Summary

זיהוי של מסלולים מארחים ממוקד על ידי חלבונים בקטריות אפקטור באמצעות רעילות שמרים מסכי מדכא

Published: October 25, 2019
doi:

Summary

פתוגנים חיידקיים מפרישות חלבונים לתוך המחשב המארח המטרה תהליכים ביולוגיים קריטיים. זיהוי מסלולים המארחים ממוקד על ידי חלבונים החיידק אפקטור הוא המפתח לטיפול פתוגנזה מולקולרית. כאן, שיטה באמצעות מדכא שמרים שונה ומסך רעילות כדי להבהיר מסלולים מארחים ממוקד על ידי חלבונים בקטריות אפקטור רעיל מתואר.

Abstract

חיידקים תאיים להפריש גורמים התקפה אלימה הנקרא אפקטור חלבונים לתוך ציטוסול מארח כי לפעול לחתור מארחים חלבונים ו/או מסלולים ביולוגיים הקשורים שלהם לטובת החיידק. זיהוי של חלבונים בקטריאלי החיידק אפקטור הפכה יותר לניהול בשל ההתקדמות ברצף הגנום החיידקי ואת הופעתו של אלגוריתמים המאפשרים זיהוי סיליקו של גנים קידוד הפרשת מועמדים ו/או eukaryotic כמו תחומים. עם זאת, זיהוי של גורמים והתקפה אלימה אלה הוא רק צעד התחלתי. באופן טבעי, המטרה היא לקבוע את התפקוד המולקולרי של החלבונים של אפקטור ולהבהיר כיצד הם מתקשרים עם המארח. בשנים האחרונות, טכניקות כמו מסך שני שמרים היברידית בקנה מידה גדול immunoprecipitations בשילוב עם ספקטרומטר המסה סייעו בזיהוי של אינטראקציות חלבונים חלבון. למרות שזיהוי של שותף כריכה מארח הוא הצעד הראשון המכריע לקראת הבעת המצאת הפונקציה המולקולרית של חלבון אפקטור חיידקי, לפעמים חלבון מארח נמצא יש פונקציות ביולוגיות מרובות (למשל, actin, clathrin טובולין), או חלבון חיידקי לא יכול פיזית לאגד חלבונים מארחים, לשלול את החוקר של מידע חיוני על מסלול מארח מדויק להיות מניפולציות. הרעלת שמרים שונה מסך בשילוב עם מסך משתיק קול הותאם כדי לזהות מסלולים מארחים המושפעים על ידי חלבונים החיידק אפקטור. מסך רעילות מסתמך על השפעה רעילה של שמרים הנגרמת על ידי חלבון אפקטור מפריעה המסלולים הביולוגיים המארחים, אשר לעתים קרובות מתבטא כפגם גדילה. ביטוי של הספרייה גנומית שמרים משמש כדי לזהות גורמים מארחים לדכא את רעילות של חלבון אפקטור חיידקי, ובכך לזהות חלבונים במסלול כי החלבון מטרות מטרה. פרוטוקול זה כולל הוראות מפורטות עבור מסכי רעילות ומדכא. ניתן לבצע טכניקות אלה בכל מעבדה המסוגלת לשכפול מולקולרי וטיפוח של שמרים ומסלול קולי.

Introduction

הדו ח הראשון של ההליכים הדומים לאלה שהוצגו כאן אפיינו את הלגיונרים האלה מסוג העירוי הרביעי, שהוא deAMPylase שמשנה Rab11. טכניקות דומות שימשו לאפיון של מספר L. משאבה מנועי 1,2,3. השיטה הותאמה כדי לאפיין את הסוג Coxiella בורנתיבי הרביעיחלבון,ולאחרונה את השירות של טכניקה זו הורחבה לאפיון של כלמידיה trachomatis ממברנה חלבונים5 .

פרוטוקול זה ניתן לפרוץ לשני חלקים עיקריים: 1) את המסך רעילות שמרים, שבה חלבון החומר החיידקי של עניין מתבטא שמרים שיבוטים מוקרן לפנוטיפ רעיל כפי שמעידים על ידי פגם גדילה, ו 2) מסך מדכא שמרים , שבו הפנוטיפ הרעיל מדוכאים על ידי ביטוי של ספרייה גנומית שמרים במתח הרעיל. כך, את המסך רעילות היא מסך עבור פנוטיפים רעילים המניפסט כמו ליקויים בגדילה כאשר החיידק החיידקי של העניין הוא ביטוי יתר. שיבוטים רעילים, השתנה בהצלחה עם וביטוי האפקטור חיידקי, נבחרו ונשמר לשלב הבא. הצעד העיקרי השני כרוך יתר על הביטוי בספרייה גנומית חלקית שמרים מתעכל בשכפול שמרים רעילים. פלמידים ממציא את הספרייה גנומית שמרים הציע לשימוש בפרוטוקול זה לשאת 5-20 kb מוסיף, בדרך כלל מתאים 3-13 שמרים לקרוא מסגרות לקריאה (ORF) של גודל הגן הממוצע של ~ 1.5 kb על פני כל פלמידים, המייצגים גנום שמרים כולו מכוסה כ-10x. חלק זה של השיטת נקרא מסך מדכא, כמו המטרה היא לדכא את רעילות של חלבון אפקטור חיידקי. הפלמיונים הפוטנציאליים של מדכא מבודדים משמרים, ברצף ומזוהים הדיכוי ORFs. הרציונל הנמצא בבסיס מסך מדכא הוא כי חלבון האפקטור נקשר, אינטראקציה עם, ו/או להתמקד ברכיבים של מסלול מארח זה מטרות, וכי מתן אלה חלבונים מארחים בחזרה עודף יכול להציל את ההשפעה הרעילה על השביל ולכן, פגם הגדילה. כך, מזוהה ORFs כי לדכא רעילות לעתים קרובות מייצגים משתתפים רבים של מסלול מארח. ניסויים אורתוגונאליות מבוצעים לאחר מכן כדי לוודא כי האפקטור חיידקי אכן אינטראקציה עם השביל מעורבים. הדבר הכרחי במיוחד אם התגלתה שותפה מחייבת כגון clathrin או אקטין, משום שחלבונים אלה מעורבים בהמון תהליכים מארחים. ניסויים נוספים יכולים להבהיר את התפקוד הפיזיולוגי של חלבון האפקטור במהלך הזיהום. רעילות מסכי מדכא הם גם כלים רבי עוצמה לפענוח התפקוד הפיזיולוגי של חלבונים אפקטור חיידקי כי לא לאגד פיזית מארח חלבונים עם מספיק כדי לזהות על ידי immunoprecipitation או כי אינטראקציה עם ארח באינטראקציות פגע וברח אנזימטיות שאינן מזוהות על-ידי מסך היברידי משני שמרים.

למרות מסך מדכא יכול להיות שיטה רבת עוצמה כדי לחשוף אינטראקציות פיזיולוגיות פוטנציאליות בין חלבונים אפקטור חיידקים ומסלולים מארחים, חלבון אפקטור חיידקי חייב לגרום לפגם גדילה שמרים, אחרת באמצעות זה ב מסך משתיק קול יהיה שימוש קטן. יתר על כן, הפנוטיפ הרעיל חייב לגרום לפחות 2-3 יומן רישום10 הגרעון בצמיחה או יהיה קשה לזהות דכאי. אם המעבדה מוגדרת לתרבות התאים, הקרנת חלבונים לרעילות בקווי תאים משותפים כגון הלה יכולה לעתים קרובות להעניק תובנה לגבי המאמץ להמשיך במסך הרעילות לשמרים. ביטוי חוץ רחמי של חלבון אפקטור בתאי הלה לפעמים גורמת לרעילות כי מתאים מאוד רעילות בזן שמרים המשמש מסכים אלה4. סימני ההיכר של הלחץ בתאי הלה כוללים אובדן סיבי לחץ, ניתוק תאים מהצלחת, ועיבוי גרעיני המציין אפופטוזיס. כל אינדיקציה חזותית של מתח בתאי הלה להפוך את החלבון של עניין מועמד טוב לגרימת פגם גדילה בשמרים, אשר לשכפל הרבה יותר במהירות, ולכן מגיבים יותר להפרעות חיוניות של מסלולים חיוניים.

יצוין כי מסך מדכא לא תמיד לזהות שותפים איגוד מארח כמו דכאי, אבל זה עדיין יכול לסבך רכיבים קריטיים של מסלול מארח (s) ממוקדות, מניב השקפה הוליסטית של התהליכים הביולוגיים נחטף על ידי ה חלבון אפקטור חיידקי. על פני השטח, זה נראה מנוגד לאינטואיציה, משום שמתן שותף מחייב בחלבון האפקטור המיותר צפוי להציל את הפגם בגדילה. במאמצים לזהות מסלולים המיועדים על ידי C. trachomatis אפקטור חלבון CT229 (cpos), אשר נקשר לפחות 10 שונים רב GTPases במהלך זיהום5, אף אחד מהשותפים מחייב ראב לדכא את רעילות של CT229. עם זאת, מדכאי רבים המעורבים בסחר בסמים (CCV) מצופים, אשר הובילו לעבודה נוספת הממחיש כי CT229 במפורש פוגעת בסחר בנשק CCV. באופן דומה, בעת חקירת ה -C. burנתיבי אפקטור חלבון Cbu0041 (cira) כמה Rho GTPases כי הצילה את הפגם בגידול שמרים זוהו, ומאוחר יותר נמצא כי cira פונקציות כמו Gtpases הפעלת חלבון (גאפ) עבור rhoa4.

השימושיות של מסך מדכא שמרים להסבר מסלולים מארחים ממוקד על ידי חלבונים בקטריות אפקטור לא יכול להיות יתר על המידה, וחוקרים אחרים מנסה לאפיין חלבונים תאיים אפקטור חיידקים יכול להפיק תועלת רבה מ טכניקות אלה. אלה מספרים הם בעלי ערך אם immunoprecipitations ו/או שמרים-שני מסכי היברידית לא הצליחו למצוא שותף מחייב והוא יכול להבהיר איזה מסלולים מיועדים על ידי חלבון אפקטור חיידקי. כאן, פרוטוקולים מפורטים עבור מסכי רעילות ומדכא כדי לזהות מסלולים ביולוגיים מארחים ממוקד על ידי חלבונים בקטריאלי תאיים אפקטור מסופקים, כמו גם כמה מכשולים נפוצים מנוסים בעת שימוש אלה בחני וה פתרונות תואמים.

Protocol

1. הכנת מדיה וריאגנטים הערה: לוחיות הרישוי צריכות להיות מוכנות לפני היום, וטובות לחודש אחד. מדיה וריאגנטים ניתן לעשות בכל שלב וטוב לחודש 1. להכין 1 L של תמיסת גלוקוז (10% w/v) על ידי המסת 100 g של D-(+)-גלוקוז ב 800 מ ל של מים מזוקקים בגביע 1, 000 mL. כוונן את אמצעי האחסון ל-1 ל’ עם מים מזוקק?…

Representative Results

לפני מסך מדכא שמרים בפועל ניתן לבצע, חלבון הריבית של אפקטור העניין חייב להיבדק עבור רעילות בשמרים. זה מושגת על ידי ביטוי חלבון העניין של שמרים תחת שליטתה של מקדם גלקטוז-inducible. הצמיחה על גלוקוז (תנאים שאינם מחייבים) יש להשוות תחילה כדי להבטיח רעילות היא במיוחד בשל ביטוי של חלבון הריבית והוא ל…

Discussion

פרוטוקול זה מתאר הליכים צעד אחר צעד לזיהוי מסלולים ביולוגיים מארחים ממוקד על ידי חלבונים החיידק אפקטור באמצעות הרעלת שמרים שונה מסך מדכא. זן שמרים השתמשו, ס cerevisiae ס W303, הוא auxotrophic עבור אורציל ו leucine. Uracil הגביע של הנבג משמש כדי לבחור שמרים נושאת את החלבון של עניין על pYesNTA-Kan וקטור בעוד לאו?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לשלבי אנדרסן, אבי מקלאוף, ולורל וודס על עזרתם בטכניקות אלו. מחקר זה מומן על ידי כספי האתחול מאוניברסיטת איווה המחלקה למיקרוביולוגיה ואימונולוגיה כדי מרי מ. וובר.

Materials

Agar Fisher Scientific BP2641500
Galactose MilliporeSigma G0750-1KG
GeneJet Gel extraction kit ThermoFisher Scientific K0691
GeneJet PCR purification kit ThermoFisher Scientific K0701
GeneJet plasmid miniprep kit Thermo K0503
Glucose MilliporeSigma G8270-1KG
Herring Sperm DNA Promega D1811
KpnI-HF New England Biolabs R3142S
Lithium acetate dihydrate MilliporeSigma L6883-250G
Peptone Fisher Scientific
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530
Poly(ethylene glycol) 3350 MilliporeSigma 1546547-1G
pYep13 ATCC 37323
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202S
Tryptophan MilliporeSigma 470031-1G
XhoI-HF New England Biolabs R0146S
Yeast extract Fisher Scientific BP1422-500
Yeast miniprep kit Zymo D2001
Yeast nitrogen base without amino acids MilliporeSigma Y0626-250G
Yeast Synthetic Drop-out Medium Supplements MilliporeSigma Y1501-20G without uracil
Yeast Synthetic Drop-out Medium Supplements MilliporeSigma Y1771-20G without uracil, leucine, tryptophan

References

  1. Tan, Y., Luo, Z. Q. Legionella pneumophila SidD is a deAMPylase that modifies Rab1. Nature. 475 (7357), 506-509 (2011).
  2. Guo, Z., Stephenson, R., Qiu, J., Zheng, S., Luo, Z. A Legionella effector modulates host cytoskeletal structure by inhibiting actin polymerization. Microbes and Infection. 16 (3), 225-236 (2014).
  3. Tan, Y., Arnold, R. J., Luo, Z. -. Q. Legionella pneumophila regulates the small GTPase Rab1 activity by reversible phosphorylcholination. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (52), 21212-21217 (2011).
  4. Weber, M. M., et al. The type IV secreted effector protein CirA stimulates the GTPase activity of RhoA and is required for virulence in a mouse model of Coxiella burnetii infection. Infection and Immunity. 84, (2016).
  5. Faris, R., et al. Chlamydia trachomatis CT229 subverts Rab GTPase-dependent CCV trafficking pathways to promote chlamydial infection. Cell Reports. 26, 3380-3390 (2019).
  6. Mumberg, D., Müller, R., Funk, M. Yeast vectors for the controlled expression of heterologous proteins in different genetic backgrounds. Gene. 156, 119 (1995).
  7. Hill, J., Donald, K. A. G., Griffiths, D. E. DMSO-enhanced whole cell yeast transformation. Nucleic Acids Research. 19 (20), 41070 (1991).
  8. Kramer, R. W., et al. Yeast Functional Genomic Screens Lead to Identification of a Role for a Bacterial Effector in Innate Immunity Regulation. PLoS Pathogens. 3 (2), 21 (2007).
  9. Häuser, R. T. S., Rajagopala, S. V., Uetz, P. Array-Based Yeast Two-Hybrid Screens: A Practical Guide. Two Hybrid Technologies: Methods and Protocols, Methods in Molecular Biology. , 21-38 (2012).
  10. Mirrashidi, K. M., et al. Global mapping of the inc-human interactome reveals that retromer restricts chlamydia infection. Cell Host and Microbe. 18 (1), 109-121 (2015).
  11. Wang, Y., et al. Development of a transformation system for chlamydia trachomatis: Restoration of glycogen biosynthesis by acquisition of a plasmid shuttle vector. PLoS Pathogens. 7 (9), 1002258 (2011).
  12. Mueller, K. E., Wolf, K., Fields, K. A. Gene deletion by fluorescence-reported allelic exchange mutagenesis in Chlamydia trachomatis. mBio. 7 (1), 1-9 (2016).
  13. Johnson, C. M., Specific Fisher, D. J. Site-Specific, Insertional Inactivation of incA in Chlamydia trachomatis Using a Group II Intron. PLoS ONE. 8 (12), 83989 (2013).
  14. Weber, M. M., et al. Absence of specific Chlamydia trachomatis inclusion membrane proteins triggers premature inclusion membrane lysis and host cell death. Cell Reports. 19 (7), 1406-1417 (2017).
  15. Weber, M. M., et al. A functional core of IncA is required for Chlamydia trachomatis inclusion fusion. Journal of Bacteriology. 198 (8), 1347-1355 (2016).
check_url/60488?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Faris, R., Weber, M. M. Identification of Host Pathways Targeted by Bacterial Effector Proteins using Yeast Toxicity and Suppressor Screens. J. Vis. Exp. (152), e60488, doi:10.3791/60488 (2019).

View Video