يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تعديلات دقيقة بوساطة CRISPR-Cas9 في قلوب الزرد

3.8K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/64209

⸱

سبتمبر 13, 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول نهجا لتسهيل التعديلات الدقيقة في أجنة الزرد باستخدام تقنية CRISPR-Cas9. يتم تقديم خط أنابيب التنميط الظاهري لإثبات قابلية تطبيق هذه التقنيات لنمذجة متغير جيني مرتبط بمتلازمة فترة QT الطويلة.

الملخص

تتيح التكرارات العنقودية القصيرة المتباعدة بانتظام (CRISPR) في النماذج الحيوانية التلاعب الجيني الدقيق لدراسة الظواهر الفسيولوجية. تم استخدام الزرد كنموذج وراثي فعال لدراسة العديد من الأسئلة المتعلقة بالأمراض الوراثية والتطور وعلم السموم على مستوى الأعضاء والكائنات الحية بأكملها. نظرا لجينوم سمك الزرد المشروح جيدا والمعين ، تم تطوير العديد من الأدوات لتحرير الجينات. ومع ذلك ، فإن فعالية توليد وسهولة اكتشاف التعديلات الدقيقة باستخدام كريسبر هي عامل مقيد. يوصف هنا نهج قائم على CRISPR-Cas9 مع الكشف البسيط عن التعديلات الدقيقة في الجين المسؤول عن إعادة استقطاب القلب والمرتبط بالاضطراب الكهربائي ، متلازمة فترة QT الطويلة (LQTS). هذا النهج ثنائي الدليل RNA (sgRNA) يستأصل ويحل محل التسلسل المستهدف ويربط جين مراسل مشفر وراثيا. يتم توضيح فائدة هذا النهج من خلال وصف قياسات النمط الظاهري غير الغازية للوظيفة الكهربائية للقلب في يرقات الزرد من النوع البري والمحرر جينيا. يتيح هذا النهج الدراسة الفعالة للمتغيرات المرتبطة بالمرض في كائن حي بأكمله. علاوة على ذلك ، توفر هذه الاستراتيجية إمكانيات لإدخال تسلسلات خارجية من الاختيار ، مثل جينات المراسل ، أو تقويم العظام ، أو محرري الجينات.

المقدمة

تتيح استراتيجيات تحرير الجينات القائمة على كريسبر في النماذج الحيوانية دراسة الأمراض الوراثية وراثيا وتطورها وعلم السموم على مستوى الكائن الحي بأكمله1،2،3. يوفر الزرد نموذجا قويا أقرب في العديد من الجوانب الفسيولوجية للبشر من الفئران أو نماذج الخلايا المشتقة من الإنسان4. تم استخدام مجموعة واسعة من الأدوات والاستراتيجيات الجينية في الزرد لكل من الفحص الجيني الأمامي5 والعكسي6. سهلت الخرائط الجينية الشاملة والتعليقات التوضيحية في أسماك الزرد نهج تحرير الجينات كتقنية أولية لهندسة الضربات....

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أجريت الدراسات باستخدام الزرد بالاتفاق مع سياسات وإجراءات لجنة رعاية الحيوان بجامعة سيمون فريزر والمجلس الكندي لرعاية الحيوان وتم الانتهاء منها بموجب البروتوكول # 1264K-18.

1. تصميم مكونات كريسبر لإجراء تعديلات دقيقة

  1. لتصميم أدلة sgRNA ثنائية التي سيتم استخدامها لاستئصال التسلسل الذي يحتوي على موقع هدف KI ، حدد أولا أورثولوج الزرد للجين محل الاهتمام.
    ملاحظة: يقدم الشكل 2 نظرة عامة موجزة عن خطوات هندسة عمليات التحرير الدقيقة باستخدام نهج sgRNA CRISPR-Cas9.
  2. بعد ذلك ، استخدم أداة برمجية للتصميم ، مثل CRISPOR24 ، والتي تتضمن اختيار Danio rerio ....

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يتم تسليط الضوء على الاستخدام الناجح لنهج كريسون البديل ثنائي الحمض النووي الريبي من خلال الإدخال والكشف البسيط عن تحرير دقيق لهندسة المتغير المرتبط ب LQTS ، R56Q ، في جين zkcnh6a في الزرد. يوضح الشكل 6 3 يرقات تمثيلية من ألياف الحافظة المحقونة في مرحلة الجنين أحادي الخلية بمكونات كريسبر كما هو موضح أعلاه. يوضح الشكل 6A وجود التعبير الجيني لمراسل YFP mVenus في عدسة العين كمراسل إيجابي لتكامل القالب الناجح. يوضح الشكل 6B ، <.......

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تواجه هندسة التعديلات الجينية الدقيقة باستخدام CRISPR-Cas9 تحديا بسبب الكفاءة المنخفضة لآليات HDR واكتشافها الفعال. هنا ، يتم وصف نهج استبدال إكسون ثنائي sgRNA قائم على CRISPR-Cas9 ينتج تعديلات دقيقة في الزرد مع اكتشاف مرئي مباشر للتعديلات الإيجابية. يتم إثبات فعالية هذا النهج من خلال توليد تعديلات دقيقة في جين zkcnh6a . توضح هذه الورقة كيف يمكن تقييم وظيفة القلب في يرقات الزرد المعدلة جينيا باستخدام مقاييس النمط الظاهري غير الغازية لمعدل ضربات القلب وأبعاد التامور ومورفولوجيا تخطيط القلب. يمكن إكمال هذا النهج ،.......

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للكشف عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا البحث من خلال منحة مشروع المعاهد الكندية للبحوث الصحية (T.W.C.) ومنح مجلس أبحاث العلوم الطبيعية والهندسة في كندا ديسكفري (T.W.C.).

....

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوي>البرنامج
CRISPORTEFOR Infrastructure
ENSEMBLالمعهد
ImageJالمعاهد الوطنية للصحة (NIH)
Micro-Managerمفتوح المصدر (Github)
NEBiocalculatorنيو إنجلاند Biolabs (NEB)
< قوي > المعدات < / قوي >
24 بئر لوحةVWR
25 مم طبق بتريVWR
Blackfly USB3 كاميراTeledyne FLIR
C1000 Thermal CyclerBio-Rad
الطرد المركزي 5415CEppendorf
طقم استخراج جل EZNAأوميغا Biotek
MAXIscript T7 طقم النسخInvitrogen
MaxQ 5000 حاضنةBarnstead Lab Line
MiniprepKit Qiagen
mMessage mMachine T7 Ultra Transcription KitInvitrogen
ND1000 Spectrophotometer
PCRQiagen
PLI 100A Picoinjectorجهاز هارفارد
PowerPac امدادات الطاقة الأساسيةBio-Rad
Stemi 305 SteroscopeZeiss
Wide Sub Cell GT نظام الرحلان الكهربائيBio-Rad
ZebTec Zebrafish الإسكان نظامTecniplast
SERVICES
Gene SynthesisGenewiz
Sanger SequencingGenewiz
REAGENTS
10β الخلايا المختصةNEB
10X PCR BufferQiagen
100 mM خليط النيوكليوتيداتABM
AmpicillinSigma
BamHI Endonuclease w / bufferNEB
BsaI Endonuclease w / bufferNEB
DR274 Plasmid (XL1 طعنة أجار البكتيرية الزرقاء)Addgene
EcoRI Endonuclease مع المخزن المؤقتNEB
Glycerol
HEPESSigma
HindIII Endonuclease w / bufferNEB
KanamycinSigma
Methylene BlueSigma
MLM3613 Plasmid (XL1 Blue طعنة أجار البكتيرية)Addgene
MS-222 (Tricaine)Sigma
pKHR5 Plasmid (DH5 & alpha ، طعنة أجار بكتيرية)Addgene
PmeI Endonuclease w / bufferNEB
Sali Endonuclease w / bufferNEB
هيدروكسيد الصوديومSigma
T4 Ligase ث / العازلةSigma
Taq PolymeraseQiagen
TE BufferSigma
Tris HydrochlorideSigma
XhoI Endonuclease w / bufferNEB
RECIPES< / strong>
SolutionComponent Supplier
المخزن المؤقت للتلدين (الرقم الهيدروجيني 7.5-8.0)10 ملي مولار تريسسيجما
50 ملي كلوريد الصوديومسيجما
1 ملي مولار EDTAسيجما
E3 الوسائط (درجة الحموضة 7.2)5 ملي كلوريد الصوديومسيجما
0.17 ملي مولار KClسيجما
0.33 ملي مولار كالوريد < الفرعي >2< / فرعي >سيجما
0.33 ملي مولار MgSO4< / sub>Sigma
Injection Buffer (درجة الحموضة 7.5)20 ملي مولار HEPESSigma
150 ملي مولار KClSigma
الأوروبي للمعلوماتية الحيوية طقم تنقية Nanodrop

المراجع

  1. Zarei, A., Razban, V., Hosseini, S. E., Tabei, S. M. B. Creating cell and animal models of human disease by genome editing using CRISPR/Cas9. The Journal of Gene Medicine. 21 (4), 3082(2019).
  2. Lee, H., Yoon, D. E., Kim, K. Genome editing methods in animal models.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

إدخال جين بتقنية CRISPRتحرير جيني دقيقإعادة استقطاب القلبمتلازمة استطالة interval QTدمج جين مراسلتسلسل سانجرتصميم قالب الإصلاح الموجه بالتماثل (HDR)التنميط الظاهري لتخطيط كهربائية القلبنمذجة المتغيرات المرضية