Septins 是细胞骨架蛋白。它们可与脂质膜相互作用,并能够在微米尺度上感知甚至产生膜曲率。本实验方案中,我们描述了自下而上的体外(in vitro)方法,用于分析膜形变、对曲率敏感的 septin 结合行为以及 septin 丝状结构的超微结构。
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* These authors contributed equally
Septins 是细胞骨架蛋白。它们可与脂质膜相互作用,并能够在微米尺度上感知甚至产生膜曲率。本实验方案中,我们描述了自下而上的体外(in vitro)方法,用于分析膜形变、对曲率敏感的 septin 结合行为以及 septin 丝状结构的超微结构。
膜重塑在质膜及细胞器内持续发生。为了全面解析环境(离子条件、蛋白质与脂质组成、膜曲率)以及与特定膜重塑过程相关的不同组分在其中所起的作用,我们开展 体外 自下而上的方法。近年来,人们高度关注揭示与重大疾病相关联的septin蛋白的作用。septin是一类必需且广泛存在的细胞骨架蛋白,可与质膜相互作用,在细胞分裂、细胞运动、神经元形态发生以及精子形成等多种生物学功能中发挥重要作用。因此,理解septin如何在膜上相互作用并组装,进而诱导膜形变,以及其如何对特定膜曲率产生响应,具有重要意义。本文旨在解析septin在分子水平上的超微结构与其在微米尺度上介导的膜重塑过程之间的相互关系。为此,研究中重组表达了芽殖酵母和哺乳动物的septin复合物,并进行了纯化。结合多种技术手段 体外 随后利用这些检测方法分析了膜上 Septin 的自组装行为。通过支持性脂双层(SLBs)、巨型单层囊泡(GUVs)、大单层囊泡(LUVs)以及波状基底,研究 Septin 自组装、膜重塑与膜曲率之间的相互作用。
Septins 是一类可形成细胞骨架丝状结构的蛋白质,能够与脂质膜相互作用。Septins 广泛存在于真核生物中,对多种细胞功能至关重要。它们已被确认为芽殖酵母和哺乳动物细胞分裂的主要调控因子1,2。它们参与膜重塑过程、纤毛发生3以及精子形成4。在哺乳动物细胞内,Septins 还能以 Rho GTP 酶结合蛋白(BORG)依赖的方式与肌动蛋白和微管相互作用5,6,78。在多种组织(如神经元9、纤毛3、精子10)中,Septins 被证实是膜结合组分扩散屏障的调控因子11。此外,Septins 还被证明可调控膜出泡和突起形成12。作为多功能蛋白,Septins 的异常与多种常见疾病的产生相关13,其失调与癌....
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1. 利用巨大单层囊泡(GUVs)测定膜重塑
注意:本节中制备 giant unilamellar vesicles(GUVs)以模拟在细胞环境中可能由 septins 诱导的膜形变。事实上,在细胞中,septins 常定位于具有微米级曲率的区域。GUVs 的尺寸范围从几微米到数十微米,且可发生形变,因此适用于检测任何由 septins 引起的微米尺度的膜形变。实验中使用荧光标记的脂质以及荧光标记的 septins(通过绿色荧光蛋白 [GFP] 标记),以同时追踪脂质与蛋白质的行为。 通过 荧光显微镜技术
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巨型囊泡(GUVs)的形变
在分裂酵母 septin 蛋白能够发生聚合的条件下,经 septin 孵育后发生形变的 GUVs 的典型共聚焦荧光图像如图3所示。裸露的 GUVs 呈完美的球形(图3A)。当与浓度超过 50 nM 的分裂酵母 septin 纤维孵育后,囊泡出现形变。当分裂酵母 septin 八聚体浓度达到 100 nM 时,囊泡呈现多面体状,且形变保持静态,无明显波动(图3B)。当分裂酵母 septin 浓度高于 200 nM 时,膜上 septin 达到饱和,此时观察到周期性形变(图3C)。使用分裂酵母 septin 时,观察到的突起结构周期在 2 µm 到 6 µm 之间,振幅约为 1 µm。因此,septin 以一种特异性的方式显著重塑膜结构。所观察到的形变振幅及其相应的曲率,惊人地反映了 septin 对细胞中微米级曲率的亲和性。由于 GU.......
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如上所述,已使用一种脂质混合物,该混合物可增强PI(4,5)P2在脂双层中的掺入,从而促进septin与膜的相互作用。事实上,我们已在其他研究中表明25,出芽酵母的septin以PI(4,5)P2特异性方式与囊泡相互作用。该脂质组成是通过筛选多种组分后经验性优化确定的,目前已被作者广泛采用。PI(4,5)P2脂质需谨慎操作。储备液必须分装成小体积,确保每个小瓶用于移液操作不超过两次。此外,脂质分装样品应保存在氩气环境中,以防止脂质氧化。最后,一旦脂质混合物溶于水溶液,必须立即使用,不可保存用于后续实验。值得注意的是,在GUV重构或支撑脂双层融合后,septin与脂质之间的相互作用在2小时后显著减弱。
本文介绍了利用八聚体酿酒酵母分裂素复合物(包含Cdc10、Cdc11、Cdc12和Cdc3)所获得的部分结果;然而,分析其他物种分裂素复合物行为所采用的实验步骤应完全相同。
为了制备GUVs,我们更倾向于使用铂丝的电形.......
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感谢 Patricia Bassereau 和 Daniel Lévy 提供的有益建议和讨论。本工作得到了法国国家研究署(ANR)对项目 "SEPTIME"(ANR-13-JSV8-0002-01)、ANR SEPTIMORF(ANR-17-CE13-0014)以及项目 "SEPTSCORT"(ANR-20-CE11-0014-01)的资助支持。B. Chauvin 的研究由巴黎大区物理博士学院 "ED564: Physique en Ile de France" 和法国医学研究基金会资助。K. Nakazawa 获得索邦大学(AAP Emergence)的支持。G.H. Koenderink 获得荷兰科学研究组织(NWO/OCW)通过“BaSyC-构建合成细胞”引力计划(024.003.019)的资助。我们感谢 Labex Cell(n)Scale(ANR-11-LABX0038)和巴黎科学与文学大学(Paris Sciences et Lettres,ANR-10-IDEX-0001-02)的支持。我们感谢居里研究所细胞与组织成像平台(PICT-IBiSA)的支持,该平台是法国国家研究基础设施法国生物成像(France-BioImaging,ANR10-INBS-04)的成员单位。
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