Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Behavior
Click here for the English version

Behavior

Поведенческая характеристика мышиной модели синдрома Ангельмана

Published: October 20, 2023 doi: 10.3791/65182
Automatic Translation
1, 1,2, 1,2
1Czech Centre for Phenogenomics, Institute of Molecular Genetics of the Czech Academy of Sciences, 2Laboratory of Transgenic Models of Diseases, Institute of Molecular Genetics of the Czech Academy of Sciences

Summary

В данной рукописи представлен набор высоко воспроизводимых поведенческих тестов для валидации мышиной модели синдрома Ангельмана.

Abstract

В этой рукописи описывается батарея поведенческих тестов, доступных для характеристики фенотипов, подобных синдрому Ангельмана (АС), в установленной мышиной модели АС. Мы используем парадигму ротародного обучения, детальный анализ походки и тест на строительство гнезда для выявления и характеристики двигательных нарушений животных. Мы тестируем эмоциональность животных в открытом поле и на повышенных и лабиринтных тестах, а также аффект в тесте на подвеску хвоста. Когда мыши с синдромом Аспергера тестируются в открытом поле, результаты следует интерпретировать с осторожностью, поскольку двигательные дисфункции влияют на поведение мышей в лабиринте и изменяют показатели активности.

Воспроизводимость и эффективность представленных поведенческих тестов уже была подтверждена на нескольких независимых линиях мышей Uba3a с различными вариантами нокаута, что делает этот набор тестов отличным инструментом валидации в исследованиях АС. Модели с соответствующей конструкцией и валидностью лица потребуют дальнейших исследований для выяснения патофизиологии заболевания и позволят разработать причинно-следственные методы лечения.

Introduction

Синдром Ангельмана (АС) является редким заболеванием развития нервной системы. Наиболее распространенным генетическим происхождением АС является большая делеция участка 15q11-q13 хромосомы материнского происхождения, которая обнаруживается почти у 74%пациенток1. Делеция этой области приводит к потере UBE3A, основного возбудителя АС, кодирующего убиквитин-лигазу E3. Отцовский аллель гена UBE3A в нейронах заглушается в процессе, известном как импринтинг. Как следствие, отцовский импринтинг гена допускает только материнскую экспрессию в центральной нервной системе (ЦНС)2. Таким образом, делеция гена UBE3A из хромосомы материнского происхождения приводит к развитию симптомов АС. У людей АС проявляется в возрасте около 6 месяцев, с задержкой развития, которая сохраняется на всех этапах развития и приводит к тяжелым изнурительным симптомам у больных 3,4. Основные симптомы расстройства включают дефицит мелкой и крупной моторики, в том числе судорожную атаксическую походку, серьезные нарушения речи и умственную отсталость. Примерно 80% пациентов с синдромом Аспергера также страдают нарушениями сна и эпилепсией. На сегодняшний день единственным доступным лечением являются симптоматические препараты, которые уменьшают эпилептические припадки и улучшают качествосна1. Таким образом, разработка надежных животных моделей с воспроизводимыми поведенческими фенотипами наряду с уточненным анализом фенотипирования будет иметь важное значение для выяснения патофизиологических механизмов расстройства и поиска эффективных лекарств и методов лечения.

Сложность человеческого заболевания, поражающего ЦНС, требует, чтобы модельные организмы обладали сопоставимым геномом, физиологией и поведением. Мыши популярны в качестве модельных организмов из-за их короткого репродуктивного цикла, небольшого размера и относительной простоты модификации ДНК. В 1984 году Пол Уилнер предложил три основных критерия валидации модели заболевания: конструкт, лицо и прогностическая валидность, которые используются дляопределения ценности модели. Проще говоря, конструктная валидность отражает биологические механизмы, ответственные за развитие расстройства, валидность лица повторяет его симптомы, а прогностическая валидность описывает реакцию модели на терапевтические препараты.

Чтобы придерживаться вышеуказанных принципов, мы выбрали наиболее распространенную генетическую этиологию, большую делецию материнского локуса 15q11.2-13q, включая ген UBE3A, для создания мышей модели AS. Мы использовали технику CRISPR/Cas9 для удаления участка длиной 76 225.н., охватывающего весь ген UBE3A, охватывающего как кодирующие, так и некодирующие элементы гена, у мышейиз фона C57BL/6N6. Затем мы скрещивали животных для получения гетерозиготных мышей UBE3A+/−. Для валидации модели мы использовали животных от скрещивания самок UBE3A+/− и самцов дикого типа для получения потомства UBE3A+/- (штамм C57BL/6NCrl-UBE3A/Ph, позже присвоенный как UBE3A mGenedel/+) и контрольные однопометники. Мы проверили их мелкую и крупную моторику, эмоциональность и аффект, чтобы повторить основные симптомы синдрома Аспергера. В предыдущей статье мы также оценивали когнитивные функции животных, так как пациенты с синдромом Аспергера также страдают умственнойотсталостью6. Тем не менее, мы не обнаружили когнитивных нарушений у мышей UBE3AmGenedel/+, возможно, из-за молодого возраста животных на момент тестирования7. Более позднее обследование старших животных, в возрасте около 18 недель, выявило дефицит поведенческой гибкости во время реверсивного обучения в парадигме предпочтения места. Однако сложность используемого оборудования для такого анализа требует отдельного методологического модуля, который здесь не включен.

Представленные здесь поведенческие тесты относятся к распространенным инструментам фенотипирования в генетических исследованиях, благодаря их высокой прогностической ценности и достаточной конструктной валидности 8,9,10. Мы использовали эти тесты для валидации мышиной модели АС путем повторения основных симптомов заболевания человека воспроизводимым, независимым от возраста образом. Эмоциональность животного оценивалась в тестах повышенного плюса лабиринта и открытого поля. Оба этих теста основаны на конфликте приближения-избегания, когда животные исследуют новую среду в поисках пищи, укрытия или возможностей для спаривания, одновременно избегая анксиогенных компартментов11. Кроме того, тест в открытом поле используется для проверки локомоторной активности мыши8. Тест на подвеску хвоста широко используется в исследованиях депрессии для скрининга новых антидепрессантов или депрессивных фенотипов в моделях нокаутамышей 12. Этот тест оценивает отчаяние, которое животные развивают с течением времени в неизбежной ситуации. Моторика и детальные характеристики походки определялись на ротароде и в DigiGait соответственно. Выносливость животного на ускорительном стержне характеризует его навыки равновесия и координации движений, в то время как детальный анализ шаговых паттернов мыши является чувствительной оценкой нервно-мышечных нарушений, связанных со многими нейрогенеративными двигательными расстройствами13,14,15. Тест на измельчение гнезд является частью стандартной методики выявления импульсивного поведения грызунов, и, поскольку он использует естественное поведение грызунов, он указывает на благополучие животного16,17.

Размер экспериментальных групп был достигнут в результате компромисса, направленного на выполнение требований правила 3R и эффективное использование показателей размножения колоний. Однако для получения статистической мощности в группах насчитывалось не менее 10 особей, что обусловлено установлением достаточного количества размножающихся пар. К сожалению, племенная продуктивность не всегда приводила к достаточному количеству животных.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Все животные и эксперименты, использованные в этом исследовании, прошли этическую экспертизу и были проведены в соответствии с Европейской директивой 2010/63/EU. Исследование было одобрено Чешской центральной комиссией по защите животных. Мышей помещали в индивидуально вентилируемые клетки и поддерживали постоянную температуру 22 ± 2 °C с 12-часовым циклом света/темноты. Мышам давали мышиный корм и воду вволю. Мышей помещали группами от трех до шести животных в клетке. Перед испытанием не выполнялось никаких действий, кроме взвешивания. Подробную информацию обо всех материалах и оборудовании, используемых в этом протоколе, см. в Таблице материалов .

1. Общие соображения до и во время испытаний

ПРИМЕЧАНИЕ: Для ясности и понятности перед описанием отдельных тестов приводятся общие комментарии. Это относится к каждому испытанию, за очевидным исключением испытания на измельчение гнезда, которое проводится в помещении для содержания и не требует использования какого-либо экспериментального оборудования.

  1. Размещайте животных в исследовательском центре не менее 14 дней до тестирования, чтобы свести к минимуму любой стресс, связанный с транспортировкой и изменениями окружающей среды.
  2. Записывайте вес животных перед тестированием, так как вес является распространенным искажающим фактором в поведенческих исследованиях.
  3. Оставьте животных акклиматизироваться в экспериментальной комнате не менее чем на 1 час после транспортировки из помещения для содержания животных, чтобы свести к минимуму транспортный стресс, когда бы ни происходила такая транспортировка (т.е. все тесты, описанные ниже, за исключением измельчения гнезд, которое проводится в помещении содержания).
  4. Пометьте каждое животное на хвосте нетоксичным маркером на водной основе, чтобы обеспечить быструю идентификацию во время эксперимента.
  5. Удаляйте всю мочу и фекалии, отложенные животными в экспериментальном аппарате во время тестирования после каждого испытания.
  6. Протирайте все экспериментальные приборы 75% спиртом до и после каждого испытуемого животного. Очистка удаляет обонятельные следы, отложенные во время тестирования, и помогает сохранить стабильные условия эксперимента.
  7. Транспортируйте животных из домашней клетки в экспериментальную установку с максимально возможной осторожностью, желательно в небольшом непрозрачном контейнере, а затем свободно выпускайте их, если не понадобятся другие манипуляции.
  8. Поместите каждое животное во временную клетку после тестирования, чтобы они не повлияли на непроверенных животных в домашней клетке.
  9. Тестируйте самцов и самок в последовательные дни. Чередуйте порядок различных генотипов во время тестирования, чтобы уравновесить непредсказуемые факторы окружающей среды между экспериментальными группами.
  10. Поместите животных обратно в домашнюю клетку после того, как все животные будут протестированы, и верните их обратно в комнату содержания.
  11. В случае повторного тестирования животных соблюдайте интервал между каждым тестом не менее 1 дня.

2. Поведенческие тесты

  1. Приподнятый плюсовой лабиринт (EPM)
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оба пола мышей линий C57BL/6NCrl и UBE3AmGenedel/+ были протестированы для этого исследования в возрасте 9-12 недель. Вес животных варьировался от 22 до 36 г для самцов и от 18 до 28 г для самок на момент тестирования.
    1. Разместите лабиринт в форме плюса на тестовой платформе прямо под камерой. С помощью потенциометра на стене установите интенсивность света на 70 люкс в его центре с помощью люксометра, при этом его датчик будет размещен в центре лабиринта во время регулировки.
    2. Откройте программное обеспечение, дважды щелкнув по значку программного обеспечения Viewer , и загрузите конфигурацию для тестирования EPM, щелкнув по значку в верхней левой части вкладки Configuration . Загрузите плагин EPM из меню Файл . Заполните информацию о животном с помощью клавиатуры компьютера — идентификатор животного, генотип, пол и информацию об эксперименте (дата, интенсивность света) — в соответствующих полях вкладки «Эксперимент ». Проверьте, правильно ли настроено положение зоны, открытые и закрытые руки. С помощью визуального управления и компьютерной мыши убедитесь, что виртуальные очерченные зоны совпадают с соответствующими зонами EPM на предварительном просмотре видео.
    3. EPM — это тест, используемый для оценки общей тревожности животного, который основан на конфликте «подход-избегание». Грызуны, естественно, склонны избегать хорошо освещенных незащищенных мест (открытые объятия), предпочитая их более безопасным (сомкнутые объятия). Поскольку этот полностью автоматизированный тест основан на системе видеонаблюдения, программное обеспечение автоматически рассчитывает время, проведенное в каждой зоне, а также количество входов.
    4. Во время тестирования запишите животных на видео с помощью промышленной инфракрасной светочувствительной камеры. Позволяет программному обеспечению определять положение животного в режиме реального времени во время записи. После этого программное обеспечение автоматически оценивает следы животного, чтобы рассчитать все параметры, описывающие поведение животного в лабиринте. Используйте время, проведенное в анксиогенных распростертых объятиях, и процент посещений с распростертыми объятиями, чтобы оценить уровень тревожного поведения у животных.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Изготовленный на заказ лабиринт изготовлен из инфракрасного светопроницаемого материала и размещен на платформе источника инфракрасного света со светодиодами (LED).
    5. Наведите курсор мыши на значок стрелки в левом верхнем углу вкладки «Сбор». Извлеките животное из домашней клетки вручную и аккуратно поместите его в центр ЭПМ. Запустите протокол, щелкнув левой кнопкой мыши на компьютере, и немедленно покиньте экспериментальную комнату.
    6. После того, как протокол записи завершится после 5 минут свободного исследования лабиринта, сохраните записанные данные, нажав OK в окне, которое появится после завершения протокола, присвойте файлу соответствующее имя и нажмите кнопку Сохранить. Экспортируйте результаты в файл .csv для каждого тестируемого животного для автономного анализа, нажав на иконку на левой вертикальной панели вкладки Анализ данных .
    7. Вытащите животное из лабиринта вручную и поместите его во временную клетку. Проведите тестирование всех животных таким же образом. Скопируйте результаты по всем испытуемым животным в файл Блокнота для автономного анализа, нажав на значок « Копировать результаты » на вкладке результатов плагина лабиринта «Повышенный плюс ».
      ПРИМЕЧАНИЕ: Программное и аппаратное обеспечение могут отличаться, и необходимо следовать соответствующим руководствам. Кроме того, экспериментальная установка, такая как освещение или размещение компьютера, может варьироваться в зависимости от конструкции помещения для животных.
  2. Испытание в открытом поле (OF)
    ПРИМЕЧАНИЕ: Тест в открытом поле оценивает общее движение животного, которое запускается исследовательским поведением в новой среде. Кроме того, он обычно используется в качестве скринингового инструмента для выявления общей тревожности в незащищенном, хорошо освещенном помещении. Это полностью автоматизированный тест, в котором используется система видеослежения, которая также использовалась в предыдущем тесте.
    1. Разместите четыре тестовых бокса OF на испытательной платформе прямо под камерой. С помощью потенциометра на стене установите интенсивность света на 200 люкс в центре каждого теста OF с помощью люксометра, датчик которого будет размещен в центре каждой коробки во время регулировки.
    2. Откройте программное обеспечение, дважды щелкнув по значку программного обеспечения Viewer, и загрузите конфигурацию для тестирования OF, нажав на значок в верхней левой части вкладки Configuration . Заполните информацию о животных с помощью компьютерной клавиатуры — идентификатор животного, генотип, пол и информацию об эксперименте (дата, интенсивность света) — в соответствующих полях вкладки «Эксперимент ». Проверьте, соответствует ли положение зоны (центр и периферия) тестовым полям OF, и при необходимости отрегулируйте их. С помощью визуального управления и компьютерной мыши убедитесь, что виртуальные очерченные центральная и периферийная зоны соответствуют соответствующим тестовым зонам OF на предварительном просмотре видео.
    3. Во время тестирования запишите животных на видео с помощью промышленной инфракрасной светочувствительной камеры. Позволяет программному обеспечению определять положение животного в режиме реального времени во время записи и автоматически оценивать следы животного для расчета всех параметров, описывающих поведение животного в тестовом боксе OF. Пройденное расстояние, средняя скорость и время отдыха являются параметрами, используемыми для оценки активности животных в новой среде, в то время как количество входов в центр и продолжительность пребывания в центре описывают тревожное поведение у животных.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Изготовленный на заказ лабиринт изготовлен из инфракрасного светопроницаемого материала и размещен на платформе светодиодного инфракрасного источника света.
    4. Наведите курсор мыши на значок стрелки в левом верхнем углу вкладки «Сбор». Вручную извлеките четырех животных из домашней клетки и аккуратно поместите их в угол каждой тестовой коробки. Запустите протокол, щелкнув левой кнопкой мыши по компьютерной мышке, и сразу же покиньте экспериментальную комнату.
    5. Когда протокол завершит работу после 10 минут свободного исследования лабиринта, сохраните данные, нажав OK в окне, которое появится после завершения протокола, присвойте файлу соответствующее имя и нажмите кнопку Сохранить. Экспортируйте результаты в файл .csv для каждого тестируемого животного для автономного анализа, нажав на иконку на левой вертикальной панели вкладки Анализ данных .
    6. Вытащите животных из лабиринта вручную и посадите их во временную клетку. Проведите тестирование всех животных таким же образом. Проанализируйте экспортированные данные.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Программное и аппаратное обеспечение могут отличаться, и необходимо следовать соответствующим руководствам. Кроме того, экспериментальная установка, такая как освещение, количество лабиринтов или размещение компьютера, может варьироваться в зависимости от конструкции помещения для животных.
  3. Испытание хвостовой подвески (TST)
    ПРИМЕЧАНИЕ: Три мыши тестируются одновременно с помощью автоматизированного устройства подвески хвоста.
    1. Поддерживайте интенсивность освещения в помещении на уровне 100-120 люкс.
    2. Подключите систему TST к компьютеру с помощью USB-кабеля. Вставьте USB-ключ в компьютер и запустите программное обеспечение, дважды щелкнув значок программного обеспечения BIO-TST . На вкладке « Настройки » в разделе «Глобальные» установите продолжительность съемки на 360 с. На вкладке « Эксперимент » выберите «Новый список испытуемых» и создайте новый файл эксперимента и новый список испытуемых, следуя инструкциям в открывшейся вкладке.
    3. Запустите прогон, щелкнув Начать прогон | продолжить на вкладке Сбор. Подготовьте животных к тесту, обмотав односторонним клейким скотчем, например, транспорированным медицинским пластырем, вокруг 3/4 хвоста животного, начиная от основания.
    4. Проденьте крючок подвески через ленту и подвесьте животное на ней. Начните собирать данные по каждому животному индивидуально сразу после того, как повесите его на крючок, нажав значок «Старт » под визуализированным положением для каждого животного, и непрерывно наблюдайте за животными во время теста.
    5. После завершения сбора для первой группы животных нажмите кнопку Инициировать следующий прогон, снимите животных с крючка, отсоедините клейкую ленту от их хвостов, аккуратно разрезав ленту ножницами вдоль хвоста, и поместите животных во временную клетку для содержания.
    6. Очистите аппарат 75% спиртом и бумажными салфетками и приступайте к остальным животным, как описано выше. На вкладке «Анализ» выберите последние 4 минуты сбора данных для анализа, затем выберите все допустимые прогоны в периоде анализа, нажмите «Анализировать выбранные объекты», выберите нужный формат данных и нажмите «Экспортировать выбранные данные», чтобы экспортировать собранные данные для дальнейшего анализа.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Тест длится 6 минут. В течение первых 2 минут животные будут энергично бороться, но поскольку реакция отчаяния становится преобладающей в течение оставшихся 4 минут, для анализа берется время неподвижности в течение этого периода. Программное и аппаратное обеспечение могут отличаться, и необходимо следовать соответствующим руководствам. Кроме того, само оборудование может отличаться (например, количество контрольных позиций).
  4. Анализ походки
    1. Включите беговую дорожку и вручную установите скорость ленты на 20 см/с на панели оборудования, нажав на символ + или -, расположенный рядом с индикатором скорости. Включите свет устройства, повернув ручку по часовой стрелке. Запустите программное обеспечение DigiGait Imager, дважды щелкнув значок программного обеспечения, и установите выдержку на 100 для мышей-альбиносов или 130 для черных/темных мышей в поле для выдержки.
    2. Выньте первое животное из домашней клетки вручную и аккуратно положите его на ленту беговой дорожки. Закройте дверцу отсека для животных. Визуально осмотрите, чтобы убедиться, что хвост животного не застрял между дверью и рамой.
    3. Позвольте мыши исследовать ленту беговой дорожки перед записью. Убедитесь, что животное способно выполнить тест, установив беговую дорожку на медленную скорость ходьбы в течение ~3 с, а затем остановив ее, непрерывно наблюдая за животным.
    4. Запустите ленту, нажав кнопку «Пуск » на панели оборудования, и записывайте в течение примерно 10 секунд. Убедитесь в том, что можно четко и плавно передвигаться, по крайней мере, в 10-15 шагов. Остановите ремень, нажав кнопку «Стоп» на панели оборудования, и вручную верните мышь во временную клетку для удержания.
    5. Просмотрите запись на наличие последовательности изображений с плавными шагами, нажав кнопку ВОСПРОИЗВЕСТИ и просмотрев запись с помощью визуального элемента управления в режиме РЕДАКТИРОВАТЬ . Выберите 10-15 плавных движений, вручную записав их начальный и конечный номера кадров в соответствующие поля (From frame# для первого кадра и To для последнего кадра). Заполните информацию о животном — идентификатор животного, дату рождения, пол, вес, скорость ремня и угол наклона ремня — и при необходимости прокомментируйте его в соответствующих полях. Сохраните файл для дальнейшего анализа, нажав кнопку Сохранить.
    6. Очистите пояс водой и проделайте то же самое с остальными животными. Выберите КАМЕРА , чтобы продолжить запись следующей прогулки животного. Когда записи будут получены по всем животным, приступайте к анализу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Животные, которые не могут ходить с заданной скоростью ремня, исключаются из тестирования. Основываясь на нашем опыте, мы наблюдаем, что пожилые животные (старше 50 недель) испытывают больше трудностей при ходьбе по беговой дорожке, с переменной частотой от 2% до 50% в зависимости от генотипа. Отходы животного происхождения собираются в лотки либо спереди, либо сзади беговой дорожки. После каждого исследования капы опорожняют и промывают теплой мыльной водой. Ремень протирается влажной тряпкой.
    7. Выполняйте анализ походки на основе полностью автоматизированного анализа видеозаписей следов животных. Скорректируйте данные в программном обеспечении DigiGait Analysis .
      ПРИМЕЧАНИЕ: Анализ походки обеспечивает не только измерение координации движений, но и подробное кинематическое описание, основанное на анализе динамического сигнала походки, представляющего временную историю постановки лапы через последовательные шаги. Программное обеспечение автоматически измеряет следующие параметры: продолжительность замаха, процент длительности шага при раскачивании, продолжительность торможения, процент длительности шага при торможении, продолжительность тяги, процент шага в тяге, продолжительность стойки, процент шага в стойке, продолжительность шага, тормозной процент от стойки, процент тяги в фазе стойки, отношение качания к стойке, длина шага, частота шага, угол наклона лапы, вариативность угла наклона лапы, ширина стойки, угол шага, вариабельность длины шага, вариабельность ширины шага, вариабельность угла шага, коэффициент вариации длины шага, коэффициент вариации ширины стойки, коэффициент вариации угла шага, коэффициент вариации длительности замаха, площадь лап в пиковой стойке, вариабельность области лап в пиковой стойке, продолжительность общей стойки задних конечностей, процент общей стойки, соотношение длительности левой и правой задней стойки, симметрия походки, максимальная скорость изменения площади лапы, соприкасающейся с ремнем беговой дорожки во время фазы торможения, максимальная скорость изменения площади лап при соприкосновении с ремнем беговой дорожки во время фазы движения, тау-движение, расстояние перекрытия лап, Положение лап, коэффициент атаки, расстояние по средней линии, расстояние до оси и сопротивление лапы. Программное обеспечение позволяет выполнять небольшую коррекцию шума трассировки шагов, которая должна быть выполнена перед статистическим анализом. Программное и аппаратное обеспечение могут отличаться, и необходимо следовать соответствующим руководствам.
  5. Ротарод
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ротародный тест используется для оценки двигательных функций грызунов - равновесия и координации движений. Тест требует, чтобы мышь ходила по вращающемуся стержню фиксированного диаметра (5 см), при этом вращение ускорялось в течение определенного периода времени (5 минут) до тех пор, пока животное больше не сможет держаться на нем.
    1. Включите ротационное оборудование, нажав переключатель включения/выключения на оборудовании, и запустите программное обеспечение, дважды щелкнув значок программного обеспечения Rod. Инициализируйте новый файл на вкладке Файл и сохраните его под соответствующим именем. В окне Настройка введите сведения об эксперименте, такие как дата, имя пользователя и возможные комментарии. Установите профиль скорости на 300 с, начальную скорость на 4 об/мин и конечную скорость на 40 об/мин.
    2. Подготовьте график для тестируемых животных в поле «Животные » и назначьте каждому животному свое положение на стержне. Позиции не указываются в программном обеспечении явно, но они соответствуют строке списка; Например, первая строка будет обозначать первое положение стержня, пятая строка — пятое положение стержня и так далее. Не забывайте уравновешивать каждое положение стержня между экспериментальными группами.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Одновременно можно тестировать пять животных.
    3. Закройте панель « Настройка », нажав кнопку « Закрыть », и откройте панель измерений, нажав кнопку «Измерение». Начните начальное вращение стержня со скоростью 4 об/мин , нажав кнопку «Старт/Стоп», и установите первых пяти животных на назначенные им положения. Когда все животные окажутся на стержне, запустите протокол тестирования, нажав « Стартовый профиль», и удилище постепенно ускорится до 40 оборотов в минуту в течение 5 минут. Если животное упало с удилища, верните его на удилище до начала протокола.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Животные обычно не задерживаются на удочке достаточно долго, чтобы поместить на нее сразу всех мышей во время первой попытки. Важно запастись терпением при размещении животных на стержне с постоянной скоростью вращения на старте. Цель теста состоит не в том, чтобы определить выносливость животного на стержне при фиксированной скорости вращения, а в том, чтобы найти скорость, при которой животное не может удержаться на стержне. Скорость стержня пропорциональна латентности пребывания на нем; Таким образом, он используется для выражения равновесия животного.
    4. Переместите животных во временную клетку после того, как все они упадут с удилища, или по прошествии 5 минут. Удалите все отходы животного происхождения и очистите стержень и лоток спиртом.
    5. Нажмите кнопку Животные ->, чтобы перейти к следующей группе животных таким же образом. После тестирования всех животных закройте окно Измерение, щелкнув Закрыть и щелкнув Показать, чтобы отобразить собранные данные. Экспортируйте полученные данные в файл формата .csv для дальнейшего анализа, нажав кнопку Экспорт CSV.
    6. Протестируйте каждое животное на стержне три раза с 15-минутным интервалом между испытаниями. Для дальнейшего статистического анализа используйте усредненное значение задержки для снижения по трем испытаниям. Оцените двигательную способность животного, повторяя тест в течение 5 дней подряд.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Программное и аппаратное обеспечение могут отличаться, и необходимо следовать соответствующим руководствам. Кроме того, само оборудование может отличаться, например, количеством испытательных позиций, общей конструкцией и размерами штанги.
  6. Измельчение гнезд и строительство гнезда
    1. Разделите животных в одинарные клетки для мышей из поликарбоната со стандартным оборудованием (подстилка, кормовая сетка, водоснабжение) на 1 неделю. Возьмите с помощью щипцов примерно 12 г хлопчатобумажного гнезда, запишите его вес вручную с помощью весов и поместите в клетку случайным образом, но с противоположной стороны от водопровода. Верните клетки с животными в помещение для содержания.
    2. Взвешивайте каждое гнездо в одно и то же время каждый день в течение следующих 4 дней вручную с помощью весов. Запишите весовые коэффициенты на бумаге или в готовую электронную таблицу. Убедитесь, что каждое гнездо сухое при взвешивании; Если нет, просушите на грелке и верните всех гнездяшек в назначенные им клетки одновременно в том месте, где мышь устроила свое гнездо. Если гнездышко разорвано на несколько частей, взвесьте самую большую.
    3. Для анализа данных выразите уменьшение веса гнезда в каждый день по отношению к исходному весу и представьте его в процентах от использованного материала.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Возвращение самцов в общую клетку может привести к повышенной агрессии и нежелательным травмам среди животных. Таким образом, испытание на измельчение гнезд должно быть запланировано ближе к концу процедуры тестирования, чтобы избежать ущерба для благополучия животных.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Испытания в лабиринте на возвышенности и в открытом грунте
Тесты EPM и OF используют естественную склонность грызунов исследовать новые среды18,19. Исследование регулируется конфликтом приближения-избегания, когда грызуны выбирают между исследованием новой среды и избеганием возможной опасности. Животные исследуют неизведанные места в поисках убежища, социальных контактов или добывания пищи. Однако новые места могут быть связаны с факторами риска, такими как хищники или конкуренты. Как тест OF, так и тест EPM состоят из безопасного и рискованного отсеков — периферии и центра в тесте OF, а также закрытых и открытых рук в EPM соответственно. Грызуны, естественно, предпочитают темные, закрытые отсеки, а не открытые, возвышенные и ярко освещенные места. Таким образом, снижение количества рискованных/анксиогенных частей, выражающееся в уменьшении числа посещений и продолжительности посещений или в увеличении латентности до первого посещения, характеризует тревожное поведение животных 8,11. Время отдыха, средняя скорость и общее пройденное расстояние дают дополнительную информацию о спонтанной активности животных. Ни один из параметров, связанных с тревожным поведением, не был изменен у мутантов UBE3AmGenedel/+ ни в тесте OF, ни в EPM (рис. 1D-G). Тем не менее, животные с UBE3AmGenedel/+ были значительно гипоактивны, что отражалось в более коротком пройденном расстоянии, более низкой средней скорости и более длительном времени покоя в тесте OF (рис. 1A-C).

Figure 1
Рисунок 1: Спонтанная активность и реакция тревоги на новую среду в тестах EPM и OF. (A-E) Исследование открытого поля. Животные UBE3AmGenedel/+ проходили более короткое расстояние (A) с более низкой средней скоростью (B) и более длительным временем отдыха (C). Количество посещений и продолжительность пребывания в центре не различались у разных животных (Д,Е). Двусторонний ANOVA выявил значимый эффект основного генотипа без значимого взаимодействия между генотипом и полом (эффект генотипа: p < 0,01; взаимодействие генотипа/пола: p > 0,7). Процент посещений открытых и закрытых рук не зависел от генотипа (F), а время, проведенное в анксиогенных открытых объятиях, не различалось между опытными группами (G). Двусторонний ANOVA не выявил значимых основных эффектов или взаимодействия генотипа/пола (эффект генотипа: p > 0,9; генотип/половое взаимодействие : p > 0,9). Данные, изображенные на ящичковой диаграмме, показывают медианное значение, межквартильный размах и диапазон значений. Значимые результаты post-hoc теста обозначаются *. Данные по контрольным животным (самка n = 10, самец n = 11) представлены красным цветом, а мутанты (самка n = 9, самец n = 10) — синим. Эта цифра была адаптирована из Syding et al.6. Сокращения: EPM = приподнятый плюс лабиринт; OF = открытое поле. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Испытание хвостовой подвески
ТСТ измеряет отчаяние животных, развившееся в неизбежной ситуации. Подвешенные за хвост, грызуны быстро становятся неподвижными после начального периода активной деятельности. Продолжительность неподвижности указывает на величину «отчаяния». Многочисленные лаборатории показали, что широкий спектр клинически активных антидепрессантов уменьшает продолжительность неподвижности 9,20,21. Этот несложный тест стал широко использоваться для скрининга потенциальных антидепрессантов, а также может быть использован для характеристики фенотипа различных штаммов животных, а также трансгенных мышей в исследованиях, изучающих нейробиологические основы депрессивныхсостояний. Животные с UBE3AmGenedel/+ были неподвижны значительно дольше, чем их однопометники в контрольной группе, что указывает на их депрессивное поведение (рис. 2).

Figure 2
Рисунок 2: Время неподвижности при испытании хвостовой подвески. Животные с UBE3AmGenedel/+ показали более длительную неподвижность во время подвешивания хвоста. Двусторонний ANOVA показал значимые основные эффекты, но не значимый в отношении взаимодействия генотипа/пола (эффект генотипа: p < 0,001; секс-эффект: p < 0,001; генотип/половое взаимодействие: p > 0,5). Данные, изображенные на ящичковой диаграмме, показывают медианное значение, межквартильный размах и диапазон значений. Значимые результаты post-hoc теста обозначаются *. Данные по контрольным животным (самка n = 10, самец n = 14) представлены красным цветом, а мутанты (самка n = 10, самец n = 11) — синим. Эта цифра была адаптирована из Syding et al.6. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Анализ ротарод и походки
История ротародного тестирования на моделях нейромоторного дефицита восходит к середине 20-го века 22. Ротарод используется для оценки равновесия и координации движений животных, поскольку их нарушения проявляются в значительно более короткой задержке падения с вращающегося стержня14. Повторное тестирование на ротароде используется для изучения двигательных способностей животных. Стремительное развитие современной техники и цифровых технологий позволило проводить автоматизированную, точную и объективную оценку локомоторных фенотипов грызунов на основе подробных описаний их походки23. Автоматизированный анализ походки пришел на смену анализу отпечатков ног, а также более чувствителен к нервно-мышечным дефицитам 14,24,25. Изменения пространственно-временных характеристик походки животных характерны для моделируемой нозологической единицы26,27,28. Мутанты UBE3AmGenedel/+ имели устойчивое чередование индексов походки (рис. 3A-G), что дополнительно подтверждается уменьшением латентности падения с ротарода (рис. 3H).

Figure 3
Рисунок 3: Детальный анализ походки и моторного обучения на ротароде. (А-Г) Индексы походки животных UBE3AmGenedel/+ были изменены. Животные с UBE3AmGenedel/+ имели более длинные махи (A) и стойку (B), что приводило к увеличению продолжительности и длины шага (C,D). Продолжительность движения задних конечностей (E) и замедление (F) также были увеличены. Анализ также выявил большую площадь лап в пиковой стойке (G). Ни метрические параметры, ни вес животных не различались (данные не показаны), что указывает на то, что наблюдаемые различия не были связаны с различиями в размерах животных. Двусторонний ANOVA с повторными измерениями показал значимый основной эффект генотипа без значимого взаимодействия генотипа/пола (генотипический эффект: p < 0,001; генотип/половое взаимодействие: p > 0,2). (H) Результаты работы ротарода показывают более короткую латентность для снижения у животных с UBE3AmGenedel/+. Двусторонний ANOVA с повторными измерениями выявил значимые основные эффекты без значимого взаимодействия (генотипический эффект: p < 0,001; сексовый эффект: p < 0,01; генотип/ половое взаимодействие: p > 0,1). Параметры походки, изображенные на ящичковой диаграмме, показывают медианное значение, межквартильный размах и диапазон значений. Значимые результаты post-hoc теста обозначаются *. Данные о латентности до падения представлены на линейном графике в виде среднего значения ± SEM. Данные по контрольным животным (самка n = 10, самец n = 14) представлены красным цветом, а мутанты (самка n = 10, самец n = 11) — синим. Эта цифра была адаптирована из Syding et al.6. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Измельчение гнезд - строительство гнезда
Тест на измельчение гнезд в основном используется для выявления стереотипного компульсивного поведения у мышей29,30. Тем не менее, мыши проявляют естественную склонность рвать предоставленный материал для строительства гнезда. Таким образом, неспособность измельчить хлопчатобумажное гнездо используется в качестве индикатора их благополучия, на которое влияют нарушения нервно-психического развития16,31. Животные UBE3AmGenedel/+ использовали значительно меньше материала для строительства гнезд, и эта разница была особенно заметной между трансгенными самками и их контрольными собратьями (рис. 4A).

Figure 4
Рисунок 4: Использование материала гнезда для строительства гнезда. Животные UBE3AmGenedel/+ измельчали меньше хлопчатобумажного материала, чем их однопометники из контрольной группы. Данные были преобразованы в выровненные ранги, чтобы удовлетворить предварительным требованиям нормальности. Дисперсионный анализ с повторными измерениями выявил значимое влияние генотипа без значимости взаимодействия генотипа/пола (эффект генотипа: р < 0,05; генотип/половое взаимодействие : р > 0,4). Данные, изображенные на линейном графике, показывают среднее значение ± SEM. Значимые результаты post-hoc тестов обозначаются *. Данные по контрольным животным (самка n = 10, самец n = 14) представлены красным цветом, а мутанты (самка n = 10, самец n = 11) — синим. Эта цифра была адаптирована из Syding et al.6. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Временная шкала тестирования
Каждая группа (контрольная и опытная) подвергается одним и тем же испытаниям в одни и те же дни. Перерыв между тестами составляет 1 день, чтобы свести к минимуму потенциальные эффекты переноса. По возможности самки и самцы тестируются в последовательные дни; в противном случае самки тестируются после того, как самцы были протестированы (рисунок 5)6.

Figure 5
Рисунок 5: Временная шкала тестирования. Животных UBE3AmGenedel/+ и их контрольную группу тестировали в двух когортах. Временная шкала тестирования для первой когорты представлена на верхней панели, а для второй когорты — в нижней. Синим цветом обозначены дни, в которые тестировались самцы, зеленым — самки. Желтым цветом обозначены дни, в которые тестировались оба пола. В выходные дни тестирование не проводилось. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Цифры были адаптированы из Syding et al.6 в соответствии с лицензионной политикой MDPI.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Модели АС, созданные на различных линиях мышей, обычно проверяются с помощью тестов эмоционального состояния, двигательных функций и когнитивных способностей животных, чтобы облегчить сравнение с человеческими симптомами31,32. Двигательный дефицит в моделях АС является наиболее последовательным выводом в разных лабораториях, за ним следует неизменное эмоциональное состояние мутантов и трудности с постройкой гнезд31,32,33. Напротив, когнитивные нарушения либо слабо выражены, либо отсутствуют 7,31,33. Расхождение в когнитивном фенотипе, по-видимому, зависит от возраста испытуемых животных, как показали Huang et al.7. Поэтому для данной работы была выбрана батарея тестов на основе их воспроизводимости, а также возрастной и видовой независимости, поскольку сопоставимые результаты наблюдаются как у мышей, так и у крыс на моделях AS 6,31,32.

Важно иметь в виду, что многократное тестирование животных в различных экспериментальных установках требует их тщательного упорядочения, начиная с тестов, наиболее чувствительных к предварительным манипуляциям, и в то же время с минимальным влиянием на последующие тесты, такие как тесты ЭПМ и ОФ34. Дополнительные опасения связаны с тестом на измельчение гнезда, при котором животные содержатся в одном доме, что, как известно, является стрессовым состоянием35. Впоследствии объединение самцов в общую клетку часто приводит к повышенной агрессии из-за установления иерархии. Таким образом, испытание на измельчение гнезда должно завершать график испытаний. Также хорошей практикой является тестирование самцов перед самками, чтобы избежать влияния на поведение самцов следящих женских обонятельных следов. Чередование животных, принадлежащих к разным экспериментальным группам, во время тестирования имеет решающее значение в поведенческих исследованиях, чтобы сбалансировать влияние непредсказуемых факторов на поведение животных. Хорошо известно, что обращение с животными перед тестированием в EPM влияет на их наблюдаемую реакцию на стресс. Поэтому объем обработки должен быть одинаковым для всех животных36. Также очень важно поддерживать условия содержания (одиночные или групповые), освещение во время тестирования, время тестирования и перед тестированием для каждого животного, так как все эти факторы влияют на реакцию мыши в тесте EPM и OF и могут исказить результаты37.

Несмотря на то, что представленные тесты относятся к хорошо зарекомендовавшим себя инструментам скрининга при разработке лекарств и фенотипированию генетически модифицированных мышей, которые дают воспроизводимые результаты в разных лабораториях, некоторые тесты все же могут подвергаться незначительным изменениям. Поскольку двигательные нарушения являются основной чертой фенотипа животных моделей АС, ротародный тест может быть ограничен 1 днем тестирования вместо 5 последовательных дней. Кроме того, параметры, описывающие качество построенного гнезда, могут быть включены в тест38 на измельчение гнезда.

Одним из явных ограничений представленных результатов является неоднозначность их интерпретации. В частности, двигательный дефицит у животных с синдромом Аспергера может объяснить изменения в задачах, связанных с передвижением, таких как тест ОФ и ЭПМ. Аналогичным образом, длительное время неподвижности при ТСТ может быть результатом большей физической усталости, которую животные с синдромом Аспергера развивают во время этого сложного теста, в отличие от депрессивного поведения. Кроме того, в тесте на измельчение гнезд сокращение использования хлопка может быть связано с нервно-мышечным фенотипом, а не с потерей инстинкта строительства гнезда. Интерпретация изменений длины шага неоднозначна, так как укорочение наблюдается в некоторых мышиных моделях болезни Паркинсона, в то время как удлинение наблюдается у стареющих мышей39,40. Тем не менее, мы считаем, что увеличение общей длины шага является следствием большей продолжительности замаха. Продолжительность качания увеличивается с болью и увеличивается в моделях артрита, что означает, что более длительная продолжительность качания у мышей потенциально может позволить правильно расположить конечности перед тем, как нести вес41,42. Продолжительность движения относится к продолжительности времени, необходимого животному для инициирования и поддержания поступательного движения. Таким образом, короткая продолжительность у здоровых животных может свидетельствовать о большей силе и лучшем контроле. Эти результаты не только характеризуют эту модель мышей с синдромом Аспергера, но и указывают на нарушение походки. Тем не менее, для выяснения физиологической основы таких нарушений необходимы более тщательные исследования, такие как определение мышечной силы и изучение нервно-мышечных связей/передачи.

Несмотря на дилемму интерпретации, представленная батарея поведенческих тестов обеспечивает воспроизводимые результаты, согласованные в разных лабораториях, и может служить элегантным инструментом валидации для новых мышиных моделей синдрома Ангельмана и новых терапевтических подходов 6,31,32,43,44,45.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.

Acknowledgments

Это исследование было поддержано Чешской академией наук RVO 68378050, LM2018126 Чешским центром феноменомики при поддержке MEYS CR, OP RDE CZ.02.1.01/0.0/0.0/16_013/0001789 (Модернизация Чешского центра феноменомики: развитие в направлении исследований перевода MEYS и ESIF), OP RDE CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_046/0015861 (CCP Infrastructure Upgrade II by MEYS и ESIF) и OP RDI CZ.1.05/2.1.00/19.0395 (более высокое качество и емкость для трансгенных моделей MEYS и ERDF). Кроме того, это исследование получило финансирование от НПО «Ассоциация генной терапии (ASGENT)», Чехия (https://asgent.org/) и LM2023036 Чешского центра феноменомики, предоставленного Министерством образования, молодежи и спорта Чешской Республики.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cages, individually ventilated Techniplast
DigiGait Mouse Specifics, Inc., 2 Central Street Level
Unit 110
Framingham, MA 01701, USA		 Equipment was tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Detailed analysis of mouse gait, hardware and software provided. 
FDA Nestlet squares Datesand Ltd., 7 Horsfield Way, Bredbury, Stockport SK6, UK Material was bought from Velaz vendor via direct email request. Velaz do not provide any catalogue no. Cotton nestlets for nest building test. Nestlet discription: 2-3 g each, with diameter around 5 x 5 x 0.5cm.
Mouse chow Altramion
Rotarod TSE Systems GmbH, Barbara-McClintock-Str.4
12489 Berlin, Germany		 Equipment was tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Rotarod for 5 mice, hardware and software provided. Drum dimensions: Diameter: 30 mm, width per lane: 50 mm, falling distance 147 mm.
Tail Suspension Test Bioseb, In Vivo Research Instruments, 13845 Vitrolles
FRANCE		 Reference: BIO-TST5 Fully automated equipment for immobility time evaluation of 3 mice hanged by tail, hardware and software provided
Transpore medical tape Medical M, Ltd. P-AIRO1291 The tape used to attach an animal to the hook by its tail.
Viewer - Video Tracking System Biobserve GmbH, Wilhelmstr. 23 A
53111 Bonn, Germany		 Equipment with software were tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Software with custom made hardware: maze, IR base, IR sensitive cameras. Custom-made OF dimensions: 42 x 42 cm area, 49 cm high wall, central zone area: 39 cm2. A custom-made EPM was elevated 50 cm above the floor, with an open arm 79 cm long,  9 cm wide, and closed arm 77 cm long, 7.6 cm wide. 

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kalsner, L., Chamberlain, S. J. Prader-Willi, Angelman, and 15q11-q13 duplication syndromes. Pediatric Clinics of North America. 62 (3), 587-606 (2015).
  2. Yamasaki, K., et al. Neurons but not glial cells show reciprocal imprinting of sense and antisense transcripts of Ube3a. Human Molecular Genetics. 12 (8), 837-847 (2003).
  3. Clayton-Smith, J., Laan, L. Angelman syndrome: a review of the clinical and genetic aspects. Journal of Medical Genetics. 40 (2), 87-95 (2003).
  4. Jolleff, N., Ryan, M. M. Communication development in Angelman's syndrome. Archives of Disease in Childhood. 69 (1), 148-150 (1993).
  5. Willner, P. The validity of animal models of depression. Psychopharmacology. 83 (1), 1-16 (1984).
  6. Syding, L. A., et al. Generation and characterization of a novel Angelman syndrome mouse model with a full deletion of the Ube3a gene. Cells. 11 (18), 2815 (2022).
  7. Huang, H. -S., et al. Behavioral deficits in an Angelman syndrome model: effects of genetic background and age. Behavioural Brain Research. 243, 79-90 (2013).
  8. Choleris, E., Thomas, A. W., Kavaliers, M., Prato, F. S. A detailed ethological analysis of the mouse open field test: effects of diazepam, chlordiazepoxide and an extremely low frequency pulsed magnetic field. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 25 (3), 235-260 (2001).
  9. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  10. Walf, A. A., Frye, C. A. The use of the elevated plus maze as an assay of anxiety-related behavior in rodents. Nature Protocols. 2 (2), 322-328 (2007).
  11. Carola, V., D'Olimpio, F., Brunamonti, E., Mangia, F., Renzi, P. Evaluation of the elevated plus-maze and open-field tests for the assessment of anxiety-related behaviour in inbred mice. Behavioural Brain Research. 134 (1-2), 49-57 (2002).
  12. Yan, H. -C., Cao, X., Das, M., Zhu, X. -H., Gao, T. -M. Behavioral animal models of depression. Neuroscience Bulletin. 26 (4), 327-337 (2010).
  13. Preisig, D. F., et al. High-speed video gait analysis reveals early and characteristic locomotor phenotypes in mouse models of neurodegenerative movement disorders. Behavioural Brain Research. 311, 340-353 (2016).
  14. Knippenberg, S., Thau, N., Dengler, R., Petri, S. Significance of behavioural tests in a transgenic mouse model of amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Behavioural Brain Research. 213 (1), 82-87 (2010).
  15. Farr, T. D., Liu, L., Colwell, K. L., Whishaw, I. Q., Metz, G. A. Bilateral alteration in stepping pattern after unilateral motor cortex injury: a new test strategy for analysis of skilled limb movements in neurological mouse models. Journal of Neuroscience Methods. 153 (1), 104-113 (2006).
  16. Jirkof, P. Burrowing and nest building behavior as indicators of well-being in mice. Journal of Neuroscience Methods. 234, 139-146 (2014).
  17. Wulaer, B., et al. Repetitive and compulsive-like behaviors lead to cognitive dysfunction in Disc1Δ2-3/Δ2-3 mice. Genes, Brain, and Behavior. 17 (8), 12478 (2018).
  18. Glickman, S. E., Hartz, K. E. Exploratory behavior in several species of rodents. Journal of Comparative and Physiological Psychology. 58, 101-104 (1964).
  19. La-Vu, M., Tobias, B. C., Schuette, P. J., Adhikari, A. To approach or avoid: an introductory overview of the study of anxiety using rodent assays. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 14, 145 (2020).
  20. Karolewicz, B., Paul, I. A. Group housing of mice increases immobility and antidepressant sensitivity in the forced swim and tail suspension tests. European Journal of Pharmacology. 415 (2-3), 197-201 (2001).
  21. Liu, X., Gershenfeld, H. K. Genetic differences in the tail-suspension test and its relationship to imipramine response among 11 inbred strains of mice. Biological Psychiatry. 49 (7), 575-581 (2001).
  22. Dunham, N. W., Miya, T. S. A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice. Journal of the American Pharmaceutical Association. 46 (3), 208-209 (1957).
  23. Dorman, C. W., Krug, H. E., Frizelle, S. P., Funkenbusch, S., Mahowald, M. L. A comparison of DigiGait and TreadScan imaging systems: assessment of pain using gait analysis in murine monoarthritis. Journal of Pain Research. 7, 25-35 (2013).
  24. Stroobants, S., Gantois, I., Pooters, T., D'Hooge, R. Increased gait variability in mice with small cerebellar cortex lesions and normal rotarod performance. Behavioural Brain Research. 241, 32-37 (2013).
  25. Vandeputte, C., et al. Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders. BMC Neuroscience. 11, 92 (2010).
  26. Amende, I., et al. Gait dynamics in mouse models of Parkinson's disease and Huntington's disease. Journal of Neuroengineering and Rehabilitation. 2, 20 (2005).
  27. Hampton, T. G., et al. Gait disturbances in dystrophic hamsters. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2011, 235354 (2011).
  28. Vinsant, S., et al. Characterization of early pathogenesis in the SOD1(G93A) mouse model of ALS: part I, background and methods. Brain and Behavior. 3 (4), 335-350 (2013).
  29. Li, X., Morrow, D., Witkin, J. M. Decreases in nestlet shredding of mice by serotonin uptake inhibitors: comparison with marble burying. Life Sciences. 78 (17), 1933-1939 (2006).
  30. Murphy, M., et al. Chronic adolescent Δ9-tetrahydrocannabinol treatment of male mice leads to long-term cognitive and behavioral dysfunction, which are prevented by concurrent cannabidiol treatment. Cannabis and Cannabinoid Research. 2 (1), 235-246 (2017).
  31. Sonzogni, M., et al. A behavioral test battery for mouse models of Angelman syndrome: A powerful tool for testing drugs and novel Ube3a mutants. Molecular Autism. 9, 47 (2018).
  32. Dodge, A., et al. Generation of a novel rat model of Angelman syndrome with a complete Ube3a gene deletion. Autism Research. 13 (3), 397-409 (2020).
  33. Born, H. A., et al. Strain-dependence of the Angelman syndrome phenotypes in Ube3a maternal deficiency mice. Scientific Reports. 7 (1), 8451 (2017).
  34. File, S. E., Mabbutt, P. S., Hitchcott, P. K. Characterisation of the phenomenon of "one-trial tolerance" to the anxiolytic effect of chlordiazepoxide in the elevated plus-maze. Psychopharmacology. 102 (1), 98-101 (1990).
  35. Liu, N., et al. Single housing-induced effects on cognitive impairment and depression-like behavior in male and female mice involve neuroplasticity-related signaling. The European Journal of Neuroscience. 52 (1), 2694-2704 (2020).
  36. Ueno, H., et al. Effects of repetitive gentle handling of male C57BL/6NCrl mice on comparative behavioural test results. Science Reports. 10 (1), 3509 (2020).
  37. Rodgers, R. J., Dalvi, A. Anxiety, defence and the elevated plus-maze. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 21 (6), 801-810 (1997).
  38. Deacon, R. M. J., Penny, C., Rawlins, J. N. P. Effects of medial prefrontal cortex cytotoxic lesions in mice. Behavioural Brain Research. 139 (1-2), 139-155 (2003).
  39. Fernagut, P. O., Diguet, E., Labattu, B., Tison, F. A simple method to measure stride length as an index of nigrostriatal dysfunction in mice. Journal of Neuroscience Methods. 113 (2), 123-130 (2002).
  40. Wooley, C. M., Xing, S., Burgess, R. W., Cox, G. A., Seburn, K. L. Age, experience and genetic background influence treadmill walking in mice. Physiology & Behavior. 96 (2), 350-361 (2009).
  41. Lakes, E. H., Allen, K. D. Gait analysis methods for rodent models of arthritic disorders: reviews and recommendations. Osteoarthritis and Cartilage. 24 (11), 1837-1849 (2016).
  42. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S., Vetter, I. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 284 (2017).
  43. Tanas, J. K., et al. Multidimensional analysis of behavior predicts genotype with high accuracy in a mouse model of Angelman syndrome. Translational Psychiatry. 12 (1), 426 (2022).
  44. Silva-Santos, S., et al. Ube3a reinstatement identifies distinct developmental windows in a murine Angelman syndrome model. The Journal of Clinical Investigation. 125 (5), 2069-2076 (2015).
  45. Milazzo, C., et al. Antisense oligonucleotide treatment rescues UBE3A expression and multiple phenotypes of an Angelman syndrome mouse model. JCI Insight. 6 (15), e145991 (2021).

Tags

Поведение выпуск 200 синдром Ангельмана поведенческие тесты валидация модели UBE3A C57BL/6N
Поведенческая характеристика мышиной модели синдрома Ангельмана
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kubik-Zahorodna, A., Prochazka, J.,… More

Kubik-Zahorodna, A., Prochazka, J., Sedlacek, R. Behavioral Characterization of an Angelman Syndrome Mouse Model. J. Vis. Exp. (200), e65182, doi:10.3791/65182 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter