在小鼠心脏rAAV9的制备过表达或敲除基因

Genetics

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Ding, J., Lin, Z. Q., Jiang, J. M., Seidman, C. E., Seidman, J. G., Pu, W. T., Wang, D. Z. Preparation of rAAV9 to Overexpress or Knockdown Genes in Mouse Hearts. J. Vis. Exp. (118), e54787, doi:10.3791/54787 (2016).

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Abstract

控制通过在鼠模型的心肌递送遗传物质的表达或特定基因的活性使得基因功能的调查。它们在心脏治疗潜力也可确定。有在小鼠心脏体内分子介入有限的方法。重组腺相关病毒(腺相关病毒)系的基因组工程已被利用作为用于体内心脏基因操作的基本工具。这项技术的具体优点包括高效率,高特异性,低基因组整合率,最小 免疫原性,和最小的致病性。这里,构造,封装,和纯化rAAV9矢量的详细过程进行说明。皮下注射rAAV9成新生幼仔导致鲁棒表达或在小鼠心脏感兴趣的基因(多个)的有效敲低,但不是在肝脏和其他组织。使用心脏 - 技术规格获得ÇTNNT2子,在心脏GFP基因的高表达。此外,靶mRNA是在心脏抑制被利用的rAAV9-U6-shRNA的时候。工作rAAV9技术方面的知识可能对心血管有益的调查。

Introduction

控制各种生物系统的特定基因的表达或活性已经成为在基因功能1的研究的有价值的策略。实现这一目标的一个直接的方法是对操纵核苷酸序列,并产生突变等位基因。虽然进行精确的,有针对性的变化到活细胞的基因组中仍 一个耗时耗力的做法,强大的TALEN和CRISPR / Cas9工具的发展开辟基因组编辑2-5的新时代。对于基因操作更常规的实验室方法重点推出遗传物质(DNA的含有编码序列或siRNA的/的shRNA的RNA)进入细胞表达或击倒感兴趣1,6基因(S)的。

在许多情况下,用于基因操作的主要瓶颈是递送DNA,RNA或蛋白的导入细胞。对于体外研究,高效transfecti上系统已经建立了许多培养的细胞系。然而,在特定的小鼠模型中, 体内基因递送是更具挑战性。有一系列的需要,以实现外源试剂的高效细胞摄取被绕过细胞内外的障碍。其他障碍包括快速清除和交付的材料7,8的持续时间短。规避这些问题的一个策略是使用病毒载体的“载体”或“车辆” 用于体内基因递送。病毒的自然进化的传导属性允许感兴趣进入细胞7,9,10基因的有效提供。许多类型的病毒载体,已经开发和实现不同类型的细胞和器官的小鼠体内基因操作灵活。

最常用的病毒系统包括逆转录病毒,慢病毒,腺病毒,和腺相关病毒(AAV) 12-14转导的基因的终身表达的潜力。但是,许多类型的逆转录病毒只感染分裂的细胞,以及它们在非分裂细胞中的功效是非常低的15。这限制了其效用的基因传递。慢病毒是逆转录病毒科的一属。从其他逆转录病毒不同,慢病毒可以感染两个分割和非分裂细胞,并已被广泛用于基因转移到有丝分裂后和高度分化的细胞16。慢病毒的生命周期也涉及整合载体DNA导入宿主基因组中。因此,慢病毒介导的基因递送使转导的遗传元件16-18的稳定和长持续时间的表达。但是,此功能可能代表一个双-E在使用这些病毒dged剑操纵基因表达,作为载体DNA的整合可能导致插入诱变 在宿主细胞中,并可能导致假象的影响。腺病毒是另一种广泛使用的基因递送系统。不像逆转录病毒和慢病毒,腺病毒是非集成,并且不与宿主细胞8,10,11,19的基因组完整性干扰。此外,腺病毒可以转染DNA引入许多细胞类型和感染是不依赖于活性细胞分裂19。腺病毒的另一个重要特性是易于矢量纯化的,因为病毒载体有能力要复制19,20。然而,这种系统的主要告诫是腺病毒感染可触发靶细胞和器官19强烈的免疫反应,限制在许多调查其使用,特别是在基因治疗研究。

这些不同类型的比较病毒载体的S,重组腺相关病毒(腺相关病毒)似乎是理想的基因递送系统21,22。它具有最小的免疫原性和致病性23,24。此外,腺相关病毒感染广泛的细胞类型,包括分割和非分裂细胞。在大多数情况下,重组腺相关病毒不整合到宿主基因组中;因此,在靶细胞不希望的基因或基因组的改变的风险是低的22。

最近,重组腺相关病毒系统已被成功地用于DNA编码的蛋白质中,miRNA,shRNA的,和CRISPR-gRNAs的体内递送到小鼠心肌23,25-29。这种方法在心血管领域的研究促进了基础研究和基因治疗的研究。这里,详细过程生成rAAV9载体能够有效地过表达或敲除的小鼠心脏目的基因进行了说明。该协议提供了一个简单而有效的方法在小鼠实验模型中操纵心脏基因表达。

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Protocol

在由生物安全委员会和波士顿儿童医院的机构动物护理和使用委员会批准的规程进行所有描述的步骤。波士顿儿童医院与监管的光/暗循环和气候控制无病原鼠标设施。兽医和动物关爱员工的变化笼,保证了老鼠的健康。该设施是AAALAC认证,并有活跃的动物福利保障认证(AAALAC认证在1992年2月24日动物福利保障授予数量:A3303-01)。小鼠通过CO 2从压缩气体源输送安乐死。组织样品证实心脏速率,运动和动物的呼吸停止后收集。新生儿啮齿动物抗CO 2安乐死,并通过使用锋利的剪刀斩首被实施安乐死。这些方法都与小组的美国兽医本草安乐死的建议相一致社团出版社。

1.由克隆的cDNA或shRNA表达盒插入质粒骨架rAAV9构建的代

注:rAAV9质粒含有用于基因表达的末端反向重复序列AAV2的(ITRS),已被修改为怀有鸡TNNT2 (rAAV9.cTNT),使转基因25,26,29的特定心肌表达。独特NheⅠ和KpnI位点已被引入到质粒中,启动子的下游。编码感兴趣的基因的cDNA片段克隆到用这两种限制性位点25,26,29的rAAV9骨干。这里,作为一个例子,产生在小鼠心脏GFP基因的过表达的rAAV9载体。所得质粒含有由两个ITR位点( 图1)侧翼的肌钙蛋白:: GFP盒。 rAAV9.U6 ::的shRNA构建体用于基因敲除25。设计使用的shRNA在线shRNA的设计服务器。 rAAV9.U6 :: shRNA的可产生或者通过退火和结扎的shRNA序列插入的限制酶消化的rAAV9载体携有U6启动子的DNA含有-寡核苷酸,或者通过远距离PCR和分子内吉布森组件基于“无缝”建设30。所得质粒中应包含的U6-shRNA的盒由两个ITR位点( 图2)侧接。在此,作为一个例子,rAAV9.U6 :: shRNA的载体构建拦截TRBP的mRNA(TRBP shRNA的序列:GCAGTGATGGATATGCATCTTCTCGAGAAGATGCATATCCATCACTCG)。一个争夺的shRNA作为阴性对照(CCTAAGGTTAAGTCGCCCTCGCTCGAGCGAGGGCGACTTAACCTTAGG)。

  1. 克隆的基因或shRNA表达盒到rAAV9质粒骨架。变换DNA导入感受态大肠杆菌细胞25。
    注:使用stbl2或stbl3 大肠杆菌细胞rAAV9 DNA转化,以尽量减少意外ITR重组。
  2. 拿起从转化的大肠杆菌的细胞阳性克隆。放大500毫升莉莉-巴尼特介质的文化和提取细菌细胞25-30 rAAV9质粒。
    注意:MIDI /马克西预习的rAAV9质粒得到的DNA(> 100微克)的高含量。产生病毒之前,总是通过限制性消化和琼脂糖凝胶电泳分析AAV质粒的序列完整性,如先前所述(http://www.vvf.uzh.ch/cloningservice/11bpdeletion/itrintegrity.html)。

2. HEK293细胞rAAV9质粒转染

  1. 准备的线性聚乙烯亚胺(PEI)的解决方案1微克/微升。溶解PEI粉末在无内毒素的dh已经加热到70-80℃2 O。后冷却至RT,中和该溶液至pH 7.0,用1M HCl中。过滤消毒(0.22微米)的溶液中。分装1微克/微升PEI原液(1,400微升/管)和存储SOLUT离子在-20℃。
  2. 培养HEK293细胞在Dulbecco改进的Eagle培养基(DMEM)中,用10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/链霉素。培养的细胞在37℃培养箱用5±0.5%的二氧化碳(CO 2)。
  3. 在第0天,板块HEK293细胞十150毫米的菜肴在1分裂> 90%汇合细胞转染前18-20小时:2的稀释。
    注:在第1天,将细胞要达到90%汇合。
  4. 第1天,转染HEK293细胞与rAAV9质粒( 例如,rAAV9.cTNT :: GFP或rAAV6.U6 :: shRNA的构建),广告辅助质粒,并采用PEI 25,26,29 AAV-REP /帽质粒。
    1. 在90%汇合10菜肴的细胞,在一个50毫升的离心管中混合70微克的AAV-REP /盖质粒,70微克粉煤rAAV9质粒,和200微克的Ad-辅助质粒的。
    2. 如果细胞较少汇合时,按比例调整的DNA量。例如,如果细胞是在75%汇合时,减少DNA金额比例(步骤2.4.1所示的金额75/90):混合70×75/90 = 58.3微克AAV-REP /帽质粒,70×75/90 = 58.3 rAAV9质粒微克和200× 75/90 = 166.7的Ad-辅助质粒的在50毫升离心管微克。
    3. 加入49毫升RT DMEM(无FBS)到50毫升试管中拌匀。
    4. 添加1,360微升的PEI溶液,使PEI:DNA比值(体积/重量)是4:1。拌匀。孵育在室温下进行15 - 30分钟。
    5. 添加在步骤2.4.4制备每150毫米培养皿(50毫升混合物的十150-mm培养皿中)的混合物的5毫升
  5. 培养的细胞在37℃培养箱用5±0.5%CO 2的60-72小时。

3.转染的HEK293收获细胞与rAAV9载体纯化

  1. 收获细胞转染后60-72小时。去除并通过上下抽吸与培养基暂停在餐具的细胞。转移所有的细胞悬液无菌50毫升管。
  2. 离心细胞,在500×g离心5分钟。悬浮用5ml的PBS将细胞沉淀在每个管和所有的细胞悬浮液合并成一个50ml管中。
  3. 离心细胞,在500×g离心5分钟。弃去上清液。在此步骤中,存储所述细胞沉淀在-80℃下或立即从粒料净化AAV,如在步骤3.4-3.15说明。
  4. 制备裂解缓冲液:150mM的氯化钠和20mM的Tris-HCl,pH值8.0。过滤消毒(0.22微米)。储存在4℃的缓冲液中。
  5. 悬浮用10ml裂解缓冲液的沉淀。
  6. 冷冻裂解物在-80℃下或在干冰/乙醇浴中,然后解冻它在37℃。涡旋1分钟。冻结和解冻的裂解物3次。
  7. 添加MgCl 2溶液的解冻溶胞产物(使 MgCl 2中的裂解物中的最终浓度为1mM)。核酸酶添加到250单位/毫升的最终浓度。孵育在37℃下15分钟以溶解该DNA /蛋白质AGGRegation。
    注:如果DNA /蛋白聚集没有得到核酸内切酶或治疗后溶解,均匀DOUNCE的裂解液的20倍。
  8. 离心样品以4800rpm×g离心在4℃下20分钟。收集上清液。
  9. 同时,准备碘克沙醇梯度的解决方案:
    1. 通过混合5毫升10×PBS中,0.05毫升的1摩尔 MgCl 2,0.125mmol毫升的1摩尔的KCl,10毫升5M的NaCl,和12.5毫升ofdensity梯度介质制备梯度溶液的17%。调整总体积为用H 2 O50毫升
    2. 通过混合5毫升10×PBS中,0.05毫升的1摩尔 MgCl 2,0.125mmol毫升的1摩尔的KCl,20毫升的密度梯度介质和0.2毫升0.5%(重量/体积)酚红制备25%的溶液。调整总体积为用H 2 O50毫升
    3. 通过混合5毫升10×PBS中,0.05毫升的1摩尔 MgCl 2,0.125mmol毫升的1摩尔的KCl,和33.3毫升密度梯度介质的制备40%的溶液。调整用总体积至50mlH 2 O
    4. 通过混合制备60%溶液0.05毫升的1M MgCl 2的,0.125mmol毫升的1摩尔的KCl,50毫升的密度梯度介质的,和0.1ml 0.5%(重量/体积)酚红。
  10. 用针和注射器,加载碘克沙醇梯度溶液进聚丙烯管以5毫升17%,5毫升25%,5毫升40%和5毫升60%的数量级,从底部开始。加载从渐变的最高领奖台3.8(14-16毫升)中获得的所有裂解液。梯度从底部列出上方,是60%,40%,25%,17%,和所述裂解物层。填用裂解缓冲液的管中,用软木塞覆盖。
  11. 离心在16℃185000 XG 90分钟。
  12. 收获病毒级分(40%层)用注射器。插入针(21号)插入40%和60%的级分之间的交叉点,只吸移40%层。
    注:避免吸ANY 25%的层。
  13. 混合病毒的部分用消毒聚氧乙烯 - polyoxypropylene嵌段共聚物的PBS溶液(10%聚氧乙烯 - 聚氧丙烯嵌段共聚物库存1:10,000稀释在PBS中)至15ml的总体积。加载混合物进入过滤管(截止MW = 100,000道尔顿)。离心机在2000×g离心在4℃下30分钟。
  14. 丢弃在底部的溶液。重新填充聚氧乙烯 - 聚氧丙烯嵌段共聚物PBS溶液过滤管的15毫升总体积。离心机在2000×g离心在4℃下20分钟。重复此步骤两次。收集纯化rAAV9病毒(过滤器上面的分数)。
  15. 转移纯化rAAV9在过滤器管1.7毫升管。分装纯化rAAV9(100 - 400微升/管,这取决于所述AAV的体积和滴度)和病毒储存在-80℃。
    注:避免重复冷冻解冻。

4. rAAV9的效价测定

  1. 制备标准DNA样本。
    1. 具体的设计和高效的PCR引物rAAV9矢量和优化的PCR条件。
      注:在本研究中使用的引物是“转发:TCGGGATAAAAGCAGTCTGG;反向:TCGGACGGAGATACGTGAGT”。在95℃下3分钟初始变性;:PCR反应以下列条件下进行95℃35个循环持续20秒,60℃15秒,72℃,10秒;和在72℃最终延伸10分钟。然而,优化引物和PCR条件是质粒特异性的,如在rAAV9矢量的插图序列可影响的PCR 31的特异性和效率。
    2. 执行与步骤4.1.1所示的条件进行PCR反应。净化用凝胶提取试剂盒将PCR产物。
    3. 测量使用分光光度计纯化的DNA的浓度。计算基于所述PCR产物的分子量/长度的DNA分子数的浓度。
      1. 使用下列公式计算的分子浓度:莫lecular浓度(DNA分子或片段/毫升)= 6.23×10 23摩尔体质。 ×10 -6 /兆瓦。注:(6.23×10 23摩尔-1是Avagadro的数量;刀豆:DNA浓度微克/毫升; MW:以g / mol的分子量)。例如,如果获得的PCR产物的浓度为100微克/毫升,其长度为200碱基,该双链DNA的分子量为2×200×310 = 124000(平均在每个核苷酸的分子量单链DNA是约310克/摩尔)。分子浓度(DNA分子/毫升)= 6.23×10 23摩尔-1×100微克/毫升×10 -6 /124000克/摩尔= 5.18×10 14的DNA分子/毫升。
      2. 执行稀释系列的DNA片段,并制备标准样品,以10 13个分子/毫升,10 12个分子/毫升,10 11个分子/毫升,10 10个分子/毫升,10 9个分子/毫升,10个浓度7分子/毫升。使用1微升解决方案的定量PCR每个标准样品(定量PCR,在步骤4.6)。
  2. 混合5微升纯化的rAAV9溶液与5微升10×DNA酶缓冲液,1μl的DNA酶的(10,000单位/毫升),和的DDH 2 O的39微升的总体积应为50微升。
  3. 孵育在37℃下的小瓶中30分钟以去除残留的未封装质粒DNA。
  4. 灭活DNA酶在95℃下10分钟。冷静下来的溶液,在加入44微升H 2 0,5微升10X DNA酶缓冲液,1微升蛋白酶K的股票(10毫克/毫升)。
  5. 孵育在50℃下该溶液2小时。终止反应,灭活蛋白酶K在95℃下10分钟。
  6. 使用1微升样本的定量PCR(定量PCR)检测的。计算滴度。
    1. 用样品FR步骤4.1.1设计引物,运行定量PCR(定量PCR)嗡步骤4.1.4(标准样品),并从步骤4.5(样品被测量)。
      1. 对于每个反应,混合2倍青主混合物的10微升(含有Taq聚合酶,dNTP混合物,缓冲液,MgCl 2的,与绿色染料),0.5微升正向引物(5微米),0.5微升反向引物(5微米)的, 8微升的H 2 O和1μl的样品进行测量。在以下条件下进行的qPCR:握住样品在50℃下2分钟和95℃,10分钟;在95℃下进行40个循环15秒,在60℃,1分钟;对于熔融阶段,孵育样品在95℃下30秒和60℃持续15秒。基于所述标准样品( 图3)(C T)的数字标准曲线。
    2. 计算相对于标准曲线的AAV样品的分子浓度/效价。的rAAV9具有单链DNA基因组,因此,分子的浓度将是2倍比更高计算值(2×功率(10,y)时, 图3B)。此外,纯化的rAAV9的滴度将是20倍比什么是从计算由于1:20稀释在DNA酶和蛋白酶K反应的病毒(5微升在100微升总)的获得更高。

5. rAAV9注射液在心脏新生小鼠与基因表达分析

  1. 制备在聚氧乙烯 - 聚氧丙烯嵌段共聚物的PBS溶液rAAV9工作溶液。使病毒库存以1-7×10 12个粒子/ ml的效价。
    注:提供50-70微升rAAV9溶液到每个日龄0.5-1.5小鼠皮下注射。实现高效的基因过表达或敲除,建议为每个研究以优化注入的AAV的量进行试验性测试。使用rAAV9.cTNT ::吕克或rAAV9.U6 ::扰频控制相同数量的每个研究,以减少偏差。
    注:我们使用1-1.5×10 11粒/小狗的过度表达与2.5 - 5×10 11粒/为击倒在出生后0.5-1.5英里CE)的小狗
  2. 通过皮下注射治疗在P0.5-P2.5与rAAV9新生小鼠。
    1. 预填充29G1 / 2,0.33点¯x12.7毫米胰岛素与rAAV9液的注射器。小心去除气泡。
    2. 握住一只手低温麻醉的小狗用拇指和食指。在注射前,滑动用70%异丙醇饱和维持无菌状态的拭子棒小狗的背部皮肤。将注射器针头插入动物的前侧 - 背侧皮下组织以5到10°的角度。注射50-70微升使用胰岛素注射器rAAV9解决方案。
      注:rAAV9也可通过腹膜内或静脉内注射26,27递送到小鼠。能够得到在心脏的递送基因的有效表达。然而,腹腔注射离子有时可导致在肝脏渗漏表达。注射后,幼崽的条件每天监测。
  3. 在心脏基因表达的水平可以与定量PCR,免疫荧光或蛋白印迹分析进行监测(代表性的结果示于图45)25,26。
    注:小鼠用CO 2从压缩气体源输送安乐死。组织样品证实心脏速率,运动和动物的呼吸停止后收集。新生儿啮齿动物抗CO 2安乐死,并通过使用锋利的剪刀斩首被实施安乐死。该方法是在美国兽医协会的安乐死小组的建议相一致。

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Representative Results

为rAAV9施工rAAV9.cTNT :: GFP或rAAV9.U6 :: shRNA的质粒的策略示于图12,分别为。作为例子,在生成rAAV9矢量过表达GFP基因在小鼠心脏。所得质粒含有由两个ITR位点( 图1)侧翼的肌钙蛋白:: GFP盒。所述rAAV9.U6 :: shRNA的载体构建拦截TRBP的mRNA( 图2)

用通过线性回归的qPCR数据生成rAAV9滴定标准曲线。操纵变量y表示每个标准样品的DNA分子浓度的Log 10值,相应的变量x表示(C T)值。日志10(浓度)值(Y)和C T编号(x)的表现很好的线性相关(R 2 = 0.9971)和适合用方程y = -0.2832x + 14.616( 图3A)。 rAAV9样品滴度基于线性方程( 图3B)来计算。与协议(步骤4.6.2和图3B)中描述的方法,rAAV9向量的高滴度(50-200微升,“6×10 13粒子/ ml)中的代表性研究得到。

为了监测rAAV9.cTNT载体的效率和组织特异性,P0.5幼仔与相同数量的rAAV9.cTNT ::荧光素酶(AAV-吕克)(1×10 11粒/小狗)或rAAV9.cTNT :: GFP处理(AAV-GFP)通过皮下注射。注射后两周,GFP信号的小鼠的各组织进行监控。在心脏中检测到GFP的稳健表现,而不是在其他器官( 图4,N> 3)。因此,高效率和心脏特异性基因表达与rAAV9.cTNT向量来实现的。

jove_content“FO: - together.within页保持=”1“>要监视击倒效率和rAAV9.U6载体的组织特异性,P0.5小鼠用相同量rAAV9的(3×10 11颗粒/小狗)处理.U6 ::争夺(AAV-争夺)或rAAV9.U6 :: TRBP的shRNA(AAV-shTrbp)通过皮下注射。两周注射后,在通过qPCR( 图5监测各种组织TRBP的表达中,n = 3从rAAV9.U6肝组织中也检测到TRBP调节)。TRBP的心脏中的表达水平由rAAV9.U6 :: shTrbp(68%的下调,P = 0.0004452)的大幅下降。向下:: shTrbp处理小鼠,但变化要低得多。

图1
1: 策略构建rAAV9.cTNT :: GFP质粒。 )的cTnT :: GFP盒的方案。 (B TNNT2启动子(rAAV9.cTNT)。将GFP开放阅读框克隆入rAAV9.cTNT载体通过限制位点介导的结扎,以产生rAAV9.cTNT :: GFP质粒。 (B)中的rAAV9.cTNT :: GFP的质粒可通过吉布森组件来构造。 请点击此处查看该图的放大版本。

图2
2: 策略构建rAAV9.U6 :: shRNA质粒。 )U6的方案:: shRNA的盒式所示。的shRNA表达由U6启动子(蓝色)驱动。 (B)的rAAV9-U6-shRNA的盒可以通过退火来产生和连接DNA寡聚含有ING的shRNA序列引入限制性内切酶消化的rAAV9矢量窝藏U6启动子。 (C)rAAV9.U6 :: shRNA的磁带可以通过远程PCR和分子内吉布森基于程序集的“无缝”建设产生。的5'臂,循环,和3'的shRNA臂分别示于绿色,橙色,和红色。 请点击此处查看该图的放大版本。

图3
图3:rAAV9滴度的计算。 (A)通过使用定量PCR数据线侵略生成rAAV9滴定的标准曲线。操纵变量y表示每个标准样品的DNA分子浓度的Log 10值,相应的变量x代表(C T)值。 (B)的rAAV9样品滴度基于标准曲线的线性方程来计算。 请点击此处查看该图的放大版本。

图4
图4: 在小鼠组织 rAAV9.cTNT:绿色荧光蛋白的表达模式 。 P0.5幼仔用皮下注射rAAV9.cTNT ::萤光素酶(AAV-吕克,阴性对照)或rAAV9.cTNT :: GFP(AAV-GFP)的相同量的(1×10 11个粒子/小狗)处理。注射后两周,收获组织样本。在荧光解剖范围进行了监测GFP的表达。无论明场和荧光图像呈现。的实验已经重复超过3倍(n> 3)。比例尺= 2.0毫米。 SKM,骨骼肌。 请点击此处查看该图的放大版本。

图5
图5:用AAV-shRNA的拦截基因表达。 P0.5小鼠通过皮下注射rAAV9.U6 ::争夺(AAV-争夺)或rAAV9.U6 :: TRBP的shRNA(AAV-shTrbp)的相同量(3×10 11颗粒/小狗)处理。注射后两周,TRBP的各种组织中的mRNA水平通过qPCR监测(N = 3)。数据以均值±SEM表示。截止P值为0.05。 NS,P> 0.05,不显著。 **,P <0.01。 SKM,骨骼肌。 请点击此处查看该图的放大版本。

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Discussion

质粒构建中,以尽量减少不希望的ITR重组是重要的。产生病毒之前,必须始终监视用限制性消化和琼脂糖凝胶电泳所述AAV质粒的ITR完整性。这是不可能的,获得100%完好的质粒,但重组比值应该被最小化,尽可能。小于20%是成功rAAV9包装上可接受的。值得注意的是,在与低级振荡速度(180-200转)低的温度(30℃)培养所述细菌可减少ITR重组的机会。

重要的是要确保HEK293细胞是成功的转染和rAAV9包装健康。 “健康”细胞通常高度增殖和快速增长。然而,快速增殖和HEK293细胞的生长并不一定能保证rAAV9包装的高效率。因此,为了用新鲜细胞开始的实验是非常重要的。它建议使用低传代的HEK293细胞(<10代,将细胞每2-3天传代),用于rAAV9包装。值得注意的是,重组腺相关病毒的其它血清型可能需要使用不同的程序32进行纯化。

研究者在rAAV9质粒的产生提供了灵活性。任一酶切位点介导的结扎或吉布森组件可以使用30。为rAAV9.U6 :: shRNA的结构中,分子内吉布森基于程序集的策略是一种有效的方法( 图12)。多种AAV-shRNA的质粒或混合在一起的AAV-的shRNA能够迅速地构成。过表达使用rAAV9基因,存在用于插入的cDNA序列的大小限制。通常,的ITR之间的大小片段必须小于5 kb的33。内含肽催化蛋白剪接可以用来规避rAAV9载体34的包装大小限制。

其他病毒系统S,包括反转录病毒,慢病毒和腺病毒,也已经开发和实现灵活的基因操作。这些不同类型的病毒载体相比,腺相关病毒具有特定的优势:高效率,高特异性,低基因组整合率,最小 免疫原性,和最小的致病性。因此,基于重组腺相关病毒基因组工程正在成为体内基因操作的理想工具。

以前的研究已经表明,rAAV9系统能够在体内递送基因的高效表达。与肌钙蛋白(鸡TNNT2)启动子,获得特定心脏基因表达( 4)25,26。虽然U6启动子在小鼠组织中,一个最显着的抑制靶mRNA(TRBP)由rAAV9.U6的无处不活跃的shRNA ::在心脏中观察到,但不是在其他器官( 图5)。肝脏是最常见的器官由不同血清型的转重组腺相关病毒35,36。然而,击倒效率(mRNA水平减少36%)在肝脏比在心脏(mRNA水平减少68%)低得多。这与先前的研究显示,相一致,尽管在肝更高的病毒基因组的存在,由rAAV9全身递送的shRNA提供在心脏35拦截更有效的基因。这是可能的肝细胞比心肌更增殖和rAAV9施用在新生儿的年龄,这将导致大量的载体基因组稀释在肝组织后更积极地进行细胞分裂。然而,这也表明,rAAV9的血清型可以更有效地转导心肌细胞相比于其他类型的细胞。这表现在Lovric。 ,在分化的肌细胞中,DNA损伤应答MRN复合蛋白被抑制。 MRN复合物蛋白质结合AAV基因组,并通过转录沉默抑制AAV转导。因此,每missivity到AAV转导可通过心肌细胞36的终端分化诱导,使得rAAV9系统,相对于其他的病毒载体,非常适合在心脏基因操作。为了进一步减少在其他器官( 例如,肝),还可以使用特定的心脏基的miR-30a中肌钙蛋白启动子驱动shmiR压制感兴趣的基因在心脏29中的不希望的敲低效果。此稿件为用户提供了心血管调查于rAAV9技术资本化的具体技术的阅读器。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Polyethylenimine, Linear (MW 25,000) Polysciences, Inc.  #23966-2
Tube, Polypropylene, 36.2 ml, 25 x 87 mm, (qty. 56) Beckman Coulter, Inc # 362183
Nuclease, ultrapure SIGMA #E8263-25KU
Density Gradient Medium(Iodixanol) SIGMA #D1556-250ML
Centrifugal Filter Unit with Ultracel-100 membrane EMD Millipore Corporation #UFC910008
Laboratory pipetting needle with 90° blunt ends,gauge 14, L 6 in., nickel plated hub SIGMA #CAD7942-12EA
Poloxamer 188 solution (Pluronic® F-68 solution) SIGMA P5556-100ML
Proteinase K SIGMA 3115828001
DNase I Roche 10104159001
Centrifuge machine Thermo Scientific 75004260
Centrifuge System Beckman Coulter 363118
Ultracentrifuge Beckman Coulter
DMEM medium Fisher Scientific SH30243FS
Fetal Bovine Serum  Atlanta Biologicals               S11150
rAAV9 vector Penn Vector Core P1967

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