En lukket-brystet modell å indusere tverrgående aorta Constriction i mus

* These authors contributed equally
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Her presenterer vi protokollen tverrgående aorta innsnevring (TAC) via en lateral thoracotomy. Denne teknikken er en minimal invasiv, lukket kiste kirurgisk prosedyre å simulere trykk overbelastning og hjertesvikt i mus utnytte TAC laboratorium standardinnstillinger.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Eichhorn, L., Weisheit, C. K., Gestrich, C., Peukert, K., Duerr, G. D., Ayub, M. A., Erdfelder, F., Stöckigt, F. A Closed-chest Model to Induce Transverse Aortic Constriction in Mice. J. Vis. Exp. (134), e57397, doi:10.3791/57397 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Hjerte-hypertrofi og hjertesvikt er ofte basert på press overbelastning musen modeller av TAC. Standard prosedyre er å utføre en delvis thoracotomy å visualisere tverrgående aortabuen. Kirurgisk traumer forårsaket av thoracotomy i åpne-brystet modeller endringer imidlertid åndedretts fysiologi som ribbeina er dissekert og venstre fristilt etter brystet nedleggelsen. For å forhindre dette, etablert vi en minimal invasiv, lukket kiste tilnærming via lateral thoracotomy. Her nærmer vi aortabuen via 2nd interkostalrom plass uten å gå inn i brystet hulrom, forlater musen med en mindre traumatisk skade å gjenopprette fra. Vi utfører operasjonen ved hjelp av standard laboratorium innstillingene for åpne brystet TAC prosedyrer med lik overlevelse. Bortsett fra opprettholde fysiologiske pusting mønstre på grunn av lukket kiste tilnærming, synes musene å ha nytte av viser rask oppgang, mindre invasiv teknikken vises å lette en rask helbredelsesprosessen og redusere immunrespons etter traumer.

Introduction

Musen modeller brukes ofte til å etterligne menneskelige sykdommer1. Tverrgående aorta innsnevring (TAC) brukes å indusere press overbelastning og venstre ventrikkel hypertrofi2. Åpne-brystet TAC modellen i mus ble godkjent av Rockman et al. 3 og den kirurgiske prosedyren er beskrevet i detalj av DeAlmeida et al. 4. Banding tverrgående aortabuen er mer gunstig i forhold til abdominal aorta innsnevring fordi en større del av sirkulasjon kan kompensere negative virkningene av denne siste prosedyren2.

Banding av tverrgående aorta fører til en økt arteriell press i stigende aorta og truncus men forlater tilstrekkelig perfusjon av organer via distale fartøyene (dvs. den venstre arteria carotis communis, venstre subclavia arterien, og synkende aorta). Dette fører til en økt hjerte afterload og en forhøyet cardiac veggen stress. Veggen stress reduserer senere på grunn av fiber jevning5. Kronisk endringen i cardiac hemodynamics resulterer i maladaptation og dilatasjon av venstre ventrikkel. Denne måten av TAC oppretter en reproduserbar modell av hjerte-hypertrofi til slutt fører til hjertesvikt.

Standard prosedyre for TAC som beskrevet av DeAlmeide et al. 4 tilnærminger aortabuen via en delvis øvre thoracotomy via Disseksjon av ribbeina eller sternum og inn i brysthulen som pleural hulrom. Dette gir et godt inntrykk av aortabuen og dens sidegreiner. Dessverre kan ikke dissekert ribbeina være reattached, som etterlater dem flyter fritt og dermed endre puste dynamikken.

Derfor opprettet vi, en minimal invasiv lukket-brystet tilnærming av aortabuen bruker en lateral kirurgisk tilnærming via 2nd interkostalrom plass. Den største fordelen ved denne modellen er muligheten til å utføre TAC uten selv skjære gjennom ribbeina. Kirurgisk traumer er i snitt i huden og dissection interkostalrom muskler. Denne fremgangsmåten reduserer traumer selv og bidrar til å opprettholde tilstrekkelig brystet stabilitet.

Her beskriver vi en detaljert fremgangsmåte for å utføre TAC kirurgi i mus uten å utføre totalen eller den øvre thoracotomy. Høy frekvens Doppler ble brukt til å sikre suksess for TAC som tidligere beskrevet 6,7.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Denne protokollen ble godkjent av den etiske komiteen for dyr eksperimentering LANUV Recklinghausen (#84-02.04.2016.A374). Vanligvis denne prosedyren utføres på voksen mus > 10 ukens av alderen. Det er imidlertid mulig å utføre denne operasjonen på yngre dyr også. Kirurgiske verktøy må steriliseres før bruk alle trinnene er utført under aseptiske forhold.

1. induksjon av anestesi og intubasjon

  1. Injisere buprenorfin 0,1 µg/g kroppsvekt intraperitoneally for smertelindring. Gjenta intraperitoneal injeksjoner av 0,1 mg/kg buprenorfin hver 8 h for de neste tre dagene etter operasjonen.
  2. For induksjon, plass musen i en bedøvelse induksjon boks som er koblet til vaporizer satt til 3.0 Vol % av isoflurane med en oksygen flyt av 1 L/min.
  3. Sikre dyp narkose ved å fremkalle en taktil stimulans.
    Merk: Økning Vol % av isoflurane til 5%, hvis anestesi induksjon mislykkes ikke eller narkose dypt nok.
  4. Knip halen på å sikre refleks fravær. Ved fullstendig fravær av reflekser, veie musen for optimal ventilator oppsett (se 1.12).
  5. Flytte musen til et temperaturkontrollert operasjonsbordet å opprettholde en kroppstemperatur på 37 ° C hele prosedyren.
  6. Plass nesen av musen i en plastikk kjegle som er koblet til anestesi induksjon for å opprettholde narkose.
  7. Fastsette øvre fortenner av musen med en nylon Sutur. Fixate ekstremiteter med et limbånd.
  8. Bruk Trykk på bakben labben med spissen av tang til å sikre en tilstrekkelig narkose igjen. I fravær av et uttak refleks fortsetter med trinnene nedenfor.
    Merk: Øke volumet % av isoflurane hvis anestesi induksjon mislykkes ikke eller narkose dypt nok og vente på fravær av uttak refleks.
  9. Plasser sterilt ophthalmica smøremiddel på hornhinnen å hindre uttørking under narkose.
  10. Smør endetarms sonden å unngå endetarms traumer. Sette inn en endetarms temperatur probe for å sikre en kjernetemperatur 37 ° c.
  11. Epilere meg halsen og øvre del av brystet med depilatory fløte i henhold til produsentens instruksjoner. Tørk av kremen etter 1 min. Gjenta dette trinnet til vellykket om nødvendig.
    Merk: Bruk bomull-tipped vattpinner ved blødning.
  12. Rengjør depilated området med 70% etanol. Deretter bruke povidon-jod for innenbys hud desinfeksjon 3 ganger og for minst 3 min.
  13. Justere ventilator for å fysiologiske parametere. Angi respirasjonsfrekvens 150/min og tidevolum til 8-10 µL/g kroppsvekt (BW).
  14. Sette på et par nye sterilt hansker. Plasser musen under kirurgisk mikroskop og plassere et sterilt fenestrated drapere over musen.
  15. Incise huden på midtlinjen ca 3 mm under mandibular ned til 2nd vrborden. Identifisere midtlinjen og bindevev av submandibular kjertel. Deretter bruke vinklet intracapsular tang å forsiktig dele kjertel i midtlinjen rett ut med to tang og utforske tracheal muskelen.
  16. Klargjør luftrøret forsiktig ved å trekke para-tracheal musklene fra hverandre rett ut med intracapsular tang.
  17. Trekk på tungen med tang til rette halsen for enklere intubasjon forhold og forsiktig inn en intubasjon kanyle (OD 1.2 mm) i luftrøret. Bekreft intubasjon ved direkte visualisering av røret inne luftrøret og ser etter riktig bryst bevegelse.
  18. Justere isoflurane konsentrasjonen etter intubasjon til 2% isoflurane med en flyt av 1.0 L/min og 100% O2.
    Merk: Hvis ikke slutter å puste bevegelser eller mus begynner å flytte, først øke respirasjonsfrekvens opptil 180/min. Om nødvendig øke isoflurane konsentrasjonen opptil 3,5% sekundært til musen slutter å puste på egen hånd. Vurdere lekkasjer eller utilstrekkelig fylling av vaporizer som de vanligste problemene.
  19. Du kan også utføre intubasjon som foreslått i følgende sub.
    1. Plasser musepekeren på et bord i 60° vinkel.
    2. Fixate ekstremiteter av musen med teip og hvile hodet.
    3. Plass en Kaldtlyskilden direkte på huden over strupehodet.
    4. Trekk tungen forsiktig med tang å visualisere stemmebåndene.
    5. Sett inn et plastrør av en IV-kanyle (24 G) gjennom stemmebåndene og koble plastrør til ventilen innstillingene.
    6. Koble ventilen til kanyle å bekrefte intubasjon ved synchrone brystet bevegelser.
      Merk: Hvis ikke slutter å puste bevegelser eller mus begynner å flytte, først øke pustefrekvens til 180 per min. Om nødvendig øke sekundært isoflurane konsentrasjonen opptil 3,5% til musen slutter å puste på egen hånd. Vurdere lekkasjer eller utilstrekkelig fylling av vaporizer som sannsynligvis problemene.

2. preoperativ Doppler måling

  1. Klargjør både carotis arteriene som lå supplement til luftrøret ved forsiktig trekke connective vev fra hverandre med tang.
  2. Plassere 20 MHz Doppler sonde med noen sterile ultralyd gel til høyre og venstre arteria subclavia på en vinkel mindre enn 45°.
  3. Sakte rotere sonden å flytte den laterale og mediale å finne et Doppler signal og vipp sonden å optimalisere signalet.
  4. Bruke en Doppler programvare å vise og lagre hastighetene i høyre og venstre felles carotis arteriene på en datamaskin.

3. thoracotomy

  1. Bruke sterilt hansker for hver individuelle musen hindre kirurgiske området infeksjoner.
  2. Utvid den hud snittet til den 2nd interkostalrom plassen med en saks.
  3. Identifisere 2nd interkostalrom visuelt ved å telle ribbeina og deretter rett ut trenge denne plass med intracapsular tang.
    Merk: 1st vrborden ligger under krageben og er derfor ikke synlig fordi den 2nd interkostalrom plassen ligger mellom første synlige vrbord (dvs. 2nd vrbord) og 3rd vrborden.
  4. Åpne den 2nd interkostalrom plassen ved hjelp av pinsett tips og sett retractors.
  5. Justere retractors med en strikk festet til drifts tabellen har et klart syn på thymus.
  6. Ved blødning bruk en bomull-spissen og trykk på overfladiske fartøyene i 2 minutter.

4. striper tverrgående aortabuen

  1. Justere forstørrelsen til 200% å identifisere midtlinjen og bindevev. Deretter bruke vinklet tang forsiktig dele thymus. Fjerne fettvev før aortabuen kan ses tydelig.
  2. Forberede en tunnel med vinklet knytte tang under tverrgående aorta mellom truncus og arteria carotis communis (se figur 1). Hold slutten av en 6,0 Sutur med hjelp av fine tang og passere tråden under aortabuen.
  3. Ta tråden med andre Tang fra den andre siden av buen.
  4. Kuttet av en 3 mm remsen lengde på en 27 G bruke nålen som en spacer til TAC-ligatur for mus veier mellom 19-25 g kroppsvekt og en 26 G nål som et mellomrom etter mus > 25 g BW.
  5. Forsiktig plassere avstandsstykket parallelt tverrgående aorta.
  6. Forberede en løs dobbel knute på avstandsstykket og sikre optimal plassering av avstandsstykket parallelt aorta. Knytt første kast og raskt utføre andre imot kaste. Fjern mellomlegget umiddelbart.
  7. For å utføre humbug mus for kontroll, kan du følge samme protokoll utelater ligation av aorta.
  8. Lukk den 2nd interkostalrom plassen med en 6.0 polypropylen Sutur. Betal spesiell oppmerksomhet til subclavian skipene når ligating.
  9. Sutur i huden med en 6.0 polypropylen Sutur i et Sutur kontinuerlig mønster.

5. bekreftelse av vellykket Ligation av tverrgående Aorta

  1. Plass en 20 MHz Doppler sonde på begge sider av halsen på en vinkel på 45 grader i del 2.
  2. Dokumentere hastighetene på hver side.
    Merk: En vellykket TAC kan valideres av Doppler flyten hastighet, som vist i figur 2. Flyten hastighet forholdet 4-10 mellom høyre og venstre arteria carotis vanligvis garanterer tilstrekkelig TAC (se figur 2).

6. hjertet høste

  1. Indusere narkose etter trinn 1.2. og 1.3.
  2. Plasser musen i en euthanasia kammer og justere karbondioksid infusjonshastigheten for å fortrenge 10-30% av volum per minutt.
  3. Fixate musen på en kirurgi tabell. Åpne magen med saks og høsting blod fra den underlegne vena cava med en kanyle for videre analyse.
  4. Skjær membranen og sternal bein med sterk saks og fjern sentrum.
  5. Fjern alle hovedveier og bindevev før veier hjertet.
  6. Separate høyre ventrikkel og septum fra venstre ventrikkel og veie begge prøver.
  7. Frys både vevsprøver i flytende nitrogen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

En vellykket TAC garanterer induksjon av press overbelastning og venstre ventrikkel hypertrofi. En ad hoc validering av press overbelastning oppnås ved hjelp av Doppler måling av hastighet som vist i figur 2. Preoperativ blod flyten hastighet er lik i begge carotis arteriene, TAC forårsaker en utvidet blod hastighet i den høyre arteria carotis på grunn av forhøyet trykk i venstre ventrikkel og aorta mens forårsaker post stenotic dempes blod flyten hastighet i det venstre arteria carotis.

Effekten av TAC og den resulterende hypertrofi ble validert ved beregning av hjertet vekt/kropp vekt ratio (HW/BW, mg/g) C57BL/6J mannlige mus på dag 3, 6 og 21 dager etter operasjonen. HW/BW forholdstallene betydelig økt i TAC mus sammenlignet med ikke-banded mus 6 dager etter operasjonen (4.78 ± 0,18 vs7.66±1.43 mg/g, p < 0,0001). Dette forholdet var nesten konstant etter 21 dager (4,8 ± 0,11 vs7.81 ± 0,65 mg/g, p < 0,0001) (se Figur 3). Er hovedsakelig avhengig intra operative blødning: det kan reduseres til under 5% gjennom vanlig praksis. Overlevelse etter 21 dager avhenger i hovedsak av genotype. For mus ikke lider av funksjonelle hjertesykdommer overlevelse frekvens tilsvarer > 85%. Overlevelse i presentert C57BL/6J mus etter 21 dager var 88%.

Systolisk blodtrykk og hjertefunksjon ble målt i intubasjon anestesi og utført med 1,4 fransk Trykk konduktans kateter8 som beskrevet av andre. 9 hjertefrekvens (HR) har en betydelig effekt på venstre ventrikkel (LV) contractility. Det var ingen forskjeller i hjertet priser (HR) aorta bundede og ikke-aorta bundede mus (p = 0.1456) etter 21 dager (se figur 4A). En konstant striper av aorta (p = < 0,0001) ble påvist av en økt systolisk blodtrykk målt etter 21 dager (se figur 4B).

Som har vært diskutert i litteraturen, kalles vanligvis C57BL/6J mus å utvikle eksentriske hypertrofi med systolisk dysfunksjon10 etter TAC. En økning av venstre ventrikkel diameter ble funnet, som også vises betydelig i trykk volum målinger. Slutten-systolisk volumet økte fra 16,25 µL (± 1.935 µL) til 23.31 µL (± 1.617µL). Denne endringen var signifikant (p = 0.0131) (se figur 4C). Ende-diastolisk volumet økte fra 25.81 µl (± 1.852 µL) til 31.24 µl ± (1.093 µL). Denne endringen var signifikant (p = 0.0268) (se Figur 4 d).

Enveis ANOVA etterfulgt av Bonferroni's posthoc testing ble utført for å sammenligne TAC og humbug grupper. Ved trykk volum målinger, ble gruppene sammenlignet med en kort t-test med welchs korreksjon. Alle data har vært presentert som mener ± SEM (feilfelt).

Figure 1
Figur 1: kirurgisk tilnærming via den 2nd interkostalrom plassen på 200% forstørrelse. Dette bildet ble tatt med kirurgisk mikroskopet og viser aortabuen med en tråd mellom truncus og arteria carotis communis. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 2
Figur 2: representant pulserende-bølge Doppler imaging fra begge carotis arteriene (sham g. TAC mus). A) puls-bølge Doppler bildebehandling av venstre arteria subclavia før TAC. B) puls-bølge Doppler bildebehandling av høyre arteria subclavia før TAC. C) Image ofPulsed-bølge Doppler av venstre arteria subclavia etter TAC. Blodet flyt hastigheten er redusert sammenlignet med figur 2A. D) puls-bølge Doppler av høyre arteria subclavia etter TAC. Blodet flyt hastigheten økes i forhold figur 2B. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 3
Figur 3: hjerte vekten / body vekt forhold. Hjerte-hypertrofi er indusert på grunn av TAC. Dette er demonstrert ved en betydelig økning i hjertet kamerahus/vekt-forhold. Mus uten aorta striper (dvs. humbug mus, hvit barer) ble sammenlignet TAC drives mus (striper) etter 3, 6 og 21 dager. 6 dager etter TAC hjertet vekt /body vektforholdet økte betydelig i TAC mus. Denne effekten er bare litt uttalt etter 21 dager. Betydning ble satt til p = < 0,05. NS = ikke betydelige; p < 0,0001. Dataene presenteres som betyr ± SEM (feilfelt). n = 6-9 per gruppe. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 4
Figur 4: Hemodynamic parametere målt via press-volum kateter i mus (C57BL/6J) med og uten TAC 21 dager etter operasjonen: A) hjertefrekvens (HR) i slag per minutt (bpm). Det var ingen forskjell i HR i begge gruppene som indikerer en sammenlignbare narkose under invasiv målinger. B) systolisk blodtrykk i den høyre arteria carotis communis (sBP). Den betydelige økningen av sBP etter 21 dager angir en konstant innsnevring av aortabuen. C) slutten-systolisk volumer (ESV) er betydelig økt (p = 0.0131) etter 21 dager og Vis en økt afterload på grunn av TAC indusert dilatasjon av ventrikkel. D) ende-diastolisk volum (ESV) er økt (p = 0.0268 av Betydning ble satt til p = < 0,05. NS = ikke betydelige; * p < 0,05; p < 0,0001. Dataene presenteres som betyr ± SEM (feilfelt); n = 8-13 per gruppe. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Høyt blodtrykk grunnet TAC raskt innsettende er forskjellig fra klinisk relevante hypertrofi skyldes aortic stenosis eller hypertensjon. Likevel bruk av små dyr modeller å indusere hjertesvikt har mange fordeler og er derfor valgt av mange etterforskere11. Dette lukket kiste-modellen forbedrer de eksisterende modellene av kirurgiske teknikken å indusere tverrgående aorta innsnevring i mus4.

Det viktigste trinnet er passasjen under aortabuen. En strammer Sutur rundt aorta kan forårsake en alvorlig reduksjon av blodstrømmen til viktige organer som nyrer. Ifølge loven av Hagen-Poiseuille er flyt hovedsakelig avhengig av radiusen. Derfor ble noen vekt-tilpasset avstandsstykker brukt i våre protokollen. Denne fremgangsmåten gjør denne modellen mer universelt aktuelt, spesielt med hensyn til meget ung eller gamle mus, avhengig av det enkelte eksperimentelle oppsettet.

Kirurgisk traumer selv induserer en immunrespons og skal reduseres til et absolutt minimum å hindre forvrenger effekter. Rask gjenoppretting og høy overlevelse er obligatorisk, spesielt i komplekse dyr modeller. Historisk, i motsetning til thoracotomy i menneskelige pasienter, er ribbe buret i mus ikke gjenopprettet etter TAC kirurgi. Derfor er hvile fysiologiske puste bevegelser begrenset på grunn av gratis flytende ribbeina, som ikke er koblet til sternum.

Minimal invasiv teknikker for TAC er også brukes av andre12,13. I begge modeller nås aortabuen gjennom en midtlinjen snitt og en øvre delvis sternotomy. Selv om begge modellene er mindre invasiv enn åpne brystet modeller, må kirurger fjerne ribber eller deler av sternum nå aorta. Vi tror at opprettholde fysiologi av hele rib bur aids raskere utvinning. Derfor denne protokollen forbedrer eksisterende protokoller og hjelper redusere kirurgisk traumer selv.

På grunn av mer apikale kirurgisk tilgang kreves en post-kirurgiske hyperinflasjon i lungene for forebygging av atelectasis eller pneumothoraces, som er noen ganger beskrevet4,14, ikke. Dette hindrer at en barotrauma i lungene som kan indusert ved clamping ekspiratorisk røret å åpne opp atelectasis i eksisterende modeller. Denne protokollen inneholder også en individualisert fysiologiske ventilasjon strategi. Det er fristende å spekulere at en individuelt tilpasset ventilasjon hjelpemidler for å redusere ventilator-assosiert komplikasjoner som barotrauma. En vekt tilpasset ventilasjon strategi ble brukt til å unngå virkninger på systemisk cytokin produksjon av ventilasjonen selv15.

Avslutningsvis representerer disse teknikkene en alternativ og forbedret modell for inducing hjerte-hypertrofi i mus.

Selv om traumer er minimert ved å unngå thoracotomy, vises ikke overlegen effekten om reduksjon av betennelse i denne publikasjonen. Dessverre tillater begrensninger satt av Dyrevern lover ikke oss å utføre åpne brystet TAC parallelt med minimal invasiv TAC for sammenligning fordi denne minimal invasiv modellen er etablert for år allerede. Derfor er disse uttalelsene basert på tidligere erfaringer fra vår gruppe.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne ikke avsløre.

Acknowledgments

Vi takker Stilla Frede og Susanne Schulz for deres kundestøtte. Denne studien mottatt finansiering.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Pressure-volume catheter Millar Instruments, USA SPR-839
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Minivent - TYPE 845
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Y-connection with intubation cannula OD 1.2mm 73-2844
Vaporizer Dräger Medical AG&CO.KG, Germany 19.3 Isofluran-Vaporizer (a newer version is available under catalog number  D-877-2010)
Microscope  Leica Microsystems, Germany MZ 7.5
Light source  Schott AG, Germany KL 1500 LCD
6-0 Prolene Ethicon, USA Polypropylene suture BV-1 9.3 mm 3/8c suture for surgery
Seraflex Serag Wiessner, Germany USP 5/0 schwarz;  IC108000  suture for constriction
Homoeothermic Controlled Operating Tables Harvard Apparatus GmbH, Germany Typ 872/3 HT with tripod stand and homoeothermic controller Type 874; 73-4233
Flexible Rectal Probe Harvard Apparatus GmbH, Germany 1.6 mm OD; 55-7021
Doppler Signal Visualisation Instrument Indus Instruments, USA Doppler Signal Processing Workstation (DSWP) with 20MHz Pulsed Doppler Module
Arruga Intracapsular Forceps Altomed, UK A5400
Doppler Probe Indus Instruments, USA 20MHz Tubing-mounted Probe
Jaffe Lid Retractor Altomed, UK A3513

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Tarnavski, O. Mouse surgical models in cardiovascular research. Methods Mol Biol Clifton NJ. 573, 115-137 (2009).
  2. Tarnavski, O., McMullen, J. R., Schinke, M., Nie, Q., Kong, S., Izumo, S. Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies. Physiol Genomics. 16, (3), 349-360 (2004).
  3. Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc Natl Acad Sci U S A. 88, (18), 8277-8281 (1991).
  4. deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. T. Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (38), (2010).
  5. Grossman, W., Jones, D., McLaurin, L. P. Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. J Clin Invest. 56, (1), 56-64 (1975).
  6. Hartley, C. J., Reddy, A. K., Madala, S., Michael, L. H., Entman, M. L., Taffet, G. E. Doppler estimation of reduced coronary flow reserve in mice with pressure overload cardiac hypertrophy. Ultrasound Med Biol. 34, (6), 892-901 (2008).
  7. Reddy, A. K., et al. Pulsed Doppler signal processing for use in mice: applications. IEEE Trans Biomed Eng. 52, (10), 1771-1783 (2005).
  8. Shioura, K. M., Geenen, D. L., Goldspink, P. H. Assessment of cardiac function with the pressure-volume conductance system following myocardial infarction in mice. Am J Physiol - Heart Circ Physiol. 293, (5), H2870-H2877 (2007).
  9. Zhang, B., Davis, J. P., Ziolo, M. T. Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect. JoVE J Vis Exp. (100), e52618 (2015).
  10. Barrick, C. J., Rojas, M., Schoonhoven, R., Smyth, S. S., Threadgill, D. W. Cardiac response to pressure overload in 129S1/SvImJ and C57BL/6J mice: temporal- and background-dependent development of concentric left ventricular hypertrophy. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292, (5), H2119-H2130 (2007).
  11. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, (2), 138-144 (2009).
  12. Zaw, A. M., Williams, C. M., Law, H. K. W., Chow, B. K. C. Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (121), (2017).
  13. Tavakoli, R., Nemska, S., Jamshidi, P., Gassmann, M., Frossard, N. Technique of Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice for Induction of Left Ventricular Hypertrophy. J Vis Exp. (127), (2017).
  14. Kim, S. -C., Boehm, O., Meyer, R., Hoeft, A., Knüfermann, P., Baumgarten, G. A Murine Closed-chest Model of Myocardial Ischemia and Reperfusion. J Vis Exp JoVE. (65), (2012).
  15. Veldhuizen, R. A., Slutsky, A. S., Joseph, M., McCaig, L. Effects of mechanical ventilation of isolated mouse lungs on surfactant and inflammatory cytokines. Eur Respir J. 17, (3), 488-494 (2001).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics