Summary

Karaktärisera Histon posttranslationella modifieringen förändringar i jäst neurodegenerativa Proteinopathy modeller

Published: March 24, 2019
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver experimentella procedurer för att karakterisera genome-wide förändringar i nivåerna av Histon post-translationella modifieringar (PTM) som förekommer i samband med överuttryck av proteiner associerade med ALS och Parkinsons sjukdom i Saccharomyces cerevisiae modeller. Efter SDS-PAGE separation upptäcks enskilda Histon PTM halter med modifiering-specifika antikroppar via Western blotting.

Abstract

Neurodegenerativa sjukdomar, såsom amyotrofisk lateralskleros (ALS) och Parkinsons sjukdom (PD), orsaka förlusten av hundratusentals liv varje år. Effektiva behandlingsalternativ kunna stoppa sjukdomsprogression saknas. Trots de omfattande sekvensering ansträngningarna i stora patientgrupper förblir merparten av ALS och PD fall oförklarad av genetiska mutationer ensam. Epigenetik mekanismer, såsom posttranslationella modifieringen av Histon proteiner, kan vara inblandade i neurodegenerativa sjukdomen etiologi och progression och leda till nya mål för farmaceutiska intervention. Från däggdjur in vivo och in vitro-modeller av ALS och PD är kostsamma och kräver ofta långvarig och mödosam experimentella protokoll. Här beskriver vi en praktisk, snabb och kostnadseffektiv metod att fastställa genome-wide förändringar i Histon modifiering nivåer med hjälp av Saccharomyces cerevisiae som modellsystem. Detta protokoll möjliggör omfattande utredningar av epigenetiska förändringar ansluten till neurodegenerativa proteinopathies som styrker tidigare fynd i olika modellsystem samtidigt avsevärt utvidga vår kunskap om den neurodegenerativa sjukdomen epigenomet.

Introduction

Neurodegenerativa sjukdomar är förödande sjukdomar med liten eller ingen behandlingsalternativ som är tillgängliga. Bland dessa är amyotrofisk lateralskleros (ALS) och Parkinsons sjukdom (PD) särskilt fruktansvärda. Cirka 90% av ALS och PD fall anses sporadisk, som inträffar utan hereditet för sjukdomen, medan de återstående fallen köras i familjer och allmänhet är kopplade till en specifik gen mutationen1,2. Intressant, är båda dessa sjukdomar associerade med protein mislocalization och aggregering3,4,5,6. Till exempel säkrade i sarkom (FUS) och tjära DNA-bindande protein 43 (TDP-43) är RNA-bindande proteiner som mislocalize till cytoplasman och aggregera i ALS7,8,9,10, 11,12, medan α-synuclein är komponenten principen av proteinhaltiga aggregat kallas Lewy organ i PD5,13,14,15.

Trots de omfattande genome-wide association ansträngningarna i stora patientgrupper förblir den överväldigande majoriteten av ALS och PD fall oförklarad genetiskt. Epigenetik kan spela en roll i neurodegenerativ sjukdom? Epigenetik består av förändringar i genuttryck som inträffar utan ändringar till underliggande DNA sekvens16. En huvudsakliga epigenetisk mekanism innebär de inlägget translationella modifieringar (PTMs) Histon proteiner16. I eukaryota celler, är genetiskt material tätt insvept i kromatin. Basenheten kromatin är den nukleosomens, som består av 146 baspar av DNA lindad runt en Histon octamer, består av fyra par histoner (två kopior varje av histoner H2A, H2B, H3 och H4)17. Varje Histon har en N-terminal svans som sticker ut ur nukleosomens och kan ändras genom tillägg av olika kemiska beståndsdelarna, oftast på lysin och arginin rester18. Dessa PTMs är dynamiska, vilket innebär att de kan enkelt läggas till och tas bort och inkluderar grupper såsom Acetylering, metylering och fosforylering. PTMs styr tillgängligheten av DNA på transkriptionell maskinen och därmed hjälpa kontroll gen uttryck18. Till exempel Histon Acetylering minskar styrkan av elektrostatiska samverkan mellan mycket grundläggande Histon proteinet och negativt laddade DNA ryggraden, så att de gener som packad av Acetylerade histoner vara mer tillgängliga och därmed mycket uttryckte19. Mer nyligen, anmärkningsvärda biologiska specificiteten av viss Histon PTMs och deras kombinationer har lett till Histon kod hypotes20,21 i vilka proteiner som skriva, radera och läsa Histon PTMs alla agera i samförstånd för att modulera genuttryck.

