Summary

Een roman Nicotinamide adenine dinucleotide correctiemethode voor intracellulaire CA2 + meting met Fura-2-analoog in levende cellen

Published: September 20, 2019
doi:

Summary

Vanwege de spectrale overlapping van de excitatie-en emissie golflengten van NADH en Fura-2-analogen, is de signaalstoring van beide chemicaliën in levende cellen onvermijdelijk tijdens de kwantitatieve meting van [ca.2 +]. Zo werd een nieuwe online correctiemethode van NADH-signaalinterferentie op maat [CA2 +] ontwikkeld.

Abstract

Om [ca.2 +] kwantitatief te meten, worden Fura-2-analogen, die ratiometrische fluoroprobes zijn, vaak gebruikt. Het gebruik van de kleurstof is echter intrinsiek beperkt in levende cellen vanwege interferentie met autofluorescentie, voornamelijk van Nicotinamide adenine dinucleotide (NADH). Specifieker, dit is een groot obstakel bij het meten van de mitochondriale [CA2 +] kwantitatief met behulp van Fura-2 analogen omdat de meerderheid van NADH in de mitochondriën. Als de fluorescerende kleurstof concentratie hetzelfde is, moet een bepaalde excitatie-intensiteit dezelfde emissie-intensiteit opleveren. Daarom moet de emissie-intensiteit verhouding van twee verschillende excitatie golflengten constant zijn. Op basis van dit principe is een nieuwe online correctiemethode van NADH-signaalinterferentie voor het meten van [CA2 +] ontwikkeld, en de werkelijke signaalintensiteit van NADH en Fura-2 kunnen worden verkregen. Verder werd een nieuwe vergelijking voor de berekening van [CA2 +] ontwikkeld met isosbestic excitatie of excitatie bij 400 nm. Met deze methode, veranderingen in de mitochondriale [CA2 +] kan met succes worden gemeten. Bovendien, met een andere set van de excitatie en emissie golflengten, meerdere parameters, met inbegrip van NADH, [CA2 +], en pH of Mitochondriale membraanpotentiaal (Ψm), gelijktijdig kunnen worden gemeten. Mitochondriale [CA2 +] en Ψm of pH werden gemeten met behulp van FURA-2-FF en tetramethylrhodamine ethyl ester (tmre) of Carboxy-seminaphtorhodafluor-1 (Carboxy-snarf-1).

Introduction

De belangrijke rol van intracellulaire CA2 + is algemeen bekend1. De kwantificering van [CA2 +] is essentieel om de processen van de cellulaire fysiologische functies te begrijpen. Fura-2-analogen zijn zeer nuttig omdat ze enthousiast zijn in het UV-bereik (< 400 nm), en de ratiometrische methode kan worden toegepast voor de kwantitatieve meting. Daarom kunnen andere fysiologische parameters zoals pH, membraanpotentiaal, enz., worden gemeten met andere fluorescerende kleurstoffen. De mitochondriale CA2 + concentratie ([CA. 2 +]m) was naar verluidt 0,08 − 20μM 2,3,4,5. Bij Fura-2-analogen is Fura-2-FF geschikt voor het meten van dit bereik van [CA2 +]. Echter, de levende cellen bevatten helaas NADH/NADPH voor hun metabole processen, en NADH genereert signaalinterferentie vanwege de overlappende excitatie en emissiespectra met de Fura-2 analoog. Deze interferentie beperkt het gebruik van Fura-2-analogen sterk. Specifiek, als de analoge wordt toegepast om te meten mitochondriale [CA2 +], deze interferentie is het grootste obstakel, omdat de hoogste hoeveelheid NADH in de mitochondriën. Dit wordt verder bemoeilijkt door NADH veranderingen gerelateerd aan het Mitochondriale membraanpotentiaal (Ψm) en de verandering van Ψm beïnvloedt [CA2 +]m6,7,8 , 9. Bovendien is het voor het bestuderen van [CA2 +]m dynamiek essentieel om de status van andere mitochondriale parameters te kennen, zoals NADH, Ψmen Ph.

De emissies bij 450 nm en 500 nm met excitaties bij 353 nm, 361 nm en 400 nm bevatten de signalen van NADH en Fura-2-FF, en de vergelijkingen zijn als volgt. Hierin zijn 353 nm en 361 nm de isosbestic punten van Fura-2-FF voor emissies bij 450 nm en bij respectievelijk 500 nm.

F361.450 = f361450, NADH + f361450, Fura vergelijking 1
F353.500 = f353500, NADH + f353500, Fura vergelijking 2
F400.500 = f400500, NADH + f400500, Fura vergelijking 3

waar Fx, y de gemeten emissie-intensiteit is bij y-nm door x-nm excitatie, fx, y, is NADH de zuivere NADH-afhankelijke emissie-intensiteit, en Fx, y, Fura vertegenwoordigt de zuivere Fura-2-FF-afhankelijke emissie-intensiteit. Onder dezelfde concentratie van de fluorescerende kleurstof moet een bepaalde excitatie intensiteit dezelfde emissie-intensiteit opleveren. Daarom moet de emissie-intensiteit verhouding van twee verschillende excitatie golflengten constant zijn. CA2 + en Fura-2 hadden geen invloed op de eigenschappen van NADH fluorescentie; Daarom was de verhouding van de emissie bij 450 nm en bij 500 nm van NADH constant bij elke excitatie golflengte. Dezelfde regel kan worden gebruikt voor Fura-2-FF op basis van de veronderstelling dat NADH of [CA2 +] heeft geen invloed op de emissie en excitatie spectra van Fura-2-FF. CA2 + veroorzaakte echter een spectrale verschuiving van de Fura-2-FF-emissie. Daarom, om het effect van CA2 +te verwijderen, moet isosbestic excitatie, die onafhankelijk is van CA2 +, worden gebruikt. Elke emissie golflengte (d.w.z. 450 nm en 500 nm) heeft een verschillend isosbestic punt, en uit onze experimentele opstelling werden 353 Nm bij 500 nm en 361 Nm bij 450 nm gekozen. Hieruit zijn de volgende vergelijkingen geldig10.

Rf = f361450, Fura/F353500, Fura vergelijking 4
RN1 = f400500, NADH/F361450, NADH vergelijking 5
RN2 = f353500, NADH/F361450, NADH vergelijking 6

Met deze constanten zijn de volgende vergelijkingen van (vergelijking 1) (vergelijking 2) en (vergelijking 3) geldig.

F361.450 = f361450, NADH + Rf × f353500, Fura vergelijking 7
F353.450 = RN2 × f361450, NADH + f353500, Fura vergelijking 8
F400.500 = RN1 × f361450, NADH + F400500, Fura vergelijking 9

Uit deze vergelijkingen, indien Rf, rN1en rN2 bekend zijn, kunnen zuivere signalen van NADH en Fura-2 als volgt worden verkregen.

F361450, NADH = (f361.450 -rf × f353.500)/(1 − rf × rN2) vergelijking 10
F353500, Fura = (rN2 × F361.450 − f353.500)/(rF × rN2 − 1) vergelijking 11
F400500, Fura = f400.500 − RN1 × f361450, NADH vergelijking 12
RFura = F353500, Fura/F400500, Fura vergelijking 13

De CA2 +-gebonden vorm van Fura-2-FF was praktisch niet-fluorescerend bij de 400 nm excitatie golflengte. Op basis van deze eigenschap kan de volgende nieuwe kalibratie vergelijking worden afgeleid.

[CA2 +] = Kd ∙ (F400500, Max/f353500, Max) × (RFura − rmin) vergelijking 14

waarbij Kd een dissociatieconstante is, F400500, Max en f353500, Max zijn de maximale waarden van de uitgestoten signalen bij 500 nm met excitaties bij respectievelijk 400 nm en 353 nm, en rmin is de minimale rFura in CA2 +-gratis conditie. Aangezien de isosbestic-excitaties werden gebruikt, kan de vergelijking als volgt verder worden vereenvoudigd.

[CA2 +] = Kd ∙ (1/Rmin) ∙ (rFura − Rmin) vergelijking 15

Daarom zijn alleen Kd -en Rmin -waarden vereist om [CA2 +] te berekenen.

Protocol

Alle experimentele protocollen werden goedgekeurd door het lokale Comité voor dierenverzorging en-gebruik. 1. voorbereiding van de oplossing Bereid één vers geïsoleerde cardiale myocytes11.Opmerking: elk laboratorium kan een andere oplossing voor celopslag hebben. Hier worden de myocyten opgeslagen in kweekmedium (DMEM). Bereid 100 mL CA2 +-vrije oplossing (tabel 1). Bereid 50 mL kweekmedium in een bekerg…

Representative Results

Mitochondriale CA2 + wijzigingen als gevolg van correctie10Figuur 4 toont de wijzigingen in [CA2 +]m voor en na de correctie. De resultaten toonden duidelijk de substantiële veranderingen in [ca.2 +]m. De mitochondriale rust calciumconcentratie zonder cytosolische CA2 + ([ca.2 +]c) was 1,03 ± 0,13 μm (gemiddelde ± 1g , n = 32), en het maximum [CA2 +] m bij[ca….

Discussion

De storings correctiemethode werd met succes ontwikkeld voor het meten van de signalen van NADH en Fura-2 analogen. Exacte meting van de signalen is essentieel voor exacte correctie. De inherente aard van het fluorescerende apparaat produceert echter een achtergrond signaal dat geen verband houdt met dat van NADH van Fura-2. De hoogste kwaliteit band-pass filter kan alleen passeren tot 10− 8 van de ongewenste golflengten van het licht. Het fluorescerende signaal van een enkele cel is echter erg klein, en de …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd deels ondersteund door het basisprogramma voor wetenschappelijk onderzoek via de National Research Foundation of Korea (NRF), gefinancierd door het ministerie van onderwijs (2018R1A6A3A01011832), door het ministerie van Wetenschappen, ICT & toekomstige planning (NRF-2016M3C1A6936606) en door het ministerie van handel, industrie & energie (10068076).

Materials

2 mL eppendorf tube Axygen MCT-200-C 2 mL Tube
AD/DA converter Instrutech ITC-18 Equipment
ADP, Adenosine 5′-diphosphate monopotassium salt dihydrate Sigma-aldrich A5285 Chemicals
Band pass filter Ealing Electro-Optics, Inc 35-3920 Equipment, 640±11nm
Band pass filter Omega Optical 690-9823 Equipment, 590±15nm
Band pass filter Omega Optical 500DF20-9916 Equipment, 500±20nm
Band pass filter Chroma Technology Corp. 60685 Equipment, 450±30nm
Calcium chloride solution Sigma-aldrich 21114 Chemicals
carboxy-SNARF-1(AM) Invitrogen C1272 Chemicals
Charge-coupled device (CCD) camera Philips FTM1800NH/HGI Equipment
Dichroic mirror Chroma Technology Corp. 86009 Equipment, Multiband dichroic mirror, Reflection : <400nm, 490±10, 560±10, Transmission : 460±15, 510±20, >580nm
Dichroic mirror Chroma Technology Corp. 567DCXRU Equipment, Reflection : <560nm, Transmission : > 580 nm
Dichroic mirror Chroma Technology Corp. 480dclp Equipment, Reflection : <470nm, Transmission : > 490 nm
Dichroic mirror Chroma Technology Corp. 20728 Equipment, Multiband dichroic mirror, Reflection : <405nm, 470±30, Transmission : 430nm~520nm, > 640 nm
Dimethyl sulfoxide(DMSO) Sigma-aldrich 154938 Chemicals
DMEM, Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium Sigma-aldrich D5030 Chemicals
EGTA, Egtazic acid, Ethylene-bis(oxyethylenenitrilo)tetraacetic acid, Glycol ether diamine tetraacetic acid Sigma-aldrich E4378 Chemicals
FCCP, Mesoxalonitrile 4-trifluoromethoxyphenylhydrazone Sigma-aldrich 21857 Chemicals
field diaphragm Nikon 86506 Equipment
Fura-2-FF(AM) TEFLABS 137 chemicals
Green tube DWM test tube
HEPES,  4-(2-Hydroxyethyl)piperazine-1-ethanesulfonic acid, N-(2-Hydroxyethyl)piperazine-N′-(2-ethanesulfonic acid) Sigma-aldrich H3375 Chemicals
High-speed counter National Instruments NI-6022 Equipment
Hot mirror Chroma Technology Corp. 21002 Equipment, 50:50
Inverted microscope Nikon TE-300 Equipment
Malate Sigma-aldrich 27606 Chemicals
Near infrared filter Chroma Technology Corp. D750/100X Equipment, 750±100nm
Oil immersion lens Nikon MRF01400 40x, NA 1.3; Equipment
Photon counter unit Hamamatsu C3866 Equipment
Photon multiplier tube Hamamatsu R2949 Equipment
Polychrome II Till Photonics SA3/MG04 Equipment
Potassium chloride Merck 1.04936 Chemicals
Potassium hydroxide solution Sigma-aldrich P4494 Chemicals
Pyruvate Sigma-aldrich 107360 Chemicals
Rotenone Sigma-aldrich R8875 Chemicals
Saponin Sigma-aldrich S4521 Chemicals
TMRE, Tetramethylrhodamine, ethyl ester Molecular probes T669 Chemicals

