Denne protokol præsenterer en arbejdsgang for submm 2D visualisering af flere labile uorganiske næringsstoffer og forurenende opløste arter ved hjælp af diffusive gradienter i tynde film (DGT) kombineret med massespektrometri billeddannelse. Opløst prøveudtagning og kemisk analyse i høj opløsning er beskrevet i detaljer for kvantitativ kortlægning af opløste stoffer i jordstængler.
Vi beskriver en metode til todimensionel (2D) visualisering og kvantificering af fordelingen af labile (dvs. ærbødig adsorberet) uorganisk næringsstof (f.eks. P, Fe, Mn) og forurenende stof (f.eks. Metoden kombinerer vaskbaseret opløst prøvetagning ved hjælp af diffusive gradienter i tyndfilmsteknik (DGT) med rumligt afløst kemisk analyse ved hjælp af laserablation, der er induktivt koblet plasmamassespektrometri (LA-ICP-MS). DGT-teknikken er baseret på tynde hydrogels med homogent fordelte analysandselektive bindingsfaser. De mange forskellige bindende faser gør det muligt at fremstille forskellige DGT-geltyper efter enkle gelfremstillingsprocedurer. Til DGT-geludrulning i rhizosfæren dyrkes planter i flade, gennemsigtige vækstbeholdere (rhizotroner), som giver minimal invasiv adgang til et jorddyrket rodsystem. Efter en prævækstperiode anvendes DGT-geler på udvalgte regioner af interesse for in situ solute sampling i rhizosfæren. Derefter hentes DGT-geler og forberedes til efterfølgende kemisk analyse af de bundne opløste stoffer ved hjælp af LA-ICP-MS line-scan imaging. Anvendelse af intern normalisering ved hjælp af 13C og ekstern kalibrering ved hjælp af matrixmatchede gelstandarder giver yderligere mulighed for kvantificering af 2D-opløste fluxer. Denne metode er unik i sin evne til at generere kvantitative, sub-mm skala 2D-billeder af multi-element opløst fluxes i jord-plante miljøer, overstiger opnåelige rumlige opløsning af andre metoder til måling opløste stigninger i rhizosfæren betydeligt. Vi præsenterer anvendelsen og evalueringen af metoden til billeddannelse af flere kationiske og anioniske opløste arter i rhizosfæren af jordbaserede planter og fremhæver muligheden for at kombinere denne metode med komplementære opløste billeddannelsesteknikker.
Næringsstof erhvervelse af afgrøder er en vigtig faktor i fastsættelsen af afgrødeproduktivitet. Processerne for effektiv optagelse af næringsstoffer af afgrøder er blevet undersøgt intenst, især de mekanismer, der styrer næringsstoftilgængelighed til og næringsstof internalisering af planterødder på jord-rod interface, rhizosfæren, er anerkendt for deres rolle i afgrøden næringsstof erhvervelse. Vigtige processer for optagelse af næringsstoffer omfatter: næringsstoftransport mod roden; dynamisk udligning af sorptionen mellem arter, der er opløst i jordens porevand, og arter, der er bundet til faste jordoverflader mikrobiel konkurrence om næringsstoffer mikrobiel mineralisering af næringsstoffer, der er indeholdt i jordens organiske materiale; og næringsstof internalisering i roden symplasme. Optagelsen af uorganiske spormetal (oid) forurenende stoffer kontrolleres i vid udstrækning af de samme mekanismer.
Afhængigt af næringsstof- og forureningstilgængelighed, planteefterspørgsel og diffusitet i jorden kan der observeres differentialnæringsmønstre i rhizosfæren. For stærkt omstændelige elementer med forholdsvis høje internaliseringsrater (f.eks. P, Fe, Mn, Zn, As, Cd, Pb), udtømning af labile (dvs. reversibly adsorberet) element fraktion i forhold til bulk jord er fundet, med udtømning zone bredder ofte ≤1 mm, mens der for mere mobile næringsstoffer såsom NO3–, udtømning zoner kan strække sig op til flere centimeter1. Desuden er akkumulering af elementer som Al og Cd blevet observeret, når tilgængeligheden overstiger planteoptagelseshastighederne2,3.
