Affinitetsrening av märkta proteiner i kombination med masspektrometri (truppminor) är en kraftfull metod för systematisk kartläggning av nätverk proteininteraktioner och för undersökning av mekanistiska grunden för biologiska processer. Här beskriver vi en optimerad sekventiell peptid affinitet (SPA) truppminor förfarande utvecklats för bakterien<em> Escherichia coli</em> Som kan användas för att isolera och karakterisera stabila flera proteinkomplex till nära homogenitet även från låga kopieantal per cell.
Eftersom de flesta cellulära processer förmedlas av makromolekylära församlingar, systematisk identifiering av protein-protein interaktioner (PPI) och identifiering av subenheten sammansättning av flera proteinkomplex kan ge insikt i geners funktion och öka förståelsen av biologiska system 1, 2. Fysiska samverkan kan mappas med hög tillförsikt vialarge skala isolering och karaktärisering av endogena protein komplexen med nära fysiologiska förhållanden baserade på affinitetsrening av kromosomalt-märkta proteiner i kombination med masspektrometri (truppminor). Detta tillvägagångssätt har framgångsrikt tillämpats i evolutionärt olika organismer, inklusive jäst, flugor, maskar, däggdjursceller och bakterier 1-6. I synnerhet, har vi genererat en karboxiterminal peptid sekventiell affinitet (SPA) dubbla märkning för affinitets-rening nativa proteinkomplex från odlade gramnegativa Escherichia coli, med användning av GEnetically-lätthanterlig värd laboratoriestammar som är väl lämpade för genomet hela undersökningar av den grundläggande biologi och bevarade processer prokaryoter 1, 2, 7. Vår SPA-märkningssystem är analog med tandem affinitetsrening metod som ursprungligen utvecklades för jäst 8, 9, och består av en calmodulin-bindande peptid (CBP) följt av klyvningsstället för den mycket specifika tobak etch virus (TEV) proteas och tre kopior av FLAG-epitopen (3X FLAG), vilket möjliggör två på varandra följande rundor av affinitetsanrikning. Efter kassett amplifiering sekvensspecifika linjära PCR-produkter som kodar för SPA-tagg och en selekterbar markör integrerad och uttryckt i ram som karboxiterminala fusioner i en DY330 bakgrund som induceras att transient uttrycka en högeffektiv heterolog bakteriofag lambda rekombinationssystem 10. Efterföljande dubbla steg rening med kalmodulin och anti-FLAG pärlor affinitet möjliggör mycket selektivaoch effektiv indrivning av även låga komplex överflöd protein från storskaliga kulturer. Tandemmasspektrometri används sedan för att identifiera de stabilt sam-rening av proteiner med hög känslighet (låga nanogram detektionsgränser).
Här beskriver vi detaljerade steg-för-steg-anvisningar vi ofta använder för systematisk protein märkning, rening och masspektrometri-baserad analys av lösligt protein komplex från E. coli, som kan skalas upp och eventuellt anpassas till andra bakteriearter, inklusive vissa opportunistiska patogener som är mottagliga för recombineering. De resulterande fysiska interaktioner kan ofta avslöja intressanta oväntade komponenter och anslutningar tyder nya mekanistiska länkar. Integrering av PPI-data med alternativa molekylära föreningen data såsom genetiska (gen-gen) interaktioner och genomiska-sammanhang (GC) förutsägelser kan underlätta klargörande av den globala molekylära organisationen av multi-proteinkomplex inom bigiska vägar. Nätverken som genereras för E. E. coli kan användas för att få kunskap om den funktionella arkitektur ortologa genprodukter i andra mikrober som funktionella anteckningar närvarande saknas.
En viktig aspekt av SPA-baserade truppminor tillvägagångssätt som beskrivs här är att märkning utförs inom den naturliga kromosomala sammanhang och därigenom säkerställa normal genreglering bibehålls (dvs.. Infödda bete promotor bevaras, därför uttrycksnivåer inte störs) och infödda stabilt-associerade proteinkomplex återvinns vid nära-endogena nivåer. Operon polaritet frågor undviks också genom att inkludera en utåt orienterad promotor i den selekterbara markören. Denna SPA-märkning ti…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av medel från den kanadensiska stiftelsen för innovation, Genome Canada, Ontario Genomics Institute, Ontario ministeriet för innovation, och den kanadensiska Institutes of Health Research bidrag till JG och AE Red uttrycker E. coli-stam DY330 var en vänlig gåva från Donald L. domstolen (National Cancer Institute, Frederick, MD).
Materials | Vendor | and Catalog Numbers | |
I. Antibiotics | |||
Kanamycin | Bioshop | #KAN201 | |
Ampicillin | Bioshop | #AMP201 | |
2. Terrific-Broth medium | |||
Bio-Tryptone | Bioshop | #TRP 402 | |
Yeast extract | Bioshop | #YEX 555 | |
Glycerol | Bioshop | #GLY 002 | |
K2HPO4 | Bioshop | #PPM 302 | |
KH2PO4 | Bioshop | #PPM 303 | |
3. Bacterial Strain and Plasmid | |||
DY330 | Yu et al. (2000)10 | ||
pJL148 | Zeghouf et al. (2004)7 | ||
4. PCR and Electrophoresis Reagents | |||
Taq DNA polymerase | Fermentas | # EP0281 | |
10 X PCR buffer | Fermentas | # EP0281 | |
10 mM dNTPs | Fermentas | # EP0281 | |
25 mM MgCl2 | Fermentas | # EP0281 | |
Agarose | Bioshop | # AGA002 | |
Loading dye | NEB | #B7021S | |
Ethidium bromide | Bioshop | # ETB444 | |
10X TBE buffer | Thermo Scientific | #28355 | |
Tris Base | Bioshop | #TRS001 | |
Boric acid | Bioshop | #BOR001 | |
0.5 M EDTA (pH 8.0) | Sigma | # E6768 | |
DNA ladder | NEB | #N3232L | |
5. Plasmid isolation and Clean-up Kits | |||
Plasmid Midi kit | Qiagen | #12143 | |
QIAquick PCR purification kit | Qiagen | #28104 | |
6. PCR and Transformation Equipments | |||
Thermal cycler | BioRad | iCycler | |
Agarose gel electrophoresis | BioRad | ||
Electroporator | Bio-Rad | GenePulser II | |
0.2 cm electroporation cuvette | Bio-Rad | ||
42 °C water bath shaker | Innova 3100 | ||
Beckman Coulter TJ-25 centrifuge | Beckman Coulter | TS-5.1-500 | |
32 °C Shaker | New Brunswick Scientific, USA | ||
32 °C large Shaker | New Brunswick Scientific, USA | ||
32 °C plate incubator | Fisher Scientific | ||
7. Electrophoresis and Western blotting | |||
Acrylamide monomer, N,N’- methylenebis-acrylamide | Bio-Rad | #161-0125 | |
Ammonium persulfate | Bioshop | # AMP001 | |
n-butanol | Sigma | # B7906 | |
TEMED | Bioshop | #TEM001 | |
Whatman No. 1 filter paper | Fischer Scientific | #09-806A | |
Mini protean 3 cell | Bio-Rad | #165-3301 | |
iBlot gel transfer device | Invitrogen | #IB1001 | |
Nitrocellulose membranes | Bio-Rad | #162-0115 | |
Monoclonal Anti-Flag M2 antibody | Sigma | #F3165 | |
Horseradish peroxidase | Amersham | #NA931V | |
Pre-stained protein molecular weight standards | Bio-Rad | #161-0363 | |
Chemiluminescence reagent | PIERCE | #1856136 | |
Autoradiography film | Clonex Corp | #CLEC810 | |
Quick Draw blotting paper | Sigma | #P7796 | |
C2 platform rocking shaker | New Brunswick Scientific, USA | ||
8. Sonication Equipment and Reagents | |||
Sonicator | Branson Ultrasonic | #23395 | |
NaCl | Bioshop | #SOD001 | |
Protease inhibitors | Roche | #800-363-5887 | |
0.5 mM TCEP-HCl | Thermo Scientific | #20490 | |
9. Affinity Purification Reagents and Equipment | |||
0.8 x 4 cm Bio-Rad polypropylene column | Bio-Rad | #732-6008 | |
Benzonase nuclease | Novagen | #70746 | |
Anti-FLAG M2 agarose beads | Sigma | #A2220 | |
Calmodulin-sepharose beads | GE Healthcare | #17-0529-01 | |
TEV protease | Invitrogen | #12575-015 | |
Triton X-100 | Sigma | #T9284 | |
CaCl2 | Sigma | #C2661 | |
EGTA | Sigma | #E3889 | |
LabQuake Shaker | Thermolyne | #59558 | |
10. Silver Staining Reagents | |||
Methanol | Bioshop | #MET302 | |
Acetic acid | Bioshop | t#ACE222 | |
Sodium-thiosulfate | Sigma | #S-7143 | |
Silver nitrate | Fischer Scientific | #S181-100 | |
Formaldehyde | Bioshop | #FOR201 | |
Sodium carbonate | Bioshop | #SOC512 | |
11. Reagents and Equipment for Protein Identification | |||
Trypsin Gold, Mass Spectrometry Grade | Promega | # V5280 | |
50 mM NH4HCO3 | Bioshop | #AMC555 | |
1 mM CaCl2 | Bioshop | #CCL302 | |
Acetonitrile | Sigma | #A998-4 | |
Formic acid | Sigma | #F0507 | |
HPLC grade water | Sigma | #95304 | |
Iodoacetamide | Sigma | #16125 | |
Millipore Zip-Tip | Millipore | # ZTC18M960 | |
~10 cm of 3 μm Luna-C18 resin | Phenomenex | ||
Proxeon nano HPLC pump | Thermo Fisher Scientific | ||
LTQ Orbitrap Velos mass spectrometer | Thermo Fisher Scientific | ||
12. Labware | |||
4 liter conical flasks | VWR | #89000-372 | |
50 ml polypropylene falcon tubes | Any Vendor | ||
1.5 ml micro-centrifuge tubes | Any Vendor | ||
250 ml conical flaks | VWR | #29140-045 | |
15 ml sterile culture tubes | Thermo Scientific | #366052 | |
Cryogenic vials | VWR | #479-3221 | |
-80 °C freezer | Fisher Scientific | #13-990-14 | |
Speed vacuum system | Thermo Scientific | ||
Buffers and Solutions 1. 1 liter Terrific Broth (TB) media 11 g Bio-Tryptone 2. Potassium Salt Stock Solution 1.5 M K2HPO4 3. Sonication Buffer 20 mM Tris-HCl (pH 7.9) 4. AFC buffer 30 mM Tris-HCl (pH 7.9) 5. TEV cleavage buffer 30 mM Tris-HCl (pH 7.9) 6. Calmodulin binding buffer 30 mM Tris-HCl (pH 7.9) 7. Calmodulin wash buffer 30 mM Tris-HCl pH 7.9 8. Calmodulin elution buffer 30 mM Tris-HCl (pH 7.9) 9. Developing solution (1L) 37% Formaldehyde 10. Digestion buffer 50 mM NH4HCO3 11. Wetting and Equilibration solution 70% acetonitrile (ACN) in 0.1% formic acid 12. Washing solution 100% H2O in 0.1% formic acid |