Summary

Protein misfoldning Cyklisk Amplifikation af Prioner

Published: November 07, 2012
doi:

Summary

Protein misfoldning cyklisk amplifikation (PMCA) er et in vitro assay til undersøgelse af prion konvertering og stamme og artsbarrierer. Den kan også anvendes som et prion påvisningsassay.

Abstract

Prioner er infektiøse stoffer, der medfører uundgåeligt fatal transmissible spongiforme encephalopatier (TSE) hos dyr og mennesker 9,18. Prionproteinet har to forskellige isoformer, de ikke-infektiøse host-kodede protein (PrP C) og smitsomt protein (PrP Sc), et unormalt-foldet isoform af PrP C 8.

En af udfordringerne ved at arbejde med prion midler er den lange inkubationstid før udviklingen af kliniske symptomer efter vært podning 13. Dette traditionelt pålagt lange og dyre dyr bioassay undersøgelser. Endvidere er de biokemiske og biofysiske egenskaber af PrPsc dårligt karakteriseret på grund af deres usædvanlige konformation og aggregering tilstande.

PrPsc kan frø omdannelsen af PrP C til PrP Sc in vitro 14. PMCA er en in vitro-teknik, der tager advantage af denne evne ved hjælp af sonikering og inkubering cyklusser for at producere store mængder af PrP Sc, med en accelereret hastighed, fra et system indeholdende overskydende mængder af PrP ° og små mængder af PrP Sc frø 19. Denne teknik har vist sig effektivt at rekapitulere arten og stammen specificiteten af PrPsc konvertering fra PrP C, for at emulere prion stamme indgreb, og til amplifikation af meget lave niveauer af PrP Sc fra inficerede væv, væsker, og miljøprøver 6,7,16, 23.

Dette papir beskriver den PMCA protokol, herunder anbefalinger til minimering af forurening, genererer ensartede resultater, og kvantificere disse resultater. Vi diskuterer også adskillige PMCA applikationer, herunder generering og karakterisering af smittebærere prion stammer, prion stamme indgreb og påvisning af prioner i miljøet.

Protocol

1. Klargøring af udstyr Brug en Misonix 3000 eller Misonix 4000 sonikator (Farmingdale, NY) forbundet med en Thermo Electron Neslab EX-7 vandbad (Newington, NH) for at holde en konstant temperatur på 37 ° C. Soniker prøverne i 200 ul tyndvæggede PCR-rør strips med hvælvede låg opnået fra Thermo Scientific (Waltham, MA). En helt ny sonikator kræver et "break-in" periode med kontinuerlig drift 9. En to-måneders pause-periode består af en 40-sec sonication burst og 10-m…

Representative Results

Protein misfoldning cyklisk amplifikation (PMCA) anvendes til at amplificere PrP Sc in vitro 7, 12, 14, 19, 24. En vellykket PrPsc amplifikation er vist med en stigning i båndintensitet på Western blots af PK-resistent prionprotein (migrerer mellem 19 og 30 kDa for hamster-afledte prion-stammer) som vist i fig. 3. Stigningen i sin båndintensitet efter PMCA indikerer amplificering af PK-resistent PrPsc materiale. Vellykkede amplifikation af hamster-…

Discussion

Udfordringer for uddybende smitsomme prionproteiner er de lange inkubationstid og udgifter i in vivo forsøg. Det PMCA teknik er en omkostningseffektiv måde at amplificere smitsomme prion agenter. Adskillige laboratorier har bekræftet evne PMCA til præcist at amplificere prion-stammer in vitro 7, 9, 12, 14, 19,24.

Prionsygdomme kan overføres mellem arter. Bessen og Marsh har faktisk inokuleret hamstere med transmissibel minkencephalopati, der producerede to f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Dr. Vesper Fe Marie Ramos for kritisk læsning af manuskriptet. Dette arbejde blev støttet af National Center for Forskning Ressourcer (P20 RR0115635-6, C06 RR17417-01 og G20RR024001) og Statens Institut for Neurologiske Lidelser (2R01 NS052609).

Materials

Reagent / Equipment Manufacturer Cat. Number
Misonix 3000 Misonix S-3000
Misonix 4000 Misonix S-4000
Tenbroeck Tissue Grinder Kontes 885000-0007
Neslab EX-7 Water Bath Thermo Electron Neslab EX-7
0.2 ml PCR Tube Strips Thermo Scientific AB-0451
Triton X-100 Sigma Aldrich T9284-100ML
Complete Protease Inhibitor Roche 11 697 498 001
EDTA J.T. Baker 4040-00
DPBS Mallinckrodt Baker Mediatech 21-031-CV
Versi-Dry Lab Soakers Fisher Scientific 14 206 28
Repti Therm Heater Zoo Med Laboratories, Inc. RH-4

References

  1. Ayers, J. I., Schutt, C. R., Shikiya, R. A., Aguzzi, A., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. The strain-encoded relationship between PrP replication, stability and processing in neurons is predictive of the incubation period of disease. PLoS pathogens. 7, e1001317 (2011).
  2. Barria, M. A., Mukherjee, A., Gonzalez-Romero, D., Morales, R., Soto, C. De novo generation of infectious prions in vitro produces a new disease phenotype. PLoS Pathog. 5, e1000421 (2009).
  3. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Biochemical and physical properties of the prion protein from two strains of the transmissible mink encephalopathy agent. J. Virol. 66, 2096-2101 (1992).
  4. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Distinct PrP properties suggest the molecular basis of strain variation in transmissible mink encephalopathy. J. Virol. 68, 7859-7868 (1994).
  5. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Identification of two biologically distinct strains of transmissible mink encephalopathy in hamsters. J. Gen. Virol. 73, 329-334 (1992).
  6. Castilla, J., Gonzalez-Romero, D., Saa, P., Morales, R., De Castro, J., Soto, C. Crossing the species barrier by PrP(Sc) replication in vitro generates unique infectious prions. Cell. 134, 757-768 (2008).
  7. Castilla, J., Morales, R., Saa, P., Barria, M., Gambetti, P., Soto, C. Cell-free propagation of prion strains. EMBO J. 27, 2557-2566 (2008).
  8. Caughey, B., Raymond, G. J. The scrapie-associated form of PrP is made from a cell surface precursor that is both protease- and phospholipase-sensitive. J. Biol. Chem. 266, 18217-18223 (1991).
  9. Deleault, N. R., Harris, B. T., Rees, J. R., Supattapone, S. Formation of native prions from minimal components in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 9741-9746 (2007).
  10. Dickinson, A. G., Fraser, H., Meikle, V. M., Outram, G. W. Competition between different scrapie agents in mice. Nat. New Biol. 237, 244-245 (1972).
  11. Gonzalez-Romero, D., Barria, M. A., Leon, P., Morales, R., Soto, C. Detection of infectious prions in urine. FEBS Lett. 582, 3161-3166 (2008).
  12. Green, K. M., Castilla, J., Seward, T. S., Napier, D. L., Jewell, J. E., Soto, C., Telling, G. C. Accelerated high fidelity prion amplification within and across prion species barriers. PLoS Pathog. 4, e1000139 (2008).
  13. Hadlow, W. J., Race, R. E., Kennedy, R. C. Temporal distribution of transmissible mink encephalopathy virus in mink inoculated subcutaneously. J. Virol. 61, 3235-3240 (1987).
  14. Kocisko, D. A., Come, J. H., Priola, S. A., Chesebro, B., Raymond, G. J., Lansbury, P. T., Caughey, B. Cell-free formation of protease-resistant prion protein. Nature. 370, 471-474 (1994).
  15. Kurt, T. D., Telling, G. C., Zabel, M. D., Hoover, E. A. Trans-species amplification of PrP(CWD) and correlation with rigid loop 170N. Virology. 387, 3235-3240 (2009).
  16. Maddison, B. C., Baker, C. A., Terry, L. A., Bellworthy, S. J., Thorne, L., Rees, H. C., Gough, K. C. Environmental sources of scrapie prions. J. Virol. 84, 11560-11562 (2010).
  17. Nichols, T. A., Pulford, B., Wyckoff, A. C., Meyerett, C., Michel, B., Gertig, K., Hoover, E. A., Jewell, J. E., Telling, G. C., Zabel, M. D. Detection of protease-resistant cervid prion protein in water from a CWD-endemic area. Prion. 3, 171-183 (2009).
  18. Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216, 136-144 (1982).
  19. Saborio, G. P., Permanne, B., Soto, C. Sensitive detection of pathological prion protein by cyclic amplification of protein misfolding. Nature. 411, 810-813 (2001).
  20. Saunders, S. E., Bartz, J. C., Vercauteren, K. C., Bartelt-Hunt, S. L. An enzymatic treatment of soil-bound prions effectively inhibits replication. Appl. Environ. Microbiol. 77, 4313-4317 (2011).
  21. Saunders, S. E., Shikiya, R. A., Langenfeld, K., Bartelt-Hunt, S. L., Bartz, J. C. Replication efficiency of soil-bound prions varies with soil type. Journal of virology. , (2011).
  22. Schutt, C. R., Bartz, J. C. Prion interference with multiple prion isolates. Prion. 2, 61-63 (2008).
  23. Shikiya, R. A., Ayers, J. I., Schutt, C. R., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. Co-infecting prion strains compete for a limiting cellular resource. Journal of. 84, 5706-5714 (2010).
  24. Shikiya, R. A., Bartz, J. C. In vitro generation of high titer prions. Journal of virology. , (2011).
  25. Weber, P., Giese, A., Piening, N., Mitteregger, G., Thomzig, A., Beekes, M., Kretzschmar, H. A. Generation of genuine prion infectivity by serial PMCA. Veterinary microbiology. 123, 346-357 (2007).

Play Video

Cite This Article
Saunders, S. E., Bartz, J. C., Shikiya, R. A. Protein Misfolding Cyclic Amplification of Prions. J. Vis. Exp. (69), e4075, doi:10.3791/4075 (2012).

View Video