Summary
Pinto no ovo eletroporação é uma técnica que permite a manipulação genética do embrião aviária. Aplicações mais comuns desta técnica incluem a análise funcional de genes e elementos enhancer putativa. Este vídeo demonstra eletroporação do tubo neural em HH 10 embriões de galinha. Técnica de injeção e manuseio adequado de ovo são discutidos.
Abstract
Grande tamanho e desenvolvimento externo do embrião de galinha há muito tempo tornou uma ferramenta valiosa no estudo da biologia do desenvolvimento. Com o advento da técnicas da biologia molecular, a garota tornou-se um sistema útil para se estudar a regulação do gene e função. Por electroporating construções de DNA ou RNA no embrião de galinha em desenvolvimento, os genes podem ser expressos ou derrubado a fim de analisar in vivo a função do gene. Da mesma forma, constrói repórter pode ser usado para o mapeamento de destino ou para analisar elementos gene putativo de regulamentação. Comparação com experiências similares em mouse, eletroporação pintinho tem a vantagem de ser rápido, fácil e barato. Este vídeo demonstra como fazer primeiro uma janela na casca de ovo para manipular o embrião. Em seguida, o embrião é visualizado com uma solução diluída de nanquim injetado abaixo do embrião. Uma agulha de vidro e pipetas são utilizadas para injetar DNA e corante verde rápido dentro do tubo neural em desenvolvimento, em seguida, são colocados eletrodos de platina paralelo ao embrião e curta pulsos elétricos são administrados com um gerador de pulsos. Finalmente, o ovo é selada com fita adesiva e colocados de volta para uma incubadora para o desenvolvimento. Além disso, o vídeo mostra a estocagem e manuseio apropriado e discute as possíveis causas do embrião eletroporação seguintes perda.
Protocol
Manipulação de ovos
- Os ovos podem ser conservados a 13 ° C por até uma semana antes da incubação, sem perda significativa de viabilidade (um refrigerador do vinho pequeno é ideal para esta finalidade).
- Antes da incubação, ovos para permitir que a temperatura ambiente, em seguida, coloque em uma galinha umidificado incubadora definido para 37,8 ° C (100 ° F).
- Nós geralmente electroporate embriões aproximadamente 48 horas depois do início de incubação, quando o embrião atingiu Hamburger e Hamilton estágio 10.
- Tempo de incubação pode variar de acordo com Hamburger desejado e estágio Hamilton. Temperatura é crítica e desvio da temperatura de incubação ideal irá alterar o tempo de incubação e viabilidade do embrião diminuir.
- Durante a incubação, os ovos devem ser mantidos em seus lados para que o embrião vai ser posicionadas corretamente, de eletroporação. O embrião vai flutuar em cima da gema e é útil para marcar a parte superior do ovo com um lápis antes de janelas para que você saiba onde cortar.
Preparação
- Quente Leibovitz L-15 media a 37 ° C. Puxe capilares de vidro em agulhas. Eletrodos posição e micromanipulador e conectar eletrodos ao gerador de pulsos.
Windowing
- Usando uma seringa com agulha grande furo, furar a casca na extremidade pequena do ovo.
- Apontando a agulha cuidadosamente para baixo para evitar a interrupção da gema, remover cerca de 5 ml de albumina.
- Sele o orifício com um pequeno pedaço de fita.
- Cobrir a parte superior do ovo com outro pedaço de fita adesiva (cerca de 4x4 cm).
- Com uma tesoura curva, e tomando cuidado para não perturbar o embrião, cortar um buraco grande o suficiente para fornecer uma janela na qual trabalho.
Opcional: Para visualizar o tubo neural, injectar a solução de tinta com agulha de calibre 26 debaixo do embrião (inserir a agulha sob o embrião de fora do anel de sangue). Tinta da Índia devem ser diluídas 1:5 com Hanks ou comparáveis solução estéril tamponada.
Injeção e Eletroporação
- Quebre a ponta capilar para diâmetro desejado usando uma pinça
- Usando a pipeta na boca, coloque o capilar com plasmídeo / Fast corante verde.
- Posição do embrião com a cabeça em direção a você e inserir a agulha no tubo neural em um ângulo raso.
- Injetar a solução de plasmídeo para o lúmen do tubo neural até dye preenche todo o espaço.
Nota: Tenha cuidado para não ter maiores ponta, em seguida, diâmetro do tubo neural. Em geral, você será capaz de dizer se o tamanho da ponta ideal tem sido alcançado por quão fácil ou difícil é para puxar líquido no capilar. Se houver resistência extrema, a abertura é provavelmente muito pequena ea ponta deve ser quebrado novamente mais acima. Se houver pouca ou nenhuma resistência, a abertura é muito grande e uma nova agulha deve ser usado.
- Coloque 1-2 gotas de estéril L-15 media sobre o embrião.
- Imediatamente colocar os eletrodos em ambos os lados do embrião, em paralelo com o tubo neural, e pulso 5 vezes em 24/10 volts para 50 mseconds em intervalos de 1 segundo. Você vai ver as bolhas perto dos eletrodos se funcionou corretamente.
- Remova cuidadosamente eletrodos, coloque 5 gotas de L-15 em cima dos embriões e selar o ovo com fita adesiva. Certifique-se que o ovo é bem fechados, como secagem é um dos principais contribuintes para a perda de embrião após eletroporação.
- Coloque os ovos de volta para a incubadora, lado da janela para cima, e incubar até chegarem desejado H & H estágio.
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Discussion
Este protocolo fornece um guia passo a passo para eletroporação do tubo neural de embriões de galinha HH10. Além de mostrar a técnica, as diretrizes para o armazenamento e manuseio de ovos também é fornecido. Esta técnica tem uma ampla gama de aplicações para análise genética e do custo baixo e facilidade de experimentos torna viável para muitos laboratórios.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Chicken egg incubator | humidified, set to 37.80°C (100F). | ||
| Pulse generator | Genetronics | BTX T820 | Square wave generator or comparable |
| Electrodes | our electrodes were made from 0.25 mm diameter platinum wire and were 5 mm long and spaced 1 mm apart | ||
| Connecter cables | |||
| Micromanipulator | |||
| Dissecting scope | with large working distance | ||
| Glass capillaries | and capillary puller or commercial glass needles | ||
| Leibovitz’s L-15 media | |||
| chicken eggs | fertilized | ||
| Curved scissors | |||
| 10 ml syringe | |||
| Large bore needle | 16-18G | ||
| Mouth pipette | |||
| India ink | |||
| Insulin syringe/syringe | |||
| Plasmid DNA | ≥ 1μg/μl in sterile TE or 1X PBS containing 0.05% Fast Green dye |
References
- 'Shocking' developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression. Nat Cell Biol. 1, 203-207 (1999).
