Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

פרוטוקול דיסקציה אוטומטי להעשרת גידולים ברקמות בעלות תכולת גידול נמוכה

Published: March 29, 2021 doi: 10.3791/62394

Summary

ביאור דיגיטלי עם דיסקציה אוטומטית של רקמות מספק גישה חדשנית להעשרת הגידול במקרים של תכולת גידול נמוכה וניתן להתאמה הן לסוגי פרפין והן לסוגי רקמות קפואות. זרימת העבודה המתוארת משפרת את הדיוק, יכולת השכפול והתפוקה וניתן ליישם אותה הן על הגדרות המחקר והן על ההגדרות הקליניות.

Abstract

העשרת גידולים ברקמות בעלות תכולת גידול נמוכה, אלה שמתחת לתכולת הגידול של 20% בהתאם לשיטה, נדרשת כדי להפיק נתונים איכותיים באופן משוחזר עם בדיקות רבות במורד הזרם כגון ריצוף הדור הבא. כריתת רקמות אוטומטית היא מתודולוגיה חדשה שהופכת ומשפרת את העשרת הגידולים ברקמות הנפוצות והנמוכות הללו על ידי הפחתת חוסר הדיוק התלוי במשתמש של ניתוח מאקרו מסורתי ומגבלות זמן, עלות ומומחיות של מיקרו-דיסקציה של לכידת לייזר על-ידי שימוש בשכבת-על של ביאור תמונה דיגיטלי על גבי שקופיות לא מוכתמות. כאן, ביאורים דיגיטליים של המטוקסילין ואאוזין (H&E) משמשים כדי להתמקד באזורי גידול קטנים באמצעות להב בקוטר 250 מיקרומטר2 בפרפין קבוע פורמלין לא מוכתם משובץ (FFPE) או מקטעים קפואים טריים בעובי של עד 20 מיקרומטר להעשרת גידולים אוטומטית לפני מיצוי חומצות גרעין וריצוף אקסום שלם (WES). כריתה אוטומטית יכולה לקצור אזורים מבוארים ברקמות בעלות תכולת גידול נמוכה מקטעים בודדים או מרובים למיצוי חומצות גרעין. הוא גם מאפשר לכידה של מדדי איסוף נרחבים לפני ואחרי הקציר תוך שיפור הדיוק, יכולת השכפול והגדלת התפוקה תוך ניצול של פחות שקופיות. הפרוטוקול המתואר מאפשר ביאור דיגיטלי עם דיסקציה אוטומטית על FFPE של בעלי חיים ו/או בני אדם או רקמות קפואות טריות עם תכולת גידול נמוכה ויכול לשמש גם לכל אזור העשרת עניין כדי להגביר את ההלימה ליישומי ריצוף במורד הזרם בתהליכי עבודה קליניים או מחקריים.

Introduction

ריצוף הדור הבא (NGS) מנוצל יותר ויותר הן לטיפול בחולים והן לחקר הסרטן כדי לסייע בהנחיית טיפולים ובהקלה על גילוי מדעי. רקמה היא לעתים קרובות מוגבלת ודגימות קטנות עם תוכן גידול משתנה משמשים באופן שגרתי. הלימות הגידול ושלמותו, אם כן, נותרו מחסום להשגת נתונים משמעותיים. דגימות עם אחוזי גידול נמוכים יותר עלולות לגרום לקושי להבחין בין וריאנטים אמיתיים לבין ממצאי ריצוף ולעתים קרובות אינן זכאיות ל- NGS1. העשרת גידולים של מקרים בעלי תכולת גידול נמוכה, אלה הנמוכים מ-20%, הוכחה כמסייעת להניב מספיק חומר על מנת לייצר נתוני ריצוף הניתנים לשחזור ולהבטיח שגרסאות בתדר נמוך לא יחמיצו 2,3. עם זאת, המגבלות ישתנו בהתאם לפלטפורמות המשמשות והשימוש המתוכנן בנתונים שנוצרו.

