Summary

Neokorteks bir Organotipik Dilim Hazırlık Tüm Hücre Kaydı

Published: June 03, 2011
doi:

Summary

Bu piramidal nöronların elektriksel kayıtlar yapma amaçlı bir Organotipik kültür neokortikal dilim hazırlama hazırlamak ve sürdürmek için bir protokoldür.

Abstract

Biz sıçan neokorteks piramidal nöronlar gerilim-kapılı potasyum kanalları ifade ve işlevsel roller eğitim görüyor. Çünkü bu kanallar için özel farmakolojik ajanların eksikliği, kanal ifade işlemek için genetik bir yaklaşım almıştır. Biz hücre morfolojisi ve korteks laminer desen korumak için bir Organotipik kültür hazırlama (16) kullanın. Biz genellikle doğum sonrası gün 8-10 akut neokortikal dilim izole ve 3-7 gün boyunca kültür dilimleri korumak. Bu, bize benzer bir yaşta akut dilimleri ile çalışmalarımızı bu nöronların çalışma sağlar ve dilim coşkulu eksitatör bağlantılarının gelişimi en aza indirir. Biz akım veya voltaj-klemp tüm hücre yama kelepçe ile kızılötesi aydınlatma (IR) ve diferansiyel girişim kontrast mikroskobu (DIC) kullanarak katmanları II / III veya V görsel tespit piramidal nöronlar kaydı. Biz onların fonksiyonu çalışma kanalları ifade işlemek için yabani türü veya potasyum kanal DNA mutant Biyolistik (Gen tabancası) transfeksiyon kullanın. Transfekte hücreleri kolayca yeşil flüoresan protein (GFP) için cDNA ile birlikte transfeksiyon sonra Epifloresans mikroskobu ile tanımlanır. Biz transfekte hücreler bitişik, aynı dilim aynı katmanda untransfected nöronlar kayıtları karşılaştırın.

Protocol

1. Dilimleme Gün Öncesi Yapılan Hazırlıklar Biz bu cerrahi aletler otoklav ve dilimleme gün önce çözümler hazırlamak için daha verimli buluyorum. Otoklav aletleri. (Cerrahi ve dilimleme yarı steril koşullar altında yapılır). Otoklav kağıt ayrı ayrı sarılmış aşağıdaki paketleri, Otoklav: Cerrahi paketi: spatula, # 22 neşter bıçak sapı, makas, forseps Dilimleme paketi: 3 düğme (bıçak…

Discussion

Biz sıçan neokorteks (4, 9-11) piramidal nöronlar voltaj bağımlı potasyum kanalları ifade ve işlevsel roller eğitim görüyor. Çünkü bu kanallar için özel farmakolojik ajanların eksikliği, kanal ifade (1,14,15,17-19) işlemek için genetik bir yaklaşım kullanır. Hücre morfolojisi ve korteks laminer düzenini korumak için Stoppini ve ark (16) yaklaşım değiştirilmiş. Organotipik kültür hazırlanması (12,13,15-22; 5-8 2,3) kullanır. Biz 6-17 postnatal gün akut neokortikal di…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, üstün teknik yardım için Mayumi Sakuraba ve Rebecca Foehring teşekkür etmek istiyorum. Buna ek olarak, Dr teşekkür etmek istiyorum. Rodrigo Andrade transfeksiyon için cDNA yapıları bize sağlamak için Organotipik dilim kültür ve Biyolistik transfeksiyon protokolleri ve Dr. Jeanne Nerbonne uygulanmasında yardım için. NS044163 NINDS (RCF): Bu çalışma NIH hibe tarafından desteklenmiştir.

Materials

Surgery / transfection / culture:

  1. Brain Slicer: Campden Vibroslice #MA572 World Precision Instruments, Sarasota, FL, USA
  2. Gene Gun System: Bio-Rad Helios # 165-2431 (Bio-Rad Laboratories, 1000 Alfred Nobel Drive, Hercules, CA 94547)
    • Includes: Gene gun, helium hose assembly with regulator, tubing prep station (#165-2418), syringe kit, Tefzel tubing, tubing cutter, optimization kit (#165-2424), tubing cutter
    • Bio-Rad Helium Regulator (#165-2413)
    • disposable supplies for Helios from Bio-Rad:
      • 1.6 μm Gold Microcarriers: #165-2264
      • Tefzel Tubing: #165-2441
  3. Incubator: Forma Scientific model # 3110 (Thermo-Scientific: (866) 984- 3766).

Media:

  1. Horse Serum: Hyclone donor equine #SH 30074. (HyClone, 925 West 1800 South, Logan, UT 84321)
  2. HMEM (Minimal Essential Media plus HBSS and HEPES, no glutamine: Lonza BioWhittaker Catalog #12-137F): GIBCO/INVITROGEN, (800) 955- 6288, Option 1.
  3. HBSS (GIBCO Hanks buffered saline, #24020-117): GIBCO/INVITROGEN, (800) 955- 6288, Option 1.
  4. MEM (GIBCO minimal essential medium, #12360-038), GIBCO/INVITROGEN, (800) 955- 6288, Option 1.
  5. 250 mL Millipore 0.2 μm filter: #SC6PU02RE
  6. Plastic Transfer pipettes: Fisher #13-711-20.
  7. 50 mL Millipore steriflip 0.22 μm filter (#SCGP00525)

Items 6-8 obtained from: Fisher Scientific, 1241 Ambassador Blvd, P.O. Box 14989, St. Louis, MO 63132.

Recording:

  1. Pipet glass: Harvard GC150TF-10: Harvard Apparatus, 84 October Hill Road, Holliston, Massachusetts 01746
  2. Sutter P-87 horizontal electrode puller: Sutter Instrument Company, One Digital Drive, Novato, CA 94949
  3. Axon Instruments Multiclamp 700B amplifier: Molecular Devices, Inc. 1311 Orleans Drive, Sunnyvale, CA 94089-1136
  4. PClamp 10 data acquisition software: Molecular Devices, Inc., 1311 Orleans Drive, Sunnyvale, CA 94089-1136
  5. lectrode position is controlled with Sutter ROE-200 manipulators and PC-200 controller: Sutter Instrument Company, One Digital Drive, Novato, CA 94949.
  6. Microscope: Olympus BX-50WI upright microscope with IR-DIC optics
  7. IR-sensitive camera OLY-150 (Olympus) or DAGE-MTI (DAGE-MTI, 01 North Roeske Avenue, Michigan City, IN 46360).

References

  1. Beique, J. C., Imad, M., Mladenovic, L., Gingrich, J. A., Andrade, R. Mechanism of the 5-hydroxytryptamine 2A receptor-mediated facilitation of synaptic activity in prefrontal cortex. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 9870-9875 (2007).
  2. Buonomano, D. V. Timing of neural responses in cortical organotypic slices. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 4897-4902 (2003).
  3. Caeser, M., Bonhoeffer, T., Bolz, J. Cellular organization and development of slice cultures from rat visual cortex. Exp Brain Res. 77, 234-244 (1989).
  4. Foehring, R. C., Toleman, T., Higgs, M., Guan, D., Spain, W. J. Actions of Kv2.1 channels in rat neocortical pyramidal neurons. Soc Neurosci Abstr. 34, (2009).
  5. Gähwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 4, 329-342 (1981).
  6. Gähwiler, B. H. Organotypic cultures of neural tissue. Trends Neurosci. 11, 484-489 (1988).
  7. Gähwiler, B. H., Capogna, M., Debanne, D., McKinney, R. A., Thompson, S. M. Organotypic slice cultures: a technique has come of age. Trends Neurosci. 20, 471-477 (1997).
  8. Gähwiler, B. H., Thompson, S. M., Muller, D. Preparation and Maintenance of Organotypic Slice Cultures of CNS Tissue. Current Protocols in Neuroscience. , 6.11.1-6.11.11 (2001).
  9. Guan, D., Lee, J. C., Tkatch, T., Surmeier, D. J., Armstrong, W. E., Foehring, R. C. Expression and biophysical properties of Kv1 channels in supragranular neocortical pyramidal neurones. J Physiol. 571, 371-389 (2006).
  10. Guan, D., Lee, J. C. F., Higgs, M., Spain, W. J., Armstrong, W. E., Foehring, R. C. Functional roles of Kv1 containing channels in neocortical pyramidal neurons. J. Neurophysiol. 97, 1931-1940 (2007).
  11. Guan, D., Tkatch, T., Surmeier, D. J., Armstrong, W. E., Foehring, R. C. Kv2 subunits underlie slowly inactivating potassium current in rat neocortical pyramidal neurons. J Physiol. 581, 941-960 (2007).
  12. Johnson, H. A., Buonomano, D. V. A method for chronic stimulation of cortical organotypic cultures using implanted electrodes. Neurosci Methods. 176, 136-143 (2009).
  13. Johnson, H. A., Buonomano, D. V. Development and plasticity of spontaneous activity and Up states in cortical organotypic slices. J Neurosci. 27, 5915-5925 (2007).
  14. Malin, S. A., Nerbonne, J. M. Delayed rectifier K+ currents, IK, are encoded by Kv2 alpha-subunits and regulate tonic firing in mammalian sympathetic neurons. J Neurosci. 22, 10094-10105 (2002).
  15. O’Brien, J. A., Holt, M., Whiteside, G., Lummis, S. C., Hastings, M. H. Modifications to the hand-held Gene Gun: improvements for in vitro biolistic transfection of organotypic neuronal tissue. J Neurosci Methods. 112, 57-64 (2001).
  16. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  17. Villalobos, C., Shakkottai, V. G., Chandy, K. G., Michelhaugh, S. K., Andrade, R. SKCa channels mediate the medium but not the slow calcium-activated afterhyperpolarization in cortical neurons. J Neurosci. 24, 3537-3542 (2004).
  18. Walker, P. D., Andrade, R., Quinn, J. P., Bannon, M. J. Real-time analysis of preprotachykinin promoter activity in single cortical neurons. J Neurochem. 75, 882-885 (2000).
  19. Woods, G., Zito, K. Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture. J Vis Exp. , (2008).
  20. O’Brien, J. A., Lummis, S. C. Biolistic transfection of neuronal cultures using a hand-held gene gun. Nat Proc. 1, 977-981 (2006).
  21. Joshi, P., Dunaevsky, A. Gene gun transfection of hippocampal neurons. J Vis Exp. , (2006).
  22. Biewanga, J. E., Destree, O. H., Scharma, L. H. . J Neurosci Met. 71, 67-75 (1997).
check_url/2600?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Foehring, R. C., Guan, D., Toleman, T., Cantrell, A. R. Whole Cell Recording from an Organotypic Slice Preparation of Neocortex. J. Vis. Exp. (52), e2600, doi:10.3791/2600 (2011).

View Video