Summary

Isolering av proksimale væsker for å undersøke tumormikromiljøet i bukspyttkjerteladenokarsinom

Published: November 05, 2020
doi:

Summary

Bukspyttkjerteljuice er en verdifull kilde til biomarkører for kreft i bukspyttkjertelen. Vi beskriver her en metode for intraoperativ innsamlingsprosedyre. For å overvinne utfordringen med å vedta denne prosedyren i murine modeller, foreslår vi en alternativ prøve, tumor interstitiell væske, og beskriver her to protokoller for isolasjon.

Abstract

Pankreas adenokarsinom (PDAC) er den fjerde ledende årsaken til kreftrelatert død, og snart å bli den andre. Det er et presserende behov for variabler knyttet til spesifikke pankreaspatologier for å hjelpe preoperativ differensialdiagnose og pasientprofilering. Bukspyttkjerteljuice er en relativt uutforsket kroppsvæske, som på grunn av sin nærhet til tumorstedet reflekterer endringer i det omkringliggende vevet. Her beskriver vi i detalj den intraoperative innsamlingsprosedyren. Dessverre er det teknisk svært utfordrende å oversette bukspyttkjerteljuiceinnsamling til murine-modeller av PDAC, for å utføre mekanistiske studier. Tumor interstitiell væske (TIF) er den ekstracellulære væsken, utenfor blod og plasma, som bader tumor og stromale celler. På samme måte som bukspyttkjerteljuice, for sin egenskap å samle og konsentrere molekyler som finnes fortynnet i plasma, kan TIF utnyttes som en indikator på mikromiljøendringer og som en verdifull kilde til sykdomsassosierte biomarkører. Siden TIF ikke er lett tilgjengelig, har ulike teknikker blitt foreslått for isolasjon. Vi beskriver her to enkle og teknisk lite krevende metoder for isolering: vevsentrifugering og vevseluering.

Introduction

Pankreas ductal adenokarsinom (PDAC) er en av de mest aggressive svulstene, og snart å bli den nest største dødsårsaken 1,2,3. Det er kjent for sitt immunosuppressive mikromiljø og for sin manglende respons på immunterapiprotokoller4. For tiden er kirurgisk reseksjon fortsatt det eneste kurative alternativet for PDAC, men det er en høy frekvens av tidlige tilbakefall og postkirurgiske komplikasjoner. Mangelen på spesifikke symptomer til et avansert stadium tillater ikke en tidlig diagnose, noe som bidrar til sykdommens tidsfrister. Videre kan overlappingen av symptomer mellom PDAC og andre godartede pankreaspatologier hindre oppnåelsen av en rask og pålitelig diagnose med dagens diagnostiske strategier. Identifisering av variabler knyttet til spesifikke pankreaspatologier kan lette den kirurgiske beslutningsprosessen og forbedre pasientprofilering.

Lovende resultater i biomarkøroppdagelse er oppnådd ved bruk av lett tilgjengelige kroppsvæsker, som blod 5,6,7, urin8, spytt 9 og bukspyttkjerteljuice10,11,12. Mange studier har utnyttet omfattende “omics” tilnærminger, for eksempel genomiske, proteomiske og metabolomiske teknikker, for å identifisere kandidatmolekyler eller signaturer som kan diskriminere mellom PDAC og andre godartede pankreasforstyrrelser. Vi har nylig vist at bukspyttkjerteljuice, en relativt uutforsket kroppsvæske, kan brukes til å identifisere metabolske signaturer hos pasienter med forskjellige kliniske profiler12. Bukspyttkjerteljuice er en proteinrik væske som akkumulerer sekretomet av bukspyttkjertelen og strømmer til hovedpankreaskanalen, og deretter til den viktigste vanlige gallekanalen. På grunn av nærheten til bukspyttkjertelen kan den bli sterkt påvirket av mikromiljøforstyrrelser indusert av tumormassen (figur 1), og derfor mer informativ enn blod eller urin eller vevsbasert profilering. Flere studier har undersøkt potensialet for bukspyttkjerteljuice for å identifisere nye biomarkører av sykdom ved hjelp av ulike tilnærminger, inkludert cytologisk analyse 13, proteomisk analyse utført ved massespektrometri 14,15, vurdering av genetiske og epigenetiske markører som K-ras og p53 mutasjoner 16,17, endringer i DNA-metylering18 og miRNA 19 . Teknisk sett kan bukspyttkjerteljuice samles intraoperativt eller med minimalt invasive prosedyrer, for eksempel endoskopisk ultralyd, retrograd kolangio-pankreatografi, eller ved endoskopisk samling av duodenal juice sekresjon20. Det er ennå ikke klart i hvilken grad sammensetningen av bukspyttkjerteljuice påvirkes av innsamlingsteknikken som brukes. Vi beskriver her den intraoperative innsamlingsprosedyren og viser at bukspyttkjerteljuice kan representere en verdifull kilde for PDAC-biomarkører.