באופן מסורתי, העשרה של אזורי גידול למיצוי מתבצעת על ידי מקרודיסקציה ידנית או מיקרו-דיסקציה של לכידת לייזר (LCM) של שקופיות מוטבעות פרפין קבועות פורמלין (FFPE). מקרו-דיסקציה ידנית, או גירוד אזורי רקמה מוגדרים משקופיות, מאפשרת להסיר אזורי גידול לשימוש בבדיקות במורד הזרם בעלות נמוכה יחסית, אך עם דיוק נמוך ודיוק נמוך 2,4. דיוק טכני מינימלי יכול להיות יעיל מאוד במקרים של תכולת גידול גבוהה יותר בהם קיימים חלקים גדולים של גידול ו/או אובדן רקמות מינימלי אינו משפיע באופן משמעותי על התוצאות, אך מקרים של תכולת גידול נמוכה או מקרים עם גידול מפוזר יותר דורשים דיוק מוגבר. LCM הומצא אפוא בשנות ה-90 של המאה ה-20 והפך לדרך רבת ערך להסיר במדויק אזורים קטנים, מוגדרים ומיקרוסקופיים של רקמה משקופיות פרפין קבוע פורמלין (FFPE) 5,6,7,8. ניתן להשתמש ב-LCM כדי לאסוף אוכלוסיות של תאים בודדים כאשר ההטרוגניות המורכבת של הדגימה קיימת9 ומאפשרת איסוף של אוכלוסיות תאים שבעבר היה קשה להפריד. עם זאת, LCM דורש מכונות יקרות הדורשות מומחיות טכנית נרחבת וזמן מעשי 10,11,12,13,14.

המכשיר המשמש לניתוח אוטומטי של רקמות הוא בעל דיוק בין זה של LCM (~10 מיקרומטר) לבין מקרו-דיסקציות (~1 מ"מ)15. בנוסף, הוא מציג הן דרישות עלות והן דרישות מומחיות טכניות בין זו של מקרודיסקציה ו- LCM ונועד לבצע העשרת רקמות מהירה משקופיות FFPE רציפות כדי להקל על החסרונות של שיטות קודמות15. כריתה אוטומטית באופן זה משתמשת בביאורים דיגיטליים או בשכבות-על של תמונות ייחוס שקופיות על הבמה על גבי שקופיות רקמה לא מוכתמות בחתך סדרתי לצורך ניתוח והעשרה של אזורי עניין. המכשיר משתמש בקצות כרסום להב מסתובב מפלסטיק, צינורות איסוף של 1.5 מ"ל וניתן להשתמש בו עם מספר נוזלים שונים לצורך כריתה כדי לאסוף אזורי עניין לבדיקות במורד הזרם הכוללות מיצוי גרעין וריצוף. קצה הטחינה הפלסטי המסתובבת משתמש במאגרי חבית מזרקים פנימיים וחיצוניים ובוכנה לאיסוף חיץ, ואז טוחן ואוסף רקמות16. קוטר גודל קצה הטחינה המשתנה (250 מיקרומטר, 525 מיקרומטר, 725 מיקרומטר) יכול לאפשר כריתה של אזורי רקמה נפרדים לצורך השוואה, אזורים מולטיפוקליים שניתן לאגד או אזורים קטנים בודדים משקופיות FFPE בודדות או מרובות. ניתן להתאים את עוביי המקטעים המשמשים לקציר על סמך צרכי הניסוי האינדיבידואליים והמשתמשים יכולים להבטיח שאזורי העניין לא התרוקנו על ידי ביצוע H&E נוסף בקטע טורי אחד מיד לאחר הקטע האחרון ששימש לקציר.

כריתה אוטומטית זוהתה כדרך להעשיר את תכולת הגידול במקרים של תכולת גידול נמוכה ובדקנו והרחבנו את הפונקציונליות המיועדת של מכשיר כריתת רקמות אוטומטי, המשווק כיום לשימוש בדגימות קליניות של FFPE בעובי של עד 10 מיקרומטר. העבודה מראה כי ניתן ליישם כריתה אוטומטית הן על FFPE והן על מקטעי רקמות קפואות טריות של בני אדם או בעלי חיים בעובי של עד 20 מיקרומטר למטרות מחקר. הפרוטוקול גם מדגים גישה לביאור דיגיטלי ולאוטומציה של כריתה להעשרת גידולים ברקמות עם תכולת גידול נמוכה ו/או מקרים של גידול מקונן ומפוזר שבו מקרו-דיסקציה משמעותית היא מאתגרת או לא אפשרית ומראה הן איכות והן תפוקה של חומצת גרעין המספיקה ל-NGS. לפיכך, דיסקציה אוטומטית יכולה לספק דיוק ברמה בינונית ותפוקה מוגברת להעשרת גידולים, וניתן ליישם אותה גם כדי להעשיר אזורי עניין אחרים או לשלב אותה עם פלטפורמות אחרות כדי לענות על שאלות מחקריות או קליניות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

לפני תחילת העבודה, השג דגימות רקמות מתאימות על פי פרוטוקולי מועצת הביקורת המוסדית (IRB). כל השיטות המתוארות כאן אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של Genentech, Inc.

1. הכנת רקמות ושקופיות

  1. בחר בלוקי FFPE או רקמות קפואות טריות והשתמש בשיטת העיבוד המתאימה להלן.
  2. חותכים מקטעי בלוק רקמה לשקופיות זכוכית טעונות חיובית בעובי הרצוי. חתכו באופן סדרתי את רקמת ה-FFPE בסרטים עם קטע הייחוס הראשון שנחתך בעובי המתאים לצביעת H&E (כלומר, 4 מיקרומטר) ואחריו 1-4 מקטעים בעובי הנע בין 4-20 מיקרומטר בהתאם לצורך וזמינות הרקמה. אספו את חלקי הרקמה לשקופיות מיקרוסקופ זכוכית טעונות חיובית.
    הערה: יש להכתים באופן מיידי קטעי רקמות ייחוס קפואות טריות עם המטוקסילין ו- Eosin (H&E) באמצעות פרוטוקולים שגרתיים עבור חלקים קפואים והמקטעים הקפואים הלא מוכתמים המוחזקים בטמפרטורה של -20 מעלות צלזיוס עד שהם נחוצים לקציר.
  3. אפשרו לכל מקטעי ה-FFPE להתייבש בטמפרטורת החדר למשך הלילה.
  4. אופים את שקופיות הייחוס של FFPE בטמפרטורה של 60 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות ולאחר מכן מכתימים עם H&E באמצעות פרוטוקולים שגרתיים.
  5. סרוק את השקופיות המוכתמות H&E על תמונת שקופיות שלמה בהגדלה של פי 20 ומעלה.
  6. הוסף הערות לתמונות השקופיות הסרוקות עבור אזורי גידול בעלי עניין באמצעות פלטפורמת צפייה שסופקה על ידי ספק או צופה בקוד פתוח. ייצא ביאורים אלה כצילום מסך בהגדלה נמוכה או שמור אותם כקובץ מטה-נתונים המכיל קואורדינטות פיקסל X-Y המתאימות לקודקודים מצולעים.
    הערה: הראשון פחות מאתגר מבחינה טכנית לעבוד איתו, אך האחרון מציע יתרונות באוטומציה של תהליכים.
  7. צור מסכות דיגיטליות של אזורי העניין המבוארים בהתאם לגישה שבה נעשה שימוש וייצא את הביאורים הידניים.
    הערה: אם נעשה שימוש בצילום מסך/תמונה של הביאורים, ניתן להשתמש בתוכנת עיבוד תמונה פשוטה כדי לבחור אזור ולהשלים את הבחירה כולה. שימוש בקואורדינטות X-Y עבור כל ROI דורש שימוש בשפת תכנות כדי לקרוא הן את נתוני התמונה והן את קואורדינטות המצולע כדי ליצור תמונה עם מאג נמוך עם אזורים מלאים של עניין. על המשתמש לעבוד עם ספק כלי הנתיחה האוטומטי כדי ליצור תהליך המבוסס על זמינות התוכנה והצרכים האישיים שלו. אם סריקה, ביאור שקופיות דיגיטלי ו/או יצירת מסיכה דיגיטלית אינם זמינים, ניתן לבצע ביאור זהיר בשקופית באמצעות סמן ולהשתמש בו במקום מסיכה דיגיטלית כתמונת ייחוס. פסאודו-קוד ליצירת מסיכה דיגיטלית סופק בקובץ משלים 1.

