Summary

Biofunctionalized普鲁士蓝纳米粒子多式联运分子成像应用

Published: April 28, 2015
doi:

Summary

This protocol describes the synthesis of biofunctionalized Prussian blue nanoparticles and their use as multimodal, molecular imaging agents. The nanoparticles have a core-shell design where gadolinium or manganese ions within the nanoparticle core generate MRI contrast. The biofunctional shell contains fluorophores for fluorescence imaging and targeting ligands for molecular targeting.

Abstract

多峰的,分子成像允许在使用多个互补的成像技术的蜂窝,亚细胞和分子水平的分辨率的生物过程的可视化。这些显像剂促进途径和机制在体内 ,这对提高诊断和治疗功效的实时评估。本文介绍的协议biofunctionalized普鲁士蓝纳米颗粒的合成(PB NPS) – 一类新的药物用于在多峰分子成像应用。在纳米颗粒,荧光成像和磁共振成像(MRI)掺入所述成像模态,具有互补的特性。该PB纳米粒具有一个核-壳的设计,其中钆和锰离子在PB晶格的间隙空间内掺入产生MRI对比,二者T中1和T 2 -加权序列。该PB纳米粒涂覆有荧光抗生物素蛋白使用静电自如sembly,使荧光成像。该抗生物素蛋白涂覆的纳米颗粒修饰赋予分子的定位功能,以纳米颗粒的生物素化配体。纳米粒子的稳定性和毒性测定,以及它们的核磁共振驰豫。这些biofunctionalized PB纳米颗粒的多,分子成像能力,然后利用他们为荧光成像和体外分子MRI表现。

Introduction

分子成像是生物过程在细胞,亚细胞和分子水平1的非侵入性的和有针对性的可视化。分子成像允许样品保持其天然的微环境,而其内源性途径和机制实时进行评估。通常情况下,分子成像涉及小分子,大分子,或纳米粒子可视化,目标,和跟踪有关的生理过程的形式的外源成像剂被研究2的管理。已探索了在分子成像的各种成像方式包括MRI,CT,PET,SPECT,超声,光声学,拉曼光谱,生物发光,荧光和活体显微镜3。多峰成像是两种或多种成像模态,其中所述组合增强可视化和表征的各种生物过程和事件4的能力相结合。 Multimoda升成像利用的各个成像技术的优势,同时补偿其个人的局限性3。

本文介绍的协议biofunctionalized普鲁士蓝纳米颗粒的合成(PB NPS) – 一类新的多峰分子成像剂。该PB纳米颗粒被用于荧光成像和分子MRI。 PB是颜料由交替铁(II)和铁(III)中的原子面心立方网络( 图1)。该PB晶格是由在铁线性氰化物配体- CN -铁连杆并入阳离子来平衡其三维网络5内的收费。 PB的掺入阳离子成其晶格的能力是由分别装入钆和锰离子进入该PB纳米粒为MRI造影利用。

对于追求纳米设计的MRI造影的基本原理是因为优点这种设计提供了相对于目前的MRI造影剂。美国FDA批准的MRI造影剂的绝大多数是钆螯合物是顺磁性的性质,并提供正的对比度的自旋-晶格松弛机构6,7,8。相比于单钆螯合物,具有低信号强度在其自己的,纳米颗粒的该PB晶格内的多个钆离子的掺入提供了增强的信号强度(阳性对照)3,9。此外,多个钆离子的PB晶格内的存在增加了整体的自旋密度和纳米颗粒的顺磁性的幅度,这扰乱在其附近的局部磁场,从而产生负反差的自旋 – 自旋松弛机理。因此,含钆纳米粒子两者的作用为T 1(正)和T 2(负)的造影剂10,11。

患者肾功能受损的一个子集,钆造影剂的管理已与肾系统纤维化8,12,13的发展。这一发现促使调查使用替代顺磁离子造影剂的MRI。因此,纳米颗粒的多功能设计适于该PB晶格内掺入锰离子。类似于钆螯合物,锰螯合物也顺磁性,并且通常用来提供正信号强度中的MRI 7,14。作为与含钆PB纳米粒,含锰PB纳米粒也起到为T 1(正)和T 2(负)的造影剂。

掺入 ​​荧光成像能力,所述纳米颗粒“核”涂有“生物功能”外壳组成的荧光标记的糖蛋白抗生物素蛋白( 图1)。抗生物素蛋白不仅使荧光成像,而且也作为一个对接平台,针对特定的细胞和组织的生物素化的配体。该抗生物素蛋白-生物素键是其特征在于抗生物素蛋白和生物素15之间非常强的结合亲和力最强已知的,非共价键中的一个。生物素化配体与抗生物素蛋白包被的纳米颗粒的PB附着赋予分子的定位功能,在PB纳米颗粒。

动机使用PB纳米粒追求荧光和磁共振成像是因为这些成像模式具有互补的特点。荧光成像是一种最广泛使用的光学分子成像技术之一,并且允许对多个对象中的高灵敏度1,16,17同时可视化。荧光成像是一种安全,无创方式,但与普及率低的深度和空间分辨率1,3,16有关。另一方面,MRI产生高时间的二维空间分辨率非侵入和而不需要电离辐射1,3,16。然而磁共振患有低灵敏度。因此荧光成像和MRI被选定作为分子成像技术由于穿透深度,灵敏度和空间分辨率它们的互补特征。

本文介绍了协议的PB纳米颗粒的合成和biofunctionalization,PB纳米颗粒(GdPB)和含钆PB纳米颗粒(MnPB)10,11含锰。以下方法描述:1)测量的大小,电荷,和纳米颗粒的经时稳定性,纳米颗粒,MRI弛豫3)测定的细胞毒性的2)的评价,和4)利用所述纳米粒子为荧光和分子MR成像的的靶细胞在体外的群体。这些结果表明了纳米颗粒的电势用作体内多峰的,分子成像剂。

Protocol

1.合成PB纳米粒子,GdPB和MnPB的的纳米颗粒(纳米颗粒的PB,GdPB或MnPB)的合成是使用一釜合成方案通过执行下面详述的步骤来实现的: 制备溶液“A”含有在去离子(DI)水加入5ml的5mM亚铁氰化钾(II)中。取决于纳米颗粒的类型被合成 – PB纳米粒,GdPB或MnPB,制备溶液“B”,如下所示: 为 PB纳米粒:制备10ml含有2.5mM的铁(III),氯化在去离子水中的…

Representative Results

使用一锅合成方案中,纳米粒子的PB纳米粒(平均直径78.8纳米,多分散性指数(PDI)= 0.230;通过动态光散射仪器来计算),GdPB(平均直径164.2纳米,PDI = 0.102),或MnPB(平均直径122.4纳米,PDI = 0.124),它们是单分散(如通过DLS测得的)可以被一致地合成( 图2A)。合成纳米颗粒的测得的ζ电位小于-30毫伏( 图2B),这表明基于它们的表面电荷的粒子的适度稳定性。合成的?…

Discussion

本文提出的方法为一类新的基于biofunctionalized普鲁士蓝纳米颗粒的多峰分子成像剂的合成。掺入纳米颗粒中的分子成像模式是荧光成像和分子MRI检查,由于它们的互补特征。该biofunctionalized普鲁士蓝纳米粒子具有核 – 壳设计。在这些纳米颗粒的合成中的关键步骤是:1)一釜合成这产生了被包括普鲁士蓝纳米颗粒的核心(PB NPS),含钆普鲁士蓝纳米颗粒(GdPB),或含锰普鲁士蓝纳米颗粒(MnPB),2?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Sheikh Zayed Institute for Pediatric Surgical Innovation (RAC Awards #30000174 and 30001489).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Potassium hexacyanoferrate (II) trihydrate (K4Fe(CN)6 · 3H2O) Sigma-Aldrich P9387
Manganese (II) chloride tetrahydrate (MnCl2 · 4H2O) Sigma-Aldrich 221279
Gadolinium (III) nitrate hexahydrate (Gd(NO3)3 · 6H2O) Sigma-Aldrich 211591
Iron (III) chloride hexahydrate (FeCl3 · 6H2O) Sigma-Aldrich 236489
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S9888
Anti-NG2 Chondroitin Sulfate Proteoglycan, Biotin Conjugate Antibody Millipore AB5320
Biotinylated Anti-Human Eotaxin-3 Peprotech 500-P156GBT
Neuro-2a Cell Line ATCC CCL-131
BSG D10 Cell Line Lab stock
OE21 Cell Line Sigma-Aldrich 96062201
SUDIPG1 Neurospheres Lab stock
Eol-1 Cell Line Sigma-Aldrich 94042252
Poly(L-lysine) hydrobromide Sigma-Aldrich P1399
Formaldehyde Sigma-Aldrich F8775
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A2153
Aminoactinomycin D Sigma-Aldrich A9400
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100
CellTrace Calcein Red-Orange, AM Life Technologies C34851
Avidin-Alexa Fluor 488 Life Technologies A21370
Centrifuge Eppendorf 5424
Peristaltic Pump Instech P270
Zetasizer Nano ZS Malvern ZEN3600
Sonicator QSonica Q125
Hot Plate/Magnetic Stirrer VWR 97042-642
Ultra Clean Aluminum Foil VWR 89107-732
Vortex Mixer VWR 58816-121
1.7 mL conical microcentrifuge tubes VWR 87003-295
15 mL conical centrifuge tubes VWR 21008-918
Tube holders VWR 82024-342
Disposable plastic cuvettes VWR 7000-590 (/586)
Zetasizer capillary cell VWR DTS1070
Centrifugal Filters, 0.2 micrometer spin column VWR 82031-356
96-well cell culture tray VWR 29442-056
Trypsin EDTA 0.25% solution 1X JR Scientific 82702
Cell Culture Grade PBS (1X) Life Technologies 10010023
XTT Cell Proliferation Assay Kit Trevigen 4891-025-K
T75 Flask 89092-700 VWR
Dulbecco's Modified Eagle's Medium Biowhitaker 12-604Q
Fetal Bovine Serum Life Technologies 10437-010
Pen-Strep 1X Life Technologies 15070063
Fluoview FV1200 Confocal Laser Scanning Microscope Olympus FV1200
Chambered Microscope Slides Thermo Scientific 154534
Micro Cover Glasses, Square, No. 1.5 VWR 48366-227
Microscope Slides VWR 16004-368
RPMI Sigma-Aldrich R8758 
Agarose Sigma-Aldrich A9539 
FACSCalibur Flow Cytometer BD Biosciences
3 T Clinical MRI Magnet GE Healthcare
100 mL round-bottom flask

References

  1. Massoud, T. F., Gambhir, S. S. Molecular imaging in living subjects: seeing fundamental biological processes in a new light. Genes Dev. 17, 545-580 (2003).
  2. Mankoff, D. A. A Definition of Molecular Imaging. J Nucl Med. 48 (6), 18N-21N (2007).
  3. James, M. L., Gambhir, S. S. A Molecular Imaging Primer: Modalities, Imaging Agents, and Applications. Phys Rev. 92, 897-965 (2012).
  4. Cao, W., Chen, X. Multimodality Molecular Imaging of Tumor Angiogenesis. J Nucl Med. 49 (2), 113S-129S (2008).
  5. Heinrich, J. L., Berseth, P. A., Long, J. R. Molecular Prussian Blue analogues: synthesis and structure of cubic Cr4Co4(CN)12 and Co8(CN)12 clusters. Chem Commun. 11, 1231-1232 (1998).
  6. . . Molecular Imaging and Contrast Agent Database (MICAD). , (2004).
  7. Zhu, D., Liu, F., Ma, L., Liu, D., Wang, Z. Nanoparticle-Based Systems for T1-Weighted Magnetic Resonance Imaging Contrast Agents. Int J Mol Sci. 14 (5), 10607-1010 (2013).
  8. Bartolini, M. E., et al. An investigation of the toxicity of gadolinium based MRI contrast agents using neutron activation analysis. Magn. Reson. Imaging. 21 (5), 541-544 (2003).
  9. Adel, B., et al. Histological validation of iron-oxide and gadolinium based MRI contrast agents in experimental atherosclerosis: The do’s and don’t’s. Atherosclerosis. 225 (2), 274-280 (2012).
  10. Dumont, M. F., Yadavilli, S., Sze, R. W., Nazarian, J., Fernandes, R. Manganese-containing Prussian blue nanoparticles for imaging of pediatric brain tumors. Int J Nanomedicine. 9, 2581-2595 (2014).
  11. Dumont, M. F., et al. Biofunctionalized gadolinium-containing prussian blue nanoparticles as multimodal molecular imaging agents. Bioconjug Chem. 25 (1), 129-137 (2014).
  12. Yang, L., et al. Nephrogenic Systemic Fibrosis and Class Labeling of Gadolinium-based Contrast Agents by the Food and Drug Administration. Radiology. 265 (1), 248-253 (2012).
  13. Mendonca-Dias, M. H., Gaggelli, E., Lauterbur, P. C. Paramagnetic contrast agents in nuclear magnetic resonance medical imaging. Sem in Nuc Med. 13 (4), 364-376 (1983).
  14. Izrailev, S., Stepaniants, S., Balsera, M., Oono, Y., Schulten, K. Molecular Dynamics Study of Unbinding of the Avidin-Biotin Complex. Biophys. 72 (4), 1568-1581 (1997).
  15. Chen, Z. Y., et al. Advance of Molecular Imaging Technology and Targeted Imaging Agent in Imaging and Therapy. Biomed Res Int. 2014, 1-12 (2014).
  16. Weissleder, R., Pittet, M. J. Imaging in the era of molecular oncology. Nature. 452 (7187), 580-589 (2008).
  17. Jaiswal, J. K., Mattoussi, H., Mauro, J. M., Simon, S. M. Long-term multiple color imaging of live cells using quantum dot bioconjugates. Nature Biotech. 21 (1), 47-51 (2002).
  18. Mangrum, W., Christianson, K., Duncan, S., Hoang, P., Song, A., Merkle, E. . Duke Review of MRI Principles. 304, 304 (2012).
  19. Shokouhimehr, M., Soehnlen, E. S., Hao, J., Griswold, M., Flask, C., Fan, X., Basilion, J. P., Basu, S., Huang, S. D. Dual purpose prussian blue nanoparticles for cellular imaging and drug delivery: a new generation of T1-weighted MRI contrast and small molecule delivery agents. J. Mater. Chem. 20, 5251-5259 (2010).
  20. Hoffman, H. A., Chakrabarti, L., Dumont, M. F., Sandler, A. D., Fernandes, R. Prussian blue nanoparticles for laser-induced photothermal therapy of tumors. RSC Adv. 4 (56), 29729-29734 (2014).

Play Video

Cite This Article
Vojtech, J. M., Cano-Mejia, J., Dumont, M. F., Sze, R. W., Fernandes, R. Biofunctionalized Prussian Blue Nanoparticles for Multimodal Molecular Imaging Applications. J. Vis. Exp. (98), e52621, doi:10.3791/52621 (2015).

View Video