שיטות לביצוע צלבים ב
1Donald Danforth Plant Science Center, 2Boyce Thompson Institute

Environment
 

Summary

פיתחנו מתודולוגיה לביצוע צלבים בviridis Setaria (ס 'viridis). השיטה כוללת גיזום המכבד לפני טיפול במים חמים כדי להרוג את האבקה ובת קיימא. צלבים מבוצעים הבא משטר צמיחה מבוקרת היטב ובדרך כלל לגרום להתאוששות של 1 עד 7 האבקה צולבת זרע / s לכל מכבד.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Jiang, H., Barbier, H., Brutnell, T. Methods for Performing Crosses in Setaria viridis, a New Model System for the Grasses. J. Vis. Exp. (80), e50527, doi:10.3791/50527 (2013).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Setaria viridis הוא מערכת מודל מתעורר ל4 C עשבים. היא קשורה קשר הדוק ולקליפות מניית ההזנה ביואנרגיה ודוחן דוחן יבול תבואה. לאחרונה, הגנום 510 Mb של דוחן דוחן, ש ' italica, כבר רצף 1,2 ורצף הגנום 25x כיסוי של ס ביחס העשבים viridis הוא בהתקדמות. ס יש viridis מספר המאפיינים ההופכים אותו למערכת גנטית מודל פוטנציאל מצוין, כולל זמן דור מהיר, קומתו הקטנה, דרישות גידול פשוטות, ייצור זרע פורה 3 ומערכות שפותחו לשינוי הן זמני ויציב 4. עם זאת, הגנטיקה של ס viridis הוא נחקר במידה רבה, בחלקו, בשל חוסר שיטות מפורטות לביצוע צלבים. נכון להיום, אין פרוטוקול סטנדרטי אומצה שיאפשר ייצור מהיר של זרעים מצלבים מבוקרים.

נוכחות הפרוטוקולכאן ented מותאם לביצוע צלבים גנטיים בס viridis, A10.1 הצטרפות. יש לנו עובדי טיפול בחום פשוט עם מים חמים לסירוס לאחר הגיזום המכבד לשמור 20-30 פרחים וסימון של פרחים לחסל את הזרעים וכתוצאה מפרחים חדשים שפותחו לאחר סירוס. לאחר בדיקת סדרה של טיפולים חום בטמפרטורות מתירנית ומשתנה משך הטבילה, הקמנו טמפרטורה אופטימלית וטווח של 48 ° C זמן ל3-6 דקות. באמצעות שיטה זו, מינימום של 15 צלבים יכול להתבצע על ידי עובד אחד ליום וממוצע של 3-5 צאצאים outcross למכבד ניתן לשחזר. לכן, בממוצע 45-75 צאצאי outcross יכול להיות מיוצר על ידי אדם אחד ביום אחד. יישום רחב של טכניקה זו יאפשר הפיתוח של אוכלוסיות שורה טהורים רקומביננטי של ס ' viridis X ס viridis או ס viridis X ס italica, מיפוי מוטציות בתפזורת seניתוח gregant ויצירת מוטציות מסדר גבוהה יותר לניתוח גנטי.

Introduction

ס viridis הוא דשא NADP-ME C תת סוג 4 הקשור באופן הדוק ולקליפות הזנת יואנרגיה המניה (תת NAD-ME), דוחן דוחן יבול תבואה, והדשא גינאה עשב החקלאי 5. הגנום 510 Mb של צורה מעובדת של Setaria, ש ' italica, לאחרונה רצף 1,2 ורצף הגנום 25x כיסוי היחסי עשבים, ש ' viridis, הוא בהתקדמות (לא פורסם). ס יש viridis מספר המאפיינים ההופכים אותו למערכת גנטית מודל פוטנציאל מצוין, כולל זמן דור מהיר, קומתו הקטנה, דרישות גידול פשוט, וייצור זרע פורה 3. חשוב מכך, שיטות לאחרונה פותחו עבור שניהם שינוי החולף ויציב של ס viridis המספק ההזדמנות ליצירת צמחים מהונדסים 4. עם זאת, צוואר בקבוק עיקרי בפיתוח של כלים גנטיים לס viridis הוא recalcitrance לoutcrossing. נכון להיום, אין פרוטוקול סטנדרטי כבר פורסם שיאפשר ייצור מהיר של זרעים מצלבים מבוקרים.

צלבים גנטיים בס italica בדרך כלל מבוצע על ידי סירוס באמצעות הסרת מאבקים מפרחי 6,7,8 או באמצעות טיפול בחום של פרחים של הורים נשיים 9-11. בעקבות טיפולים, מאבקים או panicles מפרחים שאינם מטופלים אלה / הורי זכרים משופשפים בעדינות נגד סטיגמות שחרור אבקה. בסירוס, מאבקים יוסרו באמצעות מלקחיים קנס מייד לאחר פלוראט פותח והמאבק מתחיל exsert, אך טרם לשפוך אבקה 6-8. בין האתגרים של שיטה זו האחרונה הוא הקושי בביצוע סירוס במרווח זמן צר שבין הפתיחה וסככת אבקה של הפרח. משך הזמן של פתיחה וסגירה של פרח בודד ישתנה בהתאם להצטרפות ותנאי סביבה, ויכול לנוע בין 7 דקות <sup> 6-2.5 שעות 12 בס italica. מאז שפיכה של אבקה מתרחשת כמאבקי exsert מפלוראט, מאבקי צורך להסירו בזהירות ובמהירות, ולכן, קשה להימנע מזיהום עקב האבקה עצמית. בנוסף, כpollinations מבוצע מייד לאחר סירוס, מספר הצלבים שניתן לבצע לאדם / ליום מוגבל.

כשיטת חלופית, יכול להיות טבול panicles הבוגר במים חמים כדי לחמם-להרוג את פיתוח גרגרי אבקה 9,10,13,14 עם היתרון של ביצוע צלבים על מספר גדול של panicles. עם זאת, הטמפרטורה ומשך הזמן של טיפול בחום משתנים מאוד מניסויים שונים (למשל 47 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות 14 ו42 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות 10). יתר על כן, אין ניתוחים שיטתיים על היעילות של emasculations תיווך החום פורסמו. לכן, סטנדרטי ושיטה פשוטה לביצוע צלבים גנטיים בס viridis יאיץ פיתוח משאבים הגנטיים והקמתו של ס 'באופן משמעותי viridis כמערכת מודל בתוך קהילת המחקר.

אנו מדווחים על הפיתוח ואופטימיזציה של פרוטוקול סטנדרטי לביצוע צלבים גנטיים בס viridis. צמחים גדלים תחת סביבות מבוקרות כדי לסנכרן פיתוח פרח ולהגדיל את שחזור של ההליך. צלבים מבוצעים באמצעות ס מהונדס שורת viridis כהורה הזכר המכיל את גן כתב גאס 4 כדי להקל על זיהוי של צלבים גנטיים מבוקרים מוצלחים. Transgene גאס הוא מונע על ידי אמרגן היוביקוויטין אורז המאפשר את הניקוד של זרעי F1 מייד לאחר קציר ובכך מספק assay איכותי קל לקבוע את היעילות של סירוס והאבקה. יש לנו עובדי טיפול פשוט חום עם מים חמים לסירוס מלווה בתיוג של פרחים שהיו emasculaטד לחסל את הזרעים וכתוצאה מפרחים חדשים שפותחו לאחר סירוס. לאחר בדיקת סדרה של טיפולים חום בטמפרטורות מתירנית ומשתנה משך טבילה במים חמים, הקמנו משכי טמפרטורה וזמן אופטימליים של 48 ° C 3-6 דקות. טיפול קר לפני עלות השחר נמצא לקדם anthesis סינכרוני בשני ההורים על מנת להקל על האבקה צולבת. יש לנו גם דנו בשלבים העיקריים בפרוטוקול והיישום העתידי של שיטה זו להצטרפויות Setaria אחרות.

Protocol

1. צמיחתו של ס ' viridis

  1. הגדר את התנאי בתא גידול ליום 31 ° C/22 ° C (יום / הלילה), חשוך שעות light/12 שעות 12, 50% לחות יחסית עם טיפול לפני עלות השחר של 15 ° C 8:30-9:00 PM. (איור 1). בתנאים אלה, ש ' A10.1 viridis לוקח בערך 21-22 ימים מזריעת הזרעים לanthesis.
  2. מלא דירות (4 x 9 תאים) עם מטרו מיקס 360 ולהסיר תא אחד להשקיה.
  3. מים בקלילות ערפל על פני קרקע.
  4. לזרוע זרעים על פני השטח של קרקע, זרע אחד לכל תא.
  5. כסה את הזרעים בשכבת האדמה (כ 0.5 סנטימטר)
  6. ערפל על פני השטח של קרקע ומים דירות מלמטה. שמור השקיה מלמטה לאחר זריעת הזרע.
  7. עבור כל צלב שיבוצע לפחות שלושה צמחים ישמש כהורים נשיים ותשעה צמחים ישמש כהורים ממין זכר. זריעת זרעים צריכה להיות מעד כמו כל הצמחים לא יפרחו באותו היום. sowi זרעng מומלץ בכל יום על פני תקופה של שלושה ימים.
  8. להשקות את צמחי 1-2 פעמים ביום, שהיא תלויה בגודל של הצמחים ומצב קרקע. עודף מים בקרקע אינם נוחים לצמיחה אופטימלית של הצמחים, ועלולים להוביל לצמיחת פטרייה בקרקע ונזק של רקמת עלה.
  9. לדשן את הצמחים פעמיים בשבוע, באמצעות ג'ק 15-16-17 בריכוז של 100 עמודים לדקה.

