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JoVE Journal Genetics
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Genetics

无基因克隆的基因破坏的变形链球菌菌株的生成

Published: October 23, 2017 doi: 10.3791/56319
Automatic Translation
1, 1, 1,2,3, 1
1Department of Translational Research, Tsurumi University School of Dental Medicine, 2Endowed Department of International Oral Health Science (affiliated with Department of Translational Research), Tsurumi University School of Dental Medicine, 3Cariology and Operative Dentistry, Graduate School of Medical and Dental Sciences, Tokyo Medical and Dental University

Summary

我们描述了一种简便, 快速, 和相对廉价的方法, 产生基因中断的变形链球菌菌株;这种技术可以适应于各种物种的基因中断菌株的产生。

Abstract

典型的解释特定基因的功能的方法包括对野生型菌株和一种被破坏的基因的应变的比较表性分析。基因破坏 DNA 结构包含一个合适的抗生素抗性标记基因是有用的产生基因中断菌株的细菌。然而, 传统的建设方法, 需要基因克隆步骤, 涉及复杂和耗时的协议。在这里, 一个相对简便, 快速, 和 cost-effective 的方法为目标基因的破坏在变形链球菌描述。该方法利用2步融合聚合酶链反应 (PCR) 产生的破坏结构和电穿孔的遗传转化。这种方法不需要酶反应, 除了 PCR, 并提供更大的灵活性, 从设计的破坏结构。电穿孔的使用有利于制备合格的细胞, 提高转化效率。本方法可适用于不同品种的基因阻断菌株的生成。

Introduction

基因功能分析通常涉及一种表型比较的野生类型菌株和应变, 其中一个特定的基因的利益已被打乱。这种基因破坏技术已被用于基因功能分析的各种分类群, 从细菌到哺乳动物。基因中断的构造是产生基因中断的菌株所必需的;这种脱氧核糖核酸 (脱氧核糖核酸) 构造包括与目标基因的上游和下游侧翼区域融合的抗生素抗性标记基因, 并通过同源重组将其纳入基因组。使用含有抗生素的选择性培养基可以分离出基因紊乱的菌株。传统的方法用于构建的基因中断的应变需要复杂的步骤, 如放大的目标基因的聚合酶链反应 (PCR), 结扎基因成合适的质粒, 消化的限制酶, 并 religation 插入抗生素抗性标记基因。这个过程很耗时, 需要几天到几个星期, 取决于每个步骤的成功与否。此外, 破坏构造的设计也依赖于靶基因的限制性酶位点。为了解决这些问题, pcr 的 DNA 剪接方法1,2为设计基因中断的变种人网柄3和Synechocystis sp. PCC68034已报告。在本研究中, 利用一种改进的 pcr 方法 (指定的2步融合 PCR 技术) 来建立一个以相对快速、简便和廉价的方式产生基因中断的链球菌菌株的方法。遗传转化的构造和电穿孔。

2步融合 pcr 需要基因组 DNA, 抗生素抗性标记基因作为 pcr 模板, 和四对适当设计的寡核苷酸引物。在第一步 (1st pcr), 目标基因的一个 1 kb 的上游侧翼区域, 目标基因的一个 1 kb 的下游侧翼区域和抗生素抗性标记基因通过 pcr 放大。反向底漆和前向引物的5个区域分别为上游和下游侧翼区域的放大, 包括与标记基因末端互补的15碱基。标记基因扩增的前、反向引物的5个区域, 类似地包括目标基因上游侧翼区域的下端和目标基因下游侧翼区域的上端的15基。分别.因此, 三放大的片段在融合点包含重叠的30基对区域。在第二步 (2nd pcr) 中, 采用嵌套 pcr 引物进行 pcr, 使用 1st pcr 作为模板放大的三片段。模板的互补区域通过 2nd PCR 相互连接。最后, 采用电穿孔法对野生型菌株进行同源重组的构造。成功的基因破坏可以通过 PCR 方法通过特异的引物来验证。虽然破坏结构使用高保真 dna 聚合酶放大, 但额外的酶反应, 如 dna 结扎或 dna 消化, 是不需要生成的结构。此外, 在基因组上的一个被删除或保留的区域可以根据底漆的设计灵活地选择。

