Summary

Snabb Identifiering av kemiska genetiska interaktioner i<em> Saccharomyces cerevisiae</em

Published: April 05, 2015
doi:

Summary

Here we present a cost-effective method for defining chemical-genetic interactions in budding yeast. The approach is built on fundamental techniques in yeast molecular biology and is well suited for the mechanistic interrogation of small to medium collections of chemicals and other media environments.

Abstract

Fastställande av verkningsmekanism av bioaktiva kemikalier är av intresse för ett brett spektrum av akademiska, läkemedels- och industriforskare. Saccharomyces cerevisiae, eller spirande jäst, är en modell eukaryot för vilken en komplett samling av ~ 6000 gen deletionsmutanter och hypomorphic väsentliga gen mutanter är kommersiellt tillgängliga. Dessa samlingar av mutanter kan användas för att systematiskt upptäcka kemiska-gen interaktioner, dvs gener som är nödvändiga för att tolerera en kemikalie. Denna information, i sin tur, rapporter om den troliga verkningsmekanism föreningen. Här beskriver vi ett protokoll för snabb identifiering av kemiska-genetiska interaktioner i knoppande jäst. Vi demonstrerar den metod som använder det kemoterapeutiska medlet 5-fluoruracil (5-FU), som har en väl definierad verkningsmekanism. Våra resultat visar att den nukleära TRAMP RNA Exosome och DNA-reparationsenzymer behövs för proliferation i närvaro av 5-FU, vilket överensstämmer med tidigare microarray baserade streckkodning kemiska genetiska metoder och den kunskap som 5-FU påverkar både RNA och DNA metabolism negativt. De erforderliga valideringsprotokoll för dessa hög genomströmning skärmar beskrivs också.

Introduction

De genetiska verktyg och resurser som finns tillgängliga i modellen organismen Saccharomyces cerevisiae har möjlig storskaliga funktionell genomik studier som kollektivt ger ny insikt i hur gener fungerar som nätverk för att uppfylla kraven i biologiska system. Hörnstenen i dessa verktyg var samarbets skapa en komplett uppsättning av icke väsentliga gen deletioner av alla öppna läsramar i jäst 1,2. Ett slående observation var att endast ~ 20% av jästgener krävs för lönsamhet när den odlas som haploider under standardlaboratorieförhållanden. Detta belyser förmågan hos en cell att buffra mot iska störningar genom utnyttjande av alternativa biologiska vägar. Genetiska mutanter som är livskraftiga individuellt, men dödlig i kombination, signal anslutna eller konvergerande parallella biologiska vägar och bilda genetiska interaktionsnätverk som beskriver biologisk funktion. Med utvecklingen av villkor temperature-känsliga och hypomorphic alleler av essentiella gener tekniken inte har begränsats till studiet av icke-väsentliga gener 3,4. Detta koncept har tillämpats på genomisk skala producera en opartisk genetisk interaktion karta som visar hur gener involverade i liknande cellulära processer kluster tillsammans 5.

Kemiska störningar av genetiska nätverk härma gen strykningar (Figur 1) 6. Ställa frågor tillväxthämmande föreningar mot en hög densitet rad radering stammar för överkänslighet identifierar en kemisk-genetisk interaktion profil, dvs en lista med gener som krävs för att tåla kemisk påfrestning. Liksom genetiska interaktioner, har storskaliga skärmar av kemiska bibliotek visade att föreningar med en liknande verkningsmekanism kluster tillsammans 7. Därför, genom inrättandet av kemikalie genetiska interaktionsprofilen för en förening i verkningsmekanism kan härledas genom att jämföra den med larGE-skalan syntetiska genetiska och kemisk genetisk interaktion Dataset 8,9.

Storskaliga kemiska-genetiska skärmar, där mängder av föreningar förhördes, har utförts av streckkod konkurrensanalyser. I detta tillvägagångssätt är den poolade samling av radering stammar odlas en masse för flera generationer i en liten volym av media som innehåller en kemikalie. Eftersom varje deletionsmutant hyser en unik genetisk streckkod, är lönsamheten / tillväxt av individuella mutanter inom pool av radering stammar spåras av microarray eller hög genomströmning sekvense 10.

Att utgå fitness genom att övervaka koloni storlek fysiskt klädd mutanter odlas på fast agar innehåller en bioaktiv förening är också en effektiv metod för att identifiera kemisk-genetiska interaktioner 11,12. Denna metod ger ett kostnadseffektivt alternativ till konkurrensbaserad screening och är väl lämpad för att analysera små bibliotek av kemikalier.Skiss här är en enkel metod för att producera en lista med kemisk-genetiska interaktioner i S. cerevisiae som inte förlitar sig på molekylärbiologiska manipulationer eller infrastruktur. Det kräver bara en jäst radering samling, en robot eller manuell fastlåsning apparat, och fritt tillgänglig bildanalys mjukvara.

Protocol

OBS: Det allmänna arbetsflödet för detta förfarande skisseras i Figur 2. 1. Fastställande av Tillväxt-hämmande dos Framställning av jäst övernattskultur OBS: jästextrakt-pepton-dextros tillväxtmedier (YEPD) används i detta protokoll är ett standardrecept 13. Serie ut BY4741 (MATa his3 Δ1 leu2Δ0 met15Δ0 ura3Δ0) celler på en YEPD-agarplatta och inkubera i 48 h vid 30 ° C eller tills synliga kolonier bildas. </l…

Representative Results

Som en validering av detta tillvägagångssätt vi utförde en representativ kemisk genetisk interaktion skärmen på kemoterapeutiska medlet 5-fluorouracil (5-FU) efter de ovan skisse protokollet. 5-FU är känd för att störa tymidylatsyntas liksom DNA och RNA-metabolism 18. De kemiska genetiska interaktioner av 5-FU är väl studerade och har undersökts av jäst streckkod microarray teknik som använder både heterozygota och homozygota radering samlingar 8,19. Här visar vi att liknande resul…

Discussion

Beskrivs här är en metod för att generera kemisk-genetiska interaktionsprofiler. Metoden är enkel: genom att jämföra koloni storlekar av varje stam i omfattande gendeletion samlingar i närvaro och frånvaro av en kemikalie, är alla gener som behövs för att tolerera en kemisk förolämpning identifierad. Notering anrikning analys av den resulterande listan över känsliga stammar kan sedan användas för att ge en inblick i en kemikalie verkningsmekanism. Även om detta protokoll har optimerats för blivande j?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning i CJN labbet stöds av driftsbidrag från NSERC, den kanadensiska Cancerfonden Research Institute (CCSRI), och den kanadensiska Breast Cancer Foundation (BC-Yukon Branch).

Materials

Name of Material/ Equipment  Company  Catalog Number  Comments/Description 
Yeast Extract BioBasic G0961 For YEPD liquid/solid media add to 1% final concentration (w/v)
Tyrptone Powder BD Biosciences 211820 For YEPD liquid/solid media add to 2% final concentration (w/v)
Dextrose Anachemia 31096-380 For YEPD liquid/solid media add to 2% final concentration (w/v) – Do not autoclave. Prepare 20% stock solution, filter sterilize, and add to media after autoclaving.
Agar A Bio Basic FB0010 For YEPD solid media add to 2% final concentration (w/v)
G418 A.G. Scientific Inc. G-1033 Prepare 1000x stock at 200mg/ml in dH2O and filter sterilize. 
12 well plate Greiner Bio One 655180
5ml culture tubes Evergreen Scientific 222-2376-080
10cm Petri Dish VWR 25384-302
ROTOR HDA Singer Instruments  ROT-001 high-throughput microbial array pinning robot
PLUSPLATE© Petri Dish Singer Instruments  PLU-001 Box of 200 dishes
384 Short-Pin RePad Singer Instruments  RP-MP-384 Box of 1000 pads
1536 Short-Pin RePad Singer Instruments  RP-MP-1536 Box of 1000 pads
Alternative Pinning Tools:
Fully Automated Robtic Systems S&P robotics http://www.sprobotics.com Several automated colony handling robitic and imagining systems available.
Manual Pinning Tools V&P Scientific http://www.vp-scientific.com Handheld replication tools and accessories. 

References

  1. Giaever, G., et al. Functional profiling of the Saccharomyces cerevisiae genome. Nature. 418, 387-391 (2002).
  2. Winzeler, E. A., et al. Functional characterization of the S. cerevisiae genome by gene deletion and parallel analysis. Science. 285, 901-906 (1999).
  3. Breslow, D. K., et al. A comprehensive strategy enabling high-resolution functional analysis of the yeast genome. Nat Methods. 5, 711-718 (2008).
  4. Li, Z., et al. Systematic exploration of essential yeast gene function with temperature-sensitive mutants. Nat Biotechnol. 29, 361-367 (2011).
  5. Costanzo, M., et al. The genetic landscape of a cell. Science. 327, 425-431 (2010).
  6. Parsons, A. B., et al. Integration of chemical-genetic and genetic interaction data links bioactive compounds to cellular target pathways. Nat Biotechnol. 22, 62-69 (2004).
  7. Parsons, A. B., et al. Exploring the mode-of-action of bioactive compounds by chemical-genetic profiling in yeast. Cell. 126, 611-625 (2006).
  8. Hillenmeyer, M. E., et al. The chemical genomic portrait of yeast: uncovering a phenotype for all genes. Science. 320, 362-365 (2008).
  9. Hillenmeyer, M. E., et al. Systematic analysis of genome-wide fitness data in yeast reveals novel gene function and drug action. Genome Biol. 11, R30 (2010).
  10. Smith, A. M., et al. Competitive genomic screens of barcoded yeast libraries. J Vis Exp. (54), (2011).
  11. Bowie, D., Parvizi, P., Duncan, D., Nelson, C. J., Fyles, T. M. Chemical-genetic identification of the biochemical targets of polyalkyl guanidinium biocides. Organic & Biomolecular Chemistry. 11, 4359-4366 (2013).
  12. Alamgir, M., Erukova, V., Jessulat, M., Azizi, A., Golshani, A. Chemical-genetic profile analysis of five inhibitory compounds in yeast. BMC Chem Biol. 10 (6), (2010).
  13. Amberg, D. C., Burke, D., Strathern, J. N. . Cold Spring Harbor Laboratory. Methods In Yeast Genetics: A Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual. , (2005).
  14. Baryshnikova, A., et al. Synthetic genetic array (SGA) analysis in Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe. Methods Enzymol. 470, 145-179 (2010).
  15. Young, B. P., Loewen, C. J. Balony: a software package for analysis of data generated by synthetic genetic array experiments. BMC Bioinformatics. 14, 354 (2013).
  16. Wagih, O., et al. SGAtools: one-stop analysis and visualization of array-based genetic interaction screens. Nucleic Acids Res. 41, W591-W596 (2013).
  17. Dittmar, J. C., Reid, R. J., Rothstein, R. ScreenMill: a freely available software suite for growth measurement, analysis and visualization of high-throughput screen data. BMC Bioinformatics. 11, 353 (2010).
  18. Longley, D. B., Harkin, D. P., Johnston, P. G. 5-fluorouracil: mechanisms of action and clinical strategies. Nat Rev Cancer. 3, 330-338 (2003).
  19. Lum, P. Y., et al. Discovering modes of action for therapeutic compounds using a genome-wide screen of yeast heterozygotes. Cell. 116, 121-137 (2004).
  20. Toussaint, M., Conconi, A. High-throughput and sensitive assay to measure yeast cell growth: a bench protocol for testing genotoxic agents. Nat Protoc. 1, 1922-1928 (2006).
  21. Robinson, M. D., Grigull, J., Mohammad, N., Hughes, T. R. FunSpec: a web-based cluster interpreter for yeast. BMC Bioinformatics. 3, 35 (2002).
  22. Huang da, W., Sherman, B. T., Lempicki, R. A. Systematic and integrative analysis of large gene lists using DAVID bioinformatics resources. Nat Protoc. 4, 44-57 (2009).
  23. Huang da, W., Sherman, B. T., Lempicki, R. A. Bioinformatics enrichment tools: paths toward the comprehensive functional analysis of large gene lists. Nucleic Acids Res. 37, 1-13 (2009).
  24. Hong, E. L., et al. Gene Ontology annotations at SGD: new data sources and annotation methods. Nucleic Acids Res. 36, D577-D581 (2008).
  25. Fang, F., Hoskins, J., Butler, J. S. 5-fluorouracil enhances exosome-dependent accumulation of polyadenylated rRNAs. Mol Cell Biol. 24, 10766-10776 (2004).
  26. Baba, T., et al. Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection. Mol Syst Biol. 2, 0008 (2006).
  27. Nichols, R. J., et al. Phenotypic landscape of a bacterial cell. Cell. 144, 143-156 (2011).
  28. Dai, J., et al. Probing nucleosome function: a highly versatile library of synthetic histone H3 and H4 mutants. Cell. 134, 1066-1078 (2008).

Play Video

Cite This Article
Dilworth, D., Nelson, C. J. Rapid Identification of Chemical Genetic Interactions in Saccharomyces cerevisiae. J. Vis. Exp. (98), e52345, doi:10.3791/52345 (2015).

View Video