通过胎盘的外来物质和纳米材料的运输率测定
1Department of Obstetrics, Perinatal Pharmacology, University Hospital Zurich, 2Laboratory for Materials - Biology Interactions, EMPA Swiss Federal Laboratories for Materials Testing and Research, 3Graduate School for Cellular and Biomedical Sciences, University of Bern

Bioengineering

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Summary

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Grafmüller, S., Manser, P., Krug, H. F., Wick, P., von Mandach, U. Determination of the Transport Rate of Xenobiotics and Nanomaterials Across the Placenta using the ex vivo Human Placental Perfusion Model. J. Vis. Exp. (76), e50401, doi:10.3791/50401 (2013).

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Abstract

几十年前的人胎盘被认为是一个难以逾越的障碍的母亲和未出生的孩子之间。然而,事后发现沙利度胺致出生缺陷和后来的许多研究证明相反。今天,一些有害的外来物质,如尼古丁,海洛因,美沙酮或描述克服这一障碍的药物,以及环境污染物。随着越来越多的利用纳米技术,胎盘可能接触到新颖的纳米粒子通过曝光是意外或故意的情况下,潜在的纳米药物应用。从动物实验数据,不能外推到人类,因为胎盘是最具体物种的哺乳动物器官1。因此,于1967年2,不断修改施耐德等。体外双循环人体胎盘灌注,开发等Panigel。于1972年3,可以作为一个很好的T型车Ø研究外源性化学物质或微粒的转移。

在这里,我们专注于体外双循环人体胎盘灌注协议及其进一步发展,以获得可重复的结果。

获得知情同意后,无并发症的足月妊娠,剖腹产分娩的产妇的胎盘。一个完整的子叶胎儿和母体的血管插管灌注至少五个小时。作为一个模型颗粒大小为80,直径为500 nm的荧光标记聚苯乙烯颗粒中加入的产妇电路。 80纳米粒子能够穿过胎盘屏障,并提供一个完美的例子是通过胎盘到胎儿,而500纳米粒子被保留在胎盘组织或产妇电路的一种物质。 体外人类胎盘灌注模型提供可靠信息的少数机型之一运输外源性化学物质的行为,在一个重要的组织屏障,提供预测和临床相关数据。

Introduction

胎盘是一个复杂的器官,它是负责交换,氧气,二氧化碳,营养物和废物和在同一时间能够保持对母亲和胎儿生长彼此分开的两个血电路。此外,它可以防止由母体免疫系统排斥的孩子,并分泌激素,以维持妊娠。由4,5无侧向细胞膜融合可以形成一个真正的合胞体滋养层细胞形成的细胞的屏障。整个胎盘组织在几个子叶,其中包含一个胎儿绒毛树,代表一个功能单元的胎盘。

胎盘屏障功能的研究,发现在1960年的沙利度胺致畸形加剧。出于显而易见的原因,易位研究孕妇,不能进行。因此,各种替代车型已经开发了6,7 体外人类胎盘灌注模型开发Panigel和同事2,3。

许多妇女面临不同的外来物质,如药物或环境污染物在怀孕期间8。对于一些已经在怀孕期间定期给药的药物, 在体内研究中,可以通过的产妇与脐带血液中的血药浓度相比,。然而,一般只有有限的信息,这些物质在胎儿致畸的药动学和动力学。

例如阿片类药物,如海洛因容易穿过胎盘屏障,可导致胎儿宫内发育迟缓,早产或流产9,10。因此,在丢失的情况下,节制在怀孕期间美沙酮的替代治疗的建议。 体内的人类胎盘灌注模型透露,转移美沙酮进入胎儿循环是微不足道的11,以及相关计算脐带血产妇血药浓度比分娩后12。

纳米技术是一项不断发展的领域,尤其是药品。所以,自然发生的罚款 ​​(直径小于2.5微米)和超细微粒(直径小于0.1微米)的森林火灾,火山喷发的烟雾和沙尘,暴露于纳米材料工程(至少有一维小于0.1微米13下方)增加。有关工程纳米材料的毒理学潜力提出了疑问。虽然没有人类的危害还可以证明,也有主要的实验研究表明,工程纳米颗粒可引起不良的生物反应导致毒理学结果14。最近,一些研究表明,产前暴露于空气污染与新生儿和儿童15,16需要更高的呼吸道和呼吸道炎症。此外,小颗粒可能被用来作为药物载体,专门治疗胎儿或母亲。因此,它变得明显,需要广泛的研究,不同的外源性化学物质或纳米材料和他们有能力穿过胎盘屏障。在梅内塞斯胎盘渗透到工程纳米材料的研究对当前实际的概述总结2011年17和Buerki Thurnherr 等。2012 7。

人体胎盘灌注模型的体外双循环提供了一个控制和可靠的系统研究胎盘胎盘范围广泛的其他功能,如各种内源性和外源性化合物3,11,12,18,19和运输负责的机制开发先兆子痫的病理状态,如<SUP> 20-22。在这个协议中,我们主要集中在一套,处理和方法,使研究的积累,影响和移位率了一套广泛的外来物质或纳米颗粒。

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Protocol

1。准备灌注系统

  1. 设置的水浴中,灌注腔室,两列进行氧合,两个蠕动泵,两个气泡陷阱,两个流加热器和一个压力传感器( 图1)组成的灌注系统。这些组件连接起来的管路部分组成的硅树脂和聚氯乙烯的材料,根据图2中的方案。最后,还有两个分别代表胎儿和母体的电路,电路。
  2. 打开水浴上,流动加热器和加热灌注室。温度应在37℃下
  3. 热身灌注介质(NCTC-135组织培养基稀释1:2厄尔的缓冲液(6.8克/ L盐水,0.4 g / L的氯化钾,0.14 g / L的磷酸二氢钠,硫酸镁0.2克/升,0.2克/ L的氯化钙,2 g / L的葡​​萄糖)葡萄糖(1克/升),右旋糖酐40(10克/升),牛血清白蛋白(10克补充/ L)的钠,肝素(2500 IU / L),阿莫西林(250毫克/升)和碳酸氢钠(2.2克/升),pH 7.4)中,在水浴。
  4. 连续再次冲洗动脉系统的胎儿和母体的电路)200毫升蒸馏水,二)50毫升1%的氢氧化钠,三)1%磷酸和d)200毫升蒸馏水中(流速:15 - 20毫升/分钟)。
  5. 胎儿的连接套管(直径1.2毫米,钝针应该连接到修改后的翅针输液器)到胎儿动脉导管。
  6. 灌注液冲洗动脉胎儿和母体的电路系统,直到所有的管子包含介质(流速:15〜20毫升/分钟)。在这一步填补了泡沫陷阱除去所有气泡下游的陷阱。然后停止泵。这是非常重要的入球小动脉管始终无气泡,否则插管后,特别是细胎儿血管破裂。
  7. 打开的气体流。产妇电路被氧化无线第5%二氧化碳和95%与5%二氧化碳和95%氮气的的合成空气和胎儿电路。
  8. 开始录音的压力传感器。

2。插管胎盘

  1. 获得完整初级剖宫产无并发症的足月妊娠后胎盘。给予书面同意(我们的研究中得到的情况下)由母亲分娩前的研究,必须由当地伦理委员会的批准(在我们的研究的情况下)。第一视觉控制应该由助产士,以确保一个健康的和完整的胎盘。
  2. 插管胎盘是关键的一步!在灌注组织中的每一个细小的中断可导致孕产妇和胎儿的血液循环之间的泄漏。胎盘具有以下方式获得分娩后30分钟内。
  3. 选择一个完整的无可见中断对产妇胎盘子叶边缘区。在绒毛膜板块,同时配合相关的上游通过手术缝合材料后插管侧(朝向脐带)脐动脉和静脉的分支。总是使两个结。
  4. 首先胎儿动脉导管插入。胎儿胎盘动脉总是比静脉更小,更薄。
  5. 使胎儿动脉周围缝合,但不把它立即。保持容器用一个镊子,仔细切断船只,并把小动脉套管(直径1.2毫米)。然后配合缝合(两节)。
  6. 胎儿静脉中相同的方式继续进行,但使用一个更大的套管(直径1.5-1.8毫米;钝针应附加到的变形的翅针输液器)。
  7. 打开胎儿泵(2毫升/分钟)。如果没有可见的泄漏和血液来源于胎儿静脉插管,慢慢增加至4毫升/分钟的流量。观察胎儿动脉中的压力,它不应该超过70毫米汞柱。如果液体泄漏在胎儿或配偶的RNAL套管修复他们与另一缝合。
  8. 将胎盘组织人与胎侧拉的胎盘膜和组织在尖峰。在最后的灌注子叶应该在中间的组织保持器的孔中。
  9. 稳定的部分,其中只有持有胎盘膜用硅胶膜(直径1毫米),或者两个封口膜件。
  10. 组装完整的组织支架,拧紧螺丝,并切割悬垂组织。请注意,静脉和动脉插管不捏,而是组织持有人躺在小通道。
  11. 将纸巾架倒挂,把它放进灌注室,并加盖。现在,产妇方应在顶部。经常检查,如果胎儿的电路仍然保存完好,介质流出来的胎儿静脉管。
  12. 打开的的产妇泵(12毫升/分钟)。介绍了三个钝套管(直径0.8毫米)日e结束产妇的动脉管入间隙穿透蜕膜板。返回灌流产妇电路一管静脉漏,这也与产妇泵灌注室的上部的最低位置。
  13. 连接胎儿的静脉插管,胎儿静脉管。

3。执行前和实验阶段灌注

  1. 为了使组织恢复缺血期分娩后,冲洗掉血液中的间隙,一个开放的相前的20分钟是必要的。这意味着产妇和胎儿的静脉不会导致动脉水库灌注介质。收集胎儿和母体静脉流出并将其丢弃在一个瓶子经过前期相。
  2. 灌注的完整性,以评估执行另一个预定阶段20分钟,但在一个封闭的回路。使用两个独立的水库灌注液胎儿和母体的电路,导致胎儿的静脉流出,早在胎儿水库和母亲静脉血流出早在母体水库关闭电路。
  3. 对于主灌注实验准备两个烧瓶中,用120ml灌注培养基(一个为母体和胎儿水库)。添加放射性标记的14 C-安替比林(4 NCI /毫升;作为阳性对照;注意:放射性物质)和荧光标记的外源性或纳米颗粒要分析产妇水库。以及混合产妇灌流。
  4. 纯灌注介质交换两个准备瓶(胎儿和产妇水库)开始实验。关闭电路,导致胎儿的静脉流出早在胎儿水库和母亲静脉血流出早在母体水库。
  5. 继续灌注6小时,并定期采取样本。始终悬浮介质中的胎儿和产妇水库前撤回。
  6. 灌注过程中的胎儿的动脉(应不超过70毫米汞柱),在两个电路中的pH值(应该是在生理范围内,7.2-7 .4)和两个水塘的体积(,胎儿体积损失不应超过4毫升/小时)中的压力控制。如果有必要,可以使用盐酸或氢氧化钠调节pH值。
  7. 如果在胎儿储层的体积损失超过4毫升/小时,在组织中会出现泄漏,停止灌注。 6小时无泄漏灌注的成功率是15-20%左右。
  8. 6小时后停止灌注。关闭泵,水浴,流量加热器和气体流量。
  9. 取出胎盘组织人,削减灌注的子叶(亮比unperfused组织)和称重。
  10. 抽取样本unperfused(部分的胎盘,在开始切割过程中已经采取预相)和灌注组织(约1克),并将其储存在-20°C直至均匀化,或在液氮中用于以后的分析。修复另一个组织样本在4%福尔马林组织病理学评估。样品应包括所有层的胎盘。
  11. 清洁管灌注后依次漂洗动脉系统的胎儿和母体电路)200毫升蒸馏水,B),50毫升1%的氢氧化钠,三)50毫升1%的磷酸和d)200毫升的蒸馏水再(流量:15〜20毫升/分钟)。

胎盘灌注实验的整个工作过程的图3中描述。

4。分析样品

  1. 以800×g的10分钟离心灌流液的样品在分析前以除去残余的红细胞。取上清液进行进一步的分析。可将样本在4℃下放置过夜如果在的瘦素和hCG生产的分析,可将样本存储于-20℃。
  2. 透性来评估的胎盘液体闪烁分析14 C-安替比林。混合300微升的胎儿和母体样品用3ml闪烁鸡尾酒和测量5分钟,用β-计数器。
  3. 为了评估转移的荧光纳米颗粒或还异生在485 nm激发波长,528发射波长,用酶标仪(表示波长进行分析,我们使用的纳米粒子的黄色的绿色标签)读取荧光。
  4. 为了确定胎盘组织灌注过程中测量的葡萄糖消耗和乳酸生产中的胎儿和产妇的电路与自动化血气系统的可行性。此外,评估生产人类choriongonadotropin胎盘激素(hCG)的组织匀浆样品的灌流液,用酶联免疫吸附试验(ELISA)和瘦素。