Figure 1
Figur 1: Skjematisk fremstilling av bukspyttkjerteljuicesamling. (A) Skjematisk fremstilling som viser sekresjonen av bukspyttkjerteljuice i bukspyttkjertelen og dens samling under operasjonen. Innfellingen viser et nærbilde av svulstens mikromiljø: bukspyttkjerteljuice samler molekyler frigjort av tumor- og stromale celler i bukspyttkjertelen. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Samlingen av bukspyttkjerteljuice i genetiske og ortotopiske musemodeller av PDAC vil bli verdsatt i perspektivet for å utnytte denne biofluiden i prekliniske mekanistiske studier; Imidlertid kan denne prosedyren være teknisk svært utfordrende og er ikke mulig for enklere modeller som subkutane svulster. Av denne grunn identifiserte vi tumor interstitiell væske (TIF) som en alternativ kilde til bukspyttkjerteljuice, for sin lignende egenskap for å fungere som en indikator på omgivende forstyrrelser. Interstitiell væske (IF) er den ekstracellulære væsken, funnet utenfor blod og lymfekar, som bader vevsceller21. IF-sammensetningen påvirkes av både blodsirkulasjon til orgelet og lokal sekresjon; Faktisk produserer og utskiller omkringliggende celler aktivt proteiner i IF21. Interstitium reflekterer mikromiljøendringer i omkringliggende vev og kan derfor representere en verdifull kilde for biomarkøroppdagelse i flere patologiske sammenhenger, for eksempel svulster. Den høye konsentrasjonen av lokalt utskilte proteiner i TIF kan brukes til å identifisere kandidatmolekyler som skal testes som prognostiske eller diagnostiske biomarkører i plasma22,23,24. Flere studier har vist at TIF er en egnet prøve for proteomiske tilnærminger med høy gjennomstrømning, for eksempel massespektrometriteknikker 23,24,25, samt multiplex ELISA-tilnærminger 26 og mikroRNA-profilering 27.

Flere tilnærminger har blitt foreslått for isolering av IF i svulster, som i stor grad kan kategoriseres som in vivo (kapillær ultrafiltrering 28,29,30,31 og mikrodialyse 32,33,34,35) og ex vivo metoder (vevsentrifugering 22,36,37,38 og vev eluering 39,40,41,42). Disse teknikkene har blitt gjennomgått i omfattende detalj43,44. Valg av egnet metode bør ta hensyn til blant annet nedstrømsanalyser og anvendelser og gjenværende volum. Vi har nylig brukt denne tilnærmingen som et prinsippbevis for å demonstrere den forskjellige metabolske aktiviteten til svulster fra to murine pankreas adenokarsinomcellelinjer12. Basert på litteratur 24,38 valgte vi å bruke lavhastighets sentrifugeringsmetoden for å unngå cellebrudd og fortynning fra intracellulært innhold. Både mengden glukose og laktat i TIF reflekterte de forskjellige glykolytiske egenskapene til de to forskjellige cellelinjene. Her beskriver vi i detalj protokollen for de to mest brukte metodene for isolering av TIF: vevsentrifugering og vevseluering (figur 2).

Figure 2
Figur 2: Skjematisk fremstilling av interstitiell væskeisolasjonsmetode i tumor. Skjematisk illustrasjon av teknikkene beskrevet i detalj i protokollen, nemlig vevsentrifugering (A) og vevseluering (B). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Protocol

For alle pasienter som ble registrert, ble perifert blod og bukspyttkjerteljuice samlet på operasjonstidspunktet i henhold til protokoller godkjent av institusjonens etiske komité. Alle pasientene ble inkludert i studien etter signert informert samtykke, inkludert innsamling av biologiske prøver og kliniske data. Studien ble godkjent av institusjonens etiske komité (protokollnummer ICH-595, godkjenning utstedt i mai 2009). Prosedyrer som involverer mus og deres omsorg ble overholdt EUs og institusjonens retningslinje…

Representative Results

Vi fulgte prosedyren beskrevet ovenfor for å få pancreasjuice fra pasienter med PDAC (n = 31) og andre godartede pankreasplager (ikke-PDAC, n = 9), inkludert pankreatitt (n = 2), papillære ampullatumorer (n = 4), nevroendokrine svulster (n = 2), intraduklær papillær mucinøs neoplasi (IPMN; n = 1) 12. Bukspyttkjerteljuiceprøvene ble deretter utsatt for metabolomisk analyse ved hjelp av kjernemagnetisk resonans (1H-NMR)12. Ved å filtrere de bre…

Discussion

I denne studien har vi beskrevet teknikken for intraoperativt oppsamling av bukspyttkjerteljuice, en stort sett uutforsket væskebiopsi. Vi har nylig vist at bukspyttkjerteljuice kan utnyttes som en kilde til metabolske markører av sykdom12. Metabolomisk analyse på andre flytende biopsier, som blod 5,6,7, urin8 og spytt9, har vist lovende resultater i å d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Roberta Migliore for teknisk assistanse. Forskningen som fører til disse resultatene har mottatt finansiering fra Associazione Italiana per la ricerca sul cancro (AIRC) under IG2016-ID.18443-prosjektet – PI Marchesi Federica. Finansiørene hadde ingen rolle i studiedesign, datainnsamling og analyse, beslutning om publisering eller utarbeiding av manuskriptet.

Materials

1 mL syringe BD Biosciences 309659
1.5 mL Eppendorf tube Greiner BioOne GR616201
20 µm nylon cell strainer pluriSelect 43-50020-03
25G needle BD Biosciences 305122
3 mL K2EDTA vacutainer BD Biosciences 366473
3 mL syringe BD Biosciences 309656
50 mL Falcon tube Corning 352098
Clamps Medicon 06.20.12
Disposable scalpel Medicom 9000-10
Fetal bovine serum Microtech MG10432
Flat-tipped forceps Medicon 06.00.10
Penicillin-Streptomycin Lonza ECB3001D
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich D8537
Protease inhibitor cocktail Roche 34044100
RPMI medium Euroclone ECB9006L
Scissors Medicon 02.04.09
Trypsin/EDTA 1x Lonza BE17-161F
Ultraglutamine 100x Lonza BE17-605E/U1

References

  1. Costello, E., Greenhalf, W., Neoptolemos, J. P. New biomarkers and targets in pancreatic cancer and their application to treatment. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 9 (8), 435-444 (2012).
  2. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2020. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 70 (1), 7-30 (2020).
  3. Neoptolemos, J. P., et al. Therapeutic developments in pancreatic cancer: current and future perspectives. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 15 (6), 333-348 (2018).
  4. Sahin, I. H., Askan, G., Hu, Z. I., O’Reilly, E. M. Immunotherapy in pancreatic ductal adenocarcinoma: an emerging entity. Annals of Oncology. 28 (12), 2950-2961 (2017).
  5. Mayerle, J., et al. Metabolic biomarker signature to differentiate pancreatic ductal adenocarcinoma from chronic pancreatitis. Gut. 67 (1), 128-137 (2018).
  6. Bathe, O. F., et al. Feasibility of identifying pancreatic cancer based on serum metabolomics. Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention. 20 (1), 140-147 (2011).
  7. Mayers, J. R., et al. Elevation of circulating branched-chain amino acids is an early event in human pancreatic adenocarcinoma development. Nature Medicine. 20 (10), 1193-1198 (2014).
  8. Napoli, C., et al. Urine metabolic signature of pancreatic ductal adenocarcinoma by (1)h nuclear magnetic resonance: identification, mapping, and evolution. Journal of Proteome Research. 11 (1), 1274-1283 (2012).
  9. Sugimoto, M., Wong, D. T., Hirayama, A., Soga, T., Tomita, M. Capillary electrophoresis mass spectrometry-based saliva metabolomics identified oral, breast and pancreatic cancer-specific profiles. Metabolomics. 6 (1), 78-95 (2010).
  10. Chen, R., et al. Comparison of pancreas juice proteins from cancer versus pancreatitis using quantitative proteomic analysis. Pancreas. 34 (1), 70-79 (2007).
  11. Mori, Y., et al. A minimally invasive and simple screening test for detection of pancreatic ductal adenocarcinoma using biomarkers in duodenal juice. Pancreas. 42 (2), 187-192 (2013).
  12. Cortese, N., et al. Metabolome of Pancreatic Juice Delineates Distinct Clinical Profiles of Pancreatic Cancer and Reveals a Link between Glucose Metabolism and PD-1+ Cells. Cancer Immunology Research. , (2020).
  13. Tanaka, M., et al. Cytologic Analysis of Pancreatic Juice Increases Specificity of Detection of Malignant IPMN-A Systematic Review. Clinical Gastroenterology and Hepatology. 17 (11), 2199-2211 (2019).
  14. Chen, K. T., et al. Potential prognostic biomarkers of pancreatic cancer. Pancreas. 43 (1), 22-27 (2014).
  15. Tian, M., et al. Proteomic analysis identifies MMP-9, DJ-1 and A1BG as overexpressed proteins in pancreatic juice from pancreatic ductal adenocarcinoma patients. BMC Cancer. 8, 241 (2008).
  16. Shi, C., et al. Sensitive and quantitative detection of KRAS2 gene mutations in pancreatic duct juice differentiates patients with pancreatic cancer from chronic pancreatitis, potential for early detection. Cancer Biology & Therapy. 7 (3), 353-360 (2008).
  17. Rogers, C. D., et al. Differentiating pancreatic lesions by microarray and QPCR analysis of pancreatic juice RNAs. Cancer Biology & Therapy. 5 (10), 1383-1389 (2006).
  18. Matsubayashi, H., et al. DNA methylation alterations in the pancreatic juice of patients with suspected pancreatic disease. Cancer Research. 66 (2), 1208-1217 (2006).
  19. Cote, G. A., et al. A pilot study to develop a diagnostic test for pancreatic ductal adenocarcinoma based on differential expression of select miRNA in plasma and bile. The American Journal of Gastroenterology. 109 (12), 1942-1952 (2014).
  20. Yu, J., et al. Digital next-generation sequencing identifies low-abundance mutations in pancreatic juice samples collected from the duodenum of patients with pancreatic cancer and intraductal papillary mucinous neoplasms. Gut. , (2016).
  21. Wiig, H., Swartz, M. A. Interstitial fluid and lymph formation and transport: physiological regulation and roles in inflammation and cancer. Physiological Reviews. 92 (3), 1005-1060 (2012).
  22. Haslene-Hox, H., et al. A new method for isolation of interstitial fluid from human solid tumors applied to proteomic analysis of ovarian carcinoma tissue. PLoS One. 6 (4), 19217 (2011).
  23. Zhang, J., et al. In-depth proteomic analysis of tissue interstitial fluid for hepatocellular carcinoma serum biomarker discovery. British Journal of Cancer. 117 (11), 1676-1684 (2017).
  24. Sullivan, M. R., et al. Quantification of microenvironmental metabolites in murine cancers reveals determinants of tumor nutrient availability. Elife. 8, (2019).
  25. Matas-Nadal, C., et al. Evaluation of Tumor Interstitial Fluid-Extraction Methods for Proteome Analysis: Comparison of Biopsy Elution versus Centrifugation. Journal of Proteome Research. 19 (7), 2598-2605 (2020).
