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Articolo metodologico

Un semplice e rapido protocollo non-enzimaticamente dissociare freschi tessuti umani per l'analisi di linfociti infiltranti

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DOI:

10.3791/52392

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6 dicembre 2014

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive la rapida dissociazione non enzimatica di frammenti di tessuto umano fresco per la valutazione qualitativa e quantitativa delle cellule CD45+ (linfociti/leucociti) presenti in vari tessuti umani normali e maligni. Inoltre, il surnatante ottenuto dall'omogenato del tessuto primario può essere raccolto e conservato per ulteriori analisi o sperimentazioni.

Abstract

La capacità delle cellule maligne di eludere il sistema immunitario, caratterizzata dalla fuga del tumore da entrambe le risposte immunitarie innate e adattative, è ormai accettato come un importante segno distintivo di cancro. La nostra ricerca sul cancro al seno si concentra sul ruolo attivo che tumorali infiltranti linfociti svolgono nella progressione tumorale e outcome dei pazienti. Verso questo obiettivo, abbiamo sviluppato una metodologia per la rapida isolamento delle cellule linfoidi intatte dai tessuti normali e anormali nel tentativo di valutarli in prossimità al loro stato originario. Omogenati preparati utilizzando un dissociatore spettacolo meccanico sia aumentata la vitalità delle cellule e di recupero, mantenendo l'espressione del recettore di superficie rispetto tessuti enzima-digerite. Inoltre, la digestione enzimatica del materiale insolubile restante non ha recuperato CD45 + cellule supplementari indicano che le misurazioni quantitative e qualitative nella omogeneizzato primario probabile riflettano effettivamente sottopopolazioni infiltrano nel Fragm tessutient. Le cellule linfoidi in questi omogenati possono essere facilmente caratterizzata usando immunologica (fenotipo, proliferazione, etc.) o molecolare (DNA, RNA e / o proteine) approcci. Cellule CD45 + possono essere utilizzati anche per la purificazione sottopopolazione, l'espansione in vitro o crioconservazione. Un ulteriore vantaggio di questo approccio è che il supernatante tessuto primaria da omogenati può essere utilizzato per caratterizzare e confrontare citochine, chemochine, immunoglobuline e antigeni presenti in tessuti normali e maligni. Questa funzione di protocollo estremamente bene per i tessuti mammari umani e dovrebbero essere applicate a una vasta gamma di tessuti normali e anormali.

Introduzione

Il microambiente tumorale è composto da vari tipi di cellule con numerosi studi che dimostrano che ognuno di essi svolge un ruolo distinto e importante nella tumorigenesi1,2. Questi includono, ma non sono limitati a, cellule immunitarie infiltranti, cellule stromali, cellule endoteliali e cellule tumorali3. Studi ex vivo sui linfociti infiltranti il tumore (TIL; Le cellule CD45+ o leucociti, che sono prevalentemente linfociti nei tumori al seno) da campioni di tessuto umano fresco sono rese difficili dalla loro bassa frequenza, dalle piccole dimensioni dei campioni spesso disponibili per la ricerca e dalla potenziale perdita d....

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Protocollo

NOTA: Tutti i campioni sono stati acquisiti utilizzando un protocollo approvato dal Comitato Etico Medico dell'Istituto Jules Bordet con il consenso informato scritto ottenuto da ogni paziente.

1. Preparazione del tessuto omogenato

  1. Sezionare tessuti asportati (tessuto maligno e normale resezione dalla sala operatoria) sono nel laboratorio di patologia da personale qualificato per il ritiro immediato. Tumore, NANT (presa la distanza maggiore dal tumore possibile) e frammenti di tessuto normale sono comunemente trattati nell'ambito 1 - 3 ore di escissione chirurgica in un laboratorio BSL2 utilizzando le procedure di biosi....

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Risultati

La digestione enzimatica di frammenti di tessuto sia con soluzioni disponibili in commercio dissociazione tessuto o varie miscele di laboratorio di collagenasi, DNasi e / o inibitori ialuronidasi, unirà un'ampia varietà di recettori presenti sulla superficie delle cellule. I nostri studi, inizialmente concentrati sulle cellule CD4 + T infiltranti i tumori al seno, sono stati rapidamente presentati con un grave problema tecnico dovuto alla scissione dei recettori CD4 superficie utilizzando enzimatici stand.......

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Discussione

Questo studio descrive un metodo ottimizzato per la rapida preparazione di normali e maligne omogenati di tessuto mammario senza digestione enzimatica per la successiva separazione delle cellule, l'estrazione, la crioconservazione e / o l'analisi fenotipica di CD45 + sottopopolazioni. L'obiettivo di questo approccio sperimentale è quello di produrre immagini della TIL che riflettono strettamente il loro stato in vivo e confrontarle con tessuti normali con la manipolazione minima dei tessu.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano che non esiste alcun conflitto di interessi.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni fromthe Fondo belga per la Ricerca Scientifica (FNRS), Les Amis de l'Institut Bordet, FNRS-Opération Télévie, Piano di cancro del Belgio, Fonds Lambeau-Marteaux, Fonds JC Heuson e Fonds Barsy.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
GentleMacs DissociatorMiltenyi Biotec130-093-235BD Medimachine è in qualche modo equivalente
Centrifuga 5810 REppendorfo altra centrifuga da tavolo standard
Centrifuga 5417 REppendorfo altra microcentrifuga standard
Esco Classe II A2 Biosafety CabinetESCO globaleo altra cappa
BSL2 standardMicroscopio invertitoNikon eclipse TS100o altro microscopio compatibile per un emacitometro
Bü Camera diMarienfield640210o altro ematocitometro standard
Citometro a flusso NaviosBeckman Coultero altro citometro a flusso (8-10 colori consigliati)
GentleMacs C-TubeMiltenyi Biotec130-096-344BD Medimachine utilizza Filcon
Cell Culture DishSarstedt72.710o altri materiali plastici non pirogeni
Bisturi monousoSwann-Morton0510o bisturi sterile monouso standard
BD Cell Strainer 40 & micro; mBecton Dickinson734-0002o altra plastica apirogena
BD Falcon Tube 50 mlBecton Dickinson352070o altra plastica apirogena
BD Falcon Tube 15 mlBecton Dickinson352097o altra plastica apirogena
BD FACS Tube 5 mlBecton Dickinson352008o altra plastica apirogena
Sterile Pasteur Pipetta 5 mlVWR612-1685o altra plastica apirogena
Tubo per microfuga 1,5 mlEppendorf7805-00o altra plastica apirogena
X-Vivo 20LonzaBE04-448Qterreno privo di siero consigliato
Soluzione salina tamponata con fosfatoLonzaBE17-516Ffisiologico standard PBS
Blu di tripanoVWR17942Eo altra macchia vitale
VersaLyseBeckman CoulterA09777per esperimenti di citometria a flusso
Fattibilità fissabile Colorante eFluor 780eBioscience65-0865-14per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD3 FITCBD Biosciences345763per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD3 Vio BlueMiltenyi Biotec130-094-363per esperimenti
di citometria a flussoanti-CD4 PEBD Biosciences345769per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD4 APCMiltenyi Biotec130-091-232per esperimenti di citometria
a flusso anti-CD8 ECDBeckman Coulter737659per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD8 PerCPBD Biosciences345774per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD19 APC-Vio770Miltenyi Biotec130-096-643per esperimenti di citometria a flusso
anti-CD45 VioGreenMiltenyi Biotec130-096-906per esperimenti di citometria a flusso

Riferimenti

  1. Chen, D. S., Mellman, I. Oncology meets immunology: the cancer-immunity cycle. Immunity. 39 (1), 1-10 (2013).
  2. Boudreau, A., van't Veer, J. L., Bissell, M. J. An 'elite hacker': breast tumors exploit the normal microenvironment pr....

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