Denne artikkelen viser en ekstradural tilnærming til å utslette marsvin endolymphatic sac og skade endolymphatic kanal med en fin plukke for å indusere eksperimentelle endolymphatic hydrops.
Endolymphatic hydrops er en utvidelse av scala media som oftest er forbundet med Menieres sykdom, selv om patofysiologiske mekanisme(er) forblir uklar. For å tilstrekkelig studere egenskapene til endolymphatic hydrops, for eksempel opprinnelsen til lavfrekvente hørselstap, er det nødvendig med en pålitelig modell. Marsvinet er en god modell fordi den hører i lavfrekvente regioner som er antatt påvirket av endolymphatic hydrops. Tidligere forskning har vist at endolymphatic hydrops kan induseres kirurgisk via intradural eller ekstradural tilnærminger som involverer boring på endolymphatic kanal og sac. Men om det var mulig å lage en endolymphatic hydrops modell ved hjelp av en ekstradural tilnærming som unngikk farlig boring på endolymphatic kanal og sac var ukjent. Målet med denne studien var å demonstrere en revidert ekstradural tilnærming til å indusere eksperimentelle endolymphatic hydrops på 30 dager postoperativt ved å utslette endolymphatic sac og skade endolymphatic kanal med en fin plukke. Prøvestørrelsen besto av syv marsvin. Funksjonelle målinger av hørsel ble gjort og temporale bein ble senere høstet for histologic analyse. Tilnærmingen hadde en suksessrate på 86% i å oppnå endolymphatic hydrops. Risikoen for cerebrospinalvæskelekkasje var minimal. Ingen perioperative dødsfall eller skader på den bakre halvsirkelformede kanalen skjedde i prøven. Den presenterte metoden viser en sikker og pålitelig måte å indusere endolymphatic hydrops på et relativt raskt tidspunkt på 30 dager. De kliniske implikasjonene er at den presenterte metoden gir en pålitelig modell for å utforske opprinnelsen til lavfrekvente hørselstap som kan knyttes endolymphatic hydrops.
Endolymphatic hydrops er en utvidelse av scala media. Tilstedeværelsen av endolymphatic hydrops kan måles ved hjelp av tverrsnittsområdet av scala media. Det antas at kliniske endolymphatic hydrops kan være forbundet med lavfrekvent sensorineuralt hørselstap, slik som det sett i Menieres sykdom. Men opprinnelsen(e) av hørselstapet er fortsatt uklart. For å tilstrekkelig studere opprinnelsen til lavfrekvente hørselstap forbundet med endolymphatic hydrops, er det nødvendig med en pålitelig modell.
I 1965 beskrev Kimura og Schuknecht hvordan man induserer endolymphatic hydrops i marsvin ved hjelp av en intradural tilnærming1. Deres teknikk involverte å bruke en bakre kranial fossa tilnærming for å få tilgang til operculum og subarcuate fossa. Trinnene innebar å øke dura, trekke tilbake lillehjernen med en Ringers løsning gjennomvåt bomullsdott, og bore over den endolymphatic kanalen og den mellomliggende delen av endolymphatic sac. Benvoks ble deretter plassert i operculum for å skille endolymphatic kanalen fra distal endolymphatic sac. Kraniotomidefekten ble lukket ved å plassere absorberbart gelatinpulver (f.eks. Gelfoam) og reapproksimatere de overliggende musklene. Histologiske bevis på endolymphatic hydrops ble konsekvent funnet på postoperative dager 1, 3, 7, 14, 21 og 30, viser at intradural tilnærming var en pålitelig metode for å indusere histologisk bekreftet endolymphatic hydrops. Ved hjelp av samme intradural tilnærming som Kimura og Schuknecht, men med forskjellige tidspunkter bekreftet Salt og DeMott at skalarmedia i andre sving av sneglehuset ble betydelig forstørret på dag 4 og utover2. Mens den faktiske sykeligheten av å indusere en cerebrospinalvæske (CSF) lekkasje ved hjelp av Kimura og Schuknechts intradural tilnærming ikke ble rapportert i den opprinnelige studien, kan tilstedeværelsen av en CSF-lekkasje øke risikoen for meningitt. Det har blitt foreslått at tap av CSF kan føre til en utstrømning av perilymph, noe som resulterer i en samtidig midlertidig utvidelse av endolymphatic volum i marsvin3. En ekstradural tilnærming til å indusere endolymphatic hydrops ville være et tryggere alternativ.
I 1989 beskrev Andrews og Bohmer to utenomjordiske kirurgiske tilnærminger for å nå endolymphatic sac og kanal, via enten en mellomkranial fossa tilnærming eller bakre kranial fossa tilnærming, å utslette endolymphatic sac4. De beskrev fjerning av operculum med en diamant drill, og deretter enten bore av den mellomliggende delen av endolymphatic sac eller bruke en fin plukke for å forstyrre endolymphatic sac og kanal. I 1993 beskrev Lee, Wright og Meyerhoff en lignende tilnærming, som inkluderte boring gjennom endolymphatic sac og kanal, men skilte seg ved at de også samtidig hindret cochlea akvedukten5. De demonstrerte tilstedeværelsen av endolymphatic hydrops, som vurdert via histologi, fire uker etter å ha endolymphatic sac og hindrer cochlea akvedukten. Megerian et al. var den første til å publisere en videoartikkel som viste en utenomjordisk utslettelse av endolymphatic sac og kanal som involverte boring direkte på den mediale delen av operculum å gå inn i endolymphatic sac og kanal6. De demonstrerte histologiske bevis på endolymphatic hydrops i en marsvin ofret på 28 uker etter operasjonen, samt hørselstap i 16 kHz regionen6. Om det var mulig å indusere histologisk bekreftet endolymphatic hydrops og lavfrekvente hørselstap på et tidlig tidspunkt ved hjelp av ekstradural tilnærminger var ukjent.
Det overordnede målet med denne rapporten er å demonstrere en ekstradural tilnærming til å indusere eksperimentelle endolymphatic hydrops på 30 dager postoperativt ved å utslette endolymphatic sac og skade endolymphatic kanal med en fin plukke. Begrunnelsen bak bruken av denne teknikken er fordelen med å unngå behovet for å bore på petrous temporal bein, og dermed fjerne risikoen for å skade duraen ved et uhell og forårsake en CSF-lekkasje, noe som reduserer muligheten for å skade den bakre halvsirkelformede kanalen, og redusere risikoen for skade på sigmoid sinus.
Den presenterte ekstradurale metoden hadde en suksessrate på 86% i å oppnå histologisk bekreftet endolymphatic hydrops og lavfrekvent hørselstap. Metoden oppnådde pålitelig histologisk bevis på endostatiske hydropper etter postoperativ dag 30, i samsvar med tidligere studier som brukte en intradural tilnærming2. Betydningen av metoden med hensyn til eksisterende metoder er at en CSF-lekkasje ikke er nødvendig, og dermed fjerne en potensiell forvirrende variabel som har blitt foreslått å…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Shannon M. Lefler for hjelp med tall og Table of Materials. Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av National Institute of Døvhet og andre kommunikasjonsforstyrrelser i National Institutes of Health, gjennom “Utvikling av kliniker / forskere i akademisk ENT” opplæring stipend, prisnummer T32DC000022 (C.V.V.) og av R01 DC014997 (J.T.L). Innholdet er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til National Institutes of Health.
12 mL syringe | Henke-Sass Wolf | 5100-X00V0 | |
1 mL and 3 mL syringe | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-87 15859152 | |
27.5 butterfly gauge needle | Terumo Surflo Winged Infusion Set, Terumo Corporation, Japan) (Ordered from McKesson) | 448407 | |
4-0 suture | McKesson | 1034507 | |
4×4 gauze sponges | Dukal (Ordered form McKesson) | 374454 | |
60mL syringe | Fisher Sci | 22-031-375 | |
Anspach otologic drill | Anspach | SC2100 | |
atipamezole | Zoetis | 107204-6 | |
autoclave | Fisher sci | 15-103-0508 | |
autoclave bags | McKesson | 524881 | |
bayonet separator | Olympus | AL 130564 | |
bupivicaine | auro Medics Pharma | 555150-169-10 | |
clear sterile drape | 3M | 1020 | |
cotton balls | Fisherbrand (ordered from Fisher Sci) | 22-456-885 | |
cotton swabs | McKesson | 508716 | |
diamond burrs #3, #2, #1, and #0.5 mm | Anspach | QD8-3SD; QD8-2SD; QD8-1SD; QD8-05SD | |
diaper pad | McKesson | 945330 | |
disposable 15 blade | Swann-Morton | 0305 | |
enrofloxacin | Hospira | 0409-4888-01 | |
epinephrine | McKesson | 63739-0456 | |
eye ointment | Dechra Vet Products | 17033-211-38 | |
Freer elevator | Grace Medical | 215100FX | |
gelfoam | Pfizer (Ordered from McKesson) | 82830 | |
hair trimmers | Oster Power Pro Cordless (ordered from Amazon) | 078400-020-000 | |
iodine scrub | Purdue Pharma (ordered from mcKesson) | 521243 | |
iris scissors | Olympus | CL-542114 | |
ketamine | Henry Schein Animal Health | 55853 | |
lactated ringers | B. Braun Medical (ordered from McKesson) | 186662 | |
lancet knife by Rosen | Grace Medical | 151100FX | referred to as curette in the text |
lubricant | Milex (ordered from Cooper Surgical) | MX5030 | |
masking tape | 3M (ordered from fisher sci | 19047259 | |
metal rectangle basin | Amazon | B07NQDBC6T | |
needle holder | Olympus | CR 213015-ENT | |
needles: 27 gage, 18 gauge | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-48 14-826-5D | |
neonatal warming isollete | Air Borne Life Support Systems | 731-1800 | |
operating microscope | Carl Zeiss | OPMI pico | |
oxygen tank | AirGas | OX USP200 | |
pulse ox | CapnoTrue (Ordered from Medacx) | M-3090112001 | |
rectal probe with heating blanket | Harvard Apparatus | probe: PY2 50-7217 Heating Blanket: PY2 50-7214 | |
red body holder | Lichtenhan Lab | N/A | In-house product |
right angle | Olympus | BV-230337 | |
rosen needle | Olympus | AM-130566 | customized, it is the instrument I use to tear the sac |
rubber tubing for O2 administration | Fisher Sci | 14-171-104 | |
saran wrap | Fisher Sci | NC9617977 | |
stereotactic head holder | WUSTL Instrument Machine Shop | N/A | In-house product |
sterile drapes | Cardinal Health | 7553 | |
suction tube by Baron | Grace Medical | 034903FX 034905FX | #3 and #5 Suction |
tissue forceps adson brown | Grace Medical | 325112FX | |
Weitlander retractor | Olympus Grace Medical | BL200011 100313FX | |
xylazine | Akorn | 59399-110-20 |