I betragtning af rhizosfærens betydning for næringsstof – og kontaminantcykling er der udviklet flere teknikker til måling af den plantetilgængelsesfraktion ved høj rumlig opløsning4,5. Men måling af små labile opløste distributioner har vist sig at være udfordrende af flere grunde. En væsentlig vanskelighed er at udtage prøver af meget små (lave μL-afstande) mængder jord og/eller porevand på definerede positioner, der støder op til levende planterødder, for at løse de stejle næringsgradienter i rhizosfæren. En metode til at løse dette problem er at bruge mikrosugkopper til ekstraktion af porevandsprøver6. Med denne metode målte A. Göttlein, A. Heim og E. Matzner7 jord porewater næringsstofkoncentrationer i nærheden af Quercus robur L. rødder ved en rumlig opløsning på ~ 1 cm. En vanskelighed ved at analysere μL-mængder jord eller jordopløsning er, at disse små prøvemængder i kombination med de lave koncentrationer af alle arter undtagen de vigtigste næringsarter kræver meget følsomme kemiske analyseteknikker.
Et alternativt system, der er i stand til at løse næringsstofgradienter ved en opløsning ned til ~ 0,5 mm, er at dyrke en rodmåtte på overfladen af en jordblok med et tyndt hydrofilt membranlag, der adskiller jord fra rødderne8,9. I denne konfiguration kan opløste stoffer passere gennem membranen, og rødder kan optage næringsstoffer og forurenende stoffer fra jorden, mens rodudstråler kan spredes i jorden. Efter etableringen af et tæt rodlag kan jordblokken udtages prøver og skæres i skiver til opnåede jordprøver til efterfølgende ekstraktion af grundstoffraktioner. På denne måde kan endimensionale næringsstoffer og forurenende gradienter, der er gennemsnit på tværs af et relativt stort område (~ 100 cm2), analyseres.
En anden udfordring er at få prøver af labile, plante-tilgængelige element fraktion, da de fleste kemiske jord udvinding teknikker fungerer meget forskelligt i forhold til de mekanismer, hvormed planter optage næringsstoffer og forurenende stoffer. I mange jordudvindingsprotokoller blandes jorden med en ekstraktionsopløsning med det formål at etablere en (pseudo-)ligevægt mellem opløst og sorbed elementfraktion. Men planter internaliserer kontinuerligt næringsstoffer og nedbryder derfor ofte gradvist rhizosfærens jord. Selvom ligevægtsudvindingsprotokoller er blevet bredt vedtaget som jordprøver, da de er lette at implementere , repræsenterer den ekstraherede næringsstoffraktion ofte ikke den plantetilgedningsfraktion godt10,11,12,13. Synkemetoder , der kontinuerligt nedbryder den udtagne jord til næringsstoffer , er blevet foreslået som fordelagtige metoder og kan bedre ligne den underliggende næringsstofoptagelsesmekanisme ved at efterligne rodoptagelsesprocesserne10,11,14,15.
Ud over de ovenfor beskrevne metoder er der udviklet ægte billeddannelsesapplikationer, der er i stand til at måle kontinuerlige parameterkort med opløsninger ≤ 100 μm på tværs af synsfelter på flere cm2, for specifikke grundstoffer og jordkemiske (bio)kemiske parametre5. Autoradiografi kan bruges til at afbilde grundstoffordelingen i rhizosfæren, forudsat at der er egnede radioisotoper til rådighed16. Planaropoder gør det muligt at visualisering af vigtige kemiske jordbundsparametre såsom pH og pO 217,18,19, og enzymaktivitet eller samlede proteinfordelinger kan kortlægges ved hjælp af fluorescerende indikatorbilleddannelsesteknikker som f.eks. Mens zymografi og autoradiografi er begrænset til måling af en enkelt parameter ad gangen, pH og pO2 billeddannelse ved hjælp af planar optodes kan gøres samtidigt. De mere traditionelle rodmåtteteknikker giver kun 1D-information, mens mikrosugkopper giver punktmålinger eller 2D-oplysninger med lav opløsning, men begge tilgange giver mulighed for multielementanalyse. For nylig, PD Ilhardt, et al.25 præsenteret en ny tilgang ved hjælp af laser induceret opdeling spektroskopi (LIBS) til at kortlægge 2D samlede multi-element distributioner ved en opløsning på ~ 100 μm i jord-rod kerne prøver, hvor det naturlige element distribution blev bevaret ved omhyggelig prøve forberedelse.
Den eneste teknik, der er i stand til målrettet 2D-prøvetagning af flere næringsstoffer og forurenende stoffer opløst ved høj rumlig opløsning, er de diffusive gradienter i tynde film (DGT) teknik, en vask-baseret prøveudtagning metode, immobiliserer labile spormetal (loid) arter in situ på et bindende materiale indlejret i en hydrogel lag26,27. DGT blev indført som en kemisk speciation teknik til måling af labile opløste stoffer i sedimenter og vand, og blev snart vedtaget til brug i jord28. Det muliggør sub-mm skala multi-element opløst billeddannelse, som oprindeligt blev demonstreret i en flod sediment29, og er blevet udviklet yderligere til sin anvendelse i anlægget rhizosfærerne30,31,32,33.
Til DGT-prøvetagning påføres et gelark af en størrelse på ca. 3 cm x 5 cm på en enkelt planterod, der vokser i overfladelaget af en jordblok, med en hydrofil membran, der adskiller gelen fra jorden. I løbet af kontakttiden spredes labile næringsstoffer og/eller forurenende stoffer mod gelen og bindes straks af det bindende materiale, der er indbygget i gelen. På denne måde etableres en koncentrationsgradient og dermed en kontinuerlig nettoflux mod gelen og hersker i prøvetagningstiden. Efter prøveudtagning kan hydrogelen fjernes og analyseres ved hjælp af en analytisk kemisk teknik, der giver mulighed for rumligt løst analyse. En højt specialiseret og hyppigt anvendt teknik til dette formål er laser ablation induktivt koblet plasma massespektrometri (LA-ICP-MS). I nogle tidlige undersøgelser blev der også anvendt mikropartikelinduceret røntgenemission (PIXE)29. DGT-prøvetagning kombineret med LA-ICP-MS-analyse giver mulighed for kemisk billeddannelse med flere grundelementer ved en rumlig opløsning på ~100 μm. Hvis der anvendes meget følsomme ICP-MS-teknikker (f.eks. sektorfelt ICP-MS), kan der opnås usædvanligt lave detektionsgrænser. I en undersøgelse af effekten af limning på Zn og Cd optagelse af majs15, vi var i stand til at kortlægge labile Cd i majs rhizosfæren i uforurenet jord med en grænse for påvisning af 38 pg cm-2 af Cd per gel område. DGT, planar optodes og zymografi er afhængige af spredning af målelementet fra jord til et gellag, som kan udnyttes til kombineret anvendelse af disse metoder med henblik på samtidig eller fortløbende at forestille sig et stort antal parametre, der er relevante for vegetabilsk næringsstof- og kontaminantoptagelse. Detaljerede oplysninger om analytiske kemiske aspekter af DGT-billeddannelse , om mulighederne for at kombinere DGT og andre billeddannelsesmetoder og om dets anvendelser gennemgås grundigt i ref.34,35.
I denne artikel beskriver vi, hvordan man udfører et opløst billedeksperiment ved hjælp af DGT-teknikken på rødder af jordbaserede planter i et umættet jordmiljø, herunder plantedyrkning, gelfremstilling, gelapplikation, gelanalyse og billedgenerering. Alle trin er uddybet i detaljer, herunder noter om kritiske trin og eksperimentelle alternativer.
Den opløste billedprotokol, der præsenteres her, er en alsidig metode til at visualisere og kvantificere 2D-næringsstoffer og forurenende fluxer i jord-plantemiljøer. Det er unikt i sin evne til at generere sub-mm skala multi-element billeder af labile opløst arter på jord-rod interface, overstiger opnåelige rumlige opløsning af alternative metoder til måling af opløste stigninger i rhizosfæren væsentligt4. DGT’s målrettede in situ-prøvetagningsmetode i kombination med en meget følsom kemisk analysemetode som LA-ICP-MS gør det lettere at foretage en detaljeret undersøgelse af opløst fluxdynamik omkring individuelle planterødder, der dyrkes i jord eller lignende substrater. På grund af den vaskbaserede prøvetagningsproces afspejler de opnåede billeder den visualiserede opløstes labilitet og er derfor et skøn over deres plantetilgængelighed10. Selv om den metode-iboende måling af opløste fluxer bærer betydelige fordele som fortolkelighed som plante-tilgængelige næringsstof fraktioner, flux målinger er langt mindre ligetil at forstå end porewater koncentration målinger. DGT-standardprøvetagningsgeometrien i bulkjordanvendelser (navnlig de 0,8 mm tykke diffusionsgeler, der anvendes i denne opsætning) gør det muligt at sammenligne den faktiske porevandskoncentration, csoln, og et skøn over den tidsgennemsnitige porevandkoncentration ved hjælp af en GDT-måling i løs vægt ogfor fortolkningen af disse parametre vedrørende genforsyningsdynamikken for en opløst art. En sådan sammenligning kan imidlertid ikke foretages på grundlag af gdt-billeddannelse med meget tynde diffusionslag, da de afledte cDGT-værdier er urealistisk små34. DGT’s billeddannelsesresultater er derfor ikke altid enkle og hurtige at fortolke og kan ofte ikke direkte sammenlignes med mere konventionelle målinger af porevandskoncentrationen.
Ved anvendelse af metoden skal et par kritiske trin nøje overvejes, hovedsagelig relateret til påfyldning og vanding af rhizotronvækstbeholderne. Under påfyldning af jorden i rhizotronen er det meget vigtigt at undgå at komprimere jorden for meget, da planterødderne ikke kan trænge stærkt komprimeret jord og rodvækst vil blive hæmmet. Vi har observeret rødder, der undgår stærkt komprimeret jord og vokser langs rhizotronvækstbeholderens indre kanter, hvor jorden normalt er mindre komprimeret. I dette tilfælde kan individuelle rødder placeret i midten af rhizotronerne, hvor DGT-geler kan anvendes bekvemt, slet ikke udvikle sig og effektivt hæmme vellykket gelapplikation. I vores laboratorium viste erfaringen, at tørjords bulktætheder på 1,0-1,4 g cm-3 tillader uhindret rodudvikling. Desuden er overdreven jordkomprimering også en potentiel kilde til artefakter vedrørende opløseligheden af rødoxfølsomme elementer og biogeokemisk forbundne arter. Da det samlede porevolumen reduceres, og porediameterfordelingen flyttes mod lavere diametre i stærkt komprimeret jord, er der mindre luftfyldt porevolumen med større diameter til rådighed, hvilket kan føre til reduktive forhold lokalt. Derfor kan MnIII/IV– og FeIII-oxider reduceres, hvilket fører til øgede Mn2+ og Fe2+ fluxer. Opløsningen af Fe-oxider, som er vigtige sorptionssteder, f.eks. Et lignende problem kan opstå, hvis vækstbeholderne vandes for meget. Fordampning via det lille jordoverfladeareal øverst på vækstbeholderen er lav, og jorden kan forblive vandmættet i op til flere uger efter plantningen, hvilket også kan forårsage redox-artefakter.
En anden vigtig overvejelse er den kemiske funktionalitet af den fabrikerede HR-DGT bindegel. Ved at følge protokollen opnås tynde geler med en homogen fordeling af bindingsfaser. Hvis gelerne har områder med inhomogen materialefordeling (f.eks. huller i gelen eller aggregater af bindende faser), skal disse områder fjernes, eller hvis den er for omfattende, skal gelfremstillingsprotokollen gentages. Hvis gelen fremstilles korrekt, skal den være i stand til at binde de målsolutearter, der diffunderer i gelen straks og kvantitativt27, hvilket bestemmes af den analysandspecifikke gelbindingskapacitet. Selv om overskridelse af gelkapaciteten er mindre problematisk i uforurenet jord, bør det overvejes i metalforurenet jord og saltvandsjordmiljøer. Mætning af gelbindingsfaserne vil ikke kun forringe den kvantitative opløste prøvetagning, men også resultere i lateral diffusion af opløste stoffer mellem bindende faser i gelen, hvilket fører til en ubestemt lokalisering af små opløste flux-egenskaber. Hvis der således forventes meget store mængder labile næringsstof-/kontaminantarter i måljordmiljøet, bør der udføres indledende test. Til vurdering af forventede DGT-belastninger kan prøvetagning af STEMPEL i bulkjord efterfulgt af gelefering og vådkemisk analyse anvendes15,49. Hvis det er nødvendigt, kan DGT’s udrykningstider justeres for at reducere gelkontakttiden og dermed undgå gelmætning over kapacitetstærsklerne. Omvendt kan indledende test også være nyttige til at identificere påkrævede gelkontakttider og/eller LA-ICP-MS-følsomheder, hvis der forventes meget lave opløste belastninger, hvilket kan være vigtigt for kortlægning af sporstofsoluter på naturlige jordbaggrundsniveauer15. Desuden bør den korrekte DGT-gelfunktion verificeres, inden den anvendes på forsøgsbasen, via kontrolleret indlæsning af geler ved udarbejdelsen af DGT LA-ICP-MS-kalibreringsstandarder. Gelstandarden giver en matrixmatchet analysandbelastning, der kan bruges til at vurdere, om prøvegelbelastningen bestemt af LA-ICP-MS ligger inden for det forventede interval. Hvis operatøren ikke er i stand til at opnå et signal, der er forskelligt fra gassen og metoden, skal han sikre sig, at laboratorieprocedurerne for analyse af sporstoffer er gennemført, og at alle protokoltrin er udført korrekt. Nogle gange vendes DGT-gelen ved et uheld efter opløst prøvetagning med den jordudsatte, belastede side mod glaspladen i stedet for laserstrålen, hvilket resulterer i lave signalintensiteter og fejlagtigt vendt funktioner i de endelige opløste fluxbilleder.
Under LA-ICP-MS-analysen genereres en stor mængde data, hvilket tager lang tid at evaluere. I vores laboratorium bruger vi interne dataevalueringsscripts, der er skræddersyet til vores måldataoutputformat ved hjælp af standardregnearksoftware. Efter halvautomatisk sortering og kalibrering udføres billed plotning ved hjælp af open source, open access billedanalyseværktøjer (ImageJ, Fiji50). Denne tilgang giver fuld kontrol over datasortering, evaluering og præsentation, hvilket er vigtigt, fordi de indsamlede data svarer til rektangulære og ikke kvadratiske pixel, som skal vises korrekt i de genererede opløste kort. Desuden bør enhver pixel interpolation omhyggeligt undgås under databehandling. Pixel interpolation fører til udjævnede stigninger i de kemiske billeder, hvilket resulterer i blødgjorte, ofte cirkulære elementfordelingsfunktioner og er derfor en uønsket ændring af de oprindelige data. Pixel interpolation er en standardprocedure i omskalering og omformatering af handlinger i mange billedbehandlingssoftwareprodukter, men kan fravælges normalt.
Afslutningsvis vil jeg sige, at den beskrevne metode er et betydeligt fremskridt for forståelsen af næringsstof- og kontaminantdynamik i naturlige jord-rhizosphere-plantesystemer. Ud over DGT-applikationer kan metoden kombineres med andre diffusionsbaserede billeddannelsesteknikker som planaroptodes3,33,42,43,48,51 og zymografi20,21,22,23,24og kan udvikles yderligere til at inkludere yderligere elementer og jordparametre.
The authors have nothing to disclose.
Denne undersøgelse blev medfinansieret af den østrigske videnskabsfond (FWF): P30085-N28 (Thomas Prohaska) og den østrigske videnskabsfond (FWF) og delstaten Niederösterreich: P27571-BBL (Jakob Santner).
(NH4)2S2O8 (ammonium persulfate; APS) | VWR | 21300.260 | ≥98.0%, analytical reagent |
2-(N-morpholino)-ethanesulfonic acid (MES) | Sigma-Aldrich | M8250-100G | ≥99.5% |
Acrylamide solution | Sigma-Aldrich | A4058-100ML | 40%, for electrophoresis |
Analyte salts | n/a | n/a | Use water soluble analyte salts of analytical grade or higher |
Buechner funnel | VWR | 511-0065 | 13 cm plate diameter |
Chemical equilibrium modelling software | KTH Sweden | n/a | Visual MINTEQ |
Clamp | Local warehouse | n/a | |
Desktop publishing software | Adobe Inc. | n/a | InDesign CS6 |
DGT cross-linker | DGT Research Ltd | n/a | 2%, agarose derivative |
DGT piston sampler | DGT Research Ltd | n/a | 2 cm diameter exposure window |
Digital single-lens reflex (DSLR) camera | Canon Inc. | n/a | Canon EOS 1000D |
Dispersion device | IKA | 3737000 | Ultra-Turrax T10 Basic |
Double-sided adhesive tape | Tesa | 56171 | |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 34923 | Puriss. p.a., absolute, ≥99.8% |
Gel blotting paper | Whatman | 10426981 | Blotting Papers, Grade GB005, 20 × 20 cm, 1.5 mm thickness |
Gel drier | UniEquip | n/a | UNIGELDRYER 3545 |
High-pressure microwave system | Anton Paar | n/a | Multiwave 3000 |
HNO3 | VWR | 1.00456.2500P | 65%, ISO for analysis |
Horizontal shaker | GFL | 305 | |
HydroMed D4 | AdvanSource Biomaterials Corp. | n/a | Ether-based hydrophilic urethane |
ICP-MS software | Perkin Elmer | n/a | Syngistix |
Image analysis software | National Institutes of Health (NIH) | n/a | ImageJ Fiji, freely available at https://fiji.sc/ |
Knife-coating device | BYK | 5561 | Single Bar 6″, 0.5 mils |
LA software | Elemental Scientific Lasers | n/a | ActiveView |
LA system | Elemental Scientific Lasers | n/a | NWR193 |
Laminar flow bench | Telstar Laboratory Equipment B.V. | n/a | Class II biological safety cabinet |
Magnetic stirrer | IKA | 0003582400 | C-MAG MS 7 |
Moisture-retaining film | Bemis Company, Inc. | PM999 | Parafilm M, 4" x 250' |
N,N,N’,N’-tetramethylethylenediamine (TEMED) | Sigma-Aldrich | T9281-50ML | BioReagent, suitable for electrophoresis, ~99% |
NaNO3 | Sigma-Aldrich | 229938-10G | 99.995% trace metals basis |
NaOH | Sigma-Aldrich | 1064980500 | Pellets for analysis |
Overhead shaker | GFL | 3040 | |
Perfluoroalkoxy alkane (PFA) vials | Savillex | 200-015-20 | 15 mL Standard Vial, Rounded Interior |
pH meter | Thermo Scientific | 13-644-928 | Orion 3-Star Benchtop pH Meter |
pH probe | Thermo Scientific | 8157BNUMD | Orion ROSS Ultra pH/ATC Triode |
Plastic cutter | DGT Research Ltd | n/a | Use empty cross-linker vials from DGT research Ltd |
Plastic tweezers | Semadeni | 602 | |
Plasticine | Local stationary shop | n/a | non-drying plastic modelling mass based on paraffin wax and bulking agents |
Polycarbonate membrane discs | Whatman | 110606 | Nuclepore Hydrophilic Membrane, 25 mm diameter, 0.2 µm pore size, 10 µm thickness |
Polycarbonate membrane sheet | Whatman | 113506 | Nuclepore Hydrophilic Membrane, 8 × 10 in, 0.2 µm pore size, 10 µm thickness |
Polyethersulfone membrane discs | Pall Corporation | 60172 | Supor 450 Membrane Disc Filters, 25 mm diameter, 0.45 µm pore size, 0.14 mm thickness |
Polyethersulfone membrane sheet | Pall Corporation | 60179 | Supor 450 Membrane Disc Filters, 293 mm diameter, 0.45 µm pore size, 0.14 mm thickness |
PTFE foil | Haberkorn | n/a | 50 µm thickness |
PTFE spacer | Haberkorn | n/a | Variable thicknesses available |
PTFE-coated razor blades | Personna GEM | 62-0178 | Stainless steel single edge blades (coated) |
PTFE-coated Tygon tubing | S-prep GmbH | SP8180 | 0.32 cm inner diameter |
Quadrupole ICP-MS | Perkin Elmer | N8150044 | NexION 2000B |
Quantitative filter paper, 454 | VWR | 516-0854 | Particle retention 12-15 µm |
Spreadsheet software | Microsoft Corporation | n/a | Microsoft Excel 2016 (v16.0) |
Stainless-steel cutter | Local locksmithery | n/a | 2.5 cm diameter |
Suspended particulate reagent-iminodiacetate (SPR-IDA) | Teledyne CETAC Technologies | n/a | 10 µm diameter polystyrene beads, 10 % (w/v) bead suspension |
Transistor-transistor logic (TTL) cable | n/a | n/a | Consult ICP-MS technician to identify a suitable TTL cable for a specific instrument |
Two-volume cell | Elemental Scientific Lasers | n/a | Two-volume cell 1 |
Vinyl electrical tape | 3M | n/a | Scotch Super 33+ |
Water purification system | Termo Electron LED GmbH | n/a | TKA-GenPure |
ZrOCl2 × 8H2O | Alfa Aesar | 86108.30 | 99.9 %, metals basis |