2. כריתת רקמות אוטומטית

  1. מקם את שקופיות רקמת הדגימה הלא מוכתמות על הבמה במיקומי השקופית הראשונה עד הרביעית בעת שימוש בהפניה דיגיטלית לשקופיות. בעת שימוש בביאור בשקופית במקום באפשרות דיגיטלית, מקם את שקופיות הרקמה לדוגמה שאינן מוכתמות על הבמה במיקומי השקופית השנייה עד הרביעית עם שקופית ייחוס במיקום הראשון.
  2. צור עבודת כרסום באמצעות תוכנת כריתת הרקמות האוטומטית: בחירת עבודה > יצירת מזהה מקרה > עבודה חדשה > > שם עבודת הטחינה; עבור אל עובי > עובי המקטע באמצעות הכרטיסייה חץ למעלה או למטה; לאחר מכן עבור אל הכנת רקמות > paraffinized או Deparaffinized, הפניה תמונה > מקובץ > ייבוא תמונה > קובץ לייבוא מהתפריט הנפתח כהפניה הדיגיטלית, אם רלוונטי. בחר מהבמה עבור הפניה לשקופית על הבמה. לאחר השלמת השדות, סרוק את השלב על-ידי בחירה בלחצן Scan Stage בפינה השמאלית התחתונה כדי ללכוד כל שקופית רקמת דגימה במיקום הראשון עד הרביעי.
  3. בחר את אזור הרקמה ללכידת תמונה.
    1. אם אתם משתמשים בהפניה על הבמה, גררו את התיבה מפינה אחת להפך כדי ליצור אזור מלבני מעל הרקמה. בחר את הבועה העגולה מתחת לאזור המלבני כדי לצלם את תמונת הפניה לבמה. אם אתם משתמשים בתמונת ייחוס דיגיטלית, הוסיפו את שכבת-העל של התמונה באזור המלבני שנבחר. שנה את גודל ההפניה הדיגיטלית ויישר אותה בצורה גסה בזום הקורס כדי להתאים בצורה הטובה ביותר לגודל ולמיקום מעל רקמת הדגימה.
    2. העתק שדה מלבן זה לשקופיות רקמות דגימה שנותרו במיקומי השקופית השנייה עד הרביעית על-ידי בחירת אפשרות ההעתקה בפינה השמאלית העליונה של תמונת ההפניה. יישרו את גודלם ושינו את גודלם באופן גס לפי הצורך.
      הערה: בעת שימוש בתמונת הפניה בשקופית במקום במסכה דיגיטלית, בחר איזו שקופית על הבמה צריכה לשמש כהפניה.
  4. יישור השקופיות של ההפניה והדוגמאות
    1. כאשר תמונת ההפניה מיושרת באופן גס בשקופיות דגימת רקמות בכל מיקומי השקופיות, בחר בלחצן Scan Stage בפינה השמאלית התחתונה של המסך כדי לעבור לשלב ההתאמה העדינה. בחר את מיקום השלב הראשון ואת סמל הכלי 'שינוי צורה' (הסמל השלישי למטה בסרגל הכלים הימני) כדי לבצע התאמות יישור וזום עדינות של ההפניה כך שיתאימו בצורה הטובה ביותר לכיסוי השקופית לדוגמה. השתמש בסרגל ההזזה הפניה לדוגמה בתחתית המסך המתחלף בין תמונת ייחוס לתמונה לדוגמה יחד עם התכונה Zoom In ו - Zoom Out כדי להתאים ולהשיג יישור של כל מיקום שקופית. שכפל תהליך זה במיקומי השקופית השנייה עד הרביעית לדוגמה.
  5. בחר את אזור הטחינה של אזור העניין
