Summary

En statisk selvrettet metode for å generere hjerneorganoider fra humane embryonale stamceller

Published: March 04, 2020
doi:

Summary

Denne protokollen ble generert som et middel til å produsere hjerneorganoider på en forenklet, rimelig måte uten eksogene vekstfaktorer eller kjellermembranmatrise samtidig som mangfoldet av hjernecelletyper og mange funksjoner i cellulær organisasjon opprettholdes.

Abstract

Menneskelige hjerneorganoider differensiert fra embryonale stamceller gir den unike muligheten til å studere kompliserte interaksjoner av flere celletyper i et tredimensjonalt system. Her presenterer vi en relativt grei og rimelig metode som gir hjerneorganoider. I denne protokollen er menneskelige pluripotente stamceller brutt inn i små klynger i stedet for enkeltceller og dyrket i grunnleggende medier uten en heterologøs kjellermembranmatrise eller eksogene vekstfaktorer, slik at de iboende utviklingssignaler kan forme organoid vekst. Dette enkle systemet produserer et mangfold av hjernecelletyper, inkludert glial- og mikroglialceller, stamceller og nevroner i forhjernen, midbrain og bakhjernen. Organoider generert fra denne protokollen viser også kjennetegn på passende temporal og romlig organisasjon demonstrert av brightfield-bilder, histologi, immunofluorescens og sanntids kvantitativ omvendt transkripsjon polymerase kjedereaksjon ( qRT-PCR). Fordi disse organoider inneholder celletyper fra ulike deler av hjernen, kan de brukes til å studere en rekke sykdommer. For eksempel, i en nylig artikkel demonstrerte vi bruk av organoider generert fra denne protokollen for å studere effekten av hypoksi på den menneskelige hjernen. Denne tilnærmingen kan brukes til å undersøke en rekke ellers vanskelige å studere tilstander som neurodevelopmental handicap, genetiske lidelser, og nevrologiske sykdommer.

Introduction

På grunn av utallige praktiske og etiske begrensninger har det vært store problemer med å studere den menneskelige hjernen. Mens studier som bruker gnagere har vært avgjørende for vår forståelse av den menneskelige hjerne, har musehjernen mange ulikheter1,2. Interessant, mus har en nevronal tetthet som er minst 7 ganger mindre enn primat hjernen3,4. Selv om primater er nærmere mennesker enn gnagere fra et evolusjonært synspunkt, er det ikke praktisk for de fleste forskere å jobbe med dem. Formålet med denne protokollen var å rekapitulere mange viktige trekk ved den menneskelige hjerne ved hjelp av en forenklet og billigere metode uten behov for en heterologøs kjellermembranmatrise eller eksogene vekstfaktorer samtidig som hjernecellemangfold og cellulær organisasjon opprettholdes.

Formativt arbeid fra Sasai-laboratoriet brukte serumfri kultur av embryoidorganer (SFEBq) metode for å generere to- og tredimensjonale nevronale celletyper fra signaliserte embryonale stamceller (ESCs)5,6. Mange menneskelige hjerneorganoide metoder har fulgt en relativt lignende vei fra signaliserte ESCs7,8. I motsetning starter denne protokollen med klynger av frittliggende humane ESCer (hESCs), lik de første trinnene i banebrytende arbeid av Thomson og Zhang laboratorier før plating trinn9,10 samt det første trinnet i hjernen organoid protokollen av Pasca laboratoriet før tillegg av eksogene vekstfaktorer11. Kjellermembranmatriser (f.eks. matrigel) har blitt brukt i mange hjerneorganoidprotokoller, og det har vist seg å være et effektivt stillas8. Men, mest brukte kjeller membran matriser kommer ikke uten komplikasjoner som de co-purifisere med ukjente mengder vekstfaktorer med batch til batch variabilitet under produksjon12. I tillegg kan disse matrisene komplisere bildebehandling, og øke risikoen for forurensning og kostnader.

Mens menneskelige hjerneorganoider kan brukes til å svare på mange spørsmål, er det visse begrensninger å huske på. For det første, fra embryonale stamceller, organoider ligner nærmere umodne hjerner enn alderen hjerner og som sådan kan ikke være ideelle modeller for sykdommer som oppstår i alderdommen, som Alzheimers sykdom. For det andre, mens vår protokoll fant markører for forebrain, midbrain og hindbrain utvikling som er nyttige for å studere effekten av en behandling eller sykdom på celler fra flere hjerneregioner i konsert, andre protokoller kan følges for å konsentrere seg om bestemte hjerneregioner13,14. Til slutt, en annen begrensning av organoid modeller er at av størrelse, mens den gjennomsnittlige lengden på en menneskelig hjerne ca 167 mm, hjerneorganoider laget med bruk av agitasjon vokse opp til 4 mm8 og organoider dannet av denne protokollen vokse til 1-2 mm av 10 uker. Likevel gir denne protokollen et viktig verktøy for å studere menneskelig hjernevev og samspillet mellom flere celletyper.

Protocol

1. Stamcellevedlikehold Vedlikehold H9 hESCer på et lag med vekstfaktor redusert kjeller membran matrise (se Materialbordet, heretter bare referert til som matrise) i henhold til produsentens instruksjoner. For å belegge en 6-brønns tallerken eller en 10 cm tallerken, kombiner 100 μL matrise med 5,9 ml iskald Dulbeccos modifiserte Eagle medium (DMEM) / F12 media. Pakk plater i parafinfilm og oppbevar over natten ved 4 °C. Bruk dem neste dag for å passere celler etter at overflødi…

Representative Results

Figur 1 viser representative brightfield-bilder av flere tidspunkter for å demonstrere hvordan cellene/organoidene ser ut gjennom de forskjellige stadiene av protokollen. HESCs ble fjernet fra vevkulturplaten, brutt i små biter, og plassert i en T75 ultra-lav festekolbe hvor de dannet kuler. Det er viktig å merke seg at cellene ser lyse og like ut i størrelse, uten mørke, døende celler i sentrene i disse klyngene. Cellene ble gradvis avvennet av bFGF. På dag 5 ble de plassert i nevral…

Discussion

I likhet med andre organoidmodeller er dette et kunstig system som kommer med flere advarsler. Selv om det var lite batch til batch variasjon i form av generelle uttrykknivåer, individuelle organoider viste forskjeller. For eksempel var plasseringen av Sox-2 positive områder ikke identiske i hver organoid (Figur 3). Mens qPCR er egnet til å se etter generelle endringer i grupper av celler, vil flere teknikker som encellet RNAseq bli brukt i fremtidige studier for å samle inn mer informasjon på celle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Yale Stem Cell Core (YSCC), og Yale Cancer Center (YCC) for å få hjelp. Vi takker Dr. Jung Kim for hans nevropatologi gjennomgang. Dette arbeidet ble støttet av Connecticut Regenerative Medicine Research Fund, March of Dimes, og NHLBI R01HL131793 (S.G.K.), Yale Cancer Center og Yale Cancer Biology Training Program NCI CA193200 (E.B.) og en sjenerøs ubegrenset gave fra Joseph og Lucille Madri.

Materials

Alexa Fluor 488 goat anti-mouse Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA A11029
Alexa Fluor 546 goat anti-rabbit Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA A11035
B27 Supplement Gibco, Waltham, MA, USA 17504-044
bFGF Life Technologies, Carlsbad, CA, USA PHG0263
BSA Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA A9647
BX43 microscope Olympus, Shinjuku, Tokyo, Japan
DAPI stain Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA D1306
Dispase STEMCELL Technologies, Vancouver, Canada 07913
DMEM/F12 Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 11330-032
DPBS Gibco, Waltham, MA, USA 10010023
FluroSave MilliporeSigma, Burlington, MA 345789
GFAP antibody NeuroMab, Davis, CA N206A/8
Growth Factor Reduced Matrigel (Matrix) Corning, Corning, NY, USA 356231
H9 hESCs WiCell, Madison, WI, USA WA09
Heparin Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 9041-08-1
iQ SYBR Green Supermix Bio-Rad, Hercules, CA, USA 1708880
iScript cDNA Synthesis Kit Bio-Rad, Hercules, CA, USA 1708891
L-glutamine Gibco, Waltham, MA, USA 25030-081
Monothioglycerol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA M6145
mTESR media STEMCELL Technologies, Vancouver, Canada 85850
N2 NeuroPlex Gemini Bio Products, West Sacramento, CA, USA 400-163
Nanodrop Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA ND-2000
NEAA Gibco, Waltham, MA, USA 11140-050
Normal Donkey Serum (NDS) ImmunoResearch Laboratories Inc., West Grove, PA, USA 017-000-121
OCT Sakura Finetek, Torrance, CA, USA 25608-930
PFA Electron Microscopy Sciences, Hatfield, PA RT15710
qPCR machine Bio-Rad, CFX96, Hercules, CA, USA 1855196
RNeasy kit Qiagen, Hilden, Germany 74104
Sox2 MilliporeSigma, Burlington, MA AB5603
TMS-F microscope Nikon, Melville, NY, USA
Triton X-100 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA T8787-100ML
Ultra-low attachment T75 flasks Corning, Corning, NY, USA 3814

References

  1. Northcutt, R. G. Understanding vertebrate brain evolution. Integrative and Comparative Biology. 42 (4), 743-756 (2002).
  2. Roth, G. . The Long Evolution of Brains and Minds. , (2013).
  3. Herculano-Houzel, S. The human brain in numbers: a linearly scaled-up primate brain. Frontiers in Human Neuroscience. 3, 31 (2009).
  4. Roth, G., Dicke, U. Evolution of the brain and intelligence. Trends in Cognitive Sciences. 9 (5), 250-257 (2005).
  5. Eiraku, M., et al. Self-organized formation of polarized cortical tissues from ESCs and its active manipulation by extrinsic signals. Cell Stem Cell. 3 (5), 519-532 (2008).
  6. Watanabe, K., et al. Directed differentiation of telencephalic precursors from embryonic stem cells. Nature Neuroscience. 8 (3), 288-296 (2005).
  7. Kadoshima, T., et al. Self-organization of axial polarity, inside-out layer pattern, and species-specific progenitor dynamics in human ES cell-derived neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (50), 20284-20289 (2013).
  8. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  9. Li, X. J., et al. Specification of motoneurons from human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 23 (2), 215-221 (2005).
  10. Zhang, S. C., Wernig, M., Duncan, I. D., Brustle, O., Thomson, J. A. In vitro differentiation of transplantable neural precursors from human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 19 (12), 1129-1133 (2001).
  11. Pasca, A. M., et al. Functional cortical neurons and astrocytes from human pluripotent stem cells in 3D culture. Nat Methods. 12 (7), 671-678 (2015).
  12. Hughes, C. S., Postovit, L. M., Lajoie, G. A. Matrigel: a complex protein mixture required for optimal growth of cell culture. Proteomics. 10 (9), 1886-1890 (2010).
  13. Qian, X., et al. Brain-Region-Specific Organoids Using Mini-bioreactors for Modeling ZIKV Exposure. Cell. 165 (5), 1238-1254 (2016).
  14. Sloan, S. A., Andersen, J., Pasca, A. M., Birey, F., Pasca, S. P. Generation and assembly of human brain region-specific three-dimensional cultures. Nature Protocols. 13 (9), 2062-2085 (2018).
  15. Kelava, I., Lancaster, M. A. Stem Cell Models of Human Brain Development. Cell Stem Cell. 18 (6), 736-748 (2016).
  16. Boisvert, E. M., Means, R. E., Michaud, M., Madri, J. A., Katz, S. G. Minocycline mitigates the effect of neonatal hypoxic insult on human brain organoids. Cell Death and Disease. 10 (4), 325 (2019).
  17. Bergmann, S., et al. Blood-brain-barrier organoids for investigating the permeability of CNS therapeutics. Nature Protocols. 13 (12), 2827-2843 (2018).
  18. Mansour, A. A., et al. An in vivo model of functional and vascularized human brain organoids. Nature Biotechnology. 36 (5), 432-441 (2018).
  19. Pham, M. T., et al. Generation of human vascularized brain organoids. Neuroreport. 29 (7), 588-593 (2018).
  20. Boisvert, E. M., Denton, K., Lei, L., Li, X. J. The specification of telencephalic glutamatergic neurons from human pluripotent stem cells. Journal of Visualized Experiments. (74), (2013).

Play Video

Cite This Article
Boisvert, E. M., Means, R. E., Michaud, M., Thomson, J. J., Madri, J. A., Katz, S. G. A Static Self-Directed Method for Generating Brain Organoids from Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (157), e60379, doi:10.3791/60379 (2020).

View Video