком низким, чтобы быть в использовании в качестве клинического инструмента6. Тем не менее, З'Грагген и Босток позже обнаружили, что мульти-волоконные записи, полученные путем прямой стимуляции и записи из того же пучка мышечных волокон, обеспечивают быстрый и простой метод получения таких записей in vivo7. Последовательность парных импульсных электрических стимулов с различными интервалами интерстимула (ISIs) используется в этом методе7,8,9,10,11.
Оцененные параметры MVRC включают в себя следующее: 1) мышечный относительный огнеупорный период (MRRP), который является длительностью после потенциала мышечного действия до следующего потенциала действия может быть получен; 2) ранняя сверхнормальность (ESN); и 3) поздняя сверхнормальность (LSN). ESN и LSN – это периоды после огнеупорного периода, в течение которого потенциалы действия проводятся вдоль мышечной мембраны быстрее, чем обычно. Деполяризующий afterpotential, и накопление калия в т-трубах мышцы соответственно, предположили в качестве основных причин для двух периодов сверхнормальности.
Широкая применимость MVRCs к мышечным расстройствам было показано в обнаружении мембранной деполяризации в ишемии7,10,12 и почечной недостаточности13, а также предоставление информации о мышечной мембраны аномалии при критических заболеваний миопатии14 и включения тела миозит15. Частота рампы и прерывистый 15 Гц и 20 Гц моделирования протоколы с тех пор были введены. MVRCs, вместе с этими дополнительными протоколами, продемонстрировали различные эффекты на возбудимости мышечной мембраны, связанные с потерей функции или усиления функции мутаций в различных ионных каналов мышц в наследственных ионных каналов (т.е. натриевый канал миотонии, парамиотония congenita16, миотоническая дистрофия17, Андерсен-Tagenawil18, и миотонияconit0.
В недавнем исследовании, применимость MVRCs к нейрогенным мышцам было показано в первый раз. Термин "нейрогенная мышца" относится к вторичным изменениям в скелетных мышцах, которые развиваются как денервация и реиннервация после любого повреждения передних клеток рога или моторных аксонов. Денервация характеризуется в ЭМГ как спонтанная активность (т.е. фибрилляция и положительные острые волны), в то время как крупные потенциалы моторных единиц с длительной длительностью и повышенной амплитудой настоящего реиннервации21. Изменения ЭМГ проявляются в отрицаемых мышцах, но основные клеточные изменения в потенциале мембраны мышечного волокна были продемонстрированы только в экспериментальных исследованиях на изолированной мышечной ткани2,3,4. MVRCs обеспечивают дальнейшее понимание in vivo человеческих мышечных мембранных свойств в отношении процесса денервации.
В настоящем документе подробно описывается методология МВРЦ. Он также обобщает изменения в нейрогенных мышц в подгруппе пациентов из ранее сообщалось исследования22 и здоровых субъектов контроля, что позволяет определить, является ли метод подходит для запланированного исследования.
Записи выполняются с помощью протокола записи, который является частью программного обеспечения. Другое используемое оборудование представляет собой изолированный линейный биполярный стимулятор постоянного тока, шумоподалин 50 Гц, изолированный усилитель электромиографии и аналог цифрового преобразователя.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все субъекты должны предоставить письменное согласие до рассмотрения, и протокол должен быть одобрен соответствующим местным советом по этике. Все описанные здесь методы были одобрены Региональным комитетом по научной этике и Датским агентством по защите данных.
1. Подготовка предмета
- Оцените медицинские истории субъектов, чтобы убедиться, что они не имеют каких-либо предыдущих расстройств нервной системы, кроме группы болезни, которые будут исследованы.
- Подробно сообщите субъекту об экзаменах и попросите получить письменное согласие.
- Сообщите субъекту о вставке двух игл в мышцу ноги и о том, что мышечные волокна будут стимулироваться слабым током.
- Объясните, что ощущение может чувствовать себя немного неприятно.
- Сообщите субъекту, что стимуляция может быть немедленно отключена в любой момент во время записи в случае какого-либо дискомфорта.
- Очистите нижнюю ногу субъекта с алкоголем.
- Вставьте стимулирующий монополярный электрод иглы (25 мм х 26 G) над передней мышцей и клеевым поверхностным электродом в виде анода 1 см дистальной к монополярной игле(рисунок 1).
- Поместите молотый электрод дистальный к аноду.
- Вставьте запись концентрического электрода иглы (25 мм х 30 G) около 2 см проксимальна к стимулирующему монополярному электроду иглы вдоль мышечных волокон(рисунок 1).
- Соедините концентрическую иглу записи и молотые электроды к преусилительу.
- Попросите испытуемую хранить молчание и избегать передвижения во время осмотра.
- Нулевой выход стимулятора и подключить стимулирующие электроды к стимулятору(Рисунок 1).
- Поддерживайте температуру кожи между 32-36 градусов по Цельсию с помощью нагревающей лампы.
2. Запись МВРК
- Запустите полуавтоматизированное программное обеспечение для записи с помощью протокола записи возбудимости мышц и включите стимулятор. Стимуляция начнется в 2,5 мА с 1 Гц.
- Увеличьте интенсивность стимулов вручную, нажав клавишу Insert до тех пор, пока не будет зафиксирован ответ (максимум 10 мА).
- Отрегулируйте стимулирующие и записывающие иглы при необходимости, до записи приемлемого ответа с интенсивностью стимула менее 10 мА. Форма потенциала мышечного действия должна быть трипхасической, если это возможно, и стабильной. Избегайте больших подергивания всей мышцы.
- Инвертировать потенциал мышечного действия, попав в минус ключ (-) если потенциал появляется с ног на голову.
ПРИМЕЧАНИЕ: на экране появляется пурпурная горизонтальная линия, указывающая на ширину потенциала действия.
- Отрегулируйте положение и длину пурпурной линии, перетащив линию с помощью мыши. Зеленая горизонтальная линия представляет базовую линию.
- Нажмите OK, чтобы начать запись MVRCs.
- Выберите отношение реакции стимула от основных вариантов.
- Увеличьте интенсивность стимулов, нажав клавишу Insert максимум 10 мА или терпимо.
- Нажмите OK, чтобы начать спуск кривой реакции стимула.
- Нажмите OK, когда тест стимул достигает нуля.
- Установите интенсивность стимула до уровня для стабильной задержки.
- Нажмите OK, чтобы вернуться в основное меню.
- Выберите опцию 1/2/5 кондиционирования стимулы для RC.
- Выберите протокол из вариантов цикла восстановления (например, начните цикл быстрого восстановления (пропустить альтернативные задержки), который является по умолчанию.
ПРИМЕЧАНИЕ: Запись продолжается автоматически в течение 34 шагов с уменьшением межстимулирующих интервалов (ISI). - Убедитесь, что потенциал мышечного действия стабилен во время записи и что игла не переехала. Экран автоматически изменяется на основные параметры, когда 34 шага завершены.
- Нажмите на запись Готово (ru) Закрыть файл OK,если наращивание частоты или 20 Гц записи выполняется.
- Закончите запись и сохраните данные, нажав на кнопку Close и сохраните кнопку данных.
3. Анализ MVRC
- Запустите программное обеспечение для анализа в автономном режиме.
- Выберите запись, которая будет проанализирована, и нажмите на кнопку OK.
- Нажмите на параметры загрузки из меню Файлов.
- Выберите вариант MANAL9 для анализа. Если этого нет в списке, нажмите на Browse, чтобы найти этот файл. Нажмите OK, чтобы продолжить.
- Когда появляется описание анализа возбудимости мышц MAnal9, нажмите OK, чтобы продолжить.
- Инвертировать потенциал мышечного действия, введя ММ-1, если потенциал появляется с ног на голову.
- Нажмите на мышь, чтобы сделать пурпурную линию видимой. Установите окно к основанию пикового ответа и с шириной, соответствующей примерно ширине потенциала действия на этой высоте. Перетащите с помощью мыши, чтобы настроить окно. Окно определяет просрочку, в пределах которой измеряются высота и задержка, как указано бледно-голубыми линиями, а зеленая линия указывает базовую линию. Нажмите OK, чтобы продолжить.
- Нажмите OK, чтобы переизмерить опоздания и пики. Это будет сделано автоматически.
ПРИМЕЧАНИЕ: При отображении переизмеримых просрочки, просрочки измеряются более короткими задержками, чем первоначальные. Это потому, что ответы на кондиционирования стимулы только были вычтены из ответов на кондиционирование плюс тест. Это гарантирует, что стимулы кондиционирования не мешают измерениям задержки. Как указано в быстрой коробке, один плохие точки могут быть устранены путем позиционирования курсора (вертикальная красная линия) над точкой и удара по ключу. Плохая точка заменяется средним значением по обе стороны в одном канале. Если нет плохих точек, установите DE (конец дисплея) сразу после последней задержки требуется. - Нажмите OK, чтобы создать файл RMC.
- Игнорировать большинство вариантов, появляющихся в форме "Создать RCC или RMC", так как они касаются измерений C-волокна, а не MVRCs. Нажмите Сохранить и выход продолжать. После сохранения файла RMC, быстрая коробка предоставляет различные варианты
- Если были записаны данные частотного пандуса и/или повторяющихся данных стимуляции, следуйте инструкциям по их анализу. В противном случае выберите Перейти прямо для создания опции файла MEM для создания файла MEM. Нажмите OK, чтобы продолжить.
- Нажмите Сохранить и выйти, чтобы продолжить.
- Нажмите OK, чтобы добавить данные RMC в файл MEM.
- Нажмите Добавить из файла Ввода RMC, чтобы добавить эти данные в файл MEM, а затем изменить каталог, чтобы сохранить составной файл MEM. Затем нажмите Сохранить и выйти, чтобы сохранить его.
- Нажмите OK, чтобы сохранить измеренный файл ЗД, чтобы позволить дифференциацию от исходного файла ЗД с помощью знака «Кью».
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Следующие результаты были получены в подгруппе пациентов из недавнего исследования22, в котором были fibs / psws во всех сайтах, показывающих обильные активности денервации. Результаты показали, что изменения в мышечных волокнах после денервации были оценены in vivo с использованием метода MVRC, описанного в этом протоколе. MVRCs показали изменения, согласующиеся с деполяризацию мембранного потенциала отдыха в нейрогенных мышечных волокон.
Четырнадцать пациентов были сопоставлены с 29 здоровыми субъектами. Демография объектов отображается в таблице 1. Рисунок 2 иллюстрирует записи от здорового субъекта и пациента. Рисунок 3 и таблица 2 иллюстрируют сравнение МВРК пациентов со здоровыми предметами. MRRP был продлен, и ESN и LSN были сокращены у пациентов по сравнению со здоровыми контроля(Таблица 2, Рисунок 3).
Рисунок 1: Изображение MVRCs настройки. (A) Изолированный линейный биполярный постоянный ток стимулятор, (B) 50 Гц шумоподаим, (C) изолированный усилитель ЭМГ, и (D) аналог-цифровой преобразователь. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Примеры записей MVRC. Записи после одного кондиционирования стимул (красный), два кондиционирования стимулы (зеленый), и пять кондиционирования стимулы (синий) от (A) здоровый предмет и (B) пациента с L5 радикулопатии. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: MVRCs с одним, двумя и пятью стимулами кондиционирования. (A) MVRCs в 14 пациентов (серые линии) по сравнению со средним значением 29 здоровых элементов управления (заполненные черные квадраты). Графическое представление процентного изменения задержки построено против ИСИ от 2–1000 мс (логарифмическая шкала). (B, C): То же самое, как (A), но с двумя и пятью стимулами кондиционирования. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
| Здоровые элементы управления (n'29) |
Пациентов (n'14) |
|
| Возраст (годы) | 55,7 и 14,9 | 58,9 и 16,3 |
| Пол (M/F) | 14/15 | 9/5 |
| Продолжительность заболевания (месяцы) | - | 3,4 и 2,7 |
| Оценка MRC | - | 3,0 и 1,1 |
| Этиологии | - | Перональная невропатия (9) L5 корня afflication |
Таблица 1: Демография и клинические характеристики. Значения перечислены в качестве средств и стандартного отклонения. Эта таблица была изменена от Witt et al.22.
| Здоровые элементы управления (n'29) |
Пациентов (n'14) |
p-значение для t-теста | |
| MRRP (ms) | 3,5 и 0,4 | 7,6 и 3,1 | р 6,8-8 |
| ESN (%) | 11.3 и 2.1 | 7,6 и 2,3 | р 5,5-5 |
| ESN (ms) | 7,8 и 1,3 | 12,7 и 2,5 | р 1,6-8 |
| 5ESN (%) | 13,7 и 2,5 | 1,0 и 0,6 | стр. 9,3-10 |
| LSN (%) | 4.1 и 1,4 | 2,8 и 1,7 | р 0,017 |
| XLSN (%) | 2,9 и 0,7 | 1,0 и 1,6 | стр. 1,8-10 |
| 5XLSN (%) | 8,0 и 1,4 | 2,8 и 1,6 | р 2,2-11 |
Таблица 2: Сравнение параметров MVRC между здоровым и пациентами. MRRP - мышечный относительный рефракционный период; ESN (%) - сокращение задержки потенциала мышечного действия после одного стимула кондиционирования в процентах от некондиционированного стимула на ISI из lt;15 ms. ESN (мс), ISI, соответствующий ESN (%). 5ESN - пик ранней сверхнормальности после пяти стимулов кондиционирования. LSN (%) - сокращение задержки потенциала мышечного действия после одного стимула кондиционирования в процентах от безусловных стимулов на ISI между 100-150 мс. XLSN (%) - сокращение задержки потенциала мышечного действия после двух стимулов кондиционирования в процентах от одного стимула кондиционирования на ISI между 100-150 ms. 5XLSN (%) - сокращение задержки мышечного действия потенциал после пяти стимулов кондиционирования в процентах от одного кондиционирования стимулна на ISI между 100-150 ms. Значения перечислены в качестве средств стандартного отклонения.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
MVRCs, как запрограммировано в программном обеспечении для записи, является высокоавтоматизированной процедурой, но для получения надежных результатов необходимо внимательное обслуживание. На этапе записи, при регулировке игл, важно, чтобы избежать стимулирования зоны конца пластины или нерва. Это обычно приводит к большим дергается всей мышцы, что увеличивает риск смещения стимуляции и / или записи иглы во время записи MVRCs. На сегодняшний день метод применяется к нескольким мышцам, которые лучше описали зону конечных пластин; однако, endplates могут быть рассеяны (т.е., в передней мышце tibial). Поэтому требуется особое внимание.
Для того, чтобы избежать стимуляции endplate или нерва вместо мышечных волокон, следует принимать меры при наблюдении мышцы для дергается. Стимулирующая монополярная игла должна быть перемещена, а также запись концентрической иглы, чтобы найти сайт, который не вызывает дергается. Кроме того, испытуемых следует спросить, чувствуют ли они боль. Записи MVRC не вызывают никаких неприятностей, если зона конечной пластины или нерв не стимулируется вместо мышечных волокон.
Ограничение метода MVRCs выполняет запись только в одном месте и изучение только несколько мышечных волокон, которые не обязательно представляют собой всю мышцу. Это ограничение особенно важно при расстройствах, при которых патология не рассеивается. Предыдущее исследование показало, удивительно никакой разницы между пациентами с боковой амиотрофический склероз и здоровый контроль, несмотря на denervated мышц. Вероятно, это было связано с тем, что активность денервации не была зафиксирована на месте, где были зарегистрированы23MVRC. Нельзя также исключать, что игла могла быть приспособлена к более здоровому месту с более оптимальным ответом.
Еще одно ограничение MVRCs является то, что один может иметь тенденцию к выявлению здоровых мышечных волокон при регулировке записи иглы для получения стабильного ответа для измерений. Одним из способов преодоления этого ограничения может быть сделать записи из полифазных потенциалов. Однако это может создать проблемы для определения точной задержки, если есть недифференцированные пики. Кроме того, хотя мы намерены стимулировать и записывать из того же пучка мышечных волокон, они не могут быть точно такими же. Стимулируемый пучок может содержать различные волокна во время продолжающегося эксперимента24.
MVRCs предоставить информацию, которая не может быть получена с помощью обычных электрофизиологических методов. Таким образом, в текущем использовании нет другого метода, который можно было бы сравнить с MVRCs. Предыдущий доклад6, используя одноволокно иглы электродов для записи на двух участках из того же мышечного волокна, было гораздо сложнее. Хорошие записи были получены только из 43 из 118 исследований мышечного волокна, и этот метод не был принят в исследовательских лабораториях или клиниках. Другой подобный, но неавтоматизированный подход использовал восемь различных ИСИ от 20 мс до 2 мс25. Авторы сообщили, что запись заняла 20–60 минут, в то время как этот метод записывает MVRCs с 34 ISIs примерно за 10 минут. Анализ также быстрый и высокоавтоматизированный.
В заключение, MVRCs является методом, который может предоставить бесценную информацию, чтобы понять основные механизмы нервно-мышечных расстройств. Для пациентов, в которых была выявлена мутация в гене ионного канала, этот метод также предоставляет данные о влиянии этих специфических мутаций на возбудимость мышечной мембраны in vivo. Это, наряду с исследованиями экспрессии in vitro, позволяет более точно понять мышечную патофизиологию у этих пациентов. Этот метод имеет потенциал, чтобы обеспечить понимание роли этих каналов в нормальной физиологии мышц, тем самым улучшая понимание мышечных заболеваний в целом. Необходимы дальнейшие исследования с другими группами пациентов и более крупными группами. Исследования записи MVRCs в различных мышцах также оправдано.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
H.B. получает роялти от UCL за продажу своего программного обеспечения, используемого в данном исследовании. У других авторов нет потенциальных конфликтов интересов. Все авторы одобрили заключительную статью.
Acknowledgments
Это исследование было финансово поддержано в основном двумя грантами от Фонда Лундбека (Грант номер R191-2015-931 и Грант номер R290-2018-751). Кроме того, исследование было финансово поддержано Novo Nordisk Foundation Challenge Program (Грант номер NNF14OC0011633) в рамках Международного консорциума диабетической нейропатии.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 50 Hz Noise Eliminator | Digitimer Ltd | Humbug | |
| Analogue-to-Digital Converter | National Instruments | NI-6221 | |
| Analysing software program | Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London) | QtracP, MANAL9 | |
| Disposable concentric needle electrode, 25 mm x 30G | Natus | Dantec DCN | |
| Disposable monopolar needle electrode, 25 mm x 26G | Natus | TECA elite | |
| Isolated EMG amplifier | Digitimer Ltd | D440 | |
| Isolated linear bipolar constant-current stimulator | Digitimer Ltd | DS5 | |
| Software and recording protocol | Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London) | QtracW software, M3REC3 recording protocol written by Hugh Bostock, Istitute of Neurology, London, UK) |
References
- Tankisi, H., et al. Pathophysiology inferred from electrodiagnostic nerve tests and classification of polyneuropathies. Suggested guidelines. Clinical Neurophysiology. 116 (7), 1571-1580 (2005).
- Gregorio, C. C., Hudecki, M. S., Pollina, C. M., Repasky, E. A. Effects of denervation on spectrin concentration in avian skeletal muscle. Muscle and Nerve. 11 (4), 372-379 (1988).
- Kotsias, B. A., Venosa, R. Role of sodium and potassium permeabilities in the depolarization of denervated rat muscle fibers. Journal of Physiology. 392, 301-313 (1987).
- Kirsch, G. E., Anderson, M. F. Sodium channel kinetics in normal and denervated rabbit muscle membrane. Muscle and Nerve. 9 (8), 738-747 (1986).
- Stalberg, E. Propagation velocity in human muscle fibers in situ. Acta Physiologica Scandinava Supplementum. 287, 1 (1966).
- Mihelin, M., Trontelj, J. V., Stalberg, E. Muscle fiber recovery functions studied with double pulse stimulation. Muscle and Nerve. 14 (8), 739-747 (1991).
- Z'Graggen, W. J., Bostock, H. Velocity recovery cycles of human muscle action potentials and their sensitivity to ischemia. Muscle and Nerve. 39 (5), 616-626 (2009).
- Bostock, H., Tan, S. V., Boerio, D., Z'Graggen, W. J. Validity of multi-fiber muscle velocity recovery cycles recorded at a single site using submaximal stimuli. Clinical Neurophysiology. 123 (11), 2296-2305 (2012).
- Z'Graggen, W. J., Troller, R., Ackermann, K. A., Humm, A. M., Bostock, H. Velocity recovery cycles of human muscle action potentials: repeatability and variability. Clinical Neurophysiology. 122 (11), 2294-2299 (2011).
- Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. Sarcolemmal excitability changes in normal human aging. Muscle and Nerve. 57 (6), 981-988 (2018).
- Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. Physiological differences in sarcolemmal excitability between human muscles. Muscle and Nerve. 60 (4), 433-436 (2019).
- Humm, A. M., Bostock, H., Troller, R., Z'Graggen, W. J. Muscle ischaemia in patients with orthostatic hypotension assessed by velocity recovery cycles. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 82 (12), 1394-1398 (2011).
- Z'Graggen, W. J., et al. Velocity recovery cycles of human muscle action potentials in chronic renal failure. Clinical Neurophysiology. 121 (6), 874-881 (2010).
- Z'Graggen, W. J., et al. Muscle membrane dysfunction in critical illness myopathy assessed by velocity recovery cycles. Clinical Neurophysiology. 122 (4), 834-841 (2011).
- Lee, J. H., Boland-Freitas, R., Liang, C., Ng, K. Sarcolemmal depolarization in sporadic inclusion body myositis assessed with muscle velocity recovery cycles. Clinical Neurophysiology. 19 (31205-2), 1388 (2019).
- Tan, S. V., Z'Graggen, W. J., Hanna, M. G., Bostock, H. In vivo assessment of muscle membrane properties in the sodium channel myotonias. Muscle and Nerve. 57 (4), 586-594 (2018).
- Tan, S. V., et al. In vivo assessment of muscle membrane properties in myotonic dystrophy. Muscle and Nerve. 54 (2), 249-257 (2016).
- Tan, S. V., et al. Membrane dysfunction in Andersen-Tawil syndrome assessed by velocity recovery cycles. Muscle and Nerve. 46 (2), 193-203 (2012).
- Tan, S. V., et al. Chloride channels in myotonia congenita assessed by velocity recovery cycles. Muscle and Nerve. 49 (6), 845-857 (2014).
- Boland-Freitas, R., et al. Sarcolemmal excitability in the myotonic dystrophies. Muscle and Nerve. 57 (4), 595-602 (2018).
- Stalberg, E., et al. Standards for quantification of EMG and neurography. Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1688-1729 (2019).
- Witt, A., et al. Muscle velocity recovery cycles in neurogenic muscles. Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1520-1527 (2019).
- Kristensen, R. S., et al. MScanFit motor unit number estimation (MScan) and muscle velocity recovery cycle recordings in amyotrophic lateral sclerosis patients. Clinical Neurophysiology. 130 (8), 1280-1288 (2019).
- Marrero, H. G., Stalberg, E. V. Optimizing testing methods and collection of reference data for differentiating critical illness polyneuropathy from critical illness MYOPATHIES. Muscle and Nerve. 53 (4), 555-563 (2016).
- Allen, D. C., Arunachalam, R., Mills, K. R. Critical illness myopathy: further evidence from muscle-fiber excitability studies of an acquired channelopathy. Muscle and Nerve. 37 (1), 14-22 (2008).
