En stängd-bröst modell att inducera tvärgående aorta förträngning i möss

* These authors contributed equally
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Här presenterar vi ett protokoll av tvärgående aorta sammandragning (TAC) via en lateral torakotomi. Denna teknik är en minimalinvasiv, stängda bröstet kirurgiskt ingrepp som syftar till att simulera trycket överbelastning och hjärtsvikt hos möss använder standardinställningar för TAC-laboratorium.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Eichhorn, L., Weisheit, C. K., Gestrich, C., Peukert, K., Duerr, G. D., Ayub, M. A., Erdfelder, F., Stöckigt, F. A Closed-chest Model to Induce Transverse Aortic Constriction in Mice. J. Vis. Exp. (134), e57397, doi:10.3791/57397 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Forskning om hjärthypertrofi och hjärtsvikt är ofta baserad på trycket överbelastning musmodeller induceras av TAC. Det normala förfarandet är att utföra en partiell torakotomi för att visualisera den tvärgående aortabågen. Men förändras den kirurgiskt trauma som orsakas av torakotomi i öppet-Kista modeller respirationsfysiologi som revbenen är dissekeras och lämnade okopplade efter bröstet stängning. För att förhindra detta, etablerade vi en minimalinvasiv, stängda bröstet strategi via laterala torakotomi. Häri närmar vi oss den aortabågen via den 2nd interkostalrummet utan att ange bröstet hålrum, lämnar musen med en mindre traumatisk skada att återhämta sig från. Vi utför denna operation som använder standard laboratoriemiljö för öppna bröstet TAC förfaranden med lika överlevnaden. Förutom att upprätthålla fysiologiska andningsmönster på grund av den stängda bröstet strategin, tycks möss gynna av visar snabbare återhämtning, som mindre invasiva tekniken visas att underlätta en snabb läkningsprocessen och att minska immunsvaret efter trauma.

Introduction

Musmodeller används ofta för att efterlikna mänskliga sjukdomar1. Tvärgående aorta sammandragning (TAC) används för att framkalla tryck överbelastning och vänster ventrikulär hypertrofi2. Öppna-bröstet TAC modellen hos möss validerades av Rockman o.a. 3 och det kirurgiska ingreppet är beskrivna i detalj av DeAlmeida et al. 4. Banding av tvärgående aorta är mer gynnsam i jämförelse med buken aorta sammandragning eftersom en större del av cirkulationen kan kompensera negativa effekter av detta senare förfarande2.

Ränder av tvärgående aorta leder till ett ökat artärtryck i den ascending aorta och brachiocephalic artär men lämnar tillräcklig perfusion av organ via de distala fartyg (dvs. den vänstra gemensamma halspulsådern, vänster subclavia artär, och fallande aorta). Detta leder till en ökad hjärtats afterload och en förhöjd hjärt vägg stress. Den vägg stressen minskar därefter på grund av fiber förtjockning5. Hjärt hemodynamiken kronisk förändringen resulterar i maladaptation och dilatation av vänster kammare. Detta sätt TAC skapar en reproducerbar modell av hjärthypertrofi som så småningom leder till hjärtsvikt.

Standardförfarandet för TAC som beskrivs av DeAlmeide et al. 4 närmar sig aortabågen via en partiell övre torakotomi via dissekering av revbenen eller bröstbenet och ange mediastinum samt pleural hålighet. Detta ger en bra bild av aortabågen och dess sidogrenar. Tyvärr, inte kan dissekeras ribborna anbringas, som lämnar dem flyter fritt och därmed förändra andningen dynamiken.

Därför etablerade vi, en minimalinvasiv stängd-bröstet inställning till aortabågen med en lateral kirurgisk metod via den 2nd interkostalrummet. Den största fördelen med denna modell är förmågan att utföra TAC utan även skära igenom revbenen. Den kirurgiskt trauman är begränsad till snittet i huden och dissektion av muskulaturen. Detta förfarande minimerar trauman själva och hjälper till att upprätthålla adekvat bröstet stabilitet.

Här beskriver vi detaljerade stegvisa anvisningar för att utföra TAC kirurgi hos möss utan utför totalen eller den övre torakotomi. Hög frekvens Doppler användes för att garantera framgången för TAC som tidigare beskrivits 6,7.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Detta protokoll godkändes av den etiska kommittén för djur experiment LANUV Recklinghausen (#84-02.04.2016.A374). Generellt denna procedur utförs på vuxna möss > 10 veckors ålder. Det är dock möjligt att utföra denna operation på yngre djur också. Kirurgiska verktyg måste steriliseras före användning och alla åtgärder ska utföras under aseptiska förhållanden.

1. induktion av anestesi och Intubation

  1. Injicera buprenorfin 0,1 µg/g kroppsvikt intraperitonealt för smärtlindring. Upprepa de intraperitoneala injektionerna på 0,1 mg/kg buprenorfin varje 8 h för de närmaste tre dagarna efter operationen.
  2. För induktion, Placera musen i en låda av anestesi-induktion som är ansluten till den spridare inställd på 3,0 vol.% isofluran med en syre flöde på 1 L/min.
  3. Säkerställa djup narkos genom att inducera en taktil stimulans.
    Obs: Ökning Vol.% av isofluran upp till 5%, om anestesi induktion misslyckas eller narkos är inte tillräckligt djup.
  4. Nypa svansen på musen för att säkerställa reflex frånvaro. Vid komplett frånvaro av reflexer, väga musen för optimal ventilator setup (se 1.12).
  5. Flytta musen till en temperatur-kontrollerad operationsbordet att upprätthålla en kroppstemperatur på 37 ° C under hela förfarandet.
  6. Placera näsan av musen i en plast kon som är ansluten till rutan anestesi induktion att upprätthålla narkos.
  7. Fixa de övre framtänderna av musen med en nylon sutur. Fixera extremiteter med en tejp.
  8. Applicera tryck på hind tass med spetsen på tången att säkerställa en adekvat narkos igen. I avsaknad av ett uttag reflex Fortsätt med följande steg.
    Obs: Öka volym % av isofluran om anestesi induktion misslyckas eller narkos är inte tillräckligt djup och vänta i avsaknad av tillbakadragande reflexen.
  9. Placera sterila oftalmologiska smörjmedel på hornhinna att förhindra uttorkning under narkos.
  10. Smörj rektal sonden för att undvika rektala trauma. Infoga en rektal temperatursond för att säkerställa att en temperatur av 37 ° C.
  11. Depilate halsen och övre delen av bröstkorgen med hårborttagningsprodukter grädde enligt tillverkarens anvisningar. Torka av krämen efter 1 min. Om nödvändigt, upprepa detta steg tills det lyckas.
    Obs: Använd bomull spets kompresser vid blödning.
  12. Ren området avrakade med 70% etanol. Applicera sedan povidonjod för lokala hud desinfektion 3 gånger och minst 3 min.
  13. Justera ventilatorns inställningar till fysiologiska parametrar. Ange andningsfrekvensen till 150/min och tidalvolymer till 8-10 µL/g kroppsvikt (BW).
  14. Sätta på ett nytt par sterila handskar. Placera musen i kirurgiska Mikroskop och placera en steril fenestrated drapera över musen.
  15. Incisionsfilm huden vid mittlinjen ca 3 mm under den mandibular ner till 2nd revbenet. Identifiera mittlinjen och bindväv av submandibular körteln. Sedan använda vinklade intrakapsulära pincett att försiktigt dela körteln vid mittlinjen rakt på sak med två pincett och utforska luftrör muskeln.
  16. Förbereda luftstrupen försiktigt genom att dra para-trakeal musklerna isär rakt på sak med intrakapsulära pincett.
  17. Dra tungan med pincett att räta upp halsen för enklare intubation villkorar och försiktigt in en intubationskanyl (OD 1,2 mm) inuti luftstrupen. Bekräfta intubation av direkt visualisering av röret inuti luftstrupen och genom att kontrollera korrekt bröstet rörelse.
  18. Justera isofluran koncentration efter intubation till 2% isofluran med ett flöde av 1,0 L/min och 100% O2.
    Obs: Om andning rörelser inte stoppar eller möss börjar röra, först öka andningsfrekvensen upp till 180/min. Om nödvändigt, öka isofluran koncentrationen upp till 3,5% sekundärt tills musen slutar andas på egen hand. Utvärdera läckage eller otillräcklig påfyllning av spridare som de vanligaste problemen.
  19. Alternativt utföra intubation som föreslås i följande sub steg.
    1. Placera musen på ett bord i 60° vinkel.
    2. Fixera extremiteter av musen med tejp och luta huvudet.
    3. Placera en kallt ljus källa direkt på huden ovanför struphuvudet.
    4. Dra tungan försiktigt med pincett att visualisera stämbanden.
    5. Infoga ett plaströr av en IV-kanyl (24 G) genom stämbanden och Anslut plast röret till ventilatorns inställningar.
    6. Anslut fläkten till kanylen att bekräfta intubation av synchrone bröstet rörelser.
      Obs: Om andning rörelser inte stoppar eller möss börjar röra, först öka andningsfrekvensen upp till 180 per min. Om nödvändigt, öka sekundärt isofluran koncentrationen upp till 3,5% tills musen slutar andas på egen hand. Utvärdera läckage eller otillräcklig påfyllning av spridare som de mest troligt problem.

2. preoperativa Doppler mätning

  1. Förbereda både halspulsåder som lekmanna komplement till luftstrupen genom att försiktigt dra det connective silkespappret apart med pincett.
  2. Placera spetsen på 20 MHz Doppler sonden med några sterila ultraljud gel till höger och vänster halspulsådern på en vinkel mindre än 45°.
  3. Rotera långsamt sonden till flytta den laterala och mediala att hitta en Doppler signal och luta sonden för att optimera signalen.
  4. Använda en Doppler programvara för att visa och lagra flödeshastigheter i höger och vänster gemensamma halspulsåder på en dator.

3. torakotomi

  1. Använd en uppsättning sterila handskar för varje individuell mus för att infektioner i operationsområdet.
  2. Expandera det huden snittet ner till de 2nd interkostalrummet med en sax.
  3. Identifiera de 2nd interkostalrummet visuellt genom att räkna revbenen och sedan rakt på sak tränga igenom detta utrymme med intrakapsulära pincett.
    Obs: 1st revbenet ligger under nyckelbenet och är därför inte synlig eftersom de 2nd interkostalrummet konstateras mellan första synliga revben (dvs 2nd rib) och 3rd revbenet.
  4. Öppna den 2nd interkostalrummet med hjälp av pincetten tips och sätt upprullningsdon.
  5. Justera upprullningsdon med ett gummiband som bifogas operationsbordet att ha en klar bild av tymus.
  6. Vid blödning Använd en bomull-spets och tryck på ytliga kärlen i 2 min.

4. bandning av tvärgående Aorta

  1. Justera förstoringen till 200% att identifiera mittlinjen och bindväv. Använd sedan vinklad pincett försiktigt dela tymus. Ta bort fettvävnad tills aortabågen kan ses tydligt.
  2. Förbereda en tunnel med vinklad kopplingsförbehåll pincett under tvärgående aorta mellan brachiocephalic artär och vänster gemensamma halspulsådern (se figur 1). Håll i slutet av en 6,0 sutur med hjälp av fin pincett och passera tråden under aortabågen.
  3. Ta tråden med andra tången från andra sidan av bågen.
  4. Klippte av en 3 mm lång bit-längd på en 27 G att använda nålen som en distansen för TAC-ligering för möss som väger mellan 19-25 g kroppsvikt och en 26 G nål som ett distanselement för möss > 25 g BW.
  5. Noggrant placera mellanlägget parallellt med tvärgående aorta.
  6. Förbereda en lös dubbel Knut på mellanlägget och säkerställa optimal placering av mellanlägget parallellt till aorta. Sedan knyta det första kastet och snabbt utföra en andra tvärtom kasta. Ta bort mellanlägget omgående.
  7. Utför sham möss för kontroll, följa samma protokoll utelämna ligering av aorta.
  8. Stäng den 2nd interkostalrummet med en 6,0 polypropylen sutur. Ägna särskild uppmärksamhet åt de subclavia fartyg när ligating.
  9. Suturera huden med hjälp av en 6,0 polypropylen sutur i en kontinuerlig sutur mönster.

5. bekräftelse av framgångsrika ligering av tvärgående Aorta

  1. Placera en 20 MHz Doppler sonden på båda sidor av halsen i en 45° vinkel i avsnitt 2.
  2. Dokumentera flödeshastigheter på varje sida.
    Obs: En framgångsrik TAC kan verifieras av Doppler strömningshastighet som visas i figur 2. Ett flöde hastighet förhållandet mellan 4-10 mellan höger och vänster halspulsådern brukar garanterar adekvat TAC (se figur 2).

6. hjärtat skörd

  1. Framkalla narkos enligt steg 1.2. och 1.3.
  2. Placera musen i en dödshjälp kammare och justera flödet koldioxid för att tränga undan 10-30% av det volym per minut.
  3. Fixera med musen på en operation tabell. Öppna buken med sax och skörden blod från den sämre vena cava med en kanyl för vidare analys.
  4. Skär membranet och sternala benet med stark sax och ta bort hjärtat.
  5. Ta bort alla arteriell och bindväv före vägning hjärtat.
  6. Separat höger kammare och septum från vänster kammare och väger båda exemplaren.
  7. Frysa både vävnadsprover i flytande kväve.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

En framgångsrik TAC garanterar induktion av trycket överbelastning och vänsterkammarhypertrofi. En ad hoc-validering av trycket överbelastning kan uppnås med hjälp av Doppler velocity flödesmätning som visas i figur 2. Preoperativ blod flödeshastigheten är lika i båda halspulsåder, TAC orsakar en förstärkt blod hastighet i just halspulsådern på grund av förhöjt tryck i vänster kammare och stora kroppspulsådern samtidigt som de orsakar efter stenotiska försvagat blod strömningshastighet i den vänster carotis.

Effekten av TAC och dess resulterande hypertrofi validerades genom beräkning av hjärtat vikt/kroppen vikt nyckeltal (HW/BW; mg/g) av C57BL/6J hanmöss på dag 3, 6 och 21 dagar efter operationen. HW/BW kvoterna ökat betydligt i TAC möss jämfört med icke-banded möss 6 dagar efter operationen (4.78 ± 0,18 vs7.66±1,43 mg/g, p < 0,0001). Detta förhållande var nästan konstant efter 21 dagar (4,8 ± 0,11 vs7.81 ± 0.65 mg/g, p < 0,0001) (se figur 3). Överlevnaden är främst beroende av intraoperativ blödning: det kan reduceras till under 5% genom regelbunden träning. Överlevnaden efter 21 dagar beror på genotypen. För möss som inte lider av funktionella hjärtsjukdomar survival rate beloppen till > 85%. Överlevnaden i de presenterade C57BL/6J möss efter 21 dagar uppgick till 88%.

Systoliskt blodtryck och hjärtfunktion var mätt i intubation anestesi och utförs med en 1.4 franska trycket konduktans katetern8 som beskrivs av andra. 9 puls (HR) har en betydande inverkan på vänster kammare (LV) kontraktilitet. Det fanns inga skillnader i hjärtat priserna (HR) av aorta Bandad och icke-aorta Bandad möss (p = 0.1456) efter 21 dagar (se figur 4A). En konstant randning av aorta (p = < 0,0001) bevisades av ett ökat systoliskt blodtryck mätt efter 21 dagar (se figur 4B).

Som har diskuterats i litteraturen, är C57BL/6J möss allmänt känd att utveckla excentrisk hypertrofi med systolisk dysfunktion10 efter TAC. En ökning av vänster ventrikulära diameter hittades, som visas också betydande i volym tryckmätningarna. Slutet-systoliska volymen ökat från 16,25 µL (± 1.935 µL) till 23.31 µL (± 1.617µL). Denna förändring var signifikant (p = 0.0131) (se figur 4 c). Slutet-diastoliska volymen ökat från 25.81 µl (± 1.852 µL) till 31.24 µl ± (1.093 µL). Denna förändring var signifikant (p = 0.0268) (se figur 4 d).

Envägs ANOVA följt av Bonferroni's posthoc testning utfördes för att jämföra TAC och sham grupper. Vid volym tryckmätningarna jämfördes grupper med ett oparat t-test med Welchs korrigering. Alla data har presenterats som menar ± SEM (felstaplar).

Figure 1
Figur 1: den kirurgiska metoden via den 2nd interkostalrummet på 200% förstoring. Denna bild togs med det kirurgiska mikroskopet och visar aortabågen med en tråd mellan brachiocephalic artär och vänster gemensamma halspulsådern. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 2
Figur 2: representativa pulsade-wave Doppler imaging från båda halspulsåder (sham vs. TAC möss). (A) pulsad-wave Doppler imaging av den vänstra halspulsådern innan TAC. B) pulsad-wave Doppler imaging av den rätt halspulsådern innan TAC. C) bild ofPulsed-wave Doppler av den vänstra halspulsådern efter TAC. Blod flödeshastigheten reduceras jämfört med figur 2A. D) pulsad-wave Doppler av den rätt halspulsådern efter TAC. Blod flödeshastigheten ökas i jämförelse med figur 2B. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 3
Figur 3: hjärta vikt / body viktförhållande. Hjärthypertrofi induceras på grund av TAC. Detta framgår av en betydande ökning av hjärtat vikt/kroppen viktförhållande. Möss utan aorta banding (dvs. sham möss; vita barer) jämfördes med TAC drivs möss (svarta staplar) efter 3, 6 och 21 dagar. 6 dagar efter TAC hjärtat viktförhållandet /body vikt ökade signifikant TAC möss. Denna effekt är bara något uttalad efter 21 dagar. Betydelse sattes till p = < 0,05. NS = inte betydande; p < 0,0001. Data presenteras som menar ± SEM (felstaplar). n = 6-9 per grupp. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 4
Figur 4: hemodynamiska parametrar mäts via tryck – volym kateter i möss (C57BL/6J) med och utan TAC 21 dagar efter operation: A) puls (HR) i slag per minut (bpm). Det fanns ingen skillnad i HR i båda grupper vilket indikerar en jämförbar narkos under invasiva mätningarna. B) systoliskt blodtryck i höger gemensamma halspulsådern (sBP). Den betydande ökningen av sBP efter 21 dagar anger en ständig sammandragning av aortabågen. C) slutet-systoliskt volymer (ESV) har ökat betydligt (p = 0.0131) efter 21 dagar och visa en ökad afterload på grund av TAC inducerad dilatation av ventrikeln. D) slut-diastoliskt volym (ESV) ökas (p = 0.0268). Betydelse sattes till p = < 0,05. NS = inte betydande; * p < 0,05; p < 0,0001. Data presenteras som menar ± SEM (felstaplar); n = 8-13 per grupp. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Den snabba uppkomsten av hypertoni på grund av TAC skiljer sig från kliniskt relevanta hypertrofi orsakas av aortastenos eller hypertoni. Dock användningen av små djurmodeller att inducera hjärtsvikt har många fördelar och, därför, väljs av många utredare11. Detta slutna bröst-modellen förbättrar de redan befintliga modellerna av kirurgisk teknik att inducera tvärgående aorta förträngning i möss4.

Det mest kritiska steget är passagen under aortabågen. En alltför stram sutur runt aorta kan orsaka en dödlig minskning av blodflödet till viktiga organ som njurar. Enligt lagstiftningen i Hagen-Poiseuille är flödet främst beroende av radien. Därför användes vissa vikt-anpassad distanser i våra protokoll. Detta förfarande gör denna modell mer allmängiltiga, särskilt när det gäller mycket unga eller gamla möss, beroende på den enskilda experimentella inställningen.

Kirurgiskt trauma själva inducerar ett immunsvar och bör minskas till ett absolut minimum att förhindra snedvridande effekter. Snabb återhämtning och hög överlevnad är obligatoriska, särskilt i komplexa djurmodeller. Historiskt, till skillnad från torakotomi hos patienter återställs bröstkorgen hos möss inte efter TAC kirurgi. Återlämnande till fysiologisk andning rörelser är därför begränsad på grund av gratis flytande revben, som inte återansluts till bröstbenet.

Minimalinvasiva tekniker för TAC är också används av andra12,13. I båda modellerna nås aortabågen genom en mittlinjen snitt och en övre partiell sternotomi. Även om båda modellerna är mindre invasiv än öppna bröstet modeller, måste kirurger ta bort revben eller delar av bröstbenet att nå aorta. Vi anser att bibehållandet av physiologyen av hela bröstkorgen aids snabbare återhämtning. Därför detta protokoll förbättrar redan befintliga protokoll och hjälper till att minimera den kirurgiskt trauman själva.

På grund av den mer apikala kirurgiska tillgången krävs en postoperativ hyperinflation av lungorna för förebyggande av atelektas eller pneumothoraces, som har varit ibland beskrivs4,14, inte. Denna tillgång förhindrar en barotrauma i lungorna, vilket kan induceras av fastspänning exspiratorisk röret att öppna upp atelektas i befintliga modeller. Detta protokoll innehåller också en individualiserad fysiologiska ventilation strategi. Det är frestande att spekulera i att en individuellt anpassad ventilation hjälper att minska ventilatorassocierad komplikationer såsom barotrauma. En vikt anpassad ventilation strategi användes för att undvika effekter på systemisk cytokin produktion av ventilationen själv15.

Sammanfattningsvis, representerar dessa tekniker en alternativ och förbättrad modell för att inducera hjärthypertrofi hos möss.

Även om trauma minimeras genom att undvika torakotomi, visas inte den överlägsen effekten när det gäller minskning av inflammation i denna publikation. Tyvärr tillät inte begränsningar av djurskyddslagarna oss utföra öppna bröstet TAC parallellt med minimal invasiv TAC för jämförelse eftersom denna minimalinvasiv modell har fastställts för år redan. Därför bygger dessa uttalanden på tidigare erfarenheter av vår grupp.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Författarna har något att avslöja.

Acknowledgments

Vi tackar Stilla Frede och Susanne Schulz för deras tekniskt bistånd. Denna studie fick ingen finansiering.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Pressure-volume catheter Millar Instruments, USA SPR-839
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Minivent - TYPE 845
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Y-connection with intubation cannula OD 1.2mm 73-2844
Vaporizer Dräger Medical AG&CO.KG, Germany 19.3 Isofluran-Vaporizer (a newer version is available under catalog number  D-877-2010)
Microscope  Leica Microsystems, Germany MZ 7.5
Light source  Schott AG, Germany KL 1500 LCD
6-0 Prolene Ethicon, USA Polypropylene suture BV-1 9.3 mm 3/8c suture for surgery
Seraflex Serag Wiessner, Germany USP 5/0 schwarz;  IC108000  suture for constriction
Homoeothermic Controlled Operating Tables Harvard Apparatus GmbH, Germany Typ 872/3 HT with tripod stand and homoeothermic controller Type 874; 73-4233
Flexible Rectal Probe Harvard Apparatus GmbH, Germany 1.6 mm OD; 55-7021
Doppler Signal Visualisation Instrument Indus Instruments, USA Doppler Signal Processing Workstation (DSWP) with 20MHz Pulsed Doppler Module
Arruga Intracapsular Forceps Altomed, UK A5400
Doppler Probe Indus Instruments, USA 20MHz Tubing-mounted Probe
Jaffe Lid Retractor Altomed, UK A3513

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Tarnavski, O. Mouse surgical models in cardiovascular research. Methods Mol Biol Clifton NJ. 573, 115-137 (2009).
  2. Tarnavski, O., McMullen, J. R., Schinke, M., Nie, Q., Kong, S., Izumo, S. Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies. Physiol Genomics. 16, (3), 349-360 (2004).
  3. Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc Natl Acad Sci U S A. 88, (18), 8277-8281 (1991).
  4. deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. T. Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (38), (2010).
  5. Grossman, W., Jones, D., McLaurin, L. P. Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. J Clin Invest. 56, (1), 56-64 (1975).
  6. Hartley, C. J., Reddy, A. K., Madala, S., Michael, L. H., Entman, M. L., Taffet, G. E. Doppler estimation of reduced coronary flow reserve in mice with pressure overload cardiac hypertrophy. Ultrasound Med Biol. 34, (6), 892-901 (2008).
  7. Reddy, A. K., et al. Pulsed Doppler signal processing for use in mice: applications. IEEE Trans Biomed Eng. 52, (10), 1771-1783 (2005).
  8. Shioura, K. M., Geenen, D. L., Goldspink, P. H. Assessment of cardiac function with the pressure-volume conductance system following myocardial infarction in mice. Am J Physiol - Heart Circ Physiol. 293, (5), H2870-H2877 (2007).
  9. Zhang, B., Davis, J. P., Ziolo, M. T. Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect. JoVE J Vis Exp. (100), e52618 (2015).
  10. Barrick, C. J., Rojas, M., Schoonhoven, R., Smyth, S. S., Threadgill, D. W. Cardiac response to pressure overload in 129S1/SvImJ and C57BL/6J mice: temporal- and background-dependent development of concentric left ventricular hypertrophy. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292, (5), H2119-H2130 (2007).
  11. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, (2), 138-144 (2009).
  12. Zaw, A. M., Williams, C. M., Law, H. K. W., Chow, B. K. C. Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (121), (2017).
  13. Tavakoli, R., Nemska, S., Jamshidi, P., Gassmann, M., Frossard, N. Technique of Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice for Induction of Left Ventricular Hypertrophy. J Vis Exp. (127), (2017).
  14. Kim, S. -C., Boehm, O., Meyer, R., Hoeft, A., Knüfermann, P., Baumgarten, G. A Murine Closed-chest Model of Myocardial Ischemia and Reperfusion. J Vis Exp JoVE. (65), (2012).
  15. Veldhuizen, R. A., Slutsky, A. S., Joseph, M., McCaig, L. Effects of mechanical ventilation of isolated mouse lungs on surfactant and inflammatory cytokines. Eur Respir J. 17, (3), 488-494 (2001).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics