Summary
Мы представляем протокол с помощью микроскопии интереса одновременно изображение актина структур, микротрубочки и микротрубочек плюс конец связывания белков в клетках B, которые распространились на coverslips покрытием с антителами к B-клеточный рецептор, модель для начального этапа формирования иммунной синапса.
Abstract
B-клеток, которые связывают мембраны прыгните антигены (например, на поверхности антиген представляющих клеток) образуют иммунной синапса, специализированные клеточную структуру, которая оптимизирует B-клеточной сигнализации рецептора (BCR) и приобретение BCR-опосредованной антигена. Ремоделирование Цитоскелет актина и переориентации микротрубочек сети к антигена контакт сайта имеют важное значение для формирования иммунной синапса. Ремоделирование Цитоскелет актина в плотной периферийное кольцо F-актина сопровождается поляризации микротрубочек Организация центра к иммунной синапсе. Микротрубочки плюс конец связывания белков, а также белки корковых плюс конец захвата посредником физических взаимодействий между актина и микротрубочек cytoskeletons, которые позволяют им быть реорганизована на скоординированной основе. Изучение механизмов управления, которую этот цитоскелета реорганизации, а также понять как эти цитоскелета структуры формы формирования иммунной синапса и BCR сигнализации, может обеспечить новое понимание активации B клеток. Это способствовало разработке суперразрешением микроскопии подходов, которые показывают новые детали цитоскелета сети Организации. Здесь мы описываем метод с помощью микроскопии простимулированное излучение истощения (интереса) одновременно изображение актина структур, микротрубочки и transfected GFP-тегами микротрубочек плюс конец связывания белков в клетках B. Модель раннего события в формировании иммунитета синапса, мы позволяем клетки B распространить на coverslips покрытием с anti-иммуноглобулина (анти Ig) антител, которые инициируют BCR сигнализации и модернизация цитоскелета. Мы предоставляем пошаговые протоколы для выражения GFP синтез белков в клетках A20 B-лимфомы, за распространение анти Ig индуцированной клеток и для фиксации последующие ячейки, иммуноокрашивания, получение изображения и изображения деконволюция шаги. Изображения с высоким разрешением, полученных с помощью этих процедур позволяют одновременно визуализировать актина структуры, микротрубочки и микротрубочек плюс конец связывающих белков, которые могут связать эти две сети цитоскелета.
Introduction
Когда клетки B связать поляризованных массивы антигенов (например, отображаются на поверхности антиген представляя клетки (АПК)), полученный B-клеточный рецептор (BCR) сигнализации диски, формирование структуры классический иммунной синапса, который был впервые описано в T клетки1,2,3,4,5,6,,78,9,10, 11,12,13. Первоначально microclusters формы БКРС антиген прыгните на периферии клетки B: APC связаться с сайта. Эти microclusters затем двигаться в направлении центра антигена контакт сайта, где они сливаются в Центральной супрамолекулярные активации кластер (cSMAC), который образует ядро иммунной синапса. Формирование иммунной синапса оптимизирует BCR сигнализации и облегчает извлечение BCR-опосредованной антигена APC мембраны14. Это приобретение антиген, который следуют интернализации BCR-опосредованной антигена и обработки последующих антигена, позволяет клетки B представить пептида: MHC II комплексов для Т-клетки и вызывают Т-клеток помощь14. Потому что формирование иммунной синапса способствует активации клеток B, определить механизмы, которые устанавливают этот функциональный шаблон Организации рецептор может обеспечить новое понимание как гуморального иммунного ответа инициируются и регулируется.
Реорганизация актина и микротрубочек cytoskeletons имеет важное значение для формирования иммунной синапса. Локализованные BCR сигнализации стимулируется пространственно поляризованных массив антигенов стимулирует быстрое и резкое ремоделирования Цитоскелет актина,1,,15. Формирование структур дендритных актина на периферии клетки B оказывает движущей силы на плазматической мембраны и способствует клетки B распространения. Это позволяет клетки B для сканирования большую площадь поверхности антиген подшипник и увеличивает количество БКРС, которые связывают антигена и активировать BCR, сигнальные пути. В то же время сеть микротрубочек и КТВМ переориентирована на сайт антигена контакта. Как КТВМ подходов контакт сайта антигена, микротрубочки, вытекающих из КТВМ протянулись вдоль внутренней поверхности плазматической мембраны на стыке между клетки B и поверхности антиген подшипника16,17. Затем эти juxtamembrane микротрубочки может выступать в качестве треков для Динеин опосредованной центростремительного движения антиген прыгните BCR microclusters18, приводит к образованию cSMAC.
Переориентация и поляризации КТВМ к иммунной синапса требует нетронутыми актина и микротрубочек cytoskeletons и часто зависит от взаимодействия между корковой актина сети и микротрубочек16,17, 19,20. Корковых актин связывающих белков, таких как IQGAP1, можно захватить микротрубочек, взаимодействуя с белковых комплексов, которые украшают микротрубочек плюс заканчивается21. Эти динамические комплексы плюс конец связывания белков включают в себя EB1 и клип-170, которые обозначаются как микротрубочек плюс конец отслеживания белков (+ советы)21,22. + Подсказки на концах микротрубочек можно привязать к белки, которые связаны с плазматической мембраны или корковые актина цитоскелета. Это позволяет силы создание механизмов (например, минус конец направленного движения cortically якорь Динеин вдоль микротрубочек) оказывают потянув силы на микротрубочек, и тем самым изменить КТВМ. КЛИП-170 можно привязать к актин связанные леса белка IQGAP123, и мы показали, что оба эти белки необходимы для КТВМ BCR-индуцированной поляризации к иммунной синапса17. Это взаимодействие IQGAP1-клип-170 может играть ключевую роль в координации, Ремоделирование Цитоскелет актина с репозиционирования микротрубочек сети на B-клетки иммунной синапса.
Обычных флуоресцентной микроскопии показал резкое реорганизации актина и микротрубочек cytoskeletons во время B-клетки иммунной синапса формирования2. Однако этот подход не может разрешить небольших клеточных структур в деталях из-за дифракционный предел света, который, согласно закону Аббе, зависит от длины волны света, используется для освещения образца и диафрагмы объективных24. Этот дифракционный предел ограничивает разрешение обычного света Микроскопы до 200-300 Нм в боковой направлении и 500-700 Нм в осевом направлении25. Таким образом меньше внутриклеточных структур, а также мелкие детали актина и микротрубочек cytoskeletons, можно только наблюдать с помощью электронной микроскопии. Микроскопии изображений цитоскелета отнимает много времени, требует суровых образца фиксации и подготовка протоколов, которые можно изменять биологических структур и ограничен для обнаружения антител опосредованной. Способность к имунноконтраст и одновременно изображение несколько белков или клеточных структур является существенным преимуществом микроскопии флуоресцирования. Кроме того выражая флуоресцентные синтез белков в клетках позволяет в реальном времени обработки изображений и является полезным, когда эффективные антитела для иммуноокрашивания протеина интереса не доступны.
Последние технологические достижения в микроскопии суперразрешением преодолеть ограничения дифракции света и позволяет визуализировать наноразмерных клеточных структур24. Один из таких методов микроскопии суперразрешением называется микроскопии простимулированное излучение истощения (интереса). СИГНАЛУ использует два лазера, где один лазерный возбуждает Флюорофор и второй лазерный с рисунком форме пончика избирательно подавляет флуоресценции выбросов вокруг Флюорофор. Это уменьшает точки распространения функция (очевидной район) одной флуоресцентные частицы и предоставляет югу дифракционный предел флуоресцентного изображения25,26. Микроскопия истощение земли государство также использует методы, основанные на флуоресценции, приобрести супер-разрешение изображения. Однако долгое время приобретения и реконструкции изображения, есть только ограниченное количество флуорофоров, который может быть использован, и одновременно с высоким разрешением изображения нескольких цитоскелетных компонентов технически сложным, потому что поддержание Актин и микротрубочек структур требует фиксации различных процедур. Таким образом интереса имеет несколько преимуществ над электронной микроскопии и других микроскопии суперразрешением подходы в том, что он предлагает быстрое изображение приобретения, имеет минимальные требования к пост-обработки и использует же флуорофоров и пятная методы которые используются для обычных флуоресцентной микроскопии фиксированной образцы26.
Супер-резолюции микроскопии теперь был использован для визуализации актина структур на иммунные синапсов в естественных убийца клеток (НК) и T клетки26,27,28,,2930, 31. Однако, супер резолюции изображений микротрубочек цитоскелета, а также скоординированных реорганизации актина и микротрубочек cytoskeletons во время формирования иммунной синапса, лишь недавно был сообщил17. Мы использовали интереса микроскопии изображений B клеток, которые было разрешено распространить на coverslips покрытием с антителами anti-иммуноглобулина (анти Ig), которые стимулируют BCR сигнализации и инициировать реорганизацию цитоскелета. Когда покрытием на иммобилизованные антитела анти Ig, B клетки проходят драматические актин-зависит от распространения, который повторяет первоначальных событий во время формирования иммунной синапса. Важно отметить, что интереса микроскопии выявлены мелкие детали дендритных кольцо F-актина, что формы на периферии иммунной синапса и показало, что недалеко от антигена контакт сайта17переехали КТВМ, а также микротрубочек, прилагается к нему. Эти микротрубочек расширенной наружу к периферийное кольцо F-актина. Кроме того, многоцветные изображения интереса различных комбинаций F-актина, тубулин, IQGAP1 и GFP-тегами клип-170 + советы показали, что микротрубочки плюс концы отмечен клип-170-ГФП были тесно связаны с сеть периферийных актина и IQGAP1, корковых захвата белка17.
Здесь мы представляем подробный протокол для визуализации актина и микротрубочек cytoskeletons на иммунные синапса, с помощью микроскопии интереса. Эти методы были оптимизированы с помощью линии A20 мышиных клетки B, который широко использовался для изучения BCR сигнализации и иммунных синапса формирования17,,3233,,3435 , 36 , 37 , 38 , 39. Поскольку коммерческие антител к клип-170 не работает хорошо для иммуноокрашивания в предыдущих экспериментах, мы подробно описать выражение гена GFP-тегами клип-170 в клетках A20, наряду с пятная протоколы одновременно визуализации до три цитоскелетных компонентов или Белки цитоскелета связанные. Методы использования микроскопии интереса к Изображение актина в NK клеток иммунной синапсы были описаны ранее40. Здесь мы передаем это приобретение суперразрешением многоцветные изображения актина и микротрубочек cytoskeletons в клетки.
Критическое рассмотрение для микроскопии суперразрешением использует соответствующий фиксации процедур для поддержания клеточных структур и предотвращения ущерба для флуоресцентных белков. Фиксация и пятная методы, представленные в настоящем документе были оптимизированы для сохранить GFP флуоресценции и обеспечить высоким разрешением изображений сетей актина и микротрубочек. При выражении флуоресцентных белков, следует отметить, что клетки B, обычно трудно transfect. Используя этот протокол, 20-50% A20 клетки обычно выражают transfected синтез белка GFP, и среди этой группы населения уровень экспрессии белков являются переменными. Тем не менее, супер резолюции изображений актина и микротрубочек, с использованием процедур, мы описали довольно надежные и легко получаются изображения высокого качества. Несмотря на их небольшой размер относительно ячейки A20 мы показываем, что эти процедуры могут также использоваться для изображений в сети микротрубочек в первичных B-клетки, которые были кратко активированы с липополисахарида (LPS). Мы показали, что LPS-активированный первичной клетки B может transfected с малые интерферирующие РНК в относительно высокой эффективности (т.е., такие что истощение белка может быть обнаружен, immunoblotting), что делает их хорошей альтернативой для использования линий клетки B для некоторых исследований 17.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все животные процедуры были утверждены в университете Британской Колумбии животное уход Комитета.
1. выражая GFP-синтез белков в клетках A20 B-лимфома
- Культура клетки А20 в полное RPMI среднего (с 10% тепло инактивированная плода бычьим сывороточным (ФБС), 50 мкм 2-меркаптоэтанол, глютамин 2 мм, 1 мм пируват, 50 ед/мл пенициллин и 50 мкг/мл стрептомицина RPMI 1640) при 37 ° C в инкубатор культуры ткани с 5 % CO2.
- Подготовьте трансфекции реагента (см. Таблицу материалы) согласно инструкциям производителя.
Примечание: Этот протокол был оптимизирован для определенных реагентов и протокол transfection описанные в Таблица материалов. Другие трансфекции реагенты, которые мы пытались не дали достаточных эффективность трансфекции. - Подсчет количества ячеек с помощью Горяева. Центрифуга 2,5 х 106 A20 клетки (для каждого трансфекции) за 5 мин в 525 x g. Ресуспензируйте клетки в 100 мкл Реагента трансфекции, содержащие 1-2,5 мкг плазмидной ДНК. Для ДНК кодирования КЛИПА-170-GFP23используйте 2,5 мкг на transfection. Осторожно перемешать.
- Клетки перехода к хорошо 6-ну плиты и отрегулируйте громкость по 2 мл с подогретым полный RPMI среднего. Культура клетки для 18 ч при 37 ° C, чтобы позволить выражения протеина.
2. изоляция клетки первичной мыши B и активизируя их с ПЛАСТИНОК
- Использование стерилизовать хирургические инструменты для удаления селезенки из мыши, следующие протоколы, утвержденных Комитетом за учреждение животных.
- В культуре ткани капот место стрейнер клеток стерильные 70-мкм в 35-мм тканевой культуры блюдо, содержащие 3 мл стерильного PBS комнатной температуры. Используйте резиновые части поршень от шприц 5 мл, чтобы подавить селезенки через стрейнер ячейки.
- Накапайте одноклеточного подвеска splenoctyes в стерильную пробирку 15 мл и центрифуги на 525 x g за 5 мин.
- Использование магнитных клетки B на основе бисера изоляции комплект (см. Таблицу материалы) для получения высокообогащенного популяция клеток B.
- Ресуспензируйте B клеток/мл 3 x 10-6в полной RPMI среднего дополнена 2,5 мкг/мл LPS плюс 5 нг/мл клетки B активация фактор (BAFF; выживания цитокинов).
- Культура клетки для 6 ч при 37 ° C.
3. покрытие стекла Coverslips с антителами Anti-Ig
- Подготовьте раствор антител для покрытия coverslips. Разбавить раствор антител Ig коза анти мышь в комнатной температуре стерильные PBS сделать 12,5 мкг/мл раствора; Для каждого coverslip требуется 400 мкл раствор антител.
Примечание: Использование коза против IgG A20 клетки; Использование коза анти IgM первичной клетки B. Коза IgG антитела не связывать хорошо мыши Fc рецепторов. Однако чтобы избежать любых потенциальных Fc рецептор привязки, можно использовать F(ab) или F(ab')2 фрагменты анти мыши IgG или против мышиных антител IgM. - DIP #1.5 18-мм круглые стекло coverslip в 100% метанола и дайте ему высохнуть (~ 10 мин).
- С помощью щипцов, место сушеные coverslip в 12-ну тканевые культуры пластины и пипетки 400 мкл раствора 12,5 мкг/мл антитела (5 мкг всего; 2 мкг/см2) на coverslip, так что он образует пузырь в центре coverslip и простирается до края.
- Будьте осторожны, чтобы покрыть весь coverslip, но не позволяют раствор антител продлить за край стекла coverslip и на пластической культуры ткани. Инкубации при комнатной температуре за 30 мин.
- В хорошо и впоследствии аспирационных решение для очистки coverslips дозирования 1 мл стерильного PBS. Повторите еще два раза, чтобы удалить несвязанные антитела.
- Добавьте 1 мл стерильного PBS в хорошо содержащие coverslip антителами пока клетки не готовы быть добавлены.
Примечание: Coverslips может храниться при комнатной температуре, покрытые PBS, для использования в тот же день.
4. клетки B распространение на анти Ig покрытием Coverslips
- Подготовить изменения HEPES-амортизированное физиологический (mHBS): 25 мм HEPES, рН 7,2, 125 мм NaCl, 5 мм KCl, 1 мм CaCl2, 1 мм Na2HPO4, 0,5 мм MgSO4, 1 мг/мл декстрозы, глютамин 2 мм, пируват натрия 1 мм и 50 мкм 2-меркаптоэтанол). Фильтр стерилизовать это решение и хранить при 4 ° C.
- В день эксперимента, сделать mHBS с 2%-50мл FBS (mHBS-FBS) путем добавления 1 мл тепла инактивированная FBS 50 мл mHBS. Теплые mHBS-FBS до 37 ° C перед использованием.
- Центрифуга transfected клеток A20 или первичной B-клетки, которые были культивируемых с BAFF плюс LPS в 525 x g за 5 мин.
- Ресуспензируйте клеток в 1 мл mHBS-FBS, подсчитать количество ячеек с помощью Горяева и разбавить клетки 2 x 105 клеток/мл в mHBS-FBS.
- С помощью щипцов, передать coverslip от культуры ткани пластины кусок парафина фильма.
- 250 мкл B (5 х 104 клетки), для каждого coverslip.
- Инкубируйте coverslips при 37 ° C 15 мин в темноте, чтобы позволить клетки B распространить на анти IgG покрытием поверхности.
5. крепление и иммуноокрашивания клетки
- Подготовьте решение фиксации путем разбавления параформальдегида 16% раствор и Стоковый раствор 50% глютаральдегид в комнатной температуре дистиллированной воде произвести окончательный концентрации 3% параформальдегида и 0,1%-го раствора. Приготовляют раствор фиксации на тот день, когда это использоваться и отбросить лишнюю.
Предупреждение: Параформальдегида и глутаровый акций решения должно использоваться только в химической зонта. Следуйте инструкциям на паспорт безопасности материала (MSDS). - Подготовка permeabilization/блокирование буфера (BSA 3% и 0,1% тритон X-100 разводят в PBS). Фильтр стерилизовать это решение и хранить при 4 ° C. В день эксперимента теплый необходимой суммы до комнатной температуры.
- Подготовьте окрашивание буфера (1% BSA и 0,1% сапонинов в PBS). Стерилизовать это решение, используя фильтр 0.2 мкм и хранить при 4 ° C. В день эксперимента теплый необходимой суммы до комнатной температуры.
- Накапайте 350 мкл раствора фиксации на каждом coverslip, обеспечивая, что поверхность полностью покрыта. Инкубации при комнатной температуре в течение 10 минут в темноте.
- Удаление решения фиксации из coverslip, тщательно аспирационных от края coverslip, с помощью micropipet.
Предупреждение: Фиксация решения должны быть отклонены как опасных химических отходов. - Мыть coverslips раз с 500 мкл permeabilization/блокировки буфера. Накапайте жидкости.
- Разрушения и блокировать ячейки, добавив 250 мкл permeabilization/блокирование буфера для каждого coverslip и инкубации за 10 мин при комнатной температуре в темноте.
- Разбавьте 1: 100 анти тубулин антитела кролика в пятнать буфера.
- Аспирационная от permeabilization/блокирование буфера от coverslips и 50 мкл раствора разбавленные антитела анти тубулина в каждом coverslip. Инкубации при комнатной температуре в течение 30 мин в темноте.
- Приготовляют раствор пятно вторичные антитела/актина путем разбавления Alexa Fluor 532-конъюгированных коза анти кролик IgG вторичного антитела и Alexa Fluor 568-конъюгированных Фаллоидин масштаба 1: 100 в пятнать буфера.
- Мыть coverslips 3 раза, чтобы удалить избыток основное антитело, добавив 500 мкл пятнать буфер и затем аспирационных.
- 50 мкл раствора вторичные антитела/актина пятно для каждого coverslip и Инкубируйте 30 мин при комнатной температуре в темноте.
- Мыть coverslips 3 раза, чтобы удалить избыток вторичные антитела путем добавления 500 мкл пятнать буфер и затем аспирационных.
- Добавьте 10 мкл Реагента монтажа микроскопа. Установите coverslip на микроскопа клетки стороной вниз.
Примечание: «Анти затухания» монтаж среднего (см. Таблицу материалы) настоятельно рекомендуется сохранить интенсивность флуоресценции GFP синтеза белков. Избегайте использования монтажа реагентов, содержащие DAPI, которая может помешать с изображениями флуорофоров, при использовании лазера интереса. - Разрешить слайды для высыхания на ночь в темноте. Изображения слайдов на следующий день.
Примечание: Imaging слайды, как только coverslip сухой настоятельно рекомендуется, поскольку GFP флуоресценции будет уменьшаться с течением времени.
6. обработка изображений с помощью микроскопа интереса
Примечание: Пожалуйста, обратите внимание, что все программное обеспечение, описанные ниже являются специфическими для Микроскоп и программного обеспечения, мы использовали (см. Таблицу материалов). Действия и настройки, нужно будет корректироваться, если визуализация выполняется с использованием другой Микроскоп/программного обеспечения.
- Включите в Микроскоп интереса, активировать лазеры и лампа освещения эпифлуоресцентного и запуск программного обеспечения Микроскоп.
- Установите параметры для лазеров истощения интереса.
Примечание: Это будет зависеть от конкретных Микроскоп используется и лазеров, которые он оснащен. Некоторые Рекомендуемые параметры являются белый свет (WLL) 70%; 592 Нм лазер на 80%; 660 нм лазер на 80%. - Активизируйте параметры интереса и выровняйте интереса лазерных лучей с помощью 100 X цель.
- С помощью окуляра, фокус образца и выберите ячейку с умеренной экспрессия гена GFP.
Примечание: Низкая GFP выражение не будет видна потому что сигналу уменьшает интенсивность выбросов. И наоборот высокая экспрессия клип-170-GFP индуцирует спонтанного формирования больших кластеров, которая не отражает нормальное микротрубочек плюс конец белка сложную морфологию и распределения. Выбрав ячейку с умеренной экспрессия гена GFP имеет важное значение для точно изображений цитоскелета структур на сайте контакт антигена. - Zoom в выбранную ячейку и выберите регион интерес к записи образа. Отрегулируйте фокус, таким образом, чтобы плоскость x-y , B ячейки, которая находится ближе всего к coverslip, в центре внимания.
- Для этого, переместите цель постепенно ближе к coverslip, чтобы структуры цитоскелета клетки B вступают в фокус и затем идти не в фокусе. Затем постепенно переместить цель в противоположном направлении до тех пор, пока структуры цитоскелета клетки B сначала возвращаются в центре внимания.
- Оптимизируйте параметры, включая мощности лазера, возбуждения луча и детектор диапазона. Начните с настройками, рекомендуемыми экспертами с инструкциями производителя. Затем внесите необходимые изменения для оптимизации сигнала для образцов. Изображение все образцы для сравнения друг к другу с теми же параметрами.
- На вкладке «приобрести» программного обеспечения установите захвата изображений для приобретения последовательных кадров в нижней левой панели «Последовательное сканирование», установив параметр «между кадрами».
- Задайте порядок приобретения.
Примечание: Мы приобретаем GFP флуоресценции сначала для того, чтобы избежать деградации сигнала GFP.
В зависимости от комбинации флуорофоров, которые используются в дополнение к GFP изображений больше сигнал флуоресценции волны впервые может дает лучшие результаты. Однако порядок в котором флуорофоров или флуоресцентные белки подвергаются простимулированное излучение истощения и образы должны быть оптимизированы для получения сильных сигналов флуоресценции и лучшее разрешение. - Выберите и установите мощность лазера интереса для каждого Флюорофор программного обеспечения на вкладке «Приобретение» и используйте ползунок для 592-Нм или 660 нм лазер интереса для регулировки мощности лазера. Отрегулируйте мощность для истощения 592-Нм лазер для GFP и Alexa Fluor 532. Регулировка мощности для истощения 660 нм лазер для Alexa Fluor 568.
- Чтобы увеличить разрешение и уменьшить фонового сигнала, перейдите на «Приобретение» параметры на вкладке «Приобретение» программного обеспечения, увеличить линии и/или раме, усреднение, выбрав значение больше 1, используя раскрывающееся меню для каждого параметра.
- Кроме того, приобрести флуоресцентные сигнал, с помощью условного времени интереса, проверив параметр шлюзовые для Флюорофор на вкладке «Приобретение» и указание значений для время стробирования (см. Примечание ниже). Увеличьте мощность лазера интереса для повышения резолюции, хотя это также увеличит Фотообесцвечивание флуорофоров.
Примечание: Время стробирования будет нужно быть оптимизированы для микроскопа, выборки и флуорофоров используется. Время стробирования от 0,3 до 6 ns рекомендуется. После фиксации GFP особенно чувствителен к высоким лазерного луча. Чтобы уменьшить Фотообесцвечивание GFP, должны применяться время стробирования и следует уменьшить мощность лазера интереса. - Для захвата изображения 3D интереса, используйте ползунок, чтобы изменить точку распространения функция (PSF) «3D интереса».
- Вручную, приобрести несколько изображений для обеспечения воспроизводимости. Deconvolve изображения (см. Рисунок 1) с помощью программного обеспечения деконволюция пакет41(см. Таблицу материалы).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Для распространения на иммобилизованных анти Ig клетки B интереса микроскопии, в сочетании с программным обеспечением деконволюция обеспечивает изображения более высокого разрешения цитоскелета структур чем confocal микроскопии. Это проявляется в Рисунок 1, где F-актина сети был визуализирован с использованием протокола, описанных выше. Сравнение конфокальных и интереса суперразрешением изображения одного и того же образца показывает, что сигналу изображения выше резолюции и выявить более подробной структуры Цитоскелет актина (рис. 1). Эта цифра также показывает, что деконволюция имеет важное значение для получения высокого качества изображений интереса в котором миозина нитей более четко определены. Хотя деконволюция конфокальный изображений дает значительное улучшение в разрешение изображения, deconvolved сигналу изображения представить более подробную информацию структурных чем deconvolved конфокальная изображения. В частности дендритных структура периферийное кольцо F-актина раскрывается более детально по сигналу микроскопии (рис. 1 и рис. 2). Микротрубочки сети на сайте контакт антигена был также образы с помощью подготовки пробы и визуализации протокола, описанные выше (рис. 3). Микротрубочки исходят из центральной точки, которая является КТВМ, и вытекают наружу к периферии клетки. В этом эксперименте клетки B было разрешено распространить на анти Ig покрытием coverslips 15 мин (рис. 3), момент времени, на котором КТВМ перешла к антигена контакт сайта17. КЛИП-170-GFP кластеры, которые отмечают плюс концы микротрубочек можно увидеть на концах микротрубочек, показанный на рисунке 3. Когда пробоподготовки и интереса изображений микротрубочек сети оптимальное, непрерывного и собственный наблюдаются микротрубочек, с клип-170-GFP локализованы на концах плюс (рис. 3A) или вдоль микротрубочек. Субоптимальных микротрубочек окрашивание, которая наблюдалась при использовании более низкой концентрации Пятнать антитела или партий α-тубулина антител, которые более чем один год, результаты в микротрубочки, появляясь как разрывными секций, которые плохо разрешаются после деконволюции (рис. 3Б; см. также рис. 5 c). Хотя все клип-170-GFP флуоресценции в эти образы, связанный с α-тубулина immunostained структуры, не может отличить ли клип-170-GFP расположен на концах плюс, или по длине микротрубочек, из-за неполной пятнать микротрубочек. Поэтому важно, что α-тубулина антитела храниться под производитель Рекомендуемые условия хранения и используется в течение одного года.
Используя этот протокол, высокое качество многоцветной интереса изображения, которые показывают Организации и структуры Цитоскелет актина и микротрубочек сети, а также белков, таких как IQGAP1 и клип-170, которые связывают с этих двух cytoskeletons17 могут быть приобретены. На рисунке 4 снимках интереса периферийное кольцо дендритных актина, а также микротрубочек, которые исходят из центрального местоположения в камере, где актина пятнать гораздо менее плотными. КЛИП-170-GFP на концах этих микротрубочек тесно связан с периферической F-миозина. Этот протокол позволяет визуализировать цитоскелета структур на иммунные синапса с помощью одноцветном интереса изображений (рис. 2) или многоцветной интереса изображений (рис. 3 и рис. 4). Следует, однако, отметить, что один цвет интереса изображений (рис. 2) может принести лучшее разрешение актина структур и микротрубочек в клетки B чем многоцветные интереса (рис. 4). Это может быть из-за вызванных последовательного захвата изображений интереса для различных флуорофоров Фотообесцвечивание. Чтобы получить лучшие изображения суперразрешением, сочетание флуорофоров и флуоресцентных белков выбран, а также последовательность, в которой они отражаются с помощью возбуждения и истощение лазеры, должны быть оптимизированы для образца. Тем не менее многоцветные интереса изображений обеспечивает изображения более высокого разрешения этих цитоскелета структур чем обычные confocal микроскопии. Кроме того одноцветный интереса может использоваться для приобретения изображения 3-мерной суперразрешением всей клетки B актин или микротрубочек сети (фильм 1).
При использовании клетки transfected с флуоресцентные синтез белков, достижение оптимального выражение уровня и избежать артефактов благодаря гиперэкспрессия являются существенные соображения. В клетках, где оверэкспрессировали клип-170-GFP, образуются большие компоситы клип-170-GFP (Рисунок 5A). В дополнение к этой mislocalization клип-170-GFP только частью сети микротрубочек в этой ячейке был в пределах фокальной плоскости ближе к coverslip (Рисунок 5B). Это свидетельствует о том, что клип-170 гиперэкспрессия может также ухудшить КТВМ BCR-индуцированной поляризации. И наоборот потому что сильная флуоресценция сигналы обычно требуются для получения высокого качества изображений интереса, низкий выражение флуоресцентные синтез белков например КЛИПА-170-GFP (рис. 5 c) приводит плохое качество изображения. Следовательно при использовании клетки, которые были transfected с флуоресцентных белков, важно изображения только те клетки с оптимальным уровнем синтеза белков. Важно также отметить, что протокол transfection, который был использован для A20 клетки (см. Таблицу материалы) обычно приводит к 20-50% клеток, выражая transfected белка. Для плазмида ДНК (в отличие от малые интерферирующие РНК), transfection частот для первичной клетки B зачастую гораздо ниже, чем для клеток A20, требующих использования B клеточных линий. Тем не менее высокое качество интереса изображения цитоскелетных элементов в untransfected первичной клетки могут быть получены с помощью этого протокола (рис. 6).
Рисунок 1: сравнение конфокальных и интереса изображений F-актина. Конфокальный изображения (вверху) и изображений (внизу) интереса ячейки A20, который распространился на анти IgG покрытием coverslips за 15 мин до окрашенных с Alexa Fluor 532-конъюгированных Фаллоидин. Используя Конфокальный микроскоп интереса, той же ячейке было imaged сначала confocal микроскопии, а затем интереса. Первоначальный конфокальных и интереса изображения отображаются, наряду с же конфокальных и интереса изображения после деконволюции. Линейки: 5 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: Цитоскелет актина на сайте контакт антигена. A20 клетки, которые было разрешено распространить на анти IgG покрытием coverslips 15 мин были окрашенных с Alexa Fluor 568-конъюгированных Фаллоидин и образы по сигналу микроскопии. Первоначального изображения интереса были deconvolved. A-B панелей и панелей C-E показать представителя изображения двух разных клеток. Группа E показывает 3 X расширения региона в белом поле в группе C. Линейки для панелей A-D: 5 мкм. шкалы бар для группы E: 1 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: изображения сигналу сети микротрубочек и клип-170-GFP. A20 клетки, выражая клип-170-GFP было разрешено распространить на анти IgG покрытием coverslips за 15 мин до фиксированной и immunostained с α-тубулина антитела плюс вторичное антитело проспряганное Alexa Fluor 532. (A) представитель изображением иммуноокрашивания микротрубочки сети, с клип-170-GFP, расположенных главным образом в плюс концах микротрубочек. (B) субоптимальных окрашивание и резолюции вследствие использования устаревших запасов антитела α-тубулина микротрубочек. Масштаб бары: 5 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: интереса изображения актина и микротрубочек cytoskeletons. A20 клетки, выражая клип-170-GFP было разрешено распространить на анти IgG покрытием coverslips за 15 мин до фиксированной и витражи с Alexa Fluor 568-конъюгированных Фаллоидин визуализировать F-актина и α-тубулина антитела плюс Alexa Fluor 532-конъюгированных Вторичное антитело для визуализации микротрубочек. A-D панелей и панелей E-F показать представителя изображения двух разных клеток. Группа D – это 3,5 X расширение региона в белом поле в группе C. Масштаб бары: 5 мкм для группы A-C и E-F; 1 мкм для панели D. Изображение в панели A это же изображение, используемое в рисунке 3A , но включает в себя оверлея F-актина канала. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: примеры низкого качества изображений интереса причине гиперэкспрессия или недостаточное проявление синтез белка GFP. A20 клетки, выражая клип-170-GFP было разрешено распространить на анти IgG покрытием coverslips за 15 мин до фиксированной и витражи как показано на рисунке 4. (A, B) КЛИП-170-GFP гиперэкспрессия результаты в большой, ненормально агрегатов клип-170-GFP (A) и нарушениями КТВМ поляризации к антигену контакт сайта (B). (C) компенсировать недостаточное проявление клип-170-GFP, увеличив результаты мощность лазера в бедных качество изображения интереса. Масштаб бары: 5 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6: изображение интереса микротрубочек цитоскелета в первичной клетки B. Первичного splenic клетки B были культивированный 6 h с 5 нг/мкл BAFF плюс 2,5 мкг/мл ПЛАСТИНОК и затем разрешили распространять за 15 минут на coverslips, которые были покрыты с anti-IgM антител. Клетки были затем фиксированной и витражи с α-тубулина антитела плюс Alexa Fluor 568-конъюгированных вторичное антитело для визуализации микротрубочек. Представитель изображение будет показано. Линейки: 5 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Фильм 1: 3D реконструкции сети клетки B микротрубочек. A20 клетки было разрешено распространить на анти IgG покрытием coverslips за 15 мин до фиксированной и immunostained с α-тубулина антитела плюс вторичное антитело проспряганное Alexa Fluor 488. Z-ломтики были захвачены на 0,2 мкм шаг размеров для в общей сложности 37 кадров. 3D реконструкция было сделано с использованием микроскопа интереса в визуализации программного обеспечения. Пожалуйста нажмите здесь, чтобы посмотреть это видео. (Правой кнопкой мыши для загрузки.)
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Подробные изображения цитоскелета структур могут быть получены с помощью микроскопии суперразрешением интереса, который теоретически может достичь урегулирования 50 Нм, по сравнению с обычными confocal микроскопии, для которого дифракционный резолюции составляет ~ 200 Нм 24. способность решить тонкой структуры усиливается с помощью деконволюция программного обеспечения для расчета положение скорее оригинального источника света от наблюдаемых «размытым» флуоресценции сигнала. Этот протокол описывает методы использования интереса для Изображение актина и микротрубочек cytoskeletons, а также Белки цитоскелета связанные.
Активации клеток b индуцирует ремоделирования Цитоскелет актина и микротрубочек сети, с скоординированного регулирования двух cytoskeletons, имеет важное значение для формирования иммунной синапса17,42. Метод, который мы представляем был оптимизирован для одновременно изображение актина и микротрубочек cytoskeletons на сайте контакт антигена, используя многоцветные интереса, но одинаково применима для интереса одного цвета. Предыдущие исследования, которые мы проводили на голы цитоскелета клетки B, что сигналу может обеспечить новое понимание как клеточные структуры организуются и как они взаимодействуют друг с другом. С помощью микроскопии флуоресцирования конфокальных и общего внутреннего (TIRF), мы наблюдали, что микротрубочки контакт кольцо F-актина на периферии антигена контакт сайта17. С помощью микроскопии интереса, мы смогли показать, что плюс концы микротрубочек, которые были отмечены + КОНЧИК клип-170 тесно связать с дендритных актина сети на периферии клетки (см. Рисунок 4).
Несколько факторов которые Тепловизионная техника является наиболее подходящим для конкретного приложения. К ним относятся резолюция, которая требуется, структур для записи образа, метод маркировки и ее отношение сигнал шум (то есть, контраст), приобретение время, простота подготовки проб и воспроизводимость. Пробоподготовка для интереса не значительно отличается, чем для confocal микроскопии, и он сочетает в себе высокое разрешение получение быстрого изображения. Основным преимуществом интереса, что это оптический процесс, в котором изображение приобретается непосредственно из образца и резолюции могут быть скорректированы путем изменения мощности лазера интереса24. В отличие от основного состояния истощения суперразрешением микроскопии, который восстанавливает образы из тысячи последовательных изображений захватывает, обширные вычислительной обработки не требуется для интереса, и избегать введения артефактов реконструкции изображения 24. Однако, контраст в СТЕД изображения часто является низкая24, в которой дело после обработки с помощью программного обеспечения, такие как ImageJ могут быть необходимы для повышения контраста. Это особенно важно для изображений с плотной структуры, такие как дендритные актина сети. Чтобы улучшить контрастность изображения во время загрузки изображений, один можно уменьшить мощность лазера истощения или применить линии или усреднение кадра. Время закрытый интереса, который захватывает фотонов после набора пользователей время задержки, можно увеличить разрешение, уменьшив область, из которой фотоны являются собранные24,43. Мы рекомендуем, оптимизация изображений интереса цитоскелета структур на иммунные синапса с помощью комбинации этих методов для улучшения контрастности и резолюции.
В настоящее время не все флуорофоров являются оптимальными для изображений с интереса, и не все Флюорофор комбинации подходят для получения изображений многоцветные интереса. Тщательной корректировки обнаружения диапазонов имеет важное значение для обеспечения минимальной через кровь из флуорофоров в соседних каналах. Сочетание флуорофоров, используемые в настоящем Протоколе (то есть, GFP, Alexa Fluor 532 и Alexa Fluor 568) является оптимальным для многоцветного изображения суперразрешением интереса. По сравнению с структурированного освещения микроскопии (SIM) и методы (SMLM), один молекула локализации такие фото активированный локализации микроскопии (PALM), интереса не обычно идеально подходит для многоцветные изображения. Однако мы показать здесь, что небольшие перенасыщенности обнаружения Флюорофор, в паре с простой инструмент для обработки изображений, можно доставить многоцветные изображения с высоким разрешением из актина и микротрубочек cytoskeletons.
Этот протокол для интереса изображений цитоскелета структур выявил новые подробности цитоскелета архитектуру на СИНАПС иммунные клетки B. Хотя мы оптимизировали этот протокол для визуализации актина и микротрубочек cytoskeletons на сайте антиген контакт в клетки B, эти методы должны быть применимыми для других типов клеток, особенно иммунные клетки (Т-клетки, клетки, тучные клетки, и т.д.) которые формируют Иммунная синапсов. Кроме того полезность настоящего Протокола может быть продлен для покрытия coverslips с другими лигандами или клей субстратов. Однако это важно для оптимизации протокола и приобретения параметры изображения для типа клеток и экспериментальные установки.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Мы благодарим визуализации объекта UBC института наук о жизни (LSI) за поддержание интереса микроскопа. Эта работа финансировалась Грант #68865 от канадской институтов медицинских исследований (M.R.G.). Мы благодарим д-р Козо Kaibuchi (Университет Нагоя, Нагоя, Япония) за клип-170-GFP плазмиды.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell culture | |||
| A20 mouse B-lymphoma cells | ATCC | TIB-208 | Murine B-cell lymphoma of Balb/c origin that expresses an IgG-containing BCR on its surface |
| RPMI-1640 | Thermo Fisher Scientific | R0883 | |
| Fetal bovine serum | Thermo Fisher Scientific | 12483020 | Heat inactivate at 56 oC for 30 min |
| 2-mercaptoethanol | Millipore Sigma | M3148 | |
| Glutamine | Millipore Sigma | G5763 | |
| Sodium pyruvate | Millipore Sigma | P5280 | |
| Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | Liquid, 10,000 units |
| Additional materials for primary B cells | |||
| 70-µm cell strainer | Corning | 352350 | |
| Magnetic bead-based B cell isolation kit | Stemcell Technologies | 19854 | EasySep Mouse B cell Isolation kit |
| Lipopolysaccharide (LPS) | Millipore Sigma | L4391 | LPS from E. coli 0111:B4 |
| B cell-activating factor (BAFF) | R&D Systems | 2106-BF-010 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Transfection | |||
| Plasmid encoding CLIP-170-GFP | Gift from Dr. Kozo Kaibuchi (Nagoya Univ., Nagoya, Japan); described in Fukata et al. Cell 109:873-885, 2002 | ||
| Recommended transfection reagents and equipment | |||
| Amaxa Nucleofection kit V | Lonza | VCA-1003 | Follow the manufacturer's directions for mixing the transfection reagents with the DNA |
| Amaxa Nucleofector model 2b | Lonza | AAB-1001 | Program L-013 used |
| Falcon 6-well plates, TC treated, sterile | Corning | 353046 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Coating coverslips | |||
| 18-mm diameter round #1.5 cover glasses | Thomas Scientific | 1217N81 | Similar product: Marienfield-Superior catalogue #117580 |
| Forceps | Fisher Scientific | 1381242 | Dissecting extra fine splinter forceps |
| Falcon 12-well sterile tissue polystyrene tissue culture plate | Corning | 353043 | |
| 100% methanol | Fisher Scientific | A412-4 | |
| Sterile phosphate buffered saline (PBS) without calcium or magnesium | Thermo Fisher Scientific | 10010049 | |
| Goat-anti-mouse IgG antibody | Jackson ImmunoResearch | 115-005-008 | For A20 cells |
| Goat-anti-mouse IgM antibody | Jackson ImmunoResearch | 115-005-020 | For primary mouse B cells |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Staining | |||
| Paraformaldehyde (16% stock solution) | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Dilute with PBS to working concentration |
| Glutaraldehyde (50% stock solution) | Millipore Sigma | 340855 | Dilute with PBS to working concentration |
| Triton X-100 | Fisher Scientific | BP151-500 | |
| Saponin | Millipore Sigma | S2149 | |
| Bovine serum albumin (BSA), Fraction V | Millipore Sigma | 10735094001 | |
| Rabbit anti-tubulin antibody | Abcam | ab52866 | 1:250 dilution recommended but should be optimized |
| Alexa Fluor 532-conjugated goat anti-rabbit IgG | Thermo Fisher Scientific | A11009 | 1:100 dilution recommended but should be optimized |
| Alexa Fluor 568-conjugated phalloidin | Thermo Fisher Scientific | A12380 | 1:100 dilution recommneded but should be optimized |
| Prolong Diamond Antifade Mountant | Thermo Fisher Scientific | P36970 | Without DAPI |
| Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| Parafilm | VWR | P1150-2 | |
| HEPES | Millipore Sigma | H3375 | |
| NaCl | Fisher Scientific | BP358 | |
| KCl | Millipore Sigma | P9333 | |
| CaCl2 | Millipore Sigma | C1016 | |
| Na2HPO4 | Fisher Scientific | S374-500 | |
| MgSO4 | Fisher Scientific | M63 | |
| Dextrose | Fisher Scientific | D16-500 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Microscopy | |||
| Leica SP8 TCS STED microscope | Leica | ||
| Huygens deconvolution software | Scientific Voume Imaging | See https://svi.nl/HuygensProducts |
References
- Harwood, N. E., Batista, F. D. The cytoskeleton coordinates the early events of B-cell activation. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (2), a002360 (2011).
- Batista, F. D., Treanor, B., Harwood, N. E. Visualizing a role for the actin cytoskeleton in the regulation of B-cell activation. Immunol Rev. 237 (1), 191-204 (2010).
- Harwood, N. E., Batista, F. D. Early events in B cell activation. Annu Rev Immunol. 28, 185-210 (2010).
- Batista, F. D., Harwood, N. E. The who, how and where of antigen presentation to B cells. Nat Rev Immunol. 9 (1), 15-27 (2009).
- Kumari, S., et al. T cell antigen receptor activation and actin cytoskeleton remodeling. Biochim Biophys Acta. 1838 (2), 546-556 (2014).
- Dustin, M. L. Visualization of Cell-Cell Interaction Contacts: Synapses and Kinapses. Self Nonself. 2 (2), 85-97 (2011).
- Dustin, M. L., Chakraborty, A. K., Shaw, A. S. Understanding the Structure and Function of the Immunological Synapse. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2 (10), a002311 (2010).
- Dustin, M. L. Modular design of immunological synapses and kinapses. Cold Spring Harb Perspect Biol. 1 (1), a002873 (2009).
- Dustin, M. L. Visualization of cell-cell interaction contacts-synapses and kinapses. Adv Exp Med Biol. 640, 164-182 (2008).
- Dustin, M. L. Hunter to gatherer and back: immunological synapses and kinapses as variations on the theme of amoeboid locomotion. Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 577-596 (2008).
- Dustin, M. L. T-cell activation through immunological synapses and kinapses. Immunol Rev. 221, 77-89 (2008).
- Grakoui, A., et al. The immunological synapse: a molecular machine controlling T cell activation. Science. 285 (5425), 221-227 (1999).
- Monks, C. R., et al. Three-dimensional segregation of supramolecular activation clusters in T cells. Nature. 395 (6697), 82-86 (1998).
- Yuseff, M. I., et al. How B cells capture, process and present antigens: a crucial role for cell polarity. Nat Rev Immunol. 13 (7), 475-486 (2013).
- Mattila, P. K., Batista, F. D., Treanor, B. Dynamics of the actin cytoskeleton mediates receptor cross talk: An emerging concept in tuning receptor signaling. J Cell Biol. 212 (3), 267-280 (2016).
- Kuhn, J. R., Poenie, M. Dynamic polarization of the microtubule cytoskeleton during CTL-mediated killing. Immunity. 16 (1), 111-121 (2002).
- Wang, J. C., et al. The Rap1-cofilin-1 pathway coordinates actin reorganization and MTOC polarization at the B cell immune synapse. J Cell Sci. 130 (6), 1094-1109 (2017).
- Schnyder, T., et al. B cell receptor-mediated antigen gathering requires ubiquitin ligase Cbl and adaptors Grb2 and Dok-3 to recruit dynein to the signaling microcluster. Immunity. 34 (6), 905-918 (2011).
- Nath, S., et al. Dynein Separately Partners with NDE1 and Dynactin To Orchestrate T Cell Focused Secretion. J Immunol. 197 (6), 2090-2101 (2016).
- Combs, J., et al. Recruitment of dynein to the Jurkat immunological synapse. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (40), 14883-14888 (2006).
- Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Control of microtubule organization and dynamics: two ends in the limelight. Nat Rev Mol Cell Biol. 16 (12), 711-726 (2015).
- Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Microtubule +TIPs at a glance. J Cell Sci. 123 (20), 3415-3419 (2010).
- Fukata, M., et al. Rac1 and Cdc42 capture microtubules through IQGAP1 and CLIP-170. Cell. 109 (7), 873-885 (2002).
- Wegel, E., et al. Imaging cellular structures in super-resolution with SIM, STED and Localisation Microscopy: A practical comparison. Sci Rep. 6, 27290 (2016).
- Huang, B., Bates, M., Zhuang, X.
- Mace, E. M., Orange, J. S. Dual channel STED nanoscopy of lytic granules on actin filaments in natural killer cells. Commun Integr Biol. 5 (2), 184-186 (2012).
- Ritter, A. T., et al. Actin depletion initiates events leading to granule secretion at the immunological synapse. Immunity. 42 (5), 864-876 (2015).
- Tamarit, B., et al. Membrane microdomains and cytoskeleton organization shape and regulate the IL-7 receptor signalosome in human CD4 T-cells. J Biol Chem. 288 (12), 8691-8701 (2013).
- Brown, A. C., et al. Super-resolution imaging of remodeled synaptic actin reveals different synergies between NK cell receptors and integrins. Blood. 120 (18), 3729-3740 (2012).
- Dupre, L., et al. T Lymphocyte Migration: An Action Movie Starring the Actin and Associated Actors. Front Immunol. 6, 586 (2015).
- Rak, G. D., et al. Natural killer cell lytic granule secretion occurs through a pervasive actin network at the immune synapse. PLoS Biol. 9 (9), e1001151 (2011).
- Lin, K. B., et al. The Rap GTPases regulate the migration, invasiveness and in vivo dissemination of B-cell lymphomas. Oncogene. 29 (4), 608-615 (2010).
- Lin, K. B., et al. The rap GTPases regulate B cell morphology, immune-synapse formation, and signaling by particulate B cell receptor ligands. Immunity. 28 (1), 75-87 (2008).
- McLeod, S. J., et al. The Rap GTPases regulate integrin-mediated adhesion, cell spreading, actin polymerization, and Pyk2 tyrosine phosphorylation in B lymphocytes. J. Biol. Chem. 279 (13), 12009-12019 (2004).
- Christian, S. L., et al. Activation of the Rap GTPases in B lymphocytes modulates B cell antigen receptor-induced activation of Akt but has no effect on MAPK activation. J Biol Chem. 278 (43), 41756-41767 (2003).
- Batista, F. D., Iber, D., Neuberger, M. S. B cells acquire antigen from target cells after synapse formation. Nature. 411 (6836), 489-494 (2001).
- Treanor, B., et al. Dynamic cortical actin remodeling by ERM proteins controls BCR microcluster organization and integrity. J Exp Med. 208 (5), 1055-1068 (2011).
- Mattila, P. K., et al. The actin and tetraspanin networks organize receptor nanoclusters to regulate B cell receptor-mediated signaling. Immunity. 38 (3), 461-474 (2013).
- Yuseff, M. -I., et al. Polarized Secretion of Lysosomes at the B Cell Synapse Couples Antigen Extraction to Processing and Presentation. Immunity. 35 (3), 361-374 (2011).
- Mace, E. M., Orange, J. S. Visualization of the immunological synapse by dual color time-gated stimulated emission depletion (STED) nanoscopy. J Vis Exp. (85), (2014).
- Russ, J. C. The Image Processing Handbook, Sixth Edition. , CRC Press. (2011).
- Stinchcombe, J. C., et al. Centrosome polarization delivers secretory granules to the immunological synapse. Nature. 443 (7110), 462-465 (2006).
- Vicidomini, G., et al. Sharper low-power STED nanoscopy by time gating. Nat Methods. 8 (7), 571-573 (2011).
