Summary

유체역학 신장 골반 주입은 신장에서 단백질의 비 바이러스 성 표현에 대 한

Published: January 08, 2018
doi:

Summary

이 프로토콜에는 신장에 특히 transgene 식 생산 하 신 골반을 통해 마우스 신장에 플라스 미드 DNA를 주입 하는 방법을 설명 합니다.

Abstract

유체역학 주입 transfect 다양 한 조직 플라스 미드 DNA와 다른 물질을 지역, 고압 환경을 만듭니다. 유체역학 꼬리 정 맥 주입, 예를 들어 간 페 될 수 있는 잘 설립 방법입니다. 이 원고는 신장 관련 유전자 발현에 대 한 플라스 미드 DNA와 직접 마우스 신장의 주입에 의해 유체역학 원리의 응용을 프로그램을 설명합니다. 쥐 취 고 신장 신장 골반에 직접 플라스 미드 DNA를 포함 하는 솔루션의 빠른 주입 다음 측면 절 개 하 여 노출 됩니다. 바늘은 10 초에 대 한 장소에 보관 하 고 절 개 사이트 봉합. 다음 날, 라이브 동물 영상, 서쪽 오 점 또는 immunohistochemistry 유전자 발현 분석 결과를 사용할 수 있습니다 또는 관심사의 단백질의 검출에 사용 되는 선택의 transgene에 적합 한 다른 분석 실험. 유전자 발현을 연장 하기 위해 게시 방법은 transgene 면역 반응을 억제 하 중재 하는 transposon transgene 통합과 cyclophosphamide 치료를 포함 합니다.

Introduction

유체역학 꼬리 정 맥 주입 기술은 마우스 간1,2유전자 발현의 높은 수준을 달성 하기 위해 일반적으로 사용 되는 되고있다. 신장은 또한 훨씬 더 낮은 수준, 약 100 적은3에서이 기술에 의해 페. 여기에 설명 된 유체역학 신장 골반 사출 간4,5 이전 설립 되었습니다 동일한 유체역학 원리를 사용 하 여 물리적 수단을 통해 장기 식의 특이성을 제어 하는 간단한 방법 제공 ,6, 근육 및 다른 기관7,8. 이 메서드는 압력을 사용 하 여 셀 vivo에서 동물에 transfects와 동시에 신속 하 게 기관에 손상을 유발 셀에 액체 포함 DNA를 강제로 속도 해결9. 인슐린 주사기에 의해 단일 주사 함께 측면 절 개10 통해 신장 시각화 확고 외과 기술을 사용 하 여, 우리는 다양 한 종류의 신장 세포, 주로 간 질 성 섬유 아 세포의 성공적인 transfection 발견 tubules, 그리고 모으는 덕트11. 이러한 쥐의 해 부 다른 장기 luciferase 이미징 기법11여 시각화 충분히 높은 수준에서 페 하지는 보이고 있다. 기술은 아닌 바이러스 이기 때문에, transfection에 대 한 플라스 미드 DNA의 사용 사출에 필요한 시 약의 빠르고 쉬운 준비를 허용 합니다.

우리 항 산화 glutathione S-전이 효소 A4, 인슐린 같은 성장 인자 1 수용 체 모두 예상된 생물학적 효과11, 와 함께 신장에서 호르몬 리스로 표현 하는 지역화 된 유체역학 주사를 사용 12 , 13. 경로 관리, 주입 량, DNA 복용량, 및 발기인 선택의 상세한 평가 수행된11되었습니다. 또한, 두 piggyBac transposon 시스템 또는 cyclophosphamide 치료는 transgene 면역 반응 억제를 장기 진 식 결과11을 개선 하기 위해 표시 되었습니다. 다른 조사 성공, 한 달14보다 큰 시간 동안 높은 transfection 효율을 달성 쥐에서 신장 정 맥 접근을 사용 했습니다. 그러나, 인간의 질병을 흉내 낸 고기의 유전 수정 일반적으로 수행 됩니다 마우스 처음 개념 증명으로 이후 가장 포유류 유전자 모델은 마우스 모델. 우리 신장 골반 주입에 신장 정 맥 주입을 비교 하 고 신장 골반에 주입 (약 10 배 더 높은) 유전자 발현 및 생존11신장 정 맥에 우수한 발견. 신장 골반 신장에 항목의 이상적인 경로 때문에 용납 소변 생산에 변동에 유연 이며 종종 hydronephrosis 동안 넓힐 경우에 그것의 구조적 무결성을 유지할 수 있습니다. 또한, 신장 골반에 주입 주입된 유체 가시 intraparenchymal 주입 보다는 더 나은 신장에 의해 유지 될 수 있도록 신장 캡슐을 관통 하지 않고 신장에 대 한 액세스를 허용 합니다. 다른 마우스 장기 맥 관 구조, 다른 항목의 경로 필요가 없습니다 하지만 신장 비뇨 기 공간 이상적인 사출 사이트입니다. 또한, 신장 정 맥에 주사는 복 부 구멍으로 혈액의 누설에 결과. 야생-타입 마우스 신장의 총 신장 볼륨 단일 신장의 볼륨은 약 신장 골반 유체에 의해 주입 액체의 양을에 약 0.2 c m3를 자기 공명 영상으로 추정 되었다 주입 (100 µ L)15. 여기, 우리는 가능 신장 재현할 transfection를 달성 하기 위해 유체역학 신장 골반 주입 프로토콜의 자세한 뉘앙스의 모든.

Protocol

여기에 설명 된 모든 메서드는 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUCs) 베일 러 의과대학의 Vanderbilt 대학 의료 센터에 의해 승인 되었습니다. 1. 주입을 위한 DNA 솔루션 준비 Transfection 효율과 transgene 식 향상에 바람직한 특성을 극대화 하기 위해 신중 하 게 transgene(s)을 표현 하는 plasmid(s)를 선택 합니다.참고: 형광 마커 TdTomato, 호르몬 erythropoietin (Epo), 반딧불 luciferase을 …

Representative Results

수술 및 주입 기술 하 게 수행 하기 위해 한번 마스터, 주요 장비 또는 비싼 물자를 요구 있습니다. 새로운 측면 절 개 신장 수술을 하는 경우 1 훈련 일 안락사 예정 여러 쥐에 있는 쥐 복구 된 다음 수술 때문에 하지 않습니다이 수술에서 첫 번째 시도 보다 훨씬 더 오래 걸릴 수 있습니다 허용 되어야 한다. 또는, 유사한 기술을 익힐 수 사관 간단 하 찾을 수 있습니다. <stron…

Discussion

이 프로토콜에서 신장에 특히 재현 유전자 발현을 달성 하기 위한 강력한 메서드를 설명 합니다. 적당히 경험 있는 외과 의사의 손에 우리 쥐 마우스 나이 따라 50-100%의 범위와는 transgene의 판독의 감도에이 기술에 의해 페의 비율을 발견 했다. Luciferase 유전자 발현의 수준 배경 위에서 마우스 piggyBac transposons 수신에 몇 달 동안 되었고 완전히 immunocompromised 쥐 같은 transposons11</sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

경력 개발 수상에서의 재향 군인 담당 부서 [BX002797] L.E.W. 및 건강의 국가 학회 [R01-DK095867] 및 미국 심 혼 협회 [15GRNT25700209] 제 지원 건강의 국가 학회 [DK093660], 재향 군인 담당 부서 [BX002190], 및 신장 질환에 대 한 밴 더 빌 트 센터 지원 M.H.W. 이 물자 자원 및 버지니아 테네시 밸리 의료 시스템 시설의 사용 지원 작업의 결과 이다.

Materials

AnaSed Xylazine Patterson Veterinary 07-808-1947 Anesthetic – Not controlled substance
BD Insulin Syringe 0.5 mL 29G 1/2 Inch Cardinal Health 309306 Required syringes
Buprenex Pharmacist/Veterinarian Analgesia – Controlled Substance
Dynarex Disposable Towel Drape Thermo Fisher Scientific 19-310-671 Place over heat pad
EndoFree Plasmid Maxi Kit Qiagen 12362 Use only endotoxin-free plasmid DNA
Endosafe Gel-Clot LAL Rapid Positive Control Charles River PC200 Positive control for endotoxin test
Endosafe Gel-Clot LAL Rapid Single Test Vial Charles River R13500 Endotoxin test
Extra Fine Micro Dissecting Scissors Roboz Surgical Instrument RS-5882 Surgical tool
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouch – 9" Thermo Fisher Scientific 01-812-51 For autoclaving surgical tools
Gaymar Heat Pump Paragon Medical TP-700 Water-circulating heat pump
Germinator 500 Roboz Surgical Instrument DS-401 To reuse surgical tools during surgery
Graefe Forceps Roboz Surgical Instrument RS-5136 Surgical tool
Graefe Tissue Forceps Roboz Surgical Instrument RS-5153 Surgical tool
Halsey Needle Holder, 5" Length Roboz Surgical Instrument RS-7841 Surgical tool
Heat pads – 15" x 21" – need at least 3 Paragon Medical TP22G For use with Gaymar Heat Pump
IsoFlo (Isoflurane, USP) Abbott Animal Health 5260-04-05 For imaging and euthanasia
Isotec Isoflurane Delivery System Vaporizor Smiths Medical VCT3K2 For imaging and euthanasia
Ketamine Pharmacist/Veterinarian Anesthetic – Controlled Substance
Kimwipes Kimberly-Clark Professional 34120 Laboratory tissues
Living Image software Caliper Life Sciences For live animal imaging
Luciferin Perkin Elmer 122796 For live animal imaging
Nanodrop 2000 Thermo Scientific ND-2000-US-CAN Spectrophotometer for DNA measurement
Prevantics Swabs Thermo Fisher Scientific 23-100-110 For skin surgery prep
Prolene 5-0 sutures Taper 30" Thermo Fisher Scientific NC0256891 Non-absorbable sutures for skin
Puralube Brand Opthalmic Ointment Patterson Veterinary 07-888-2572 To keep eyes moist during surgery
Trans IT – QR Hydrodynamic Delivery Solution Mirus Bio MIR-5240 Hydrodynamic delivery buffer for diluting DNA
Vicryl 5-0 Sutures J303H Thermo Fisher Scientific NC9816710 Absorbable sutures for muscle layer
Wahl Mini Arco Clipper Med-Vet International 8787-1550 Shaver for skin prep
Xenogen IVIS 200 Caliper Life Sciences For live animal imaging

References

  1. Liu, F., Song, Y., Liu, D. Hydrodynamics-based transfection in animals by systemic administration of plasmid DNA. Gene Ther. 6 (7), 1258-1266 (1999).
  2. Zhang, G., Budker, V., Wolff, J. A. High levels of foreign gene expression in hepatocytes after tail vein injections of naked plasmid DNA. Human Gene Therapy. 10, 1735-1737 (1999).
  3. Fumoto, S., Nishimura, K., Nishida, K., Kawakami, S. Three-Dimensional Imaging of the Intracellular Fate of Plasmid DNA and Transgene Expression: ZsGreen1 and Tissue Clearing Method CUBIC Are an Optimal Combination for Multicolor Deep Imaging in Murine Tissues. PLoS One. 11 (1), e0148233 (2016).
  4. Yoshino, H., Hashizume, K., Kobayashi, E. Naked plasmid DNA transfer to the porcine liver using rapid injection with large volume. Gene Ther. 13 (24), 1696-1702 (2006).
  5. Kamimura, K., Suda, T., Xu, W., Zhang, G., Liu, D. Image-guided, lobe-specific hydrodynamic gene delivery to swine liver. Mol Ther. 17 (3), 491-499 (2009).
  6. Kamimura, K., Zhang, G., Liu, D. Image-guided,intravascular hydrodynamic gene delivery to skeletal muscle in pigs. Mol Ther. 18 (1), 93-100 (2010).
  7. Suda, T., Liu, D. Hydrodynamic gene delivery: its principles and applications. Mol.Ther. 15 (12), 2063-2069 (2007).
  8. Alino, S. F., et al. Naked DNA delivery to whole pig cardiac tissue by coronary sinus retrograde injection employing non-invasive catheterization. J Gene Med. 12 (11), 920-926 (2010).
  9. Suda, T., Gao, X., Stolz, D. B., Liu, D. Structural impact of hydrodynamic injection on mouse liver. Gene Ther. 14 (2), 129-137 (2007).
  10. Skrypnyk, N. I., Harris, R. C., de Caestecker, M. P. Ischemia-reperfusion model of acute kidney injury and post injury fibrosis in mice. J Vis Exp. (78), (2013).
  11. Woodard, L. E., et al. Kidney-specific transposon-mediated gene transfer in vivo. Sci Rep. 7, 44904 (2017).
  12. Liang, A., et al. Loss of glutathione S-transferase A4 accelerates obstruction-induced tubule damage and renal fibrosis. Journal of Pathology. 228 (4), 448-458 (2012).
  13. Liang, M., et al. Protective role of insulin-like growth factor-1 receptor in endothelial cells against unilateral ureteral obstruction-induced renal fibrosis. Am J Pathol. 185 (5), 1234-1250 (2015).
  14. Corridon, P. R., et al. A method to facilitate and monitor expression of exogenous genes in the rat kidney using plasmid and viral vectors. Am J Physiol Renal Physiol. 304 (9), F1217-F1229 (2013).
  15. Wallace, D. P., et al. Tracking kidney volume in mice with polycystic kidney disease by magnetic resonance imaging. Kidney Int. 73 (6), 778-781 (2008).
  16. Woodard, L. E., Wilson, M. H. piggyBac-ing models and new therapeutic strategies. Trends Biotechnol. 33 (9), 525-533 (2015).
  17. Yeikilis, R., et al. Hydrodynamics based transfection in normal and fibrotic rats. World J Gastroenterol. 12 (38), 6149-6155 (2006).
  18. Thalhofer, C. J., et al. In vivo imaging of transgenic Leishmania parasites in a live host. J Vis Exp. (41), (2010).
  19. Wooddell, C. I., et al. Muscle damage after delivery of naked plasmid DNA into skeletal muscles is batch dependent. Hum Gene Ther. 22 (2), 225-235 (2011).
  20. Crespo, A., et al. Hydrodynamic liver gene transfer mechanism involves transient sinusoidal blood stasis and massive hepatocyte endocytic vesicles. Gene Ther. 12 (11), 927-935 (2005).
  21. Rocca, C. J., Ur, S. N., Harrison, F., Cherqui, S. rAAV9 combined with renal vein injection is optimal for kidney-targeted gene delivery: conclusion of a comparative study. Gene Ther. 21 (6), 618-628 (2014).

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Woodard, L. E., Welch, R. C., Williams, F. M., Luo, W., Cheng, J., Wilson, M. H. Hydrodynamic Renal Pelvis Injection for Non-viral Expression of Proteins in the Kidney. J. Vis. Exp. (131), e56324, doi:10.3791/56324 (2018).

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