2. זמירה וסימון של מכבד לפני הסירוס - יום 1

  1. בשעתי אחר הצהריים או בשעתי הערב לפני ההאבקה, להעביר צמחים מחדר הצמיחה למעבדה (טמפרטורה (T): 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית (RH) 21.79% ± 1.15%).
  2. בחר panicles העיקרי שיש פרח 1 עד 1/3 של פרחים על המכבד שכבר פרח.
  3. במחקר זה ארבעה תחומים בתוך המכבד מוגדרים כדלקמן (איור 2 א; קצה, באמצע דיסטלי, אמצע ובסיס פרוקסימלי).
  4. באופן אידיאלי, choosמכבד ea עם 1-5 פרחים שפרחו, לנתק את קצה המכבד (קצה הדיסטלי), ולהסיר את כל הפרחים בסעיפי האמצע והבסיס הפרוקסימלי באמצעות מספריים באביב או במלקחיים בסדר.
  5. אם מכבד יש כ 1/10 עד 1/5 של פרחים שפרחו, לחתוך את הקצה ולקצץ פרחים מבסיס המכבד, רק לשמור על חלקו התחתון של אמצע דיסטלי והחלק העליון של אמצע הפרוקסימלי גיזום נוסף.
  6. אם מכבד יש כ 1/4 עד 1/2 של פרחים שפרחו, לנתק את החלק האמצעי דיסטלי ורק לשמר את החלק האמצעי הפרוקסימלי לזמירה נוספת.
  7. השתמש במספריים כירורגית לקצץ בקלילות את הזיפים.
  8. הסר את כל הפרחים שפרחו וכל הפרחים לא בוגרים עוזבים כ 20-30 פרחים / מכבדים שמופצים באופן שווה באזור (איור 3). לתרגל טיפול כדי לשמר את הזיפים באזור שיהיה האבקה על מנת להגן על פרחים מפני נזקי חום אפשריים.עבור כל spikelet, לשמור פלוראט העליון הבשל ביותר. רוב פלוראט העליון יהיה הסתברות גבוהה יותר של anthesis בזמן ההאבקה (איור 2).
  9. סמן צד אחד של כל פרח עם סמן קבע אדום ולרשום את מספר הפרחים על המכבד (איור 2 ב).
  10. דגל המכבד עם הפרטים הבאים: התאריך של סירוס, המשך הזמן והטמפרטורה שבה הסירוס מתבצע.
  11. ברגע שהמכבד חיתוך, להסיר את כל tillers של כל צמח כדי להבטיח הקצאה מחדש של משאבים רבים יותר לפיתוח של מכבד הראשי.

3. סירוס עם מים טבילה חמה - יום 1

  1. הגדר את אמבט מים ל48 C ° ± 0.1 מעלות צלזיוס במשך הטיפול בחום.
  2. בעדינות לכופף את panicles הגזוז וטובל אותם במים חמים ב48 מעלות צלזיוס למשך 3-6 דקות. השתמש בזהירות שלא לשבור את הגזע של מכבד.
  3. יכול להיות טבול כ 3-4 panicles togeיס בפעם אחת, תוך שמירה על המרחב מספיק בין panicles להתפלגות אחידה של חום. זה חיוני כדי להטביע את כולו מכבד במים חמים במהלך טיפול בחום. עלה הדגל (עלה subtending המכבד המספק חומרים מזינים למכבדים) לא צריך לבוא במגע עם מים חמים כדי למנוע נזקי חום לרקמת עלה.
  4. ברגע שהסירוס מתבצע למשך תקופת הרצויה, להסיר panicles מאמבט המים ובעדינות לנער את המים ממכבדים.
  5. הנח שקית לחם מחורר מיקרו אישית כדי לכסות באופן מלא את המכבדת המסורס ולאבטח אותו עם טוויסט עניבה. יכולות להיות מותאמים אישית שקיות לחם מחוררות מיקרו בהתאם לגודל של מכבד (כולל וידאו).
  6. מקם צמחים חזרה בחדר הצמיחה עד ליום הבא.

4. מעבר / האבקה אחרי הסירוס - יום 2 ויום 3

  1. בשעה 9:00 בבוקר ביום 2 ויום 3, להעביר את הנקבה (מסורס) וmalדואר הורים מחדר הצמיחה למעבדה (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%) כדי לבצע צלבים.
  2. להתבונן ולהוסיף עוד נקודה אדומה לפרחים שפרחו או פורחים באמצעות סמן קבע אדום. רשום את המספר הכולל של פרחים פרחו למכבד.
  3. רשום את התאריך של האבקה ואת שמו של הורה הזכר על התג כדי לעקוב אחר מה צלבים מבוצעים.
  4. שים לב לזמן השיא של anthesis בהורים ממין זכר. בתנאי החדר שלנו (איור 1) פרחים על panicles של הורה הזכר מתחילים פתיחת סינכרוני סביב 10:10. מרגע פתיחה של פרחים, exsertion של מאבקים ושחרורו של אבקה המלאה יתרחש לאחר 20 דקות.
  5. השלב האידיאלי להאבקה הוא השלב שבו האבקה של הורה הזכר הוא שוחרר. הפרחים ייסגרו לאחר 20 דקות משחרור אבקה. לפיכך, את משך הזמן לanthesis הוא כ 40 דקות מרגע פתיחה של זרימהERS. הצבע של שינויי אבקה מלבנים צהבהבה עד חום על פני תקופה של כ -30 דקות לאחר הפרח נסגר.
  6. התחל האבקה מייד לאחר מאבקים לבנים צהבהבים גלויים על פרחיו של ההורה ממין הזכר. Pollinations מבוצע ביום 2 ויום 3 באמצעות אחת משלוש השיטות:
    1. האבקה מכבדת למכבדת: באמצעות מכבד מנותק אחד כזכר, לשפשף בעדינות המכבדת יחד עם מכבד המסורס כדי להקל על האבקה וזורקים המכבדים הגברי, כדי למנוע זיהום. חזור על התהליך עד שכל ההאבקה מכבדת מסורס כבר האבקה על ידי 2-3 panicles.
    2. מאבק להסטיגמה האבקה: באמצעות מלקחיים להרים פרח שפורח עם מאבקים לבנים צהבהבים או להרים מאבקים ופיזי לגעת בסטיגמה של הפרח על ההורה הנקבי. השתמש פרח אחד מהורה הזכר להאביק פרח אחד על מכבד המסורס. חזור על p ההאבקהrocess עד שכל סטיגמה על מכבד המסורס כבר האבקה על ידי כמה (כ 2-3) פרחים / מאבקים. לובש מגן מגדלת יעבד הראות טובה יותר כדי לבצע את ההאבקה.
    3. בין pollinations של הורים גבריים שונים, לטבול את המלקחיים ב95% אתנול ואחריו מנגב עם Kimwipes כדי למנוע זיהום עקב לשאת מעל האבקה בין צלבים שונים.
    4. מכבד מחייב: לאחר סירוס, בחר 3-4 panicles על הורה הזכר שיפרח ביום המחרת. לאגד אותם יחד עם מכבד המסורס של ההורה הנקבי באמצעות טוויסט עניבה. מקם את מכבד המסורס מעט מתחת המכבד של ההורה ממין הזכר. הנח שקית נייר שקופה מעל panicles ולאבטח את התיק בבסיס עם אטב נייר. זה עשוי להסתיים ביום 2 ברגע שpanicles של הורה הזכר להתחיל anthesis.
    5. בזמן הפריחה בבוקרו של יום 2 ויום 3, קפיצי או לנער את שקית נייר השקופה לfacilהאבקת itate. תמשיך קפיצי או לנער panicles כל 15 דקות לאורך כל תקופת anthesis בבוקר (בין 9:00 AM-11: 00:00). הסר panicles של הורה הזכר לאחר האבקה ולתייג את הצד הנגדי של הפרחים פרחו על מכבד המסורס. רשום את מספר הפרחים פרחו על המכבד של כל הורה נקבי.
  7. לאחר ההאבקה שבוצעה, במקום שקית לחם מחורר מיקרו אישית כדי לכסות את מכבדת של ההורה הנקבי ומאובטח בבסיס באמצעות טוויסט עניבה לאחר ההאבקה עד קצירת זרע.

5. קצירת זרע

  1. זרעי קציר לאחר 2 שבועות (14-16 ימים) מיום ההאבקה. מקם את התג באותה השקית של הזרעים. זרעים שיש סימנים אדומים בשני הצדדים מייצגים את הזרעים שהביאו מהצלב הגנטי המבוקר. אלה צפויים להיות צאצאי outcross.
  2. לבטל את כל זרעים בלי סימונים אדומים כפי שהם מייצגיםהזרעים הנובעים מפרחים חדשים שפותחו לאחר סירוס. זרעים עם סימנים אדומים רק בצד אחד צפוי לייצג את הזרעים כתוצאה מהאבקה עצמית כפי שהם לא היו פורחים בזמן שבו הצלבים מבוקרים בוצעו.
  3. זרעים יבשים ב30 מעלות צלזיוס למשך 2 ימים במייבש זרע. זרעי חנות מיובשות במעבדה (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%) או בתא זרע (T: 4.0 ° C ± 1.0 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 20% ± 1%).

Representative Results

במחקר זה, השתמשנו בס הרצף A10.1 הצטרפות viridis כהורה הנקבי, וס מהונדס שורת viridis (גם A10.1) המכילה את גן כתב גאס 4 כהורה זכר לכל pollinations. משטר צמיחה מותאם היה משמש לסנכרון פריחה כפי שמוצג באיור 1. בדקנו כמה שילובים של טמפרטורה וזמן של טיפול בחום עבור סירוס וציינתי כי כ 40-80% מהפרחים שמרה על מכבד המסורס פרחו ביום nd 2 והשאר פרח ביום 3 rd (איור 2). עם זאת, אם הטיפול בחום היה חמור מדי, לדוגמא, C ° 49 למשך 4 דקות, מעט מאוד, אם בכלל, פרחים פרח ביום nd 2. חוצה האבקה בוצעה ב -2 או 3 ביום שלישי אחרי הסירוס, שהיה תלוי בזמן השיא של anthesis של הורים ממין זכר.

זה היה משקיפיםאד שפרחים צעירים המשיכו להתפתח לאחר סירוס, התבגר והאבקה עצמית pollinations המבוקר 3-6 ימים אחרי. אחרי 7-10 ימים לאחר הפריה, פרחים, כי הם בצבע לבן נראים על מכבד. פרחים לבנים אלה מופרה בשל נזק חום או האבקה עניות. במקביל, את הפרחים שכבר האבקת הצלחה מתחילים לשאת זרעים כהים ולהתחיל מתנפצים לאחר 14 ימים. הזרעים הכהים עם סימנים אדומים שנקטפו על 14 היום ה לאחר ההאבקה יכולים להבחין באופן ברור מהזרעים ללא סימנים אדומים שעדיין היו ירוקים ולא נשבר. אם קצירה מתעכבת, anthecium של הזרעים עם ובלי סימונים אדומים פונה שניהם כהה, מה שהופך אותו קשה להבחין במהירות את הזרעים עם סימנים אדומים בבריכות שנקטפו.

כדי לייעל את הטיפול בחום הניסויים כמה פרוטוקול המעבר בוצעו כפי שמסוכמים בטבלה 1. ממוצע של0-10 זרעים / מכבדים נתגלו ניסויי טיפול בחום שונים. לאחר קציר, זרעים יובשו ב30 מעלות צלזיוס למשך 2 ימים במייבש זרעים ואחרי הסרת anthecium באמצעות מסיר anthecium. לאחר anthecium הוסר, זרעי F1 משוערים הוכתמו פתרון מכתים גאס, וצאצאי outcross מוכתמים בצבע כחול ב1-2 שעות (איור 2F). בהתבסס על תוצאות אלו, אנו ממליצים על טיפול בחום של 48 מעלות צלזיוס למשך 3-6 דקות. יתר על כן, אנו ממליצים כי צלבים להתבצע על גם ביום 2 ויום 3 הבאות סירוס.

כדי לבחון את היעילות של טכניקה זו בביצוע צלבים עם הצטרפויות Setaria אחרות או מינים, חוצה בין ס A10.1 viridis ושמונה ס המגוון הצטרפויות viridis ואחד ס הצטרפות pumila בוצעה. למרות ימים לפריחה מגוונים בין ההצטרפויות מצאנו כי פרחים מכל שמונה ס הצטרפויות viridis ואחד סהצטרפות pumila להתחיל פתיחה בין 10:00-11:00 עם זמן פתיחת שיא ב10:20-11:00 לאחר הטיפול הקר שלפני עלות השחר. זה מצביע על כך שלפני עלות שחר הטיפול בקור יכול להיות מיושם על הצטרפויות Setaria מגוונות. טיפול בחום של 48 מעלות צלזיוס במשך 5-6 דקות שימש לסרס ס A10.1 viridis ששימש כהורה הנקבי לכל הצלבים שבוצעו. אנחנו התאוששתי מאחד ל12 זרעים מהכלאות בין A10.1 ושלוש של ס המגוון הצטרפויות viridis ושישה זרעים מצלב יחיד בין ס A10.1 viridis וס אחת הצטרפות pumila. עם זאת, בשלב זה אנחנו לא נקבעו אם זרעים אלה נבעו מtestcross מוצלח או היו התוצאה של זיהום עצמי. בכל מקרה, תוצאות הראשוניות אלה מצביעים על כך שתנאי גידול המשמשים לס A10.1 viridis יכול לשמש כדי ליצור צלבים עם ס המגוון הצטרפויות viridis ואולי מינים אחרים של Setaria.

פינוק חום טמפ (° C) פינוק חום זמן (דקות) # צלבים ממוצע. # של פרחים אחרי לקצץ יום של האבקה (יום אחרי emasc) ממוצע. # זרעים (אדום) / מכבד (מתכוון) ממוצע. % גאס (+) / זרעים (אדום) ממוצע. זרעים # היב (גאס +) # דקות היב זרעים זרעי היב # Max 47 10 2 27 יום 2 0 0 0 0 0 48 3 3 36 יום 2 5 60 3 1 5 4 3 25 יום 3 10 50 5 3 7 5 8 25 יום 2 5 60 3 1 6 6 3 25 יום 2 4 75 3 0 4 7 4 24 יום 2 3 33 1 0 4 7 1 25 יום 3 4 75 3 N / N / 49 1 3 23 יום 2 5 25 1 0 2 2 7 26 יום 2 8 25 2 0 4 3 5 22 יום 2 0 0 0 0 1 4 4 25 יום 2 0 0 0 0 0

טבלת 1. אופטימיזציה של טיפול בחום לסירוס. תוצאות של שינוי הן בטמפרטורה ושעה של טיפול בחום. Pollinations בוצע אחד (2 nd יום) או יומיים (3 יום שלישי) הבא של הסירוס וoutcrosses המוצלחcored עם מכתים גאס

איור 1
איור 1. תנאי חדר צמיחה אופטימליים עם לפני עלות השחר טיפול קר. טמפרטורה ופרקי זמן לצמיחה ולתיאום אופטימליים של ייצור פרחים מוצגים. חיצים ירוקים ואדומים מראים חלון אופטימלי לביצוע צלבים וסירוס, בהתאמה.

איור 2
איור 2. הכנה מכבדת למעבר ומכתים גאס של צאצאי outcross. () מכבד של A10.1 Setaria viridis לפני החיתוך, מראה כ 1/10 פרחים נפתחו. ארבעת החלקים ויווני בהתקדמות של anthesis לאורך המכבד מוצגים. (C) מכבד מסורס לאחר הסרת זיפים. (ד') מכבד מסורסת ביום 2 הודעה סירוס, מראה פרחים שפורחים (תמונה שצולמה בשעת 10:30 בבוקר). (ה) מכבד של הורה הזכר (מהונדס Setaria שורת A10.1 viridis ביצוע β-glucuronidase (גאס) גן כתב) שהוא פורח לאחר טיפול לפני עלות השחר (תמונה נלקחה ב 10:30). באמצעות דואר, ברים בקנה מידה = 1 מ"מ. (F) צאצאי outcross משוערת לאחר צביעת גאס לשעה 2 ואחריו distaining ב70% (v / v) אתנול. שני זרעים מהימין הם בקרות שליליות וחיוביות, בהתאמה.

איור 3
איור 3. תרשים זרימה של פרוטוקול ייצוג סכמטי של מ 'מעורבים בביצוע ס צעדי ajor viridis חוצה.

Discussion

חשיבות של טיפול לפני עלות השחר

כדי להשיג תדירות גבוהה של צאצאי outcross זה חיוני שיהיה לי anthesis סינכרוני מאוד של הורי זכר ונקבה. בתחילה, אנו רכב על אופניו משטרי טמפרטורה והאור (31 ב° C/22 ° C, יום / לילה) ומשמשים ס A10.1 הצטרפות viridis לכל pollinations. בתנאים אלה, רוב הפרחים לפתוח מוקדם בבוקר לפני שהטמפרטורה עולה ליום 31 ° C, אם כי כמה פרחים פתוחים באופן אקראי בין 8:00 8: 12:00. מחקרים קודמים בס italica מצביע על הזמן של יום, מיקום והעונה תורמים לשונות בanthesis 7,15,16. סילס et al. 6 ציינו כי anthesis היה קשור עם שינויים מהירים בטמפרטורה ולחות, אבל לא עם טמפרטורה נמוכה ולחות גבוהה, כשלעצמה, כפי שסוכם במחקרים קודמים 7,15. לכן, אנו מועסקים טיפול קר לפני עלות השחר של 15 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות (מ 8:30 AM-9: 12:00) לחקותהמצב טרום זריחה הטבעית. טיפול קר לפני עלות השחר זה סייע בסנכרון anthesis בהורים. הבחנו כי למרות הגדרת התא לרמות לחות היחסית של 50%, הלחות היחסית בתוך החדר עלתה לרמה מעל 70% ככל שהטמפרטורה ירדה מ 22 ° C עד 15 מעלות צלזיוס והמשיכה להישאר מעל 70% עד לטמפרטורה עלה בהדרגה ל 31 ב° C לאחר 9:30 בבוקר. בשעת 9:00 בבוקר, מסורס הורים נשיים וצמחים של הורה זכר מובאים למעבדה (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%). פרחים של הורי גברים מתחילים פתיחה סביב 10:10, והאבקה יכולה להתבצע בשעה 10:30 AM-11: 12:00. רשימה מפורטת של כל חומרים כימיים והציוד מסופקת בטבלה 2.

חשיבותה של הכנה מכבדת לסירוס

בתנאי החדר במחקר זה (איור 1), משך הפריחה מכבדת העיקרית נע בין2-3 ימים. בדרך כלל, פרחים ממוקמים באמצע הדיסטלי של התפרחת (איור 2 א) proximally הראשון ופתיחה מקדימה פתוח וdistally. המספר האידיאלי של פרחים כדי להישמר על המכבד הוא 20-30. זהירות יש לנקוט בעת ההסרה של פרחים בשלה, כך שרק פרחים מפותחים (הפרח העליון או הגדול ביותר על spikelet 17) נשמרים. תיוג עם סמן אדום בשני הצדדים של הפרחים מסייע להבחין ביעילות צאצאי outcross משוערת מזרעים מפרחים חדשים שפותחו לאחר סירוס. בנוסף, חשוב להשאיר את הזיפים על panicles לפני הסירוס כדי להגן על הפרחים מפני נזקי חום רבים, עם זאת, כאופציה, הם יכולים להסיר לאחר סירוס באמצעות מספריים באביב על מנת להקל האבקה, במיוחד כאשר מכבד מחייבים טכניקה היא מועסק (2C דמויות ו2 ד).

טמפרטורה אופטימליתמשך טיפול ד לטיפול במים חמים

הבסיס לסירוס באמצעות טבילה במים חמה הוא שהאבקה היא רגישה יותר לחום מאשר משטח סטיגמות. עם זאת, משך הזמן והטמפרטורה של טיפולים חום עשויים להשתנות בין מינים והצטרפויות Setaria. באופן כללי, טמפרטורה גבוהה יותר עם זמן קצר יותר לטיפול או לטמפרטורה נמוכה יותר בזמן טיפול ארוך יותר תהיה לה ההשפעה על סירוס. זה כבר דווח כי טיפול בחום של 42 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות 10 או 47 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות 14 ס שניתנו אבקת italica שאינו ברת קיימא, אבל את היעילות של טיפולים אלה לא נקבע. פיתחנו הפרוטוקול שלנו בעקבות ההשערה כי תחת טמפרטורה ואת משך זמן אופטימליים של טיפול, אבקת פרחים של כל הפרחים שמרה על ההורה הנקבי יהיה שאינו בת קיימא תוך סטיגמות יישארו פתוחה. עם זאת, לאחר השוואה וניתוח ההשפעות של כמה טמפרטורות ותקופות טיפול (טבלה 1), מצאנו כי הרגישות לטיפול בחום משתנה בין הפרחים שמרו על כל מכבד, ובכך שקשה לחסל את הזרעים כתוצאה מהאבקה עצמית לחלוטין. אנו מסיקים כי היעילות בייצור צאצאי outcross היא הגדולה ביותר, כאשר טיפולים מבוצעים ב48 מעלות צלזיוס במשך 3-6 דקות בס A10.1 הצטרפות viridis.

זמן שיא של anthesis והפריה הדדית

כאשר הפרחים מגיעים לבגרות והם עומדים לפתוח, מאבקים הם לבנים בצבע צהבהב ואבקה נשפכה בהקדם מאבקי exsert מהפרחים 8. מאבקים הופכים בהדרגה חום לאחר האבקה נשפכה כפרחים מתחילים להיסגר. שוחרר פעם אחת, את הכדאיות של אבקה אינה ידועה. לכן, זה קריטי להשתמש באבקה מפתיחה או פרחים טריים פתחו בהורה הזכר בהקדם האפשרי. בתנאי החדר שלנו (איור 1), רוב floweRS של הורי גברים מתחיל לפתוח בשעת 10:10 בבוקר והפרחים נפתחו לשפוך אבקה בשעת 10:30 PM. לכן, החלון הרצוי לביצוע האבקה הוא 10:30-11:00. סטיגמות יישארו מחוץ לglumes אחרי פרחים קרובים ועשויות להיות פתוח לאבקה. זה כבר נצפה בעבר ואישר בס italica שסטיגמות הן פתוחים במשך כ 48 פתיחת הודעה פרח-HR על ידי סילס et al. 6, ולכן חשוב לpanicles התיק הבא טיפול בחום ולאחר ביצוע צלבים מבוקרים. כאמור לעיל, אנו ממליצים pollinations ביצועים בשני יום 2 ויום 3 שלאחר סירוס.

שיטות להאבקה

החוקרים השווינו את היעילות של שלוש טכניקות האבקה. אם פרחים פורחים לא מגבילים, האבקה מכבדת למכבדת היא הטכניקה היעילה ביותר ותניב מספר גדול יותר של צאצאי outcross. אם panicles הפורח מגביל, תדירות גבוהה יותר של oצאצאי utcross יופקו כאשר נעשה שימוש בשיטת מאבק ל- הסטיגמה. יש לנו להשיג צאצאי outcross משתי השיטות בהצלחה. שיטת "מחייב panicles" נעשתה שימוש בחציית ס italica 6 אבל מצאנו בשיטה זו כדי להיות השיטה היעילה לפחות כמו חלון הזמן לשפיכת אבקה של הורה הזכר הוא קצר. יתר על כן, יש פחות שליטה על האבקה והזיפים על ס panicles viridis עשוי גם לעכב את התנועה של אבקה על גבי משטח סטיגמות.

קצירת זרע, ייבוש ואחסון

לאחר קציר, צריכים להיות מיובשים זרעים ב30-33 מעלות צלזיוס למשך 2 ימים. Anthecium יש להוציא עבור מכתים גאס, במידת צורך. זרעים צריכים להיות מאוחסנים במקום יבש, קריר (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%) עבור אחסון לטווח קצר (פחות משנתיים) או בתא זרע (T: 4.0 10 ° C ± 1.0 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 20% ± 1%) עבור אחסון לטווח ארוך.תנאי אחסון לקויים עלולים לגרום שיעורי כדאיות נמוכים 8. יש לנו ציינו כי שיעור הנביטה של ס A10.1 viridis הוא כ -5%, כאשר נזרע 4 ימים לאחר הקציר, אך ניתן להגדיל 90-96% לאחר האחסון במעבדה (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%) ל110 ימים לאחר קציר ואחריו ריבוד של שלושה ימים ב-80 ° C לשבור תרדמת זרעים. לריבוד ב -80 מעלות צלזיוס, ניתן להציב זרעים יבשים בכלי אטום (צינור למשל מיקרו צנטריפוגות או מעטפת מטבע בשקית פלסטיק אטומה) והמשיכו ב-80 מעלות צלזיוס במשך 3 ימים לפני השתילה. לאחר 16 חודשים של אחסון במעבדה (T: 24.06 ° C ± 0.13 מעלות צלזיוס, לחות יחסית: 21.79% ± 1.15%), עדיין ניתן להשיג אחוזי נביטה של ​​90-95%. בנוסף, כדי לשבור את תרדמת, יכולים להיות מיובשים זרעים ב30-33 מעלות צלזיוס למשך 2 ימים לאחר קציר, ולאחר מכן ניתנו ריבוד של שלושה ימים ב-80 מעלות צלזיוס ואחרי הסרתanthecium לפני השתילה. לאחר טיפולים אלה, שיעורי נביטת זרעים של עד 33% יכולים להיות מושגת.

יתרונות, מגבלות ושינויים אפשריים

כאן אנו מספקים פרוטוקול הסטנדרטי הראשון לביצוע צלבים בס viridis A10.1 באמצעות טיפול בחום לסירוס. בניגוד לסירוס פיזי, פרוטוקול זה הוא פחות פולשני וקל יחסית כדי להקים במעבדה. בדרך כלל זה לוקח בערך 15 דקות לקצץ מכבד אחד ויכול להיות מטופח -15 panicles וחצה / אדם / יום. בהנחה ממוצעת של 3-5 צאצאים / מכבד outcross ניתן לשחזר בתנאים מותאמים, סך של 45-75 צאצאי outcross יכול להיות מיוצר על ידי אדם אחד ביום אחד. יתר על כן, טכניקה זו יכולה להיות מיושמת על חוצה במינים Setaria אחרים, אם כי אופטימיזציות נוספות תהיה סבירה. אם חלל חדר הצמיחה מוגבל, ניתן לגדל צמחים בבית ירוק או תאי גידול מבלי גיד לפני עלות השחרtment עד המכבד עולה לפני שהם עברו לתנאי בתא מותאם.

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgements

אנו מודים Sankalpi Warnasooriya ואיימי הומבולדט לקריאה ולעריכה ביקורתיות של כתב היד. עבודה זו נתמכה על ידי מענקים ממשרד אנרגיה (DE-SC0008769) והקרן הלאומית למדע (IOS-1,127,017).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Scissors, spring World Precision Instruments, Inc 14126
Forceps, Dumostar Biology Polished SPI Supplies TD5BP-XD
Surgical Scissors F.S.T (Fine Science Tools) 14005-12
Europack Clear Polypropylene Micro-Perforated Crusty Bread Bags 6"x28" http://www.pjpmarketplace.com 361001
Flats T.O. Plastics 715401C
metro mix 360 Hommert International 10-0356-1
Jack's 15-16-17 Hommert International 07-5925-1
Kimwipes VWR International 34120
Sharpie Ultra Fine Point Permanent Markers, Red Staples 37002
Donegan DA-10 OptiVisor Headband Magnifier, 3.5x Magnification, 4" Focal Length Amazon DA-10, B0015IP380
12"24/7 Packaging Hand Impulse Sealer Heat Seal Machine Poly Sealing Free Element Grip Amazon N/A
water bath VWR scientific Model: 1166
BDW walk in plant growth chamber Conviron BDW 40

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bennetzen, J. L., et al. Reference genome sequence of the model plant Setaria. Nat Biotechnol. 30, 555-561 (2012).
  2. Zhang, G., et al. Genome sequence of foxtail millet (Setaria italica) provides insights into grass evolution and biofuel potential. Nat Biotechnol. 30, 549-554 (2012).
  3. Li, P., Brutnell, T. P. Setaria viridis and Setaria italica, model genetic systems for the Panicoid grasses. J Exp Bot. 62, 3031-3037 (2011).
  4. Brutnell, T. P., et al. Setaria viridis: a model for C4 photosynthesis. Plant Cell. 22, 2537-2544 (2010).
  5. Doust, A. N., Kellogg, E. A., Devos, K. M., Bennetzen, J. L. Foxtail millet: a sequence-driven grass model system. Plant Physiol. 149, 137-141 (2009).
  6. Siles, M. M., Baltensperger, D. D., Nelson, L. A. Technique for artificial hybridization of foxtail millet [Setaria italica (L.) Beauv.]. Crop Sci. 41, 1408-1412 (2001).
  7. Li, H. W., Meng, C. J., Liu, T. N. Problems in the Breeding of Millet (Setaria Italica (L.) Beauv.). Agron. J. 27, 963-970 (1935).
  8. Willweber-Kishimoto, E. Interspecific relationships in the genus setaria. Contributions from the Biological Laboratory, Kyoto University. 14, 1-41 (1962).
  9. Chang, L. P. Studies on flowering and hybridization technique in Setaria. Nungyeh-hsueh Pao (Jour. Agric.) Act. Agric. Sin. 9, 68-76 (1958).
  10. Darmency, H., Pernes, J. Use of wild Setaria viridis (L.) Beauv. to improve triazine resistance in cultivated S. italica (L.) by hybridization. Weed Research. 25, 175-179 (1985).
  11. Sakai, S., Shin, C. Artificial hybridization of Setaria italica by hot water treatment. Bull. Fac. Agric. Kagoshima Univ. 28-37 (1955).
  12. Malm, N. R., Rachie, K. O. Setaria millets: A review of the world literature S.B. University of Nebraska, Lincoln. 513-529 (1971).
  13. Miyaji, Y., Samura, T. The influence of atmospheric humidity on flowering and pollination in Setaria italica. Bull. Fac. Agric. Kagoshima Univ. 1-6 (1954).
  14. Wang, Z. M., Devos, K. M., Liu, C. J., Wang, R. Q., Gale, M. D. Construction of RFLP-based maps of foxtail millet, Setaria italica (L.). P. Beauv. Theoret. Appl. Genetics. 96, 31-36 (1998).
  15. RangaswamiAyyangar, G. N., Narayanan, T. R., Seshadri Sarma, P. Studies in Setaria italica (Beauv.), the Italian millet. Part I. Indian J. Agr. Sci. 561-571 (1933).
  16. Heh, C. M., Mei, T. F., Yang, S. S. Anthesis of Millet, Setaria Italica (L.) Beauv. Agron. J. 29, 845-853 (1937).
  17. Doust, A. N., Devos, K. M., Gadberry, M. D., Gale, M. D., Kellogg, E. A. The genetic basis for inflorescence variation between foxtail and green millet (poaceae). Genetics. 169, 1659-1672 (2005).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics