Summary

Avledning av Highly Purified kardiomyocytter fra menneskeskapte Pluripotent stamceller ved hjelp av små Molecule-modulert Differensiering og Følgende Glucose Sult

Published: March 18, 2015
doi:

Summary

Here, we describe a robust protocol for human cardiomyocyte derivation that combines small molecule-modulated cardiac differentiation and glucose deprivation-mediated cardiomyocyte purification, enabling production of purified cardiomyocytes for the purposes of cardiovascular disease modeling and drug screening.

Abstract

Menneskeskapte pluripotent stamcelle-avledet cardiomyocytes (hiPSC-CMS) har blitt en viktig celle kilde for å løse mangelen på primær kardiomyocytter tilgjengelige for grunnforskning og translasjonsforskning applikasjoner. For å skille hiPSCs inn kardiomyocytter, har ulike protokoller inkludert embryoid kroppen (EB) -basert differensiering og vekstfaktor induksjon blitt utviklet. Disse protokollene er ineffektiv og meget variabel i deres evne til å generere rensede kardiomyocytter. Nylig ble et lite molekyl-basert protokoll benytter modulering av Wnt / β-catenin signale vist seg å fremme differensiering hjerte med høy effektivitet. Med denne protokoll, var større enn 50% -60% av differensierte celler hjerte troponin-positive kardiomyocytter ble konsekvent observert. For ytterligere å øke cardiomyocyte renhet ble de differensierte cellene utsettes for glukose sult for spesifikt å eliminere ikke-kardiomyocytter basert på den metabolske forskjellens mellom cardiomyocytes og ikke-kardiomyocytter. Ved hjelp av dette valget strategi, vi konsekvent fått en større enn 30% økning i forholdet mellom kardiomyocytter til ikke-cardiomyocytes i en populasjon av differensierte celler. Disse høyt rensede kardiomyocytter bør forbedre påliteligheten av resultatene fra menneskelig IPSC-basert in vitro sykdom modelleringsstudier og narkotika screening-analyser.

Introduction

Primære humane kardiomyocytter er vanskelig å oppnå på grunn av kravet til invasive biopsier, vanskeligheter med å dissosiere til enkeltceller, og på grunn av dårlig langtidscelleoverlevelse i kultur. Gitt denne mangel på primære humane kardiomyocytter, pasient-spesifikke menneskeskapte pluripotent stamcelle-avledet cardiomyocyte (hiPSC-CM) teknologi har vært ansett som en kraftig alternativ cardiomyocyte kilde for grunnforskning samt kliniske og translasjonsforskning applikasjoner som sykdom modellering og narkotika oppdagelse en. Tidlig innsats i å differensiere pluripotente stamceller inn kardiomyocytter ansatt differensiering protokoller ved hjelp av embryoid organer (EBS), men denne metoden er ineffektiv i produserende cardiomyocytes fordi ofte mindre enn 25% av cellene i en EB er juling cardiomyocytes 2,3. Relativt, en monolayer basert differensiering protokollen ved hjelp av cytokiner aktivin A og BMP4 vises en høyere virkningsgrad enn EBS, mendenne protokollen er fortsatt relativt ineffektiv, krever dyre vekstfaktorer, og fungerer kun i et begrenset antall menneskelige pluripotente stamcellelinjer 4. Nylig ble en svært effektiv, hiPSC monolayer-basert cardiomyocyte differensiering protokoll utviklet av moduler Wnt / β-catenin signale 5. Disse hiPSC-CMs uttrykke hjerte troponin T og alfa actinin, to sarcomeric proteiner som er standard markører for kardiomyocytter 6. Protokollen beskriver her er en tilpasning av denne lite molekyl-baserte, mater celle-fri, mono differensiering metode 5,7. Vi er i stand til å få juling cardiomyocytes fra hiPSCs etter 7-10 dager (Figur 1). Imidlertid, etter en cardiomyocyte differensiering som resulterer i 50% av stolpene celler, farging konsekvent viser eksistensen av en populasjon av ikke-kardiomyocytter som er negative for cardiomyocyte-spesifikke markører så som hjertespesifikk troponin T og alfa-actinin. Til further rense kardiomyocytter og eliminere ikke-kardiomyocytter, ble heterogene differensierte cellepopulasjoner kastet glukose sult ved å behandle dem med en ekstremt lav glukosekulturmedium for flere dager (figur 2). Denne behandling selektivt eliminerer ikke-kardiomyocytter på grunn av evnen til kardiomyocytter, men ikke ikke-kardiomyocytter, for å forbrenne laktat som den primære energikilde for å overleve i et lavt glukose miljø 8. Etter dette rensetrinnet, er en 40% økning i forholdet av kardiomyocytter til ikke-kardiomyocytter observert (figur 3, figur 4), og disse celler kan brukes til nedstrøms genekspresjonsanalyser, sykdoms modellering og medikamentscreeningsanalyser.

Protocol

MERK: Vendor informasjon for alle reagenser som brukes i denne protokollen er oppført i tabell 1 og Materialer List. Alle løsninger og utstyr som kommer i kontakt med cellene må være sterilt og aseptisk teknikk brukes tilsvarende. Utføre alle kultur inkubasjonene i en fuktet 37 ° C, 5% CO 2 inkubator med mindre annet er spesifisert. I denne protokollen, er alle differensiering utført i 6-brønners plater, hvor hiPSCs sås. Etter differensiering og rensing, kan cellen…

Representative Results

De morfologiske endringer under hiPSC differensiering. Den hiPSC dyrket i mater frie plater vokste som flate, todimensjonale kolonier. Ved å nå rundt 85% confluency, ble hiPSCs behandlet med 6 mikrometer tsjir for differensiering (figur 1A). Betydelige mengder av celledød, et normalt og vanlig fenomen ble observert etter 24 timers behandling av Chir. Etter to dager med Chir behandling, hiPSCs fortsatte å skille mot en mesodermal skjebne. I forhold til ce…

Discussion

Innhenting av en stor mengde høyt rensede hiPSC-avledet cardiomyocytes er kritisk for grunnleggende hjerte forskning samt kliniske og translasjonsforskning applikasjoner. Hjerte differensiering protokoller har gjennomgått store forbedringer de siste årene, overgangen fra embryoid body-baserte metoder benytter kardiovekstfaktorer 2, til matrise sandwich-metoder 12, og til slutt til små molekyl-modulert og monolayer-baserte metoder fem. Av de nevnte protokoller, protokollen som er besk…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the NIH/NHBI (U01 HL099776-5), the NIH Director’s New Innovator Award (DP2 OD004411-2), the California Institute of Regenerative Medicine (RB3-05129), the American Heart Association (14GRNT18630016) and the Endowed Faculty Scholar Award from the Lucile Packard Foundation for Children and the Child Health Research Institute at Stanford (to SMW). We also acknowledge funding support from the American Heart Association Predoctoral Fellowship 13PRE15770000, and National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program DGE-114747 (AS).

Materials

Name Company Catalog number
Matrigel (9-12 mg/mL) BD Biosciences 354277
RPMI media Invitrogen 11835055
Glucose free RPMI media Invitrogen 11879-020
B27 Minus Insulin Invitrogen A1895601
B27 Supplement (w/ insulin) Invitrogen 17504-044
Pen-strep antibiotic Invitrogen 15140122
Fetal bovine serum BenchMark 100-106
DMSO Sigma D-2650
ROCK inhibitor Y-27632 EMD Millipore 688000
CHIR99021 Thermo Fisher 508306
IWR1 Sigma I0161
EDTA Invitrogen 15575-020
Accutase Millipore SCR005
Cell lifter Fisher 08-100-240
Cryovial Fisher (NUNC tubes) 375418
TrypLE Select Enzyme Invitrogen 12563-011

References

  1. Sharma, A., Wu, J. C., Wu, S. M. Induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for cardiovascular disease modeling and drug screening. Stem Cell Research & Therapy. 4 (6), 150 (2013).
  2. Kehat, I., et al. Human embryonic stem cells can differentiate into myocytes with structural and functional properties of cardiomyocytes. The Journal of Clinical Investigation. 108 (3), 407-414 (2001).
  3. Zhang, J., et al. Functional cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells. Circulation Research. 104 (4), e30-e41 (2009).
  4. Kattman, S. J., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8 (2), 228-240 (2011).
  5. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  6. Sharma, A., et al. Human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes as an in vitro model for coxsackievirus B3-induced myocarditis and antiviral drug screening platform. Circulation Research. 115 (6), 556-566 (2014).
  7. Lian, X., et al. Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/beta-catenin signaling under fully defined conditions. Nature Protocols. 8 (1), 162-175 (2013).
  8. Tohyama, S., et al. Distinct metabolic flow enables large-scale purification of mouse and human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Cell Stem Cell. 12 (12), 127-137 (2013).
  9. Rodin, S., et al. Long-term self-renewal of human pluripotent stem cells on human recombinant laminin-511. Nature Biotechnology. 28 (6), 611-615 (2010).
  10. Li, X., Meng, G., Krawetz, R., Liu, S., Rancourt, D. E. The ROCK inhibitor Y-27632 enhances the survival rate of human embryonic stem cells following cryopreservation. Stem Cells And Development. 17 (6), 1079-1085 (2008).
  11. Burridge, P. W., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  12. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  13. Burridge, P. W., Keller, G., Gold, J. D., Wu, J. C. Production of de novo cardiomyocytes: human pluripotent stem cell differentiation and direct reprogramming. Cell Stem Cell. 10 (1), 16-28 (2012).

Play Video

Cite This Article
Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J. Vis. Exp. (97), e52628, doi:10.3791/52628 (2015).

View Video