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Representative Results

图4A显示小的聚苯乙烯颗粒(80纳米)相比更大的聚苯乙烯颗粒(500纳米),不会转移到胎儿车厢被运往通过胎盘灌注曲线。每个数据点代表给定的时间点中的至少3个独立实验的平均颗粒浓度。聚苯乙烯纳米粒子胎盘传输大小依赖19。胎盘灌注3小时后,已经有20-30%的最初加入80纳米的聚苯乙烯颗粒是从母体转移到胎儿的电路,而500纳米的聚苯乙烯颗粒没有出现在胎儿的电路,甚至6小时后灌注。然而,产妇500纳米颗粒的浓度下降。灌注后的组织的组织切片的荧光图像显示,这些粒子积聚在胎盘的绒毛(数据未示出)。 图4B 14 C-安替比林。安替比林作为一个小的亲脂性分子是通过被动扩散分布在胎盘屏障,并作为控制电路的完整性。灌注4-6小时后胎儿和产妇安替比林浓度之间的平衡应建23。为了评估和比较胎盘传输率外源性化学物质,胎儿对母体药物浓度比(F / M)通常显示( 图5)。

通过分析和乳酸胎盘激素(人类choriongonadotropin和瘦素)生产的葡萄糖消耗,以及在灌注过程中的可行性和胎盘组织中的功能可以监测( 图6)。灌注外源性的值应始终从控制灌注在同一范围内的值没有外源性。此外,histop可以执行athological评价胎盘组织灌注。然后与非灌注胎盘组织的比较可以揭示病理变化,由于灌注( 细菌污染),因此可以作为另一个质量控制参数。

体外双循环人体胎盘灌注模型得到进一步代表性的结果最近发表的11,19。

图1
图1。 体外人体胎盘灌注设置。1)产妇和胎儿的水库的水洗澡,2)灌注室,3)泡沫陷阱,4)氧合列,5)流动加热器。

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图2。 FA:胎儿动脉; FV:胎儿静脉,MA:产妇动脉; MV:产妇静脉; BT:泡沫陷阱; PS:压力传感器 示意图体外人类胎盘灌注模型。

图3
图3。 体外人类胎盘灌注实验的工作过程。分娩后胎盘必须在30分钟内插管。 6小时实验阶段与再循环之前一个开放的前相位和闭合前相应进行至少20分钟。

图4
图4。灌注聚苯颗粒和14型材</ SUP> C-安替比林19。灌注聚苯颗粒大小的档案组(n = 4)80纳米和500纳米(N = 3)。最初,25μg/ ml的颗粒和4.2 NCI / ml的14 C-安替比林被添加的产妇电路。的颗粒量(A)14 C-安替比林(B)测定在经过指定的时间点(M,实心符号)的母体及胎儿的电路(F,空心符号)。显示的浓度均值±SE。 点击这里查看大图

图5
图5。整个人胎盘19聚苯颗粒的大小依赖转移胎儿和母体浓度的14个 C-安替比林和聚苯乙烯颗粒之间的比率,计算国务院胎盘灌注180分钟后。数据表示至少3个独立实验的平均值±SE。控制列描绘灌注无颗粒,但有14个 C-安替比林。 (* P <0.05比80nm的比值)。

图6
图6。胎盘组织灌注过程中的19(A)葡萄糖消耗和乳酸生产中的胎盘灌注的可行性(B)显示的是在电路中的总含量(胎儿和产妇)随着时间的推移除以灌注子叶的重量的总和。归净产量(NP除以初始的组织内容T0)胎盘激素人类choriongonadotropin瘦素。数据代表平均值±SE在l东3个独立的实验。

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Discussion

这里显示下方的双循环灌流,还有其他一些可能的实验配置取决于必须回答的问题。常用特别开放的胎盘灌注,稳态浓度3评估药物清除。的循环灌流设置也可以应用于,确认主动运输的内源性或外源性物质。对于这种方法的生物外源性的相同浓度的已被添加到母亲和胎儿循环。假定不存在逆浓度梯度的主动转运,可以观察到的两个电路中的任一个被检物质的积累24。值得注意的是,除了只胎儿电路测试物质也是可行的,并能显示这个特定物质25胎盘屏障转运的机制。

该协议已经发展了添e和不同的研究小组,特别是有关的流量,灌注介质的组合物,氧合形式和加热26,27之间可以有所不同。特别是,流率可以经胎盘转移发生的时间点的影响。为了控制这种被动运输的参考化合物,如安替比林,除了是重要的。异生的传输速率可以始终比安替比林(F / M比应在0.75以上)26的传输速率。由于主要受限的流动和交换面的安替比林转移,这种比较中的流动与灌注子叶之间的实验中考虑到这可能会有所不同的大小的差异。此外,FITC-葡聚糖可以被添加到胎儿的电路,作为控制势垒26的完整性。屏障完整性的标记物也可以用来作为胎儿体积损失。一般胎儿的流体损失多达4毫升/小时允许28,但再没有一个普遍接受的极限。

很明显,像个体间的变化和成功率较低(15-20%)的离体人胎盘灌注法也有一些缺点。此外,6小时的灌注期间不能模拟慢性药物治疗,并因此不能完全排除长期接触后转让的异生。模型的另一个限制是,在胎龄时,势垒厚的迁移率,而仍然保持未知主要足月胎盘转移评估。事实上,第一孕期胎盘的灌注是可能的,但这些胎盘是相当有限的可用性。然而,到现在为止体外胎盘灌注的方法是唯一的模型来研究各种外来物质或纳米粒子在有组织的人胎盘组织运输。虽然毒效学在人类体外灌流模型可以分析只能在排位动物实验acental组织,的确可以提供有关胚胎的信息。虽然,由于人类和啮齿动物之间的胎盘屏障的解剖差异,这些结果不能外推到人类4,5。另一种可能性调查胎盘转移可能主要滋养细胞,绒毛膜上皮细胞株的,孤立的质膜微囊或胎盘组织块29的细胞培养模型。最常用的模型是系Bewo的细胞系,这些细胞是来自于一种恶性妊娠绒毛膜癌,可以形成一个融合的单层上的渗透膜,所以可以进行运输研究。运输研究系Bewo细胞模型的结果以及相关结果在体外人类胎盘灌注30。然而,药物运输( 特定的传输蛋白的贡献)和代谢研究的细节,系Bewo细胞模型可能是m矿石可行,主要是因为它是比较容易处理,容易受到操纵像表达的基因改变转运或酶,但关于一般药物传输研究这个模型的可靠性是有限的。它缺乏血流量和单层的完整性,必须仔细评估,因为它依赖于几个因素,如细 ​​胞培养条件,播种密度,曝光持续时间和膜的插入物6,29。

不同的外来物质和纳米粒子绑定到各种血浆蛋白,它可以显着影响胎盘转移31,考虑到血浆蛋白结合是很重要的。灌注介质中含有牛血清白蛋白,最频繁的血浆蛋白。近日,一项研究表明, 体外人类胎盘灌注模型获得的各种物质的转移率良好的相关性, 产妇体内的脐带血血药浓度比例时,传输率进行了调整,根据程度的血浆蛋白结合12。

总体而言, 体外胎盘灌注模型是一种有效和可靠的方法来研究整个人胎盘运输,并预测在体内的外来物质和纳米粒子的胎盘。

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Disclosures

作者宣称,他们有没有竞争经济利益。

Acknowledgements

这项工作是由瑞士国家基金会(NRP 64个程序,不授予4064-131232)财政支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
NCTC-135 medium ICN Biomedicals, Inc. 10-911-22C could be replaced by Medium 199 from Sigma (M3769)
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich, Fluka 71381
Potassium chloride (KCl) Hospital pharmacy also possible: Sigma (P9541)
Monosodium phosphate (NaH2PO4 · H2O) Merck 106346
Magnesium sulfate (MgSO4 · H2O) Sigma-Aldrich, Fluka 63139
Calcium chloride (CaCl, anhydrous) Merck 102388
D(+) Glucose (anhydrous) Sigma-Aldrich, Fluka 49138
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Merck 106329
Dextran from Leuconostoc spp. Sigma-Aldrich 31389
Bovine serum albumin (BSA) Applichem A1391
Amoxicilline (Clamoxyl) GlaxoSmithKline AG 2021101A
Sodium heparin B. Braun Medical AG 3511014
Sodium hydoxide (NaOH) pellets Merck 106498 CAUTION: corrosive
Ortho-phosphoric acid 85% (H3PO4) Merck 100573 CAUTION: corrosive
Maternal gas mixture: 95% synthetic air, 5% CO2 PanGas AG
Fetal gas mixture: 95% N2, 5% CO2 PanGas AG
Antipyrine (N-methyl-14C) American Radiolabeled Chemicals, Inc. ARC 0108-50 μCi CAUTION: radioactive material (specific activity: 55mCi/mmol)
Scintillation cocktail (IrgaSafe Plus) Zinsser Analytic GmbH 1003100
Polystyrene particles 80 nm Polyscience, Inc. 17150
Polystyrene particles 500 nm Polyscience, Inc. 17152
EQUIPMENT
Water bath VWR 462-7001
Thermostat IKA-Werke GmbH Co. KG 3164000
Peristaltic pumps Ismatec ISM 833
Bubble traps (glass) UNI-GLAS Laborbedarf
Flow heater UNI-GLAS Laborbedarf
Pressure sensor + Software for analyses MSR Electronics GmbH 145B5
Notebook Hewlett Packard
Miniature gas exchange oxygenator Living Systems Instrumentation LSI-OXR
Tygon Tube (ID: 1.6 mm; OD: 4.8 mm) Ismatec MF0028
Tubes for pumps (PharMed BPT; ID: 1.52 mm) Ismatec SC0744
Blunt cannulae ( 0.8 mm) Polymed Medical Center 03.592.81
Blunt cannulae ( 1.2 mm) Polymed Medical Center 03.592.90
Blunt cannulae ( 1.5 mm) Polymed Medical Center 03.592.94
Blunt cannulae ( 1.8 mm) Polymed Medical Center 03.952.82
Parafilm VWR 291-1212
Perfusion chamber with tissue holder (plexiglass) Internal technical department Similar equipment is available from Hemotek Limited, UK
Surgical suture material (PremiCron) B. Braun Medical AG C0026005
Winged Needle Infusion Set (21G Butterfly) Hospira, Inc. ASN 2102
Multidirectional stopcock (Discofix C-3) B. Braun Medical AG 16494C
Surgical scissors B. Braun Medical AG BC304R
Dissecting scissors B. Braun Medical AG BC162R
Needle holder B. Braun Medical AG BM200R
Dissecting forceps B. Braun Medical AG BD215R
Automated blood gas system Radiometer Medical ApS ABL800 FLEX
Multi-mode microplate reader BioTek Synergy HT
Liquid scintillation analyzer GMI, Inc. Packard Tri-Carb 2200
Scintillation tubes 5.5 ml Zinsser Analytic GmbH 3020001
Tissue Homogenizer OMNI, Inc. TH-220
pH meter + electrode VWR 662-2779

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References

  1. Ala-Kokko, T. I., Myllynen, P., Vahakangas, K. Ex vivo perfusion of the human placental cotyledon: implications for anesthetic pharmacology. Int. J. Obstet. Anesth. 9, 26-38 (2000).
  2. Panigel, M., Pascaud, M., Brun, J. L. Radioangiographic study of circulation in the villi and intervillous space of isolated human placental cotyledon kept viable by perfusion. J. Physiol. (Paris). 59, 277 (1967).
  3. Schneider, H., Panigel, M., Dancis, J. Transfer across the perfused human placenta of antipyrine, sodium and leucine. Am. J. Obstet. Gynecol. 114, 822-828 (1972).
  4. Enders, A. C., Blankenship, T. N. Comparative placental structure. Adv. Drug Deliv. Rev. 38, 3-15 (1999).
  5. Takata, K., Hirano, H. Mechanism of glucose transport across the human and rat placental barrier: a review. Microsc. Res. Tech. 38, 145-152 (1997).
  6. Saunders, M. Transplacental transport of nanomaterials. Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 1, 671-684 (2009).
  7. Buerki-Thurnherr, T., von Mandach, U., Wick, P. Knocking at the door of the unborn child: engineered nanoparticles at the human placental barrier. Swiss Med. Wkly. 142, w13559 (2012).
  8. Gendron, M. P., Martin, B., Oraichi, D., Berard, A. Health care providers' requests to Teratogen Information Services on medication use during pregnancy and lactation. Eur. J. Clin. Pharmacol. 65, 523-531 (2009).
  9. Burns, L., Mattick, R. P., Lim, K., Wallace, C. Methadone in pregnancy: treatment retention and neonatal outcomes. Addiction. 102, 264-270 (2007).
  10. von Mandach, U. Drug use in pregnancy. Ther. Umsch. 62, 29-35 (2005).
  11. Malek, A., Obrist, C., Wenzinger, S., von Mandach, U. The impact of cocaine and heroin on the placental transfer of methadone. Reprod. Biol. Endocrinol. 7, 61 (2009).
  12. Hutson, J. R., Garcia-Bournissen, F., Davis, A., Koren, G. The human placental perfusion model: a systematic review and development of a model to predict in vivo transfer of therapeutic drugs. Clin. Pharmacol. Ther. 90, 67-76 (2011).
  13. International Organization for Standardization (ISO). Technical Specification (ISO/TS) 27687. Nanotechnologies – Terminology and definitions for nano-objects – Nanoparticles, nanofibre and nanoplate. (2008).
  14. Pietroiusti, A. Health implications of engineered nanomaterials. Nanoscale. 4, 1231-1247 (2012).
  15. Latzin, P., Roosli, M., Huss, A., Kuehni, C. E., Frey, U. Air pollution during pregnancy and lung function in newborns: a birth cohort study. Eur. Respir. J. 33, 594-603 (2009).
  16. Lacasana, M., Esplugues, A., Ballester, F. Exposure to ambient air pollution and prenatal and early childhood health effects. Eur. J. Epidemiol. 20, 183-199 (2005).
  17. Menezes, V., Malek, A., Keelan, J. A. Nanoparticulate drug delivery in pregnancy: placental passage and fetal exposure. Curr. Pharm. Biotechnol. 12, 731-742 (2011).
  18. Muhlemann, K., Menegus, M. A., Miller, R. K. Cytomegalovirus in the perfused human term placenta in vitro. Placenta. 16, 367-373 (1995).
  19. Wick, P., et al. Barrier capacity of human placenta for nanosized materials. Environ. Health Perspect. 118, 432-436 (2010).
  20. Dancis, J. Why perfuse the human placenta. Contrib Gynecol. Obstet. 13, 1-4 (1985).
  21. May, K., et al. Perfusion of human placenta with hemoglobin introduces preeclampsia-like injuries that are prevented by alpha1-microglobulin. Placenta. 32, 323-332 (2011).
  22. Guller, S., et al. Protein composition of microparticles shed from human placenta during placental perfusion: Potential role in angiogenesis and fibrinolysis in preeclampsia. Placenta. 32, 63-69 (2011).
  23. Challier, J. C. Criteria for evaluating perfusion experiments and presentation of results. Contrib. Gynecol. Obstet. 13, 32-39 (1985).
  24. Kraemer, J., Klein, J., Lubetsky, A., Koren, G. Perfusion studies of glyburide transfer across the human placenta: implications for fetal safety. Am. J. Obstet. Gynecol. 195, 270-274 (2006).
  25. leal, J. K., et al. Modification of fetal plasma amino acid composition by placental amino acid exchangers in vitro. J. Physiol. 582, 871-882 (2007).
  26. athiesen, L., et al. Quality assessment of a placental perfusion protocol. Reprod. Toxicol. 30, 138-146 (2010).
  27. Myllynen, P., et al. Preliminary interlaboratory comparison of the ex vivo dual human placental perfusion system. Reprod Toxicol. 30, 94-102 (2010).
  28. Malek, A., Sager, R., Schneider, H. Maternal-fetal transport of immunoglobulin G and its subclasses during the third trimester of human pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 32, 8-14 (1994).
  29. Prouillac, C., Lecoeur, S. The role of the placenta in fetal exposure to xenobiotics: importance of membrane transporters and human models for transfer studies. Drug Metab. Dispos. 38, 1623-1635 (2010).
  30. Poulsen, M. S., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Modeling placental transport: correlation of in vitro BeWo cell permeability and ex vivo human placental perfusion. Toxicol. In Vitro. 23, 1380-1386 (2009).
  31. Mathiesen, L., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Transport of benzo[alpha]pyrene in the dually perfused human placenta perfusion model: effect of albumin in the perfusion medium. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 105, 181-187 (2009).

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