Summary

Метод грызунов Всего культуры эмбрионов использованием Rotator типа бутылки культуры система

Published: August 28, 2010
doi:

Summary

Всего техника культуре эмбрионов позволяет мыши культуры и крысиных эмбрионов<em> Исключая виво</em> Состоянии в течение ограниченного периода соответствующее середине беременности этапов. В этом видео-протокол, мы демонстрируем наши стандартные процедуры крысы целая культура эмбриона после E12.5 использовании поворотного устройства типа бутылки системе культуры.

Abstract

Всего культивирования эмбрионов (ВЭС) методика была разработана в 1950 году по количеству новых и его коллегами, и применяется для биологии развития 1. Хотя развитие и рост эмбрионов млекопитающих критически зависят от функции плаценты, ВЭС техника позволяет мыши культуры и крысиных эмбрионов бывших естественных условиях в течение ограниченного периода соответствующее середине беременности этапах эмбрионального день (E) 6,5-E12.5 в мышь или E8.5-E14.5 у крыс 2, 3, 4. В ВЭС, мы можем непосредственно целевой требуемых областях эмбрионов с использованием тонких стеклянных капилляров, поскольку эмбрионы можно управлять под микроскопом. Таким образом, грызунов ВЭС очень полезный метод, когда мы хотим для изучения динамических процессов развития в postimplanted эмбрионов млекопитающих. На сегодняшний день, несколько видов ВЭС системы были разработаны 1. Среди тех, поворотное устройство типа бутылки культуре системы наиболее популярны и подходят для долгосрочных культуры эмбрионов в середине беременности, т. е. после E9.5 и E11.5 у мышей и крыс, соответственно 1. В этом видео-протокол, мы демонстрируем наши стандартные процедуры крысы ВЭС после E12.5 использованием изысканные модели оригинального поворотного устройства системы, который был разработан новый и 5 Кокрофт, 6, и внедрить различные приложения ВЭС технику для исследований в развитии млекопитающих биологии.

Protocol

1. Настройка системы ВЭС Совместное 0,22 мкм мембранный фильтр для трубки кремния входе в системы ВЭС). Откройте клапан газового баллона содержащего O 2 (95%) и CO 2 (5%). Поток газовой смеси в барабан через пузырящийся флакон, содержащий автоклавного воды. Отре?…

Discussion

Есть два важных шагов в грызун ВЭС для успеха. Во-первых, процедура вскрытия должна быть точной, чтобы не повредить эмбрионов, особенно кровеносные сосуды. Во-вторых, процедура должна быть как можно быстрее, потому что кислород и питательные больше не поставляется через плаценту после в…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим г-н Хадзимэ Ichijo для видео-записи и полезные советы для редактирования видео. Мы также благодарим Drs.Yuji Tsunekawa и кайчи Yoshizaki за добрые помощник для видео-записи. Эта работа проводится при поддержке KAKENHI на молодых ученых и B в приоритетных областях,-молекулярной наук о мозге от MEXT Японии. Мы признаем, поддержке Глобального COE Программа «Базовые и трансляционных исследований Центра глобального науке мозга" от MEXT Японии и основной исследовательской эволюционной науки и техники (CREST) ​​от японской науки и техники от японской корпорации науки и техники агентство (JST) .

Materials

Name Type Company Catalog Number Comment
Setting up WEC
WEC system (10-0310) Tool Ikemoto Rika 010-0310 Another small model is also available.
Silicon plug without a hole Tool Ikemoto Rika 010-032-08  
Gas mixture cylinder Tool Nikko Sanso Containing 95% oxygen & 5% carbon dioxide. Custom order.
Gas regulator Tool Ono Seisakusho WR-11  
0.22 μm filter Millex GS Tool Millipore SLGS033SS  
Anesthesia and isolation of the uterus
Large scissors Tool Napox B-7H  
Forceps Tool Napox A-3-2  
Disposal Petri dish
(90 mm x 15 mm)
Tool Iwaki SH90-15 Deep-type dish is the best for dissection.
Isoflurane Reagent Abbott B506 For anesthesia
Pentobarbital sodium Reagent Schering-Plough Animal Health For anesthesia
Tyrode’s saline Reagent According as the protocol in Ref. 2. Save at 4°C.
Timed-pregnant Sprague-Dawley rat Animal Charles Rivers Laboratories Japan  
Preparation of culture medium
Culture glass bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-05  
Disposal culture bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-06  
Silicon plug with hole Tool Ikemoto Rika 010-032-07  
Aluminum foil Tool Any company  
Autoclaving bag Tool Hogy HM-26 For culture bottles
Autoclaving bag Tool Hogy HM-14A For silicon plugs
0.45 μm filter Millex HA Tool Millipore SLHA033SS  
50 ml conical tube Tool Becton Dickinson 352070  
100 ml beaker Tool Iwaki TE-32  
Rat IC serum Reagent Charles Rivers Laboratories Japan Refer to: Mr. Kunihiko Morisaki,
TEL: +81-(0) 45-474-9336; FAX: +81-(0) 45-474-9340
D(+)-Glucose Reagent Wako 041-00595  
Antibiotic-antimyotic liquid Reagent Gibco 15240  
Dissection of embryos
Ophthalmic straight scissors Tool Napox MB50-7 For cutting the uterine wall
Ophthalmic curved scissors Tool Napox MB54-2 For cutting the yolk sac
Forceps #5 Tool Vigor T6715  
Forceps #5F Tool Regine T6819  
Glass pipette Tool Made by hand using Pasteur pipette.
Autoclaving bag Tool Hogy HM-4 For glass pipettes
Binocular microscope Tool Leica Mz7s  
Light Tool Leica CLS 150XD  
Oil stone Tool Uchida Yoko 833-2000 For sharpening of forceps
Machine oil Tool Uchida Yoko 835-0000 For sharpening of forceps

References

  1. New, D. A. T., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Intoroduction. In mammalian postimplantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 1-14 (1990).
  2. Cockroft, D. L., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Dissection and culture of post implantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 15-40 (1990).
  3. Morris-Kay, G. M. Postimplantation mammalian embryos. Essential Developmental Biology A Practical Approach. , 55-66 (1993).
  4. Fujinaga, M., Tuan, R. S., Lo, C. W. In vitro culture of rodent embryos during the early postimplantation period. Developmental Biology Protocols. , 53-76 (2000).
  5. Eto, K., Takakubo, F. Improved development of rat embryos in culture during the period of craniofacial morphogenesis. J. Craniofac. Genet. Dev. Biol. 5, 351-355 (1985).
  6. New, D. A., Cockroft, D. L. A rotating bottle culture method with continuous replacement of the gas phase. Experientia. 35, 138-140 (1979).
  7. Osumi-Yamashita, N., Ninomiya, Y., Eto, K. Mammalian craniofacial embryology in vitro. Int. J. Dev. Biol. 41, 187-194 (1997).
  8. Inoue, T., Nakamura, S., Osumi, N. Fate mapping of the mouse prosencephalic neural plate. Dev. Biol. 219, 373-383 (2000).
  9. Nomura, T., Holmberg, J., Frisen, J., Osumi, N. Pax6-dependent boundary defines alignment of migrating olfactory cortex neurons via the repulsive activity of ephrin A5. Development. 133, 1335-1345 (2006).
  10. Inoue, Y. U., Asami, J., Inoue, T. Genetic labeling of mouse rhombomeres by Cadherin-6::EGFP-BAC transgenesis underscores the role of cadherins in hindbrain compartmentalization. Neurosci. Res. 63, 2-9 (2009).
  11. Calegari, F., Huttner, W. B. An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis. J. Cell Sci. 116, 4947-4955 (2003).
  12. Osumi, N., Inoue, T. Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporation. Methods. 24, 35-42 (2001).
  13. Arai, Y. Role of Fabp7, a downstream gene of Pax6, in the maintenance of neuroepithelial cells during early embryonic development of the rat cortex. J. Neurosci. 25, 9752-9761 (2005).
  14. Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation. Dev. Growth Differ. 50, 485-497 (2008).
check_url/2170?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Takahashi, M., Osumi, N. The Method of Rodent Whole Embryo Culture using the Rotator-type Bottle Culture System. J. Vis. Exp. (42), e2170, doi:10.3791/2170 (2010).

View Video