Summary
El protocolo presenta un modelo murino completo validado inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn y métodos para la visualización de receptores de estrógeno por inmunohistoquímica utilizando inmunofluorescencia de secciones de colon fijas en formalina incrustadas en parafina.
Abstract
La enfermedad de Crohn es el tipo más diagnosticado de enfermedad inflamatoria intestinal. La inflamación crónica que se desarrolla en el intestino conduce al trastorno de peristalsis y al daño de la mucosa intestinal y parece estar asociada con un mayor riesgo de transformación neoplásica del colon. La evidencia acumulada indica que los estrógenos y los receptores de estrógenos afectan no sólo los tejidos sensibles a las hormonas, sino también otros tejidos no directamente relacionados con los estrógenos, como los pulmones o el colon. Aquí, describimos el protocolo para la correcta tinción de inmunofluorescencia de receptores de estrógeno en el colon obtenido de un modelo murino de la enfermedad de Crohn inducida por TNBS. Se proporciona un protocolo detallado para la inducción de la enfermedad de Crohn en ratones y la preparación intestinal, así como un procedimiento inmunohistoquímico paso a paso utilizando secciones intestinales fijas en parafina fijas en formalina. Los métodos descritos no sólo son útiles para la detección de receptores de estrógeno y la investigación de señalización de estrógeno in vivo, sino que también se pueden aplicar a otras proteínas que pueden estar implicadas en el desarrollo de la colitis.
Introduction
La enfermedad de Crohn (CD) es una enfermedad inflamatoria intestinal (EII) que se manifiesta como inflamación del intestino crónico. La etiología de la CD no se entiende bien, pero hay algunos factores importantes que parecen ser responsables del desarrollo de la CD, incluida la microbiota intestinal, y los factores genéticos y ambientales, como la dieta o el estrés1. Para una mejor comprensión de la patogénesis de la enfermedad de Crohn, se han utilizado varios modelos de inflamación intestinal2,3,4,5,6,7. En este artículo, presentamos resultados obtenidos de un modelo murino inducido por ácido sulfónico (TNBS) de 2,4,6-trinitrobenzeno(TNBS) de CD.
Se ha documentado que los estrógenos son capaces de modular la inflamación intestinal crónica8,9,10,11,12. La actividad biológica de los estrógenos está mediada por receptores cognados, entre los que se encuentran los receptores de estrógeno nuclear (ER), es decir, eRE (gen ESR1)y ER ( gen ESR2), así como el receptor de estrógeno acoplado a proteínas G, es decir, GPER (gen GPER1),denominado ER13,,14. Hay varios métodos para determinar el nivel de receptores de estrógeno, pero sólo unos pocos se pueden utilizar para visualizarlos en el intestino.
La inmunohistoquímica (IHC) es un método ampliamente utilizado en estudios clínicos y básicos para la detección de ciertos antígenos en células o tejidos con anticuerpos conjugados con fluorocromo. IHC parece ser un método importante en la visualización de la estructura tisular, así como en la identificación y localización de proteínas específicas, que pueden ser cruciales para entender el desarrollo de la colitis. Aquí, presentamos un protocolo completo y validado para la visualización inmunohistoquímica de receptores de estrógeno en el intestino utilizando inmunofluorescencia.
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Protocol
Los estudios en animales se llevaron a cabo con el consentimiento del Comité ético local (28/B29/2016) de conformidad con la Directiva 2010/63/UE del Parlamento Europeo y del Consejo, de 22 de septiembre de 2010, y las recomendaciones institucionales.
1. Modelo murino inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn
NOTA: Este protocolo utiliza ratones macho sABA/C con un peso de 25-28 g. Los animales se alojan a una temperatura constante (22-24 oC) y, humedad relativa de 55 a 5%, y se mantienen en un ciclo de luz/oscuridad de 12 h con acceso gratuito a pellets de chow estándar y agua del grifo ad libitum.
- Coloque el ratón en la cámara de inducción y cierre bien la tapa. Anestetizar el ratón brevemente con isoflurano (25% O2 con O2 caudal a 1,5-2 L/min).
NOTA: La frecuencia respiratoria debe permanecer rítmica y más lenta de lo normal y no debe cambiar en respuesta a un estímulo nocivo. - Inculcar 4 mg de TNBS en 0,1 ml de etanol 30% en 0,9% de NaCl o 0,1 ml de etanol al 30% en 0,9% de NaCl como control del vehículo en el colon distal a través de un catéter.
NOTA: El catéter debe introducirse cuidadosamente aproximadamente 3 cm en el ano. - Supervise el ratón diariamente del día dos al ocho para conocer los parámetros clínicos, como el peso corporal, el sangrado rectal, la consistencia de las heces y la mortalidad.
- En el octavo día, eutanasia el ratón por luxación cervical.
Figura 1: Cronología del modelo murino inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
2. Separación y evaluación macroscópica del colon
NOTA: Un día antes de la separación del colon, diluir 100 ml de antibiótico en 1 ml de solución salina tampón de fosfato (PBS) y dejar a 4 oC durante la noche.
- Limpie la piel sobre el abdomen con 75% de etanol y gasa estéril.
- Corta la pared abdominal del esternón al ano usando tijeras y pinzas estériles.
- Cortar el colon lo más cerca posible del ano y el cecum.
- Coloque el colon en el plato Petri. Corta los dos puntos desde el ano hasta el extremo del cecum. Limpie y lave el colon 2-4 veces en solución fría de antibiótico-PBS.
- Realice una evaluación macroscópica utilizando una pinza según la Tabla 1.
NOTA: La adhesión de los tejidos* y el eritema/hemorragia,#lasangre fecal y ladiarrea están sujetos a evaluación visual. * La adhesión tisular se evalúa utilizando una escala de tres puntos (0: colon sin adherencia tisular, 1: colon con adhesión moderada de tejido, 2: colon con adhesión tisular extensa); •basado en ausencia (0) o presencia (1) de eritema/hemorragia, sangre fecal y diarrea.
| Adhesión* | Eritema/hemorragia? | Sangre fecal? | Diarrea? | Duración de la úlcera | Grosor del colon | Longitud del colon |
| puntos (0 – 2) | puntos (0 – 1) | puntos (0 – 1) | puntos (0 – 1) | cm/puntos | mm/puntos | cm/puntos |
| 0 – ausente | 0 – ausente | 0 – ausente | 0 – ausente | 0,5 cm a 0,5 puntos | n mm n puntos | 0 – <10% más corto que el control |
| 1 – moderado | 1 – presente | 1 – presente | 0.5 – heces ligeras/sueltas | 1 – de 10 a 20% más corto que el control | ||
| 2 – presente | 1 – presente | 2 – más del 20% más corto que el control |
Tabla 1: Puntuación macroscópica del intestino de los ratones con el modelo inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn.
- Convertir la longitud de la úlcera en centímetros a una escala de puntos, es decir, cada 0,5 cm de úlcera se cuenta como 0,5 puntos. Convierta el grosor de los dos puntos en milímetros a una escala de puntos, es decir, cada n mm corresponde a n puntos.
- Convierta la longitud de los dos puntos en centímetros en una escala de tres puntos. La longitud de colon obtenida de cada ratón con la enfermedad de Crohn inducida por TNBS se evalúa en relación con la longitud media del colon para el grupo de control (0: <10% más corto que el control, 1: de 10 a 20% más corto que el control, 2: más de 20% más corto que el control).
- Calcular la puntuación macroscópica total de acuerdo con la ecuación: Puntuación macroscópica total - adhesión (puntos) + eritema /hemorragia (puntos) + sangre fecal (puntos) + diarrea (puntos) + longitud de la úlcera (puntos) + espesor del colon (puntos) + longitud del colon (puntos).
3. Preparación de la muestra de colon
- Cortar el colon en fragmentos de 1-2 cm y colocar cada uno en una esponja en un casete histológico debidamente etiquetado.
NOTA: Las esponjas para casetes histológicos evitan el plegado del colon durante la deshidratación y la incubación en parafina líquida. - Colocar el fragmento de colon en un 4% de formaldehído e incubar durante al menos 24 h a 4oC.
- Preparar y programar el procesador de tejidos para 1 h de incubación en 50%, 70%, 90%, 95%, 100% etanol, xileno/100% etanol (1:1; v/v), y xileno solamente, así como para al menos 3 h de incubación en parafina líquida.
NOTA: La deshidratación debe realizarse en concentraciones crecientes de etanol y xileno, pero la concentración de etanol puede modificarse. Se recomienda la mezcla de xileno/etanol, pero no es necesaria. - Transfiera el fragmento de colon a una caja histológica y colóquelo en el procesador de tejido preprogramado.
- Ejecuta el procesador de tejidos.
- Después de los pasos de incubación, coloque el fragmento de colon en un molde de metal para que los dos extremos del colon estén en posición vertical y llene un tercio del molde con parafina líquida.
- Coloque el molde en el área de enfriamiento (-5 oC) durante unos segundos y, a continuación, mueva el molde al área de calentamiento (70 oC). Colocar en la parte inferior de la caja histológica y cubrir todo el fragmento de colon con parafina líquida.
- Deje el molde metálico con el fragmento de colon en parafina durante unos minutos en el área de enfriamiento. Retirar el molde metálico del bloque de parafina e incubar durante al menos 24 h a 4oC.
- Retire el exceso de parafina del bloque e insértelo en un microtome rotativo totalmente automatizado.
NOTA: El bloque de parafina puede almacenarse a -20 oC durante unos minutos antes de este paso. - Cortar el fragmento de dos puntos en secciones de 5 m.
- Transfiera la sección de dos puntos a un baño de agua precalentado a 40 oC.
- Utilice el portaobjetos de vidrio etiquetado para eliminar la sección de dos puntos del baño de agua.
NOTA: Las secciones de dos puntos flotan en el agua. Coloque el portaobjetos de vidrio etiquetado en el agua debajo de la sección de dos puntos y retire el portaobjetos de vidrio con cuidado. - Deje el portacristales durante 24 horas a temperatura ambiente. Para un almacenamiento a largo plazo, mantenga el portaobjetos de vidrio a 4 oC después de 24 h de incubación a temperatura ambiente.
4. Inmunohistoquímica con tinción de inmunofluorescencia
NOTA: No permita que la sección de dos puntos se seque en ningún paso durante el procedimiento.
- Retire la parafina incubando el portaobjetos de vidrio en xileno durante 5 min. Repita este paso tres veces.
- Coloque el portaobjetos de vidrio en xileno/100% etanol (1:1; v/v) durante 5 min. Repita este paso tres veces.
- Rehidratar la sección del colon en una serie de concentraciones de etanol decrecientes, es decir, 70%, 50%, 30% y 10% etanol durante 5 min. Repita cada paso tres veces.
- Enjuague el portaobjetos de vidrio con agua corriente durante 5 min.
- Precalentar el tampón de recuperación de antígenos (10 mM de citrato de sodio; 0,05% Tween 20, pH 6.0) a 95-98 oC y calentar el deslizamiento de vidrio en solución de recuperación de antígeno hirviendo durante 10 minutos.
NOTA: El paso de recuperación de antígenos es opcional, pero se recomienda. La solución de desenmascaramiento debe optimizarse en función del anticuerpo utilizado en el experimento. - Dibuje un círculo alrededor de la sección del colon usando una pluma hidrófoba.
NOTA: Este paso es opcional, pero se recomienda. La pluma hidrófoba evita el desperdicio de reactivos manteniendo el líquido agrupado en un pequeño volumen en el interior marcado el círculo. - Incubar la sección en 3% solución de agua de hidrógeno peroxidasa durante 10 min.
- Lavar en solución de lavado (50 mM Tris-HCl, pH 7,4; 150 mM NaCl; 0,05% Tween 20) durante 5 min.
- Incubar en solución de bloqueo (5% de suero normal de cabra; 50 mM Tris-HCl, pH 7,4; 150 mM NaCl; 0,05% Triton X-100) durante 1 h a temperatura ambiente.
NOTA: En la solución de bloqueo, el suero normal debe ser de la misma especie que el anticuerpo secundario. En etapas donde se requiera incubación, coloque el portaobjetos de vidrio en una cámara de humedad para evitar una evaporación excesiva. - Retire la solución de bloqueo y agregue 20-50 l de anticuerpo primario contra ER, ER o GPER diluido en albúmina sérica bovina al 1% con 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl, 0.05% Triton X-100.
NOTA: Las diluciones recomendadas de anticuerpos primarios se muestran en la Tabla 2.
| Tipo de anticuerpo | Anticuerpo contra | Clonality | Especies anfitrionas | Reactividad de las especies | Dilución |
| Primaria | ER | Policlonal | Conejo | Humano | 1:100 |
| Ratón | |||||
| Tortuga | |||||
| Carpincho | |||||
| ER. | Policlonal | Conejo | Humano | ||
| Mono | |||||
| Rata | |||||
| Ratón | |||||
| Ovejas | |||||
| Cerdo | |||||
| GPER | Policlonal | Conejo | Humano | ||
| Rata | |||||
| Ratón | |||||
| Secundaria | DyLight 650 | Policlonal | Cabra | Conejo | 1:250 |
Tabla 2: Características de los anticuerpos.
- Incubar con anticuerpo primario durante la noche a 4oC en la oscuridad.
- Retire la solución de anticuerpos y lave en solución de lavado (50 mM Tris-HCl, pH 7.4; 150 mM NaCl; 0.05% Tween 20) durante 5 min. Repita este paso tres veces.
- Añadir 20-50 l de anticuerpo secundario DyLight 650 diluido en albúmina sérica bovina al 1% (que contiene 50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM de NaCl, 0,05% de tritón X-100). Incubar con anticuerpo secundario conjugado con tinte durante 1 h a temperatura ambiente en la oscuridad.
NOTA: La dilución recomendada del anticuerpo secundario se muestra en la Tabla 2. - Retire la solución de anticuerpos y lave en solución de lavado (50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl, 0.05% Tween 20) durante 5 min. Repita este paso tres veces.
- Añadir 2% DiOC6(3) diluido en 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl e incubar durante 10 min a temperatura ambiente en la oscuridad.
- Retire la solución y lave en solución de lavado (50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl, 0.05% Tween 20) durante 5 min. Repita este paso tres veces.
- Agregue unas gotas de líquido a base de glicerol con DAPI directamente en la sección del colon y cubra cuidadosamente con una diapositiva de cubierta. Incubar la sección de dos puntos durante al menos 24 h a 4oC.
NOTA: Evite las burbujas de aire al cubrir el tejido con el portaobjetos de la cubierta. - Analice la sección del colon bajo microscopio confocal con objetivos 20x o 63x e inmersión en aceite utilizando software dedicado.
NOTA: En la Tabla 3 se enumeran las características de los fluorocromos utilizados en este estudio.
| Tipo de fluorochome | Longitud de onda (nm) | Tinte | |
| Excitación | Emisión | ||
| Dapi | 405 | 460 – 480 | Azul |
| DiOC6 (3) | 485 | 538 – 595 | Verde |
| DyLight 650 | 654 | 660 – 680 | Rojo |
Tabla 3: Características de los fluorocromos.
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Representative Results
Características macroscópicas de los colones en ratones con enfermedad de Crohn inducida por TNBS
En la Figura 2se muestran imágenes representativas de colones tomados del control y ratones tratados con TNBS. En ratones con un modelo inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn, la longitud del colon se reduce mientras aumenta el ancho del colon.
Figura 2: Colon representativo obtenido de los ratones de control (control) y ratones tratados con TNBS (TNBS). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Los parámetros macroscópicos evaluados se indican en el Cuadro 1. La administración de TNBS a ratones conduce a un aumento en la puntuación macroscópica colónica total(Figura 3A)y la longitud de la inflamación (Figura 3B) en relación con los ratones de control.
Figura 3: Puntuación macroscópica total del colon (A) y la longitud total de la inflamación colónica (B) en ratones de control (control) y ratones tratados con TNBS (TNBS). Diez ratones por grupo. El análisis estadístico se realizó utilizando ANOVA unidireccional seguido de la prueba post-hoc de Newman-Keuls. Los datos se presentan como medios : SEM; ***p < 0.001 TNBS frente al control. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Validación de anticuerpos del receptor de estrógeno
La validación de la especificidad de los anticuerpos del receptor de estrógeno utilizados en el estudio se realizó utilizando células MCF-7. Células MCF-7 fueron elegidos sobre la base de estudios previos en los que varios investigadores independientes encontraron que los receptores de estrógeno están presentes en los niveles de ARNm y proteínas. Como se muestra en la Figura 4, los anticuerpos utilizados en el estudio permiten la detección de ambos receptores de estrógeno nuclear, es decir, ER ( Figura4A) y ER ( Figura4B), así como el receptor de estrógeno ligado a la membrana, es decir, GPER(Figura 4C)en células MCF-7. Los receptores de estrógeno nuclear se localizan en el citoplasma y los núcleos, y la señal de la tinción GPER sólo está presente en el citoplasma de las células MCF-7.
Figura 4: Imágenes representativas de la tinción de inmunofluorescencia de eRE (A), ER (B) y GPER (C) en las células MCF-7. Descripción detallada en la parte superior de las imágenes. Barras de escala: 10 m. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Además del control positivo, también se realizó un control negativo, en el que sólo se utilizó el anticuerpo secundario. La Figura 5 muestra una imagen de células MCF-7 teñidas sólo con anticuerpos secundarios conjugados con fluorocromo y líquido a base de glicerol con DAPI.
Figura 5: Imagen representativa de la tinción de inmunofluorescencia de DyLight 650 en las células MCF-7. La descripción adicional está disponible encima de la imagen. Barras de escala: 20 m. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Localización del receptor de estrógeno en el modelo murino inducido por TNBS de la enfermedad de Crohn
Se encontró una fuerte señal citoplasmática de ER en la sección del colon obtenida de ratones y ratones de control con la enfermedad de Crohn inducida por TNBS(Figura 6A). Sin embargo, parece que sólo en el intestino obtenido de ratones de control había localizado ER en el citoplasma de células de copa. La microscopía confocal también reveló la localización citoplasmática de eRE en la sección de dos puntos de ratones tratados con TNBS(Figura 6B). Del mismo modo, la localización citoplasmática de GPER se documentó en la sección de colon obtenida de ratones de control y ratones tratados con TNBS(Figura 6C).
Figura 6: Imágenes representativas de la tinción de inmunofluorescencia de eRE (A), ER (B) y GPER (C) en la sección de colon obtenidas de ratones de control (control) y ratones tratados con TNBS (TNBS). La descripción adicional está disponible encima de cada imagen. Barras de escala: 50 m; barras de escala de zoom: 25 m. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
Existen numerosos modelos animales para el examen de la fisiopatología de la EII, incluidos los modelos genéticos, inmunológicos o espontáneos, así como los modelos15inducidos químicamente. Entre los varios tipos de modelos animales de colitis, los modelos inducidos químicamente como el modelo inducido por TNBS descrito en este protocolo, son relativamente baratos y fáciles de obtener. El modelo murino inducido por TNBS de la colitis tiene varios síntomas clínicos relacionados con la base patológica de la CD. Los animales con colitis inducida se caracterizan por la formación de heces inconsistentes, diarrea sangrante y pérdida de peso corporal. Sin embargo, esto no significa que este modelo se pueda utilizar para estudiar exclusivamente la etiopatogénesis cd. El modelo inducido por TNBS se recomienda y se utiliza comúnmente, por ejemplo, para posibles pruebas terapéuticas. En el caso de la colitis inducida químicamente, es necesario destacar algunos puntos críticos. El TNBS tiene que diluirse en etanol, lo que perturba la barrera mucosa y permite que TNBS penetre a través de la pared intestinal e interactúe con proteínas de alto peso molecular, lo que conduce a una respuesta inmune mediadacelularmente 2,,16,,17. Tanto la dosis de TNBS como la concentración de etanol deben optimizarse para la tensión y el peso del ratón. Una dosis demasiado alta de TNBS y la concentración de etanol pueden causar una mortalidad excesiva, lo que impide un análisis adicional. Por otro lado, una dosis demasiado baja de TNBS y la concentración de etanol pueden causar una respuesta deficiente y prolongar innecesariamente el experimento.
El intestino obtenido de ratones con colitis inducida por TNBS puede examinarse no sólo a nivel macroscópico, como se describe en este protocolo, sino que también puede utilizarse para el análisis bioquímico y molecular. Un enfoque útil para estudiar tanto la expresión como la localización es una técnica inmunohistoquímica con el uso de inmunofluorescencia. Sin embargo, algunos pasos críticos deben incluirse en la preparación e implementación de IHC para las secciones de colon urino fijada en parafina fijada por formalina. El primer paso pivotal, es decir, la preparación del colon determina la calidad de los resultados. El tiempo de fijación, que depende del espesor del tejido tiene que ser optimizado. Otra etapa crucial es la deshidratación, que debe realizarse suavemente mediante múltiples incubaciones en el aumento de las concentraciones de etanol. Finalmente, el posicionamiento correcto de los dos puntos en el molde es esencial para generar las secciones transversales correctas. La preparación de tejidos no es el único problema importante en la inmunohistoquímica. Aunque la recuperación de antígenos es un paso opcional, en las secciones de parafina incrustada sin foro fijas de formalina parece ser necesario. Durante la fijación con formaldehído, se generan puentes de metileno entre proteínas y sitios de antígeno de máscaras reticulantes de proteínas18. Existen dos métodos principales, basados en la recuperación de antígenos inducidos por el calor o enzimáticos (trippsina, pepsina o proteinasa K). La recuperación de antígenos inducidos por calor, llevada a cabo en tampón de citrato de sodio, tampón de ácido etilendiaminetetraacético (EDTA) o tampón Tris-EDTA, se utiliza más ampliamente porque no afecta a la morfología celular. El tipo de ingesta de antígenos y las condiciones deben ajustarse experimentalmente. Cabe señalar que a veces el método de recuperación de antígenos está determinado por el anticuerpo utilizado en los experimentos. La permeabilización es una afección dependiente del antígeno examinado, y es necesaria especialmente para las proteínas intracelulares. Existen varios enfoques que utilizan disolventes (acetona o metanol) y agresivos (Triton X-100 o NP-40), así como detergentes suaves (Tween 20 o saponina). En el protocolo actual se utilizaron simultáneamente dos detergentes, es decir, Triton X-100 y Tween 20 dependiendo del paso. Cabe destacar que la permeabilización tiene que optimizarse en función del anticuerpo utilizado. El bloqueo de sitios de unión no específicos es particularmente importante durante el análisis inmunohistoquímico. Las soluciones de bloqueo incluyen suero normal, albúmina sérica bovina o incluso soluciones de bloqueo listas para usar. El presente protocolo recomienda el uso de albúmina sérica normal y de suero bovino. Como ya se ha mencionado en el protocolo, la solución de bloqueo debe contener suero normal de la misma especie que el anticuerpo secundario.
Por último, la detección de IHC por inmunofluorescencia como se describe en este protocolo puede extenderse a la tinción de otras proteínas en los estudios de interacción proteína-proteína. Al buscar la colocación de proteínas seleccionadas, se deben cumplir ciertas condiciones. Los fluorocromos deben seleccionarse en función de la excitación y los espectros de emisión. Este paso es crucial para eliminar las superposiciones espectrales y debe realizarse en la etapa de planificación del experimento. En este protocolo se utilizan tres fluorocromos, es decir, anticuerpos secundarios DyLight 650, DAPI y DiOC6(3). Como se muestra en la Tabla 3,DyLight 650 utilizado para la detección de receptores de estrógeno se observa como un tinte rojo con excitación y emisión de 654 nm a 660-680 nm. Para manchar los núcleos celulares y la membrana interna, DyLight 650 se utiliza junto con el marcador nuclear DAPI y el marcador de membrana DiOC6 (3). DAPI se observa como un tinte azul con excitación y emisión de 405 nm a 460-480 nm. A su vez, DiOC6(3) se observa como un tinte verde con excitación y emisión de 485 nm a 538-595 nm. La tinción de la siguiente proteína se debe realizar después del paso 4.14., comenzando con el paso de bloqueo (ver paso 4.9.). Para dos proteínas, se recomienda el uso de anticuerpos de tinción de diferentes especies. Este enfoque permite excluir la unión del anticuerpo secundario conjugado con tinte a la proteína previamente manchada.
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Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
El trabajo fue publicado gracias al apoyo financiero de las autoridades de la Universidad de Lodz: Vicerrector de Investigación Científica, Vicerrector de Cooperación Nacional e Internacional y dedean de la Facultad de Biología y Protección Ambiental. Damian Jacenik fue apoyado por subvenciones (2017/24/T/NZ5/00045 y 2015/17/N/NZ5/00336) del Centro Nacional de Ciencias, Polonia.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animals | |||
| BALB/C mice | University of Lodz | NA | |
| Equipment | |||
| Caliper | VWR | 62379-531 | |
| Cardboard block | NA | NA | |
| Confocal microscope - TCS SP8 | Leica Biosystems | NA | |
| Fully automated rotary microtome - RM2255 | Leica Biosystems | NA | |
| Glass slide | Thermo Scientific | J1800BMNT | |
| Heated Paraffin Embedding Module - EG1150 H | Leica Biosystems | NA | |
| Histological box | Marfour | LN.138747 | |
| Hydrophobic pen | Sigma-Aldrich | Z377821 | |
| Laboratory balance | Radwag | WL-104-0048 | |
| LAS X software | Leica Biosystems | NA | |
| Metal mold | Marfour | CP.5105 | |
| Sterile gauze | NA | NA | |
| Sterile scissor | NA | NA | |
| Sterile tweezer | NA | NA | |
| Tissue processor - TP1020 | Leica Biosystems | NA | |
| Reagents | |||
| 2, 4, 6-trinitrobenzene sulfonic acid | Sigma-Aldrich | 92822 | |
| Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | A3294 | |
| DiOC6 (3) | Sigma-Aldrich | 318426 | |
| DyLight 650 secondary antibody | Abcam | ab96886 | |
| ERα primary antibody | Abcam | ab75635 | |
| ERβ primary antibody | Abcam | ab3576 | |
| Ethanol | Avantor Performance Materials Poland | 396480111 | |
| Formaldehyde | Avantor Performance Materials Poland | 432173111 | |
| GPER primary antibody | Abcam | ab39742 | |
| Hydrochloric acid | Avantor Performance Materials Poland | 575283421 | |
| Hydrogen peroxidase | Avantor Performance Materials Poland | 885193111 | |
| isoflurane (forane) | Baxter | 1001936040 | |
| Normal goat serum | Gibco | 16210064 | |
| Paraffin | Leica Biosystems | 39602012 | |
| Petrie dish | Nest Scientific | 705001 | |
| Phosphate buffer saline | Sigma-Aldrich | P3813 | |
| Physiological saline | Sigma-Aldrich | 7982 | |
| Primocin (antibiotic) | Invitrogen | ant-pm-1 | |
| ProLong Diamond Antifage Mountant with DAPI (glycerol-based liquid with DAPI) | Invitrogen | P36971 | |
| Sodium chloride | Chempur | WE/231-598-3 | |
| Sodium citrate | Avantor Performance Materials Poland | 795780429 | |
| Tris | Avantor Performance Materials Poland | 853470115 | |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | |
| Tween 20 | Sigma-Aldrich | P9416 | |
| Xylene | Avantor Performance Materials Poland | BA0860119 |
References
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