Jäst är en mycket användbar modell för att studera neurodegeneration. Ännu viktigare, bevaras många neuronala cellulära vägar från jäst till människor22,23,24. Jästen recapitulate cytotoxicitet fenotyper och protein inneslutningar vid överuttryck av FUS, TDP-43 eller α-synuclein22,23,24,25,26. I själva verket har Saccharomyces cerevisiae modeller av ALS använts för att identifiera genetiska riskfaktorer i människor27. Dessutom jäst överuttryck mänskliga α-synuclein tillåtet för karakterisering av Rsp5 nätverket som ett druggable mål att lindra α-synuclein toxicitet i nervceller28,29.

Här beskriver vi ett protokoll som utnyttjar Saccharomyces cerevisiae för att upptäcka genome-wide Histon PTM förändringar i samband med neurodegenerativa proteinopathies (figur 1). Användning av S. cerevisiae är mycket attraktiva på grund av dess användarvänlighet, låga kostnader, och hastighet jämfört med andra in vitro och djur modeller för neurodegeneration. Utnyttja tidigare utvecklat ALS och PD modeller22,23,25,26, vi har i ökad utsträckning mänskligt FUS, TDP-43 och α-synuclein i jäst och avtäckta distinkta Histon PTM förändringar som sker i i samband med varje proteinopathy30. Det protokoll som vi beskriver här kan utföras i mindre än två veckor från omvandling till dataanalys.

Protocol

1. omvandla S. cerevisiae med neurodegenerativa proteinopathy-associerade protein konstruktioner Växa vildtyp (WT) 303 jäst i jäst extrakt pepton dextros (YPD) buljong över natten med skakningar (200 rpm) vid 30 ° C. Efter 12−16 h tillväxt, späd jäst till en optisk densitet på 600 nm (OD600) 0,25 med YPD. Som 10 mL flytande jästkultur kommer att behövas för varje omformning, förbereda 50 mL flytande jästkultur för fem transformationer motsvarar FUS, TDP-43, a-synuc…

Representative Results

För att illustrera den här metoden, kommer vi utnyttja nyligen publicerade resultat30. WT mänskliga FUS och TDP-43 var i ökad utsträckning för 5 h, medan WT α-synuclein var i ökad utsträckning för 8 h. En ccdB konstruktion användes som en vektor negativ kontroll. Figur 2 visar tillväxt suppression i fasta och flytande kulturer. Jäst var skördas som beskrivs och Western blotting med modifiering-specifika antikroppar utför…

Discussion

Protokollet beskrivs här ger ett okomplicerat, ändamålsenligt och kostnadseffektivt sätt att kategorisera genome-wide Histon PTM förändringar korrelerade med neurodegenerativa proteinopathies. Medan det finns andra modeller av ALS och PD, exempelvis in vitro- modeller mänskliga cellinjer och murint32, S. cerevisiae förblir attraktiva på grund av dess användarvänlighet. Till exempel jäst modeller kräver inte användning av en steril huva, inte heller behöver de den i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Royena Tanaz, Huda Yousuf och Sadiqa Taasen för teknisk hjälp. Vi är mycket tacksamma mot Prof. James Shorter för generösa tillhandahållande av reagenser och intellektuella hjälp i utformningen av sackaros trim experiment. Jästen plasmider var en generös gåva från Prof. Aaron Gitler (inklusive 303Gal-FUS; Addgene plasmid # 29614). Brooklyn College och den avancerade Science Research Center (CUNY) samt en NIH NINDS avancerad postdoktorala övergången Award (K22NS09131401) stöds M.P.T.

Materials

-His DO Supplement Clontech 630415
10x Running Buffer Mix: 141.65 g glycine (ThermoFisher BP381-1), 30.3 g Tizma base (Sigma-Aldrich T6066), 10 g sodium dodecyl sulfate (Sigma-Aldrich L3771), and 1 L deionized water, pH 8.8.
12% Polyacrylamide Gels BIO-RAD 456-1041
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Anti-acetyl-Histone H3 (Lys14) Primary Antibody MilliporeSigma 07-353 (Lot No. 2762291) Dilution: 1/1000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys 16) Primary Antibody Abcam ab109463 (Lot No. GR187780) Dilution: 1/2000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys12) Primary Antibody Abcam ab46983 (Lot No. GR71882) Dilution: 1/5000
Anti-dimethyl-Histone H3 (Lys36) Primary Antibody Abcam ab9049 (Lot No. GR266894, GR3236147) Dilution: 1/1000
Anti-Histone H3 Primary Antibody Abcam ab24834 (Lot No. GR236539, GR174196, GR3194335) Nuclear Loading Control; Dilution: 1/2000
Anti-phospho-Histone H2B (Thr129) Primary Antibody Abcam ab188292 (Lot No. GR211874) Dilution: 1/1000
Anti-phospho-Histone H3 (Ser10) Primary Antibody Abcam ab5176 (Lot No. GR264582, GR192662, GR3217296) Dilution: 1/1000
BioPhotometer D30 Eppendorf 6133000010
Cell Culture Dish (100 x 20 mm) Eppendorf 30702118
Cell Culture Plate, 96 well Eppendorf 30730011
Centrifuge 5804/5804 R/5810/5810 R Eppendorf 22625501
Donkey Anti-Mouse IRDye 800 CW LI-COR 926-32212 (Lot No. C60301-05, C61116-02, C80108-05) Dilution: 1/5000
Donkey Anti-Rabbit IRDye 860 RD LI-COR 926-68073 (Lot No. C60217-06, C70323-06, C70601-05, C80116-07) Dilution: 1/2500
Ethanol Sigma-Aldrich E7023
Extra thick blot paper (filter paper) BIO-RAD 1703968
Galactose Sigma-Aldrich G0750 Prepare 20% w/v stock solution.
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Prepare 20% w/v stock solution.
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 Prepare 50 % w/v solution.
Immobilon-FL Transfer Membranes MilliporeSigma IPFL00010
Lithium acetate dihydrate (LiAc) Sigma-Aldrich L4158 Prepare a 1 M solution.
Loading Dye Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue (Sigma-Aldrich B8026), 4.7 mL glycerol, 1.2 mL 0.5M Trizma base pH 6.8, 0.93 g DL-Dithiothreitol (Sigma-Aldrich D0632), and 2.1 mL deionized water.
Methanol ThermoFisher A412-4
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoeresis Cell BIO-RAD 1658004
Multichannel pipet Eppendorf 2231300045
NEB Restriction Enzyme Buffer 2.1, 10x New England Bio Labs 102855-152
Nhe I Restriction Enzyme New England Bio Labs 101228-710
Nuclease Free Water Qiagen 129114
Odyssey Fc Imaging System LI-COR Biosciences 2800-03
OmniTray Cell Culture Treated w/Lid Sterile, PS (86 x 128 mm) ThermoFisher 165218
pAG303GAL-a-synuclein-GFP Gift from A. Gitler
pAG303GAL-ccdB Addgene 14133
pAG303Gal-FUS Addgene 29614
pAG303GAL-TDP-43 Gift from A. Gitler
Poly(ethylene glycol) (PEG) Sigma-Aldrich P4338 Prepare a 50% w/v solution.
Ponceau S Stain Sigma-Aldrich P3504 Mix: 0.5 g 0.1% w/w Ponceau S dye, 5 mL 1% v/v acetic acid (Sigma-Aldrich 320099), and 500 mL deionized water.
PowerPac Basic Power Supply BIO-RAD 164-5050
Raffinose pentahydrate Sigma-Aldrich R7630 Prepare 10% w/v stock solution.
Salmon Sperm DNA Agilent Tech 201190
SD-His plates Mix: 20 g Agar (Sigma-Aldrich A1296), 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids (ThermoFisher 291920), and 900 mL deionized water.
SGal-His plates Mix: 20 g Agar, 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids, 100 mL galactose solution, and 900 mL deionized water.
Sodium dodecyl sulfate Loading Buffer Store at -20 oC. 6X, Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue, 0.93 g DL-Dithiothreitol, 2.1 mL deionized water, 4.7 mL glycerol, and 1.2 mL 0.5 M Trizma base, pH 6.8.
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465 Prepare 0.2 M solution.
Sucrose Sigma-Aldrich 84097 Prepare 20% w/v stock solution.
TBS + 0.1% Tween 20 (TBST) Mix: 100 mL 10X TBS, 1 mL Tween 20 (Sigma-Aldrich P7949), and 900 mL deionized water.
TBS Blocking Buffer LI-COR 927-5000
Trans-Blot SD Semi-Dry Electrophoretic Transfer Cell BIO-RAD 170-3940
Transfer Buffer Mix: 22.5 g glycine, 4.84 g Tizma base, 400 mL methanol, 1 g sodium dodecyl sulfate, and 1.6 L deionized water.
Tris-Buffered Saline (TBS) 10X, 7.6 pH, Solution: Mix 24 g Trizma base, and 88 g sodium chloride (Sigma-Aldrich S7653). Fill to 1 L with deionized water.
WT 303 S. cerevisiae yeast Gift from J. Shorter
Yeast Extract Peptone Dextrose (YPD) Sigma-Aldrich Y1375

References

  1. Landgrave-Gómez, J., Mercado-Gómez, O., Guevara-Guzmán, R. Epigenetic mechanisms in neurological and neurodegenerative diseases. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 58 (2015).
  2. Paez-Colasante, X., Figueroa-Romero, C., Sakowski, S. A., Goutman, S. A., Feldman, E. L. Amyotrophic lateral sclerosis: mechanisms and therapeutics in the epigenomic era. Nature Reviews Neurology. 11 (5), 266-279 (2015).
  3. Beitz, J. M. Parkinson’s Disease: a Review. Frontiers in Bioscience. 6, 65-74 (2014).
  4. Kim, H. J., et al. Mutations in prion-like domains in hnRNPA2B1 and hnRNPA1 cause multisystem proteinopathy and ALS. Nature. 495 (7442), 467-473 (2013).
  5. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  6. Robberecht, W., Philips, T. The changing scene of amyotrophic lateral sclerosis. Nature Reviews Neuroscience. 14 (4), 248-264 (2013).
  7. Chen-Plotkin, A. S., Lee, V. M. Y., Trojanowski, J. Q. TAR DNA-binding protein 43 in neurodegenerative disease. Nature Reviews Neurology. 6 (4), 211-220 (2010).
  8. Couthouis, J., et al. A yeast functional screen predicts new candidate ALS disease genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (52), 20881-20890 (2011).
  9. Da Cruz, S., Cleveland, D. W. Understanding the role of TDP-43 and FUS/TLS in ALS and beyond. Current Opinion in Neurobiology. 21 (6), 904-919 (2011).
  10. King, O. D., Gitler, A. D., Shorter, J. The tip of the iceberg: RNA-binding proteins with prion-like domains in neurodegenerative disease. Brain Research. 1462, 61-80 (2012).
  11. Neumann, M., et al. FET proteins TAF15 and EWS are selective markers that distinguish FTLD with FUS pathology from amyotrophic lateral sclerosis with FUS mutations. Brain. 134 (9), 2595-2609 (2011).
  12. Neumann, M., et al. Ubiquitinated TDP-43 in Frontotemporal Lobar Degeneration and Amyotrophic Lateral Sclerosis. Science. 314 (5796), 130-133 (2006).
  13. Baba, M., et al. Aggregation of alpha-synuclein in Lewy bodies of sporadic Parkinson’s disease and dementia with Lewy bodies. The American Journal of Pathology. 152 (4), 879-884 (1998).
  14. Lotharius, J., Brundin, P. Pathogenesis of parkinson’s disease: dopamine, vesicles and α-synuclein. Nature Reviews Neuroscience. 3 (12), 932-942 (2002).
  15. Spillantini, M. G., et al. α-Synuclein in Lewy bodies. Nature. 388 (6645), 839-840 (1997).
  16. Probst, A. V., Dunleavy, E., Almouzni, G. Epigenetic inheritance during the cell cycle. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (3), 192-206 (2009).
  17. Luger, K., Mäder, A. W., Richmond, R. K., Sargent, D. F., Richmond, T. J. Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 Å resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  18. Mazzio, E. A., Soliman, K. F. A. Basic concepts of epigenetics. Epigenetics. 7 (2), 119-130 (2012).
  19. Struhl, K. Histone acetylation and transcriptional regulatory. Genes & Development. 12 (5), 599-606 (1998).
  20. Garcia, B. A., Shabanowitz, J., Hunt, D. F. Characterization of histones and their post-translational modifications by mass spectrometry. Current Opinion in Chemical Biology. 11 (1), 66-73 (2007).
  21. Strahl, B. D., Allis, C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 403 (6765), 41-45 (2000).
  22. Jovicic, A., et al. Modifiers of C9orf72 dipeptide repeat toxicity connect nucleocytoplasmic transport defects to FTD/ALS. Nature Neuroscience. 18 (9), 1226-1229 (2015).
  23. Sanchez, Y., Lindquist, S. L. HSP104 required for induced thermotolerance. Science. 248 (4959), 1112 (1990).
  24. Outeiro, T. F., Lindquist, S. Yeast Cells Provide Insight into Alpha-Synuclein Biology and Pathobiology. Science. 302 (5651), 1772 (2003).
  25. Johnson, B. S., et al. TDP-43 Is Intrinsically Aggregation-prone, and Amyotrophic Lateral Sclerosis-linked Mutations Accelerate Aggregation and Increase Toxicity. Journal of Biological Chemistry. 284 (30), 20329 (2009).
  26. Sun, Z., et al. Molecular Determinants and Genetic Modifiers of Aggregation and Toxicity for the ALS Disease Protein FUS/TLS. PLOS Biology. 9 (4), e1000614 (2011).
  27. Elden, A. C., et al. Ataxin-2 intermediate-length polyglutamine expansions are associated with increased risk for ALS. Nature. 466 (7310), 1069-1075 (2010).
  28. Wijayanti, I., Watanabe, D., Oshiro, S., Takagi, H. Isolation and functional analysis of yeast ubiquitin ligase Rsp5 variants that alleviate the toxicity of human α-synuclein. The Journal of Biochemistry. 157 (4), 251-260 (2015).
  29. Tardiff, D. F., et al. Yeast Reveal a “Druggable” Rsp5/Nedd4 Network that Ameliorates α-Synuclein Toxicity in Neurons. Science. 342 (6161), 979 (2013).
  30. Chen, K., et al. Neurodegenerative Disease Proteinopathies Are Connected to Distinct Histone Post-translational Modification Landscapes. ACS Chemical Neuroscience. 9 (4), 838-848 (2018).
  31. Flick, J. S., Johnston, M. Two systems of glucose repression of the GAL1 promoter in Saccharomyces cerevisiae. Molecular and Cellular Biology. 10 (9), 4757 (1990).
  32. Fernandez-Santiago, R., Ezquerra, M. Epigenetic Research of Neurodegenerative Disorders Using Patient iPSC-Based Models. Stem Cells International. 2016, 9464591 (2016).
  33. Armakola, M., et al. Inhibition of RNA lariat debranching enzyme suppresses TDP-43 toxicity in ALS disease models. Nature Genetics. 44 (12), 1302-1309 (2012).
  34. Tibshirani, M., et al. Cytoplasmic sequestration of FUS/TLS associated with ALS alters histone marks through loss of nuclear protein arginine methyltransferase 1. Human Molecular Genetics. 24 (3), 773-786 (2015).
  35. Masala, A., et al. Epigenetic Changes Associated with the Expression of Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS) Causing Genes. Neuroscience. 390, 1-11 (2018).
  36. Eryilmaz, I. E., et al. Epigenetic approach to early-onset Parkinson’s disease: low methylation status of SNCA and PARK2 promoter regions. Neurological Research. 39 (11), 965-972 (2017).
  37. Daniele, S., et al. Epigenetic Modifications of the α-Synuclein Gene and Relative Protein Content Are Affected by Ageing and Physical Exercise in Blood from Healthy Subjects. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2018, 3740345 (2018).

Play Video

Cite This Article
Bennett, S. A., Cobos, S. N., Meykler, M., Fallah, M., Rana, N., Chen, K., Torrente, M. P. Characterizing Histone Post-translational Modification Alterations in Yeast Neurodegenerative Proteinopathy Models. J. Vis. Exp. (145), e59104, doi:10.3791/59104 (2019).

View Video