  26. Espinoza, J. A., et al. Cytokine profiling of tumor interstitial fluid of the breast and its relationship with lymphocyte infiltration and clinicopathological characteristics. Oncoimmunology. 5 (12), 1248015 (2016).
  27. Halvorsen, A. R., et al. Profiling of microRNAs in tumor interstitial fluid of breast tumors – a novel resource to identify biomarkers for prognostic classification and detection of cancer. Molecular Oncology. 11 (2), 220-234 (2017).
  28. Yang, S., Huang, C. M. Recent advances in protein profiling of tissues and tissue fluids. Expert Review of Proteomics. 4, 515-529 (2007).
  29. Huang, C. M., et al. Mass spectrometric proteomics profiles of in vivo tumor secretomes: capillary ultrafiltration sampling of regressive tumor masses. Proteomics. 6 (22), 6107-6116 (2006).
  30. Leegsma-Vogt, G., Janle, E., Ash, S. R., Venema, K., Korf, J. Utilization of in vivo ultrafiltration in biomedical research and clinical applications. Life Sciences. 73 (16), 2005-2018 (2003).
  31. Schneiderheinze, J. M., Hogan, B. L. Selective in vivo and in vitro sampling of proteins using miniature ultrafiltration sampling probes. Analytical Chemistry. 68 (21), 3758-3762 (1996).
  32. Hardt, M., Lam, D. K., Dolan, J. C., Schmidt, B. L. Surveying proteolytic processes in human cancer microenvironments by microdialysis and activity-based mass spectrometry. Proteomics Clinical Applications. 5 (11-12), 636-643 (2011).
  33. Xu, B. J., et al. Microdialysis combined with proteomics for protein identification in breast tumor microenvironment in vivo. Cancer Microenvironment. 4 (1), 61-71 (2010).
  34. Bendrik, C., Dabrosin, C. Estradiol increases IL-8 secretion of normal human breast tissue and breast cancer in vivo. The Journal of Immunology. 182 (1), 371-378 (2009).
  35. Ao, X., Stenken, J. A. Microdialysis sampling of cytokines. Methods. 38 (4), 331-341 (2006).
  36. Ho, P. C., et al. Phosphoenolpyruvate Is a Metabolic Checkpoint of Anti-tumor T Cell Responses. Cell. 162 (6), 1217-1228 (2015).
  37. Choi, J., et al. Intraperitoneal immunotherapy for metastatic ovarian carcinoma: Resistance of intratumoral collagen to antibody penetration. Clinical Cancer Research. 12 (6), 1906-1912 (2006).
  38. Wiig, H., Aukland, K., Tenstad, O. Isolation of interstitial fluid from rat mammary tumors by a centrifugation method. The American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 284 (1), 416-424 (2003).
  39. Li, S., Wang, R., Zhang, M., Wang, L., Cheng, S. Proteomic analysis of non-small cell lung cancer tissue interstitial fluids. World Journal of Surgical Oncology. 11, 173 (2013).
  40. Fijneman, R. J., et al. Proximal fluid proteome profiling of mouse colon tumors reveals biomarkers for early diagnosis of human colorectal cancer. Clinical Cancer Research. 18 (9), 2613-2624 (2012).
  41. Teng, P. N., Hood, B. L., Sun, M., Dhir, R., Conrads, T. P. Differential proteomic analysis of renal cell carcinoma tissue interstitial fluid. Journal of Proteome Research. 10 (3), 1333-1342 (2011).
  42. Turtoi, A., et al. Novel comprehensive approach for accessible biomarker identification and absolute quantification from precious human tissues. Journal of Proteome Research. 10 (7), 3160-3182 (2011).
  43. Wagner, M., Wiig, H. Tumor Interstitial Fluid Formation, Characterization, and Clinical Implications. Frontiers in Oncology. 5, 115 (2015).
  44. Haslene-Hox, H., Tenstad, O., Wiig, H. Interstitial fluid-a reflection of the tumor cell microenvironment and secretome. Biochimica Biophysica Acta. 1834 (11), 2336-2346 (2013).
  45. Hsieh, S. Y., et al. Secreted ERBB3 isoforms are serum markers for early hepatoma in patients with chronic hepatitis and cirrhosis. Journal of Proteome Research. 10, 4715-4724 (2011).
  46. Sun, W., et al. Characterization of the liver tissue interstitial fluid (TIF) proteome indicates potential for application in liver disease biomarker discovery. Journal of Proteome Research. 9 (2), 1020-1031 (2010).
  47. Haslene-Hox, H., et al. Increased WD-repeat containing protein 1 in interstitial fluid from ovarian carcinomas shown by comparative proteomic analysis of malignant and healthy gynecological tissue. Biochimica Biophysica Acta. 1834 (11), 2347-2359 (2013).
  48. Wang, T. H., et al. Stress-induced phosphoprotein 1 as a secreted biomarker for human ovarian cancer promotes cancer cell proliferation. Molecular & Cellular Proteomics. 9, 1873-1884 (2010).
  49. Gromov, P., et al. Up-regulated proteins in the fluid bathing the tumour cell microenvironment as potential serological markers for early detection of cancer of the breast. Molecular Oncology. 4 (1), 65-89 (2010).

Play Video

Cite This Article
Donisi, G., Barbagallo, M., Capretti, G., Nappo, G., Takis, P. G., Zerbi, A., Marchesi, F., Cortese, N. Isolation of Proximal Fluids to Investigate the Tumor Microenvironment of Pancreatic Adenocarcinoma. J. Vis. Exp. (165), e61687, doi:10.3791/61687 (2020).

View Video