    1. לאחר שהושגה שכבת-על אופטימלית של כל אחד מארבעת מיקומי השקופיות, ציירו את הכינויים של נתיב הטחינה באמצעות סמל הכלי 'בורר הצבעים ' (הסמל העשירי למטה בסרגל הכלים הימני) בחלק הצבעוני של תמונת הייחוס במסכה. בחר בתיבה הרחב לדומה אם שקופיות או אזורים מרובים מבוארים לצורך כריתה ולאחר מכן בחר בלחצן קבל ביאור(ים) בפינה הימנית התחתונה כדי לצייר נתיבי כרסום לשקופיות לדוגמה.
    2. בחר את נתיב הטחינה במיקום השקופית הראשון.
      הערה: כאשר נתיב הטחינה נבחר במיקום השקופית הראשון, הוא יועתק למיקומי השקופיות הנותרים ויחושב השימוש בקצה הטחינה. השימוש בקצה הטחינה בפינה השמאלית העליונה מחושב על סמך השטח המכוסה וגודל הקצה שנבחר. אם מחושבים יותר מארבע עצות, ניתן לבחור גודל טיפ גדול יותר כדי ללכוד את ההחזר על ההשקעה המבואר. ניתן לבחור או לשנות את גודל העצה בצד שמאל של המסך תחת החץ 'קצה כרסום', והשימוש בקצה יחושב מחדש.
    3. כאשר מחושב נתיב הטחינה, אסוף את ההחזר על ההשקעה המבואר עם ארבעה טיפים או פחות לכרסום. בחר בלחצן Setup Stage בפינה השמאלית התחתונה של המסך כדי לבקש טעינה מהירה של קצוות כרסום מצינורות איסוף הממוקמים בייעודם הנכון על הבמה.
  6. מלאו את המאגר ב-3.0 מ"ל של מאגר הנתיחה המתאים ביותר לסוג הרקמה (FFPE או קפואה טרייה) וערכת מיצוי חומצות גרעין במורד הזרם, ובחרו בלחצן Dissect בפינה הימנית התחתונה של המסך. השתמש בשמן מינרלי בדרגה מולקולרית או במאגר מתאים מתוך ערכות מיצוי של חומצות גרעין הזמינות באופן מסחרי.
    הערה: ניתוח אוטומטי של שקופיות ואזורי עניין נבחרים מתחיל לאחר מכן ודגימות נאספות על ידי המכשיר. ראש היחידה יאסוף קצוות כרסום מהחלק האחורי של הבמה וימלא בנוזל דיסקציה מהמאגר. לאחר מכן הטיפים מסתובבים לאורך נתיב הטחינה ושואפים לרקמת דגימה משקופיות עד להשלמתן או מלאה. הדגימה שנאספה עם נוזל דיסקציה מחולקת לאחר מכן לצינורות איסוף הממוקמים בחלק האחורי של הבמה.
  7. לאחר השלמת הנתיחה האוטומטית, הסר את צינורות האיסוף ואת מגלשות הדגימה המנותקות מהבמה והנח אותן במדף צינורות ובמדף החלקות, בהתאמה.
    הערה: יש לקחת יבולים קפואים טריים ישירות למיצוי חומצות גרעין בהתאם להוראות היצרן ויש להכתים את החלקים הקפואים הטריים שלאחר הנתיחה לאחר הניתוח באופן מיידי באמצעות פרוטוקולים שגרתיים למקטעים קפואים.
  8. יש לאפות את שקופיות הרקמה המנותקות בטמפרטורה של 60 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות ולאחר מכן להכתים ב-H&E באמצעות פרוטוקולים שגרתיים.
  9. סרוק את הפוסט שנחתך H&E מוכתם בשקופיות על תמונת שקופיות שלמה בהגדלה ו/או ארכיון של פי 20 לקבלת הפניה של הרקמה שלא נאספה ונשארה על השקופית.
    הערה: ראה שלב 1.5 לעיל לקבלת אפשרויות סריקה חלופיות.

3. מיצוי חומצות גרעין

  1. בריכה וכדור את הרקמה. בצע את מיצוי חומצות הגרעין באמצעות ערכה זמינה מסחרית ופעל לפי הוראות היצרן.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

נבחרו מקטעי כבד של עכברי FFPE ו-FF המכילים סרטן מעי גס גרורתי בנצרי קסנוגרפט. המקטעים הוכתמו ב-H&E (איור 1A,E,I) ונסרקו על תמונת שקופיות שלמה בהגדלה של פי 20. פתולוג ציין באופן דיגיטלי אזורי גידול מעניינים ומסכה נוצרה באמצעות תוכנה מסחרית ועוצבה כתמונת ייחוס דיגיטלית של png (איור 1B,F,J). שקופיות דגימה לא מוכתמות בעובי 10 מיקרומטר ו-20 מיקרומטר הונחו על הבמה ונתיחה אוטומטית בוצעה כמתואר לעיל. רקמות קפואות טריות נאספו במאגר ליזיס מתוך ערכה זמינה מסחרית והובלו ישירות למיצוי חומצות גרעין בהתאם להוראות היצרן. דגימות FFPE נאספו באמצעות שמן מינרלי בדרגה מולקולרית ודגימות שנותחו רוכזו יחד וצנטריפוגות בטמפרטורה של 25,000 x גרם למשך 20 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. חומר העל הוסר והשמן המינרלי המינימלי הנדרש שימש להחייאה, העברה ואיסוף של הרקמה המנותקת לצינור איסוף יחיד עבור כל דגימה כראוי. הדגימות נשלחו בטמפרטורת החדר למוכר לצורך מיצוי חומצות גרעין, גודל RNA ו-DNA, כמות, שלמות וקביעת טוהר בהתאם להוראות היצרן. ספריות ריצוף נוצרו ושימשו להכלאה ולכידה עם אפשרויות מסחריות בהתאם להוראות היצרן. שקופיות לדוגמה לאחר ניתוח הוכתמו ב-H&E באמצעות פרוטוקולי צביעה שגרתיים כדי לאשר אזורי כריתה ב-10 מיקרומטר (איור 1C,G,K) ו-20 מיקרומטר (איור 1D,H,L) תועדו שקופיות ומדדי כריתה (טבלה משלימה 1). ריצוף Exome הניב כ-75 מיליון קריאות 100 bp מזווגות, והניב עומק כיסוי ממוצע (לפני הסרת קריאות כפולות) של פי 150 לכל מדגם, עם 99.9% קריאות מיושרות ושיעור יעד של 78%. מדדי ריצוף ה-RNA הדגימו קצת יותר מ-55 מיליון קריאות צמד bp, שיעור יישור של 98% ושיעור שכפול של 19.4% עם 77% קריאות קונקורדנט.

Figure 1
איור 1; כריתה מוצלחת של קיני גידול מרקמת FFPE קפואה ורעננה. H&E מוכתם בעכבר רקמת כבד קפואה ורעננה (A-D) ו-FFPE (E-L) עם גרורות של סרטן המעי הגס. שקופיות ייחוס של 4 מיקרומטר המשמשות לביאור דיגיטלי (A, E, I) מדגימות דוגמאות עם אחוז גידול נמוך עבור שטח הרקמה הכולל (I) וקיני גידול מבוזרים (E) המציבים באופן קלאסי אתגרים להעשרת הגידול. נוצרו שקופיות ייחוס H&E מבוארות ומוסוות דיגיטלית (B, F, J) ולאחר כריתה נוצרו 10 מיקרומטר (C, G, K) ו-20 מיקרומטר (D, H,L) H&E שקופיות מוכתמות H&E מדגימות קציר מוצלח של אזורים נבחרים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

קובץ משלים 1: פסאודו-קוד המשמש ליצירת מסיכות דיגיטליות מביאורים לשימוש בניתוח אוטומטי. אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.

טבלה משלימה 1: מדדים שנתפסו לדוגמה מניתוח אוטומטי וממיצוי חומצות גרעין. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

מוצג כאן פרוטוקול ליישום של ביאור דיגיטלי וכריתה אוטומטית לנתח אזורי גידול מתכולת גידול נמוכה FFPE או רקמות קפואות טריות להעשרת הגידול והשימוש בו ב- WES. שילוב של ביאור דיגיטלי ויצירת מסכה עם דיסקציה אוטומטית מפחית באופן משמעותי את הזמן והמומחיות המעשיים הנדרשים הנפוצים בשיטות קלאסיות של העשרת גידולים, כולל מאקרודיסקציה ידנית ו-LCM. הפרוטוקול מדגים אפשרות העשרת גידולים בעלת פוטנציאל חשוב לטווח בינוני המאפשרת לא רק העשרה נמוכה של תכולת הגידול, אלא גם העשרה במקרים בהם קשה לנתח קיני גידול מבוזרים הרחק מהרקמה הנורמלית של הגידול הסמוך לגידול להעשרת גידול משמעותית עם תפוקה גבוהה ורמת דיוק מתונה. בעוד שהשימוש בתהליך העבודה שלנו לרקמות קסנוגרפט בעלות תכולת גידול נמוכה מודגם כאן, נמצא גם כי פרוטוקול זה פועל על פני סוגי רקמות, כולל רקמות אנושיות, מורין וקסנוגרפט עבור מגוון רקמות נורמליות והתוויות לסרטן.

לכן, זה יכול לחול גם על מגוון רחב של יישומים שבהם העשרה עבור אזורים ספציפיים של עניין ללא זיהום משמעותי של רקמת רקע יהיה מועיל (כלומר, להעשיר עבור אזור מסוים במוח) או אפילו להסרת אזורים של רקמה לפני מיצוי חומצת גרעין באמצעות macrodissection קלאסי.

קיימות פלטפורמות רבות בשוק לסריקת שקופיות וביאור דיגיטלי. לכן חשוב להישאר מודעים לכך שתאימות לפלטפורמות עשויה להציג מגבלות ופלטפורמות מוגדרות בתוך כל פרוטוקול עשויות שלא להיות זמינות באופן נרחב בכל המעבדות. לכן, נעשו מאמצים משמעותיים לספק אפשרויות חלופיות בתוך הפרוטוקול המתואר שינחו את המשתמשים בביצוע כל השינויים הדרושים בהתבסס על המשאבים הזמינים שלהם. כמו כן צוינה אפשרות להסרת רכיב הביאור הדיגיטלי כדי לאפשר ביאור ידני זהיר בשקופית. האפשרויות המסופקות לשינויים ימקסמו את היכולת של המשתמשים למצוא אפשרות שעובדת עם זמינות הפלטפורמה והתוכנה הנוכחית שלהם.

בעוד שביאור דיגיטלי ונתיחה אוטומטית הוכחו כמיושמות באופן נרחב הן על FFPE והן על רקמות קפואות טריות, חשוב לציין כי גבולותיו של מכשיר כריתת הרקמה האוטומטי נדחקו מעבר לשימוש המיועד שלו בדגימות FFPE והפרוטוקול מיועד לשימוש מחקרי בלבד. כאן, העשרת גידולים מוצלחת הודגמה באמצעות ניתוח גידול אוטומטי של תכולת גידול נמוכה FFPE, כמו גם רקמות קפואות טריות למיצוי חומצות גרעין, WES וריצוף RNA. הפרוטוקול מראה כי ניתן היה להעשיר את אזורי העניין של קסנוגרפט ורקמות אנושיות לפני ריצוף WES ו- RNA בהגדרות מחקר בסיסיות ותרגום וכן לציין כי יישומים מולקולריים אחרים במורד הזרם, כולל PCR, משני סוגי הרקמות יהיו אפשריים. הפרוטוקול מרחיב את אפשרויות הנתיחה האוטומטיות של FFPE ומניח את היסודות לניתוח אוטומטי של רקמות קפואות טריות שניתן לפתח ולאמת עוד יותר לשימוש במסגרות קליניות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

צ'ארלס א' האבנאר, אוליבר זיל, ג'ף איסטהאם, ג'פרי האנג, ג'ניפר גילטנן, ניקולס לונסברי, דניאל אורפר, סרג'אן סטורניו ואיימי א' לו הם עובדים ובעלי מניות של ג'ננטק ורוש ומאנה ג'אבי ועמנואל נאורי הם עובדים ובעלי מניות של רוש.

Acknowledgments

המחברים רוצים להודות לקרמינה אספיריטו ורובין א. טיילור על תמיכתם בפיתוח דיסקציה אוטומטית, כמו גם לצוות המעבדה המרכזית לפתולוגיה של Genentech שתמך בעבודה זו.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Agilent SureSelectXT Agilent G9611A
AVENIO Millisect Fill Station Roche 8106533001
AVENIO Millisect Instrument, Base Roche 8106568001
AVENIO Millisect Instrument, Head Roche 8106550001
AVENIO Millisect Milling Tips Small Roche 8106509001
AVENIO Millisect PC Roche 8106495001
BioAnalyzer Agilent G2939BA
Eppendorf 5427R Eppendorf 22620700 Micro-centrifuge
Incubation Buffer Promega D920D
Leica Autostainer XL Leica ST5010 Automated stainer
Molecular Grade Mineral Oil Sigma M5904-500ML
Proteinase K Promega V302B Digestion buffer
Qiagen AllPrep DNA/RNA Mini Kit Qiagen 80284
RLT Plus buffer Qiagen 80204
Superfrost Plus positively charged microscope slides Thermo Scientific 6776214