在目前的工作中, 删除的整个编码区域的gtfC基因, 编码葡萄糖在变形链球菌, 是为了证明快速, 容易的基因破坏方法的链球菌物种。此外, 以相同的方式生成了gtfB中断的应变。由gtfC和gtfB编码的 glucosyltransferases 有助于龋牙科生物膜的开发5,6。对野生型菌株的生物膜形成能力 (变形量)、 gtfC-被破坏的应变 (变形者δgtfC) 和gtfB中断的应变 (变形者δgtfB) 进行了评估用于比较表型分析。这个协议扩展了 two-step 方法的应用为基因中断对一个另外的种类和可能被修改对基因功能的研究在更大的种类分类群。

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Protocol

1. 入门设计

  1. 准备2步融合 PCR 的引物和基因破坏的验证.
    注意: 表 1 显示了本协议中使用的入门序列。 图 1 显示了用于生成 变形链球菌 和 #916 的2步融合 PCR 方法的示意图; gtfC 。
    1. 设计用于在基因组中替换目标区域的霉抗性基因 ( spc r ) 7 。此协议将 gtfC 基因的整个编码区域替换为 spc r 。
    2. 在5和 #39 中包括与 "spc" r 的上、下两端互补的15基, 分别为上反转和下向引物的区域。同样, 还包括与 gtfC 的上游侧翼区域的下端以及在5和 #39 上的 gtfC 的下游侧翼区域的上端互补的15基地; spc r 前向和 spc 的区域 -分别反转底漆 ( 图 1A )。 注意: 上反转、下向前、 spc r 前向和 spc r 反向底漆的顺序将根据中断构造的合并站点自动确定.
    3. 设计向上和向下反转引物以构成和 #62; gtfC 基因的上游和下游侧翼区域分别为 1 kb。根据上反和下向引物的熔化温度分别设置前向和向下反转底漆的熔化温度 ( T m ) ( 图 1A ).
      注意: 请参阅以下公式以确定 T m : T m (and #176; C) = 2 (* NA + * NT) + 4 (* NC + NG)-5, 其中 ** 表示具有指定标识 (A、T、C 或 G) 的入门核苷酸的数量.
    4. 设计 2 nd PCR ( 图 1B ) 的嵌套底漆 (N_up 前向和 N_up).
      注: 虽然最外层的底漆对 (向前和向下反转) 可用作 2 nd PCR 的引物, 但在本协议中设计了嵌套底漆 (N_up 和 N_up 反转)。2 nd PCR 通常需要嵌套的底漆, 详见 代表性结果 。
    5. 设计特定于 spc r 的底漆。该引物用于菌落 PCR 筛选 gtfC 中断.
    6. 设计用于验证 gtfC 中断的底漆.
      注: 使用这些引物扩增的 PCR 产品横跨 gtfC 或 spc r 和 gtfC 的上游或下游侧翼区域之间的边界。入门集和 #39; gtfC 前向和 gtfC 上-反向和 #39; 和 #39; gtfC 下向前和 gtfC 向下反转和 #39; 特定于 gtfC 和 #39; gtfC 前向和 spc r 2-反转和 #39; 和 #39; spc r 2 向前和 gtfC 下反转和 #39; spc r 的特定项。

2。基因组 DNA 从 s. 变形

  1. 条纹储存牡丹 s UA159 到脑心输液 (BHI) 琼脂板上。在厌氧条件下, 在37和 #176 的夜间孵育盘.
  2. 用一根消毒过的牙签拿起一个菌落, 将它接种到5毫升的 BHI 汤中。将 s. 牡丹 的区域性一夜之间孵化为37和 #176; C 在厌氧条件下.
  3. 在2000和 #215 离心细菌细胞培养15分钟; 重5毫升磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 中的细胞颗粒.
  4. 在2000和 #215 离心15分钟; 重200和 #181 中的细胞小球; PBS 的 L.
  5. 根据制造商提供的说明从悬浮液中提取基因组 dna, 使用珠 beating-base 基因组 dna 提取试剂盒.
    1. 将悬浮液传输到包含玻璃珠的2.0 毫升样品管 (包括在套件中)。在细胞悬浮液中加入750和 #181; L 溶解溶液 (包括在试剂盒中).
    2. 盖紧并将管子对称地放在磁珠跳动的破坏装置的管架上。在最高速度为5分钟的过程。在1万和 #215 离心1分钟的微珠样品; g. 将上清液转移到旋转过滤器 (包括在套件中) 在2.0 毫升收集管和离心机为 1 min 在7000和 #215; g .
    3. 添加1200和 #181; L 的 DNA 结合缓冲 (包括在工具箱中) 到滤液。将800和 #181 的混合物转到自旋柱 (包括在套件中), 以2.0 毫升的收集管和离心机1分钟, 在1万和 #215; g.
    4. 丢弃流式, 添加200和 #181; l 清洗缓冲器 (包括在套件中), 以洗涤柱矩阵, 离心1分钟, 在1万和 #215; g. 丢弃流, 添加500和 #181; 洗涤缓冲器 (包括在套件中) 的旋转柱洗柱矩阵, 离心1分钟, 在1万和 #215; g.
    5. 将自旋列放入新的 1.5 mL 离心管中, 并将100和 #181 的洗脱缓冲器 (包括在套件中) 添加到柱形矩阵中.
    6. 离心三十年代在1万和 #215; g 洗基因组 DNA。通过测量 260 nm 和 280 nmusing 分光光度计的吸光度来估计 DNA 浓度和纯度, 并确认 260 / 280 比率大于 1.8.

3。pcr 放大

  1. 执行 1 st pcr 使用牡丹 s 基因组和合成的 spc r 基因作为 pcr 模板 (参见 表 1 )。使用上面描述的三套引物 ( 图 1A ), 放大 gtfC 基因的上游侧翼区域、 gtfC 基因的下游侧翼区域以及 spc r 基因, 按 表 2 和 表 3 .
    注: PCR 引物、试剂和扩增周期分别在 表 1 、 表 2 和 表 3 中进行了总结.
  2. 在1% 琼脂糖凝胶上分级每个 PCR 产品, 并使用凝胶带切割器对相应的频段进行切除.
  3. 使用自旋柱和硅胶膜凝胶萃取试剂盒从凝胶中纯化每个放大的 DNA 产物.
    1. 将凝胶切片转换为干净的离心管, 并将其与500和 #181; L 绑定缓冲区 (包括在套件中)。将混合物孵育在55和 #176; C 为15分钟, 直到凝胶切片完全溶解.
    2. 将自旋列 (包括在套件中) 放入收集管 (包括在套件中), 将样品加载到自旋柱上, 并在1.1万和 #215 上离心三十年代; g 。放弃流动, 添加600和 #181; 洗涤缓冲器 (包括在套件中), 以洗涤硅胶膜, 并离心三十年代在1.1万和 #215; g .
    3. 在1.1万和 #215 丢弃流经和离心机2分钟; g 干燥二氧化硅膜.
    4. 将自旋列放入一个新的 1.5 mL 离心管中, 添加50和 #181; L 洗脱缓冲液 (包括在套件中), 室温孵育2分钟.
    5. 在1.1万和 #215 离心2分钟; g 洗放大的 DNA。通过测量 260 nm 和 280 nmusing 分光光度计的吸光度来估计 DNA 浓度和纯度, 并确认 260 / 280 比率大于 1.8.
  4. 使用三近似摩尔片段作为 pcr 模板执行2步融合 pcr 的 2 nd pcr, 按 表 2/st荣 > 和 表 3 .
    注意: 这些片段被放大和拼接使用嵌套的引物和 #39; N_up 向前和 N_down-反向和 #39; 或最外层的底漆和 #39; 向上和向下反转和 #39; ( 图 1B )。PCR 引物、试剂和扩增周期分别在 表 1 、 表 2 和 表 3 中进行了总结.
  5. 在0.8% 琼脂糖凝胶上加载1/10 的 PCR 反应混合物 (5 和 #181; L), 并将放大的带大小与预期的带大小进行比较, 以确认适当的增 ( 图 1C ) 的生成.
  6. 将剩余的最终 PCR 产物浓缩为无纯化的乙醇沉淀.
    1. 添加55和 #181; 超纯水到剩余的 PCR 混合物调整总容量到100和 #181; l. 添加1/10 卷的3米醋酸钠 (10 和 #181; l), pH 5.2, 其次是2.5 量的100% 乙醇 (250 和 #181; l)。在-80 和 #176 中混合和冻结30分钟; C.
    2. 离心20分钟, 在1.5万和 #215; g 在4和 #176; C, 检查管底部的颗粒, 并丢弃上清液。用1毫升70% 乙醇洗涤颗粒, 离心5分钟, 在1.5万和 #215; g 在4和 #176; C, 并丢弃上清。空气干燥颗粒约30分钟, 溶解与10和 #181; 超纯水的 L.

4。合格的细胞制备和细胞转化

  1. 条纹股票 牡丹 s UA159 到 BHI 琼脂板上。在厌氧条件下, 在37和 #176 的夜间孵育盘.
  2. 用一根消毒过的牙签拿起一个菌落, 将它接种到5毫升的 BHI 汤中。将 s. 牡丹 的区域性一夜之间孵化为37和 #176; C 在厌氧条件下.
  3. 将2毫升的 S. 牡丹 s 培养到50毫升的 BHI 汤, 并在37和 #176 孵育6-8 小时; C 到光学密度在600毫微米 (OD 600 ) 0.2-0.4 在厌氧条件下.
  4. 在2000和 #215 离心细胞15分钟; g at 4 和 #176; C、丢弃上清, 然后用40毫升的 ice-cold 水冲洗两次细胞, 然后40毫升10% 的甘油.
    注: 残余物质会影响随后的电穿孔.
  5. 用巴斯德吸管将上清液仔细吸出, 因为在10% 甘油中, 细胞团的粘附量减少了。重1毫升新鲜10% 甘油, 免除50和 #181; L 悬浮入每1.5 毫升离心管, 并且存放在-80 和 #176; C 直到使用前.
  6. 将50和 #181 混合在一起; l 分 ice-cold 5 和 #181 的合格细胞; 上文3节所述的破坏结构 l。将混合物添加到电穿孔试管 (电极之间的距离为0.2 厘米)。采用 金黄色葡萄球菌 模式 (1.8 伏、600、#937、10、#181、1脉) 的电穿孔装置 electroporate.
  7. 将500和 #181 中的单元格挂起, 并在电穿孔后立即 BHI 肉汤, 并添加50和 #181; 悬浮物的 l 霉 BHI 琼脂板.
    注: 电穿孔后额外的孵育时间不需要。但是, 在电穿孔后1-2 小时的孵化可以提高转化效率.
  8. 在37和 #176 下孵育盘2-6 天; C. 在厌氧条件下.
    注意: S 变形 和 #916; gtfB 是按照上面的描述构造的。将 gtfB 基因的整个编码区域替换为 变形链球菌 和 #916 中的红霉素抵抗基因 8 ; gtfB. 每个 S. 变形菌 菌株在37和 #176 的 BHI 汤中培养; C. 在厌氧条件下.

5。基因中断和存储的验证

  1. 选取随机菌落并将其接种到 pcr 混合物中, 以按 表 2 和 表 3 进行菌落 pcr。PCR 引物、试剂和扩增周期分别在 表 1 、 表 2 和 表 3 中进行了总结.
  2. 在1% 琼脂糖凝胶上加载 PCR 反应混合物以确认 spc r 特定的 DNA 带。
  3. 在10毫升含霉的 BHI 汤中, 用无菌牙签和亚文化细胞选择阳性菌落, 2 天在37和 #176; C 在厌氧条件下.
  4. 验证 S. 变形 和 #916 的生成; gtfC
    1. 平均划分单元格挂起。从上面描述的细胞中提取基因组 DNA (步骤 2.3. 2.5.5.)。以基因组 DNA 为 pcr 模板, 使用引物来验证 gtfC 中断 ( 表 1 ) 按 表 2 和 表 3 .
      注: PCR 引物、试剂和扩增周期分别在 表 1 、 表 2 和 表 3 中进行了总结.
    2. 在2% 琼脂糖凝胶上加载 PCR 混合物, 并将放大的带大小与预期的带大小进行比较, 以确认适当增的生成 .
    3. 将剩余的电池悬浮液离心15分钟, 在2000和 #215; g at 4 和 #176; c. 重5毫升的 PBS 中的细胞团.
    4. 离心15分钟, 在2000和 #215; g at 4 和 #176; c. 重1.5 毫升的 BHI 汤中含有25% 甘油的细胞团, 贮存于-80 和 #176; 林-20 和 #176; c.

6。表型分析

  1. 将每个 的牡丹 s 的应变置于 BHI 琼脂板上。在厌氧条件下, 在37和 #176 的夜间孵育盘.
  2. 使用无菌牙签取一个单一的菌落, 并将其接种到2毫升的 BHI 汤中, 或没有适当的抗生素。在37和 #176 的夜间孵育; C. 在厌氧条件下.
  3. 接种20和 #181; 夜间养殖的 L 在玻璃试管中含有1% 或5% 蔗糖, 不含抗生素的 BHI 肉汤; 在无氧条件下, 在37和 #176 的情况下, 在一夜之间培养与试管在倾斜位置的细胞;
  4. 涡流玻璃试管十年代和醒酒文化悬浮。用蒸馏水冲洗试管三次。添加1毫升的0.25% 马斯亮辉煌蓝色 (CBB), 以染色的生物膜在管壁上, 然后孵化1分钟.
  5. 醒酒染色液, 用蒸馏水冲洗试管三次, 并烘干试管.
  6. 以视觉方式评估 CBB 染色生物膜的颜色密度和延伸度, 以确定表型分析中的生物膜形成能力.

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Representative Results

图 2显示了 1st PCR 中的每个产品的大小, 如在1% 琼脂糖凝胶上观察到的, 与预测的大约 1 kb 的大小一致。图 3显示了 2nd PCR 产物的凝胶电泳分析。图 4显示了由破坏构造转化而来的变形人菌落, 以及菌落 PCR 产物的凝胶电泳分析。所有殖民地的增都是预测的大小。 图 5显示了用于验证 PCR 产品的gtfC中断和凝胶电泳的入门级绑定站点。通过使用gtfC-特定底漆的放大得到的 pcr 产物在s. 变形链球菌中得到了证实, 但不在变形者ΔgtfC中得到, 而 pcr 产品则使用spcr特定在变形链球菌ΔgtfC,中确认了底漆集, 但不在变形链球菌中.图 6显示了每个变形菌株的蔗糖衍生的生物膜形成能力. 在蔗糖存在的情况下, 由S 变形链球菌形成附着的生物膜;变形链球菌的附着生物膜形成能力δgtfB低于变形链球菌.变形链球菌δgtfC在蔗糖的存在下呈现非常低的附着生物膜形成。

Figure 1
图 1: 2 步融合 PCR 的策略.S的示意图说明。显示变形ΔgtfC构造。基因长度不扩展。(A)通过 PCR 扩增了gtfC和spcr 基因座的上游和下游侧翼区域。模板中的入门绑定站点由相同的模式表示。(B)第二个 pcr 步骤是使用 (as 模板) 在第一个 pcr 步骤中用嵌套引物放大的3片段进行的。(C)为细菌菌株的同源重组获得了破坏结构。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 来自 1st PCR 的产品的代表性凝胶电泳.显示gtfC的上游侧翼区域和gtfC和spcr 的下游侧翼区域的增。M: 分子标记。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 来自2和 PCR 的产品的代表性凝胶电泳. 产品放大与嵌套底漆和最外层的底漆显示。实心箭头表示中断构造的预测大小。M: 分子标记。

Figure 4
图 4:通过菌落 PCR (A) 对gtfC中断进行筛选在含霉的 BHI 琼脂板上的S 变形链球菌菌落;每个带圆圈的数字表示菌落 ID。(B)菌落 PCR 产物的代表性凝胶电泳;每个带圆圈的车道号指示图 4A中的相应的菌落 ID。M: 分子标记, 重量: 野生型基因组 DNA 用作模板。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 5
图 5: 通过 PCR 验证gtfC中断.(A)入门级绑定站点;基因长度不被扩展。采用S. 变形链球菌基因组 DNA 作为模板进行 PCR。入门集: gtfC前向和gtfC上反转 (特定于gtfC);gtfC下向和gtfC向下反转 (特定于gtfC);gtfC前向和spcr2-反转 (特定于spcr);spcr2 向前和gtfC下反转 (特定于spcr)。(B) PCR 产物的代表性凝胶电泳;每个带圆圈的车道编号表示 图 5A中的相应入门集。一个单一的电泳图像被划分为标记带标签。M: 分子标记 (100 基对梯子)。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 6
图 6: 基于生物膜发育的表型分析.由每一个S 变形株菌株形成的蔗糖衍生的生物膜被马斯亮亮蓝色染成。s. 变形, δgtfB:变形链球菌δgtfB, δgtfC:变形链球菌δgtfC.请单击此处查看此图的较大版本.

CAGCCACTGCATTTCCCGCAATATCTTTTGGTATG

表 1: 本协议中使用的底漆带下划线的 "向上反转" 和spcr向前 "和"spcr-反转 "和" 下向前 "的序列是互补的。"向上反转" 和spcr前向 "和"spcrr 和向下向前 "的加粗类型的序列是互补的。

底漆对 序列 (5 "到 3") 预期波段大小 (bp)
用于gtfC中断的2步 PCR
第一 PCR
前向
向上反转		 AAGATATTTTGATAAGCAATCTGGGAACATGTATC
CGAACGAAAATCGATATTTCCTCCAAAAATAGTTA		 1036
spcr-转发
spcr-反转		 ATTTTTGGAGGAAATATCGATTTTCGTTCGTGAAT
CTTCTAAGATAAGTACATATGCAAGGGTTTATTGT		 1188
前向
向下反转		 AAACCCTTGCATATGTACTTATCTTAGAAGAATAG
TTAAGAGCAAGTTTAAGATAGAACATGTTACTCAC		 1059
第二 PCR
N_up 前
N_down-反向		 TTTTATTGAAAACGAAGAAGGTAAATGGCTGTATC
GCCATACTTAGAGAAATTTCTTTGCTAAATTCTTG		 3132
验证gtfC中断
菌落 PCR 筛查
S_spcr-转发
S_spcr-反转		 535
最终验证
gtfC前向
gtfC向上反转		 TACGGCCGTATCAGTTATTACGATGCTAACTCTGG
GGTTGGTTGAGATGTTGCTGAAGTTGCTGTACTTG		 498
gtfC下-向前
gtfC向下反转		 GCCTTAATTGGTTGGCATGTTGTTGAAGGAAGACG
TTGTCCACTTTGAAGTCAACGTCTTGCAAGGCATG		 557
gtfC前向
spcr2-反转		 如上所述
CCACTCTCAACTCCTGATCCAAACATGTAAGTACC		 641
spcr2-转发
gtfC向下反转		 GTGGCTGAATCTTCTCCATTAGAACATAGGGAGAG
如上所述		 623
试剂 库存解决方案的集中 卷 最终浓度
DNA 聚合酶预混料 2x 25μ l 1x
正向底漆 5µM 2μ l 0.2 µM
反向底漆 5µM 2μ l 0.2 µM
模板 DNA 变量 变量 变量 ***
去离子水 - 高达50μ l -

表 2:PCR 试剂.* 用于 1st步 PCR;100 ng** 用于 2nd PCR;每 30-50 ng 1st步 PCR 增。用于菌落 PCR;将细菌细胞直接添加到反应混合物中。

周期步骤 温度 时间 周期数
初始变性 98° c 2分钟 1
变性
退火
扩展		 98° c
55° c
72° c		 十年代
5 s
增依赖
(1 min/1 kbp)		 35
最终扩展 72° c 增依赖
(1 min/1 kbp)		 1

表 3:PCR 扩增周期

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Discussion

在本议定书中, 1st PCR 的引物必须被设计为在基因组中放大大约 1 kb 的目标区域的上游和下游侧翼区域。这样长的侧翼序列对于提高同源重组的效率是必要的。

本协议中的引物序列 (向上反转、下向前、 spcr前向和spcr反转) 都是根据该中断构造的合并站点自动确定的。每个引物包括15基地补充到 2nd PCR 模板在 5 ' 地区的结束。更长的绑定站点可以更有效地生产中断构造。建议在每个底漆的5个区域中加入至少10互补基,9。

2nd PCR 使用了嵌套底漆 (N_up 和 N_up), 而不是最外层的引物 (向前和向下反转)。对 2nd PCR 的最外层引物的使用在某些情况下是有益的;通过使用最外层的引物 (未显示数据), 成功地放大了S. 变形ΔgtfB的中断构造。然而, 2nd pcr 步骤最外层引物的使用常常导致 pcr 放大不足, 如图 3所示。发现使用嵌套的底漆来解决此问题9。即使使用嵌套引物, 也不能大幅放大中断结构, 但是, 可能需要重新设计第一 PCR 中使用的底漆。

菌落 PCR 可以方便地筛选出基因中断的菌株。已知序列的引物可应用于使用spcr的基因中断菌株的生成。电穿孔用于将干扰构造引入到S. 变形器中, 因为使用电击的转化效率通常高于其他程序所能达到的效果。使用马血清, 或马血清与能力刺激肽, 广泛接受在链球菌10,11,12。虽然需要一个电穿孔装置, 但所涉及的程序, 如合格的细胞准备, 比那些在替代方法10,11中要简单得多。此外, 从动物福利的角度推荐电穿孔。

本协议适用于多个基因的中断, 这取决于数字 ofantibiotic 标记。例如, 要生成gtfC和gtfB--破坏了变形的菌株, 可以将2步 PCR 构建的gtfC中断的 DNA 构造转化为变形的ΔgtfB.由于gtfC和gtfB在这种情况下是相邻的, 因此,变形者δgtfC和变形者δgtfB基因组必须用作2步 PCR 的模板, 以保持同源序列的同源重组.事实上, 双基因干扰的变形菌株以前是由这个协议9构造的。

本议定书的基因干扰, 在S. 变形可能会适应的一代基因中断的菌株, 各种物种。该协议不需要在常规协议中涉及的基因克隆步骤。此外, PCR 是唯一需要的酶反应;因此, 质粒载体、大肠杆菌、连接和限制性酶是不必要的。此外, 本协议在中断构造的设计方面提供了更大的灵活性, 因为该结构设计独立于目标基因的限制性酶位点。研究人员可以确定在基因组中被删除或保存的区域, 以设计用于放大上游侧翼区域的反向引物和用于放大下游侧翼区域的前引物。这些侧翼区域是直接上游, 并立即下游的 DNA 区域希望删除, 分别。这种灵活性可以用来减少外部影响, 如极性效应, 对邻近基因的表达。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作得到了日本促进科学协会的支持 [授予数字 16K15860 T.M. 和15K15777 新罕布什尔州]。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Streptococus mutans Stock strain in the lab. Wild-type strain (Strain UA159)
Genomic DNA extraction kit Zymo Research D6005
Bead-beating disruption apparatus Taitec GM-01
Synthetic genes Eurofins Genomics Custom-ordered Spectinomycin- and erythromycin-resistance gene
Thermal cycler Astec PC-708
PCR primers Eurofins Genomics Custom-ordered 35 bases in length
DNA polymerase Takara R045A High-fidelity DNA polymerase
Gel extraction kit Nippon Genetics FG-91202 DNA extraction from agarose gel
Gel band cutter Nippon Genetics FG-830
Spectrophotometer Beckman Coulter DU 800
Electroporator Bio-rad 1652100
Electroporation cuvette Bio-rad 1652086 0.2-cm gap
Anaeropack Mitsubishi Gas Chemical A-03 Anaerobic culture system
Brain heart infusion broth Becton, Dickinson 237500 Bacterial culture media
Spectinomycin Wako 195-11531 Antibiotics
Erythromycin Wako 057-07151 Antibiotics
Sucrose Wako 196-00015 For biofilm development
CBB R-250 Wako 031-17922 For biofilm staining

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References

  1. Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension. Gene. 77 (1), 61-68 (1989).
  2. Horton, R. M., Cai, Z., Ho, S. M., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. BioTechniques. 54 (3), 129-133 (2013).
  3. Kuwayama, H., et al. PCR-mediated generation of a gene disruption construct without the use of DNA ligase and plasmid vectors. Nucleic Acids Res. 30 (2), E2 (2002).
  4. Sakurai, I., Mizusawa, N., Wada, H., Sato, N. Digalactosyldiacylglycerol is required for stabilization of the oxygen-evolving complex in photosystem II. Plant Physiol. 145 (4), 1361-1370 (2007).
  5. Aoki, H., Shiroza, T., Hayakawa, M., Sato, S., Kuramitsu, H. K. Cloning of a Streptococcus mutans glucosyltransferase gene coding for insoluble glucan synthesis. Infect Immun. 53 (3), 587-594 (1986).
  6. Hanada, N., Kuramitsu, H. K. Isolation and characterization of the Streptococcus mutans gtfC gene, coding for synthesis of both soluble and insoluble glucans. Infect Immun. 56 (8), 1999-2005 (1988).
  7. LeBlanc, D. J., Lee, L. N., Inamine, J. M. Cloning and nucleotide base sequence analysis of a spectinomycin adenyltransferase AAD(9) determinant from Enterococcus faecalis. Antimicrob Agents Chemother. 35 (9), 1804-1810 (1991).
  8. Macrina, F. L., Tobian, J. A., Jones, K. R., Evans, R. P., Clewell, D. B. A cloning vector able to replicate in Escherichia coli and Streptococcus sanguis. Gene. 19 (3), 345-353 (1982).
  9. Murata, T., Hanada, N. Contribution of chloride channel permease to fluoride resistance in Streptococcus mutans. FEMS Microbiol Lett. 363 (11), (2016).
  10. Perry, D., Wondrack, L. M., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of putative cariogenic properties in Streptococcus mutans. Infect Immun. 41 (2), 722-727 (1983).
  11. Lau, P. C., Sung, C. K., Lee, J. H., Morrison, D. A., Cvitkovitch, D. G. PCR ligation mutagenesis in transformable streptococci: application and efficiency. J Microbiol Methods. 49 (2), 193-205 (2002).
  12. Ge, X., Xu, P. Genome-wide gene deletions in Streptococcus sanguinis by high throughput PCR. J Vis Exp. (69), (2012).

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遗传学 问题 128 基因中断 DNA 结构 聚合酶链反应 引物设计 抗生素抗性标记基因,变形链球菌 电穿孔 同源重组
无基因克隆的基因破坏的<em>变形链球菌</em>菌株的生成
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Murata, T., Okada, A., Matin, K.,… More

Murata, T., Okada, A., Matin, K., Hanada, N. Generation of a Gene-disrupted Streptococcus mutans Strain Without Gene Cloning. J. Vis. Exp. (128), e56319, doi:10.3791/56319 (2017).

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