References

  1. Berridge, M. J., Bootman, M. D., Roderick, H. L. Calcium signalling: dynamics, homeostasis and remodelling. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 4 (7), 517-529 (2003).
  2. Miyata, H., et al. Measurement of mitochondrial free Ca2+ concentration in living single rat cardiac myocytes. American Journal of Physiology. 261 (4 Pt 2), H1123-H1134 (1991).
  3. Allen, S. P., Stone, D., McCormack, J. G. The loading of fura-2 into mitochondria in the intact perfused rat heart and its use to estimate matrix Ca2+ under various conditions. Journal of Molecular Cellular Cardiology. 24 (7), 765-773 (1992).
  4. Griffiths, E. J., Halestrap, A. P. Pyrophosphate metabolism in the perfused heart and isolated heart mitochondria and its role in regulation of mitochondrial function by calcium. Biochemical Journal. 290 (Pt 2), 489-495 (1993).
  5. Crompton, M., Moser, R., Ludi, H., Carafoli, E. The interrelations between the transport of sodium and calcium in mitochondria of various mammalian tissues. European Journal of Biochemistry. 82 (1), 25-31 (1978).
  6. Chance, B., Schoener, B., Oshino, R., Itshak, F., Nakase, Y. Oxidation-reduction ratio studies of mitochondria in freeze-trapped samples. NADH and flavoprotein fluorescence signals. The Journal of Biological Chemistry. 254 (11), 4764-4771 (1979).
  7. Eng, J., Lynch, R. M., Balaban, R. S. Nicotinamide adenine dinucleotide fluorescence spectroscopy and imaging of isolated cardiac myocytes. Biophysical Journal. 55 (4), 621-630 (1989).
  8. Brandes, R., Bers, D. M. Simultaneous measurements of mitochondrial NADH and Ca(2+) during increased work in intact rat heart trabeculae. Biophysical Journal. 83 (2), 587-604 (2002).
  9. Jo, H., Noma, A., Matsuoka, S. Calcium-mediated coupling between mitochondrial substrate dehydrogenation and cardiac workload in single guinea-pig ventricular myocytes. Journal of Molecular Cellular Cardiology. 40 (3), 394-404 (2006).
  10. Lee, J. H., Ha, J. M., Leem, C. H. A Novel Nicotinamide Adenine Dinucleotide Correction Method for Mitochondrial Ca2+ Measurement with FURA-2-FF in Single Permeabilized Ventricular Myocytes of Rat. Korean Journal of Physiology and Pharmacology. 19 (4), 373-382 (2015).
  11. Powell, T., Terrar, D. A., Twist, V. W. Electrical properties of individual cells isolated from adult rat ventricular myocardium. Journal of Physiology. 302, 131-153 (1980).
  12. Sun, B., Leem, C. H., Vaughan-Jones, R. D. Novel chloride-dependent acid loader in the guinea-pig ventricular myocyte: part of a dual acid-loading mechanism. Journal of Physiology. 495 (Pt 1), 65-82 (1996).
  13. Page, E. Quantitative ultrastructural analysis in cardiac membrane physiology. American Journal of Physiology. 235 (5), C147-C158 (1978).
  14. Page, E., McCallister, L. P., Power, B. Sterological measurements of cardiac ultrastructures implicated in excitation-contraction coupling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 68 (7), 1465-1466 (1971).
  15. Grynkiewicz, G., Poenie, M., Tsien, R. Y. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. The Journal of Biological Chemistry. 260 (6), 3440-3450 (1985).

Play Video

Cite This Article
Lee, J. H., Ha, J. M., Ho, Q. M., Leem, C. H. A Novel Nicotinamide Adenine Dinucleotide Correction Method for Intracellular Ca2+ Measurement with Fura-2-Analog in Live Cells. J. Vis. Exp. (151), e59881, doi:10.3791/59881 (2019).

View Video