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cho, M., et al. Tissue recommendations for precision cancer therapy using next generation sequencing: a comprehensive single cancer center's experiences. Oncotarget. 8 (26), 42478-42486 (2017).
  2. Smits, A. J. J., et al. The estimation of tumor cell percentage for molecular testing by pathologists is not accurate. Modern Pathology: An Official Journal of the United States and Canadian Academy of Pathology, Inc. 27 (2), 168-174 (2014).
  3. Poole-Wilson, P. A., Langer, G. A. Effect of pH on ionic exchange and function in rat and rabbit myocardium. The American Journal of Physiology. 229 (3), 570-581 (1975).
  4. Viray, H., et al. A prospective, multi-institutional diagnostic trial to determine pathologist accuracy in estimation of percentage of malignant cells. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 137 (11), 1545-1549 (2013).
  5. El-Serag, H. B., et al. Gene Expression in Barrett's Esophagus: Laser capture versus whole tissue. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 44 (7), 787-795 (2009).
  6. Harrell, J. C., Dye, W. W., Harvell, D. M. E., Sartorius, C. A., Horwitz, K. B. Contaminating cells alter gene signatures in whole organ versus laser capture microdissected tumors: a comparison of experimental breast cancers and their lymph node metastases. Clinical & Experimental Metastasis. 25 (1), 81-88 (2008).
  7. Kim, H. K., et al. Distinctions in gastric cancer gene expression signatures derived from laser capture microdissection versus histologic macrodissection. BMC Medical Genomics. 4, 48 (2011).
  8. Klee, E. W., et al. Impact of sample acquisition and linear amplification on gene expression profiling of lung adenocarcinoma: laser capture micro-dissection cell-sampling versus bulk tissue-sampling. BMC Medical Genomics. 2, 13 (2009).
  9. Civita, P., et al. Laser capture microdissection and RNA-seq analysis: High sensitivity approaches to explain histopathological heterogeneity in human glioblastoma FFPE archived tissues. Frontiers in Oncology. 9, 482 (2019).
  10. Emmert-Buck, M. R., et al. Laser capture microdissection. Science. 274 (5289), 998-1001 (1996).
  11. Bonner, R. F., et al. Laser capture microdissection: molecular analysis of tissue. Science. 278 (5342), 1481-1483 (1997).
  12. Hunt, J. L., Finkelstein, S. D. Microdissection techniques for molecular testing in surgical pathology. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 128 (12), 1372-1378 (2004).
  13. Espina, V., et al. Laser-capture microdissection. Nature Protocols. 1, 586-603 (2006).
  14. Grafen, M., et al. Optimized expression-based microdissection of formalin-fixed lung cancer tissue. Laboratory Investigation; A Journal of Technical Methods and Pathology. 97 (7), 863-872 (2017).
  15. Javey, M., et al. innovative tumor tissue dissection tool for molecular oncology diagnostics. The Journal of Molecular Diagnnostics: JMD. (21), 1525-1578 (2021).
  16. Adey, N., et al. A mill based instrument and software system for dissecting slide-mounted tissue that provides digital guidance and documentation. BMC Clinical Pathology. 13 (1), 29 (2013).

Tags

חקר הסרטן גיליון 169 כריתה אוטומטית ריצוף הדור הבא העשרת גידולים תכולת גידול נמוכה
פרוטוקול דיסקציה אוטומטי להעשרת גידולים ברקמות בעלות תכולת גידול נמוכה
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Havnar, C. A., Zill, O., Eastham,More

Havnar, C. A., Zill, O., Eastham, J., Hung, J., Javey, M., Naouri, E., Giltnane, J., Balko, J. M., Wallace, A., Lounsbury, N., Oreper, D., Saturnio, S., Yang, G. Y., Lo, A. A. Automated Dissection Protocol for Tumor Enrichment in Low Tumor Content Tissues. J. Vis. Exp. (169), e62394, doi:10.3791/62394 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter