Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Bioengineering
Click here for the English version

Bioengineering

Niet-invasieve en invasieve renale hypoxiemonitoring in een varkensmodel van hemorragische shock

Published: October 28, 2022 doi: 10.3791/64461
Automatic Translation
1, 2,3, 1,4, 4,5
1Department of Biomedical Engineering, University of Utah, 2Department of Emergency Medicine, University of Utah, 3Nora Eccles Harrison Cardiovascular Research and Training Institute, University of Utah, 4Department of Anesthesiology, University of Utah, 5Geriatric Research, Education, and Clinical Centre, VAMC

ERRATUM NOTICE

Summary

Hier wordt een protocol gepresenteerd om renale oxygenatie in het medulla en niet-invasieve urine zuurstof partiële druk te meten in een hemorragisch shock varkensmodel om urine zuurstof partiële druk vast te stellen als een vroege indicator van acute nierschade (AKI) en een nieuw reanimatie-eindpunt.

Abstract

Tot 50% van de patiënten met trauma ontwikkelt acute nierschade (AKI), deels als gevolg van slechte nierperfusie na ernstig bloedverlies. AKI wordt momenteel gediagnosticeerd op basis van een verandering in serumcreatinineconcentratie ten opzichte van baseline of langdurige perioden van verminderde urineproductie. Helaas zijn gegevens over de serumcreatinineconcentratie bij baseline niet beschikbaar bij de meeste patiënten met trauma en zijn de huidige schattingsmethoden onnauwkeurig. Bovendien kan de serumcreatinineconcentratie pas 24-48 uur na het letsel veranderen. Ten slotte moet oligurie minimaal 6 uur aanhouden om AKI te diagnosticeren, waardoor het onpraktisch is voor een vroege diagnose. AKI-diagnostische benaderingen die vandaag beschikbaar zijn, zijn niet nuttig voor het voorspellen van risico's tijdens de reanimatie van patiënten met trauma. Studies suggereren dat urinaire partiële druk van zuurstof (PuO2) nuttig kan zijn voor het beoordelen van nierhypoxie. Een monitor die de urinekatheter en de urineopvangzak verbindt, is ontwikkeld om PuO2 niet-invasief te meten. Het apparaat bevat een optische zuurstofsensor die PuO2 schat op basis van luminescentie-blusprincipes. Bovendien meet het apparaat de urinestroom en temperatuur, de laatste om aan te passen aan verstorende effecten van temperatuurveranderingen. De urinestroom wordt gemeten om de effecten van het binnendringen van zuurstof tijdens perioden van lage urinestroom te compenseren. Dit artikel beschrijft een varkensmodel van hemorragische shock om de relatie tussen niet-invasieve PuO2, nierhypoxie en AKI-ontwikkeling te bestuderen. Een belangrijk element van het model is de echogeleide chirurgische plaatsing in het niermerg van een zuurstofsonde, die is gebaseerd op een niet-verwarmde optische microvezel. PuO 2 zal ook worden gemeten in de blaas en vergeleken met de nier- en niet-invasieve PuO2-metingen. Dit model kan worden gebruikt om PuO 2 te testen als een vroege marker van AKI en PuO2 te beoordelen als een reanimatie-eindpunt na een bloeding dat indicatief is voor eindorgaan in plaats van systemische oxygenatie.

Introduction

Acuut nierletsel (AKI) treft tot 50% van de patiënten met trauma die zijn opgenomen op de intensive care1. Patiënten die AKI ontwikkelen, hebben meestal een langere verblijfsduur in het ziekenhuis en op de intensive care en een drievoudig groter risico op sterfte 2,3,4. Momenteel wordt AKI meestal gedefinieerd door de Kidney Disease Improving Global Outcomes (KDIGO) -richtlijnen, die zijn gebaseerd op veranderingen in serumcreatinineconcentratie ten opzichte van baseline of perioden van langdurige oligurie5. Baseline creatinineconcentratiegegevens zijn niet beschikbaar bij de meeste patiënten met trauma en schattingsvergelijkingen zijn onbetrouwbaar en zijn niet gevalideerd bij patiënten met trauma6. Bovendien kan de serumcreatinineconcentratie pas ten minste 24 uur na het letsel veranderen, waardoor vroegtijdige identificatie en interventie worden uitgesloten7. Hoewel onderzoek suggereert dat urineproductie een eerdere indicator is van AKI dan serumcreatinineconcentratie, vereisen de KDIGO-criteria een minimum van 6 uur oligurie, wat interventies gericht op letselpreventie uitsluit8. De optimale urineproductiedrempel per uur en de juiste duur van oligurie voor het definiëren van AKI worden ook besproken, wat de effectiviteit ervan als een vroege marker van de ziektebeperkt 9,10. De huidige diagnostische maatregelen voor AKI zijn dus niet nuttig in trauma-instellingen, leiden tot een vertraagde diagnose van AKI en bieden geen realtime informatie over de risicostatus van een patiënt voor het ontwikkelen van AKI.

Hoewel de ontwikkeling van AKI in een trauma-setting complex is en waarschijnlijk geassocieerd met verschillende oorzaken, zoals slechte nierperfusie als gevolg van hypovolemie, verminderde renale bloedstroom als gevolg van vasoconstrictie, traumagerelateerde ontsteking of ischemie-reperfusieletsel, is nierhypoxie een veel voorkomende factor bij de meeste vormen van AKI11,12. In het bijzonder is het medulla-gebied van de nier zeer gevoelig voor een onbalans tussen zuurstofvraag en -aanbod in de trauma-setting als gevolg van verminderde zuurstofafgifte en hoge metabole activiteit geassocieerd met natriumreabsorptie. Dus als het mogelijk zou zijn om renale medulla-oxygenatie te meten, kan het mogelijk zijn om de risicostatus van een patiënt voor het ontwikkelen van AKI te controleren. Hoewel dit klinisch niet haalbaar is, correleert de partiële druk van zuurstof (PuO2) in de urine aan de uitlaat van de nier sterk met medullaire weefseloxygenatie13,14. Andere studies hebben aangetoond dat het mogelijk is om blaas PuO 2 te meten en dat het verandert als reactie op stimuli die medullaire zuurstof en nierbekken PuO2-niveaus veranderen, zoals een afname van de renale bloedstroom15,16,17. Deze studies suggereren dat PuO2 kan wijzen op eindorgaanperfusie en nuttig kan zijn voor het monitoren van de impact van interventies in trauma-instellingen op de nierfunctie.

Om PuO 2 niet-invasief te monitoren, is een niet-invasieve PuO2-monitor ontwikkeld die gemakkelijk verbinding kan maken met het uiteinde van een urinekatheter buiten het lichaam. De niet-invasieve PuO2-monitor bestaat uit drie hoofdcomponenten: een temperatuursensor, een luminescentie-dovende zuurstofsensor en een thermische stromingssensor. Omdat elke zuurstofsensor optisch is gebaseerd en afhankelijk is van de Stern-Volmer-relatie om de relatie tussen luminescentie en zuurstofconcentratie te kwantificeren, is een temperatuursensor nodig om mogelijke verstorende effecten van temperatuurveranderingen te compenseren. De stromingssensor is belangrijk om de urineproductie te kwantificeren en om de richting en omvang van de urinestroom te bepalen. Alle drie de componenten zijn verbonden door een combinatie van mannelijke, vrouwelijke en t-vormige luer lock connectoren en poly-vinylchloride (PVC) flexibele buizen. Het uiteinde met de conische connector sluit aan op de uitlaat van de urinekatheter en het uiteinde met slang over de conische connector verbindt dia's over de connector op de urineopvangzak.

Ondanks het distaal meten van de blaas, toonde een recente studie aan dat lage urinaire PuO2 tijdens hartchirurgie geassocieerd is met een verhoogd risico op het ontwikkelen van AKI18,19. Evenzo hebben de huidige diermodellen zich voornamelijk gericht op de vroege detectie van AKI tijdens hartchirurgie en sepsis 14,20,21,22. Er blijven dus vragen over het gebruik van dit nieuwe apparaat in omgevingen van trauma. Het doel van dit onderzoek is om PuO2 vast te stellen als een vroege marker van AKI en het gebruik ervan als reanimatie-eindpunt bij patiënten met trauma te onderzoeken. Dit manuscript beschrijft een varkensmodel van hemorragische shock dat de plaatsing van de niet-invasieve PuO 2-monitor, een blaas PuO2-sensor en een weefselzuurstofsensor in het niermerg omvat. Gegevens van de niet-invasieve monitor worden vergeleken met blaas PuO2 en invasieve weefselzuurstofmetingen. De niet-invasieve monitor bevat ook een stroomsensor die nuttig zal zijn voor het begrijpen van de relatie tussen urinestroomsnelheid en zuurstofindringing, wat het vermogen vermindert om renale medullaire weefseloxygenatie af te leiden uit niet-invasieve PuO2 terwijl urine de urinewegen doorkruist. Bovendien zullen gegevens van de drie zuurstofsensoren worden vergeleken met systemische vitale functies, zoals de gemiddelde arteriële druk. De centrale hypothese is dat niet-invasieve PuO2-gegevens sterk correleren met het invasieve medullaire zuurstofgehalte en medullaire hypoxie tijdens reanimatie weerspiegelen. Niet-invasieve PuO2-monitoring heeft het potentieel om traumagerelateerde resultaten te verbeteren door AKI eerder te identificeren en te dienen als een nieuw reanimatie-eindpunt na bloeding dat indicatief is voor eindorgaan in plaats van systemische oxygenatie.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

De Institutional Animal Care and Use Committee van de Universiteit van Utah keurde alle hier beschreven experimentele protocollen goed. Voorafgaand aan het experiment werden in totaal 12 gecastreerde mannelijke of niet-drachtige vrouwelijke Yorkshire-varkens met een gewicht van 50-75 kg en tussen 6-8 maanden oud gedurende ten minste 7 dagen in hun verblijf geacclimatiseerd. Gedurende deze periode wordt alle zorg geleid door een dierenarts en in overeenstemming met de Gids voor de verzorging en het gebruik van proefdieren en de Wet op het dierenwelzijn. De dieren worden 's nachts gevast voordat de anesthesie wordt ingelast, maar krijgen vrije toegang tot water.

1. Sensor montage

  1. Snijd een stuk van 6 cm van 3/8 in thermoplastische elastomeer (TPE) buizen, 25 mm stukken van 1/8 in en 3/16 in PVC-buizen en 31 mm stukken van 1/8 in en 3/16 in PVC-buizen.
  2. Boor een gat in de bovenkant van de niet-geventileerde dop om de blootgestelde punt van de temperatuursonde te passen; Begin met een 3/32 in boor, gebruik dan een 1/8 in boor.
  3. Gebruik een 5/32 in boor om het bovenste deel van de T-connector uit te boren om op de zuurstofsensor te passen.
  4. Schuif het kortere stuk van de 1/8 in PVC-buis over de inlaatzijde van de flowsensor. Schuif het langere stuk PVC-buis van 1/8 in over de uitlaatzijde (zoals aangegeven door de pijl op de stroomsensor zelf) van de stroomsensor. Schuif de kortere en langere 3/16 in stukken PVC-buis over de overeenkomstige lengtes van de 1/8 in PVC-buizen. Steek het prikkeldraaduiteinde van de mannelijke luer lock-connector in het open uiteinde van de 1/8 in PVC-buizen.
    OPMERKING: Gebruik indien nodig een warmtepistool om de slang te verwarmen voordat u over prikkeldraadfittingen glijdt. Het is ook mogelijk om isopropylalcohol te gebruiken om het prikkeldraadeinde te smeren om het gemakkelijker te maken om de slang over de prikkeldraadconnector te schuiven.
  5. Meng de biocompatibele lijm.
  6. Stel de punt van de temperatuursonde bloot door eventuele beschermende mantels of slangen te verwijderen. Vul de binnenkant van de slang van de thermistor met biocompatibele lijm, maar bedek de blootgestelde punt niet.
  7. Monteer de onderdelen zoals weergegeven in figuur 1. Gebruik de lijm om elke luer lock-verbinding vast te zetten, bij het plaatsen van de thermistor in de niet-geventileerde dop en voordat u de 3/8 in TPE-slang over het prikkeldraadeinde schuift.
  8. Zorg er voorafgaand aan de sterilisatie voor dat de blauwe dop op de zuurstofstick niet te strak is gedraaid, anders is het moeilijk om deze na sterilisatie ongedaan te maken.
    OPMERKING: Een afbeelding van een geassembleerd apparaat wordt ter referentie weergegeven in figuur 1 . Voor dit experiment werd de glasvezelkabel aangesloten op een elektro-optische module die software bevat die is ontworpen om te werken met de specifieke zuurstofsensoren die in het apparaat worden gebruikt. Elke op luminescentie gebaseerde zuurstofsensor en compatibel apparaat voor gegevensverzameling werkt. Daarnaast werden een aangepaste module en een printplaat ontworpen om de stroomsensor en temperatuurvoeler aan te sluiten. Aangepaste software werd gebruikt om gegevens in realtime te verzamelen en weer te geven.

2. Experimentele procedure

  1. Inductie van anesthesie en monitoring.
    1. Verdoof het dier met een gecombineerde intramusculaire injectie van Ketamine (2,2 mg/kg) en Xylazine (2,2 mg/kg) en Telazol (4,4 mg/kg).
    2. Afhankelijk van de grootte van het dier, plaatst u een endotracheale buis van de juiste grootte (waarschijnlijk tussen 7 mm en 8 mm) met behulp van een laryngoscoop.
    3. Breng oogglijmiddel aan op beide ogen.
    4. Na inductie, ventileer het dier mechanisch met het onderhoud van anesthesie met 1,5% -3,0% gasvormig isofluraan gemengd in zuurstof. Stel de fractie geïnspireerde zuurstof in tussen 40% -100%, de positieve eind-expiratoire druk op 4 cm H 2O, het getijdenvolume op 6-8 ml / kg en pas de ademhalingsfrequentie en het getijdenvolume aan om eindgetijde CO2 van 35-45 mmHg te behouden.
    5. Controleer en bevestig de juiste diepte van de anesthesie door de kaaktoon, palpebrale reflex ongeveer elke 15 minuten en de afwezigheid van spontane beweging tijdens het experiment te beoordelen. Controleer daarnaast de klinische parameters van weefselperfusie (slijmvlieskleur, capillaire navultijd, hartslag), pulsoximetrie, eindgetijde CO2, kernlichaamstemperatuur en elektrocardiogram.
    6. Plaats het dier in dorsale lighouding op een verwarmende deken en bevestig elk been aan de tafel.
    7. Het protocol is een niet-overlevingsprocedure met euthanasie van het dier aan het einde van het experiment, zoals beschreven in rubriek 5.
  2. Bereid het dier voor op het experiment.
    1. Bereid alle punctieplaatsen (die worden vermeld in stappen 2.2.3-2.2.7) voor door de huid te schrobben met drie afwisselende scrubs chloorhexidine gevolgd door alcohol. Breng na de derde scrub chloorhexidine aan en laat volledig drogen en drapeer vervolgens de chirurgische site op een steriele manier.
    2. Infiltreer lokaal alle punctie- en incisieplaatsen met 2% lidocaïne voor lokale pijnverlichting.
    3. Plaats met behulp van echografiebegeleiding en de Seldinger-techniek een 9 Fr-katheter in de rechter externe halsader voor medicatie-infusie en centrale veneuze drukbewaking en een 7 Fr-katheter in de rechter femorale ader voor reanimatie.
    4. Plaats onder echografische begeleiding een 7 Fr-schede in de rechter brachiale slagader.
    5. Plaats onder echografische begeleiding een 7 Fr-schede in de rechter dijbeenslagader.
    6. Plaats onder echografische begeleiding een 7 Fr-schede in de linker dijbeenslagader.
    7. Plaats onder echografische begeleiding een 5 Fr-schede in de rechter of linker halsslagader.
    8. Controleer de druk distaal aan de ballon van de reanimatie endovasculaire occlusie van de aorta (REBOA) katheter via de linker femorale slagaderschede.
      1. Sluit een wegwerpdrukomvormer aan op de arteriële katheter die distaal is van de REBOA-ballon.
    9. Controleer de druk proximaal aan de ballon van de REBOA-katheter via de halsslagaderschede.
      1. Sluit een wegwerpdrukomvormer aan op de arteriële katheter die proximaal is aan de REBOA-ballon.
    10. Voer een laparotomie van de middellijn uit door een incisie te maken langs de middellijn van de buik, beginnend bij het inferieure deel van het borstbeen en eindigend bij het schaambeen.
    11. Met de buik open, identificeer de blaas en voer een cystotomie uit, of maak een kleine incisie, om de punt van een 20 Fr urinekatheter in de blaas in te brengen. Sluit de cystotomie met de urinekatheter op zijn plaats met behulp van een hechtdraad in de tas. Nadat de katheter op zijn plaats zit, bevestigt u deze met hechtingen aan de huid.
    12. Voordat u de uitlaat van de katheter aansluit op de urineopvangzak, plaatst u het kegelvormige uiteinde van de niet-invasieve PuO2-monitor in de uitlaat van de katheter.
    13. Plaats de open slang aan het einde van de nieuwe PuO2-monitor over de kegelvormige connector op de slang die is aangesloten op de urineopvangzak.
    14. Verwijder de milt om door bloedingen geïnduceerde autotransfusie te elimineren.
      1. Zoek de milt. Identificeer de hilum van de milt of de plaats waar de miltslagader en ader de milt binnenkomen. Klem en transect elk vat.
      2. Na de transsectie wordt elk vat gehaaid met behulp van gemodificeerde Miller-knopen met behulp van 2-0 hechtingen.
  3. Plaats het instrument om blaas PuO2 en weefseloxygenatie te meten.
    1. Meet PuO2 aan de uitlaat van de blaas.
      1. Identificeer de ballon op de katheter. Maak net onder de ballon een incisie langs de lange as van de katheter, zodat u het lumen dat op de ballon aansluit niet snijdt.
      2. Breng na het maken van de incisie een t-connector met het sensormateriaal in de incisie.
      3. Gebruik weefsellijm om de t-connector op zijn plaats te houden.
      4. Sluit de glasvezelkabel van het blaasgegevensverzamelingsapparaat aan op de connector die het sensormateriaal bevat.
      5. Maak een nieuw bestand op het apparaat voor gegevensverzameling en noteer het tijdsverschil tussen het zelfstandige verzamelapparaat en andere apparaten die in het experiment worden gebruikt.
        1. Voor het apparaat voor gegevensverzameling dat in dit onderzoek wordt gebruikt: druk op de pijl-terug om het hoofdmenu te bereiken.
        2. Ga naar de meetinstellingen en klik op Ok. Gebruik de pijlen om het vak van de meetbrowser te markeren en druk op OK.
        3. Druk op de pijl naar rechts om een nieuw bestand te maken. Typ de naam van het nieuwe bestand en selecteer Gereed.
        4. Markeer de nieuwe bestandsnaam en selecteer OK. Navigeer naar het meetscherm en klik op Ok om de opname te starten.
    2. Meet medullaire renale weefseloxygenatie.
      1. Identificeer de locatie van de nier intern.
      2. Beweeg de darm zodat u een duidelijke lijn van de plaats en toegang tot de hele nier heeft.
      3. Plaats de sensor in een katheter van 2" 18 gauge. Pas de luer lock-connector op de sensor zo aan dat de punt van de sensor zichtbaar is. Verwijder de katheter en plaats deze over een naald van 18 gauge.
      4. Plaats de naald van 18 gauge en de 2 in de katheter in het niermerg onder echografische begeleiding.
      5. Verwijder de naald en houd de katheter op zijn plaats. Rijg de weefselsensor door de katheter en gebruik de luervergrendeling om de sensor op de katheter aan te sluiten.
      6. Gebruik weefsellijm om de katheter op zijn plaats te houden.
      7. Sluit de weefselsensor aan op de doos voor gegevensverzameling.
      8. Wacht 10 minuten voordat u begint met het experimentele protocol na het voorbereiden van de instrumentatie en het dier. Dit wordt beschouwd als een basislijnperiode.
  4. Experimenteel protocol
    1. Voordat u met de experimentele procedure begint, moet u ervoor zorgen dat de gemiddelde arteriële druk (MAP) ≥65 mmHg is. Als MAP onder de drempelwaarde ligt, geef dan maximaal twee bolussen van 5 ml/kg isotone kristalloïde oplossing. Als MAP onder 65 mmHg blijft, infundeer noradrenaline (0,02 μg/kg/min) totdat de doelmap is bereikt.
    2. Induceer hemorragische shock.
      1. Verwijder 25% (geschat als 60 ml / kg) van het geschatte bloedvolume van het dier door de rechter brachiale slagaderschede gedurende 30 minuten in zacht geagiteerde geïrriteerde bloedafnamezakken. Markeer het begin van de bloedverwijdering als t = 0 min.
      2. Bewaar het verwijderde bloed in een warmwaterbad bij 37 °C.
      3. Voer vervolgens randomisatie uit om dieren toe te wijzen aan de REBOA met volbloed of REBOA met kristalloïdengroep (n = 6 voor elke groep).
    3. Plaats de REBOA-katheter.
      1. Plaats een 7 Fr REBOA katheter in de rechter dijbeenslagaderschede. Plaats de ballon van de katheter onmiddellijk superieur aan het diafragma en bevestig de locatie met behulp van fluoroscopie.
      2. Bij t = 30 min, blaas de REBOA-ballon op en sluit de aorta gedurende 45 minuten volledig af.
    4. Initiëren van reanimatie en het toedienen van kritieke zorg.
      1. Bij t = 70 min, transfuseer elk dier met hun vergoten bloed gedurende 15 minuten.
      2. Infundeer intraveneus calcium gedurende 10 minuten om citraat-geïnduceerde hypocalciëmie te voorkomen.
      3. Laat bij t = 75 min de REBOA-ballon gedurende 10 min leeglopen.
      4. Reanimeer het dier tot t = 360 min met vloeistoffen en noradrenaline om een MAP > 65 mmHg te behouden.
  5. Einde experiment en euthanasie
    1. Verzamel eventuele resterende bloed- of urinemonsters.
    2. Euthanaseer het dier door een combinatie van Pentobarbital Sodium (390 mg) en Phenytoin Sodium (50 mg) (1 ml / 10 lbs) te injecteren.

3. Gegevensverwerking

  1. Alle gegevensbestanden worden gesynchroniseerd met de tijd.
    1. Op basis van de tijden die op elk apparaat ten opzichte van elkaar zijn genoteerd en het begin van het experiment, lijnt u alle gegevensbestanden zodanig uit dat t = 0 het begin van het experiment aangeeft.
  2. Verwijder alle gegevenspunten die zijn gekoppeld aan foutvlaggen uit de stroomsensor.
    OPMERKING: De fouttypen zijn High Flow Rate en Air-in-Line. De high flow rate-fout geeft aan dat het debiet de uitgangslimiet van de sensor heeft overschreden. De Air-in-Line-foutvlag wordt gehesen wanneer de sensor lucht in het stroomkanaal detecteert.
  3. Verwijder de gegevens die aan de negatieve stroom zijn gekoppeld.
    1. Zodra de stroom negatief wordt, volgt u het volume dat langs de sensor stroomt in de achterwaartse richting.
    2. Nadat de stroom positief is geworden, volgt u het volume en vergelijkt u het met het volume van de negatieve stroom om alleen metingen van recent geleegde urine op te nemen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Figuur 1 toont een afbeelding van de niet-invasieve PuO2-monitor die in dit manuscript wordt beschreven. Figuur 2 toont een plot van MAP- en niet-invasieve PuO2-metingen bij een enkele proefpersoon tijdens een experiment dat vergelijkbaar is met het beschreven varkensbloedingsmodel. Aan het begin van het experiment, toen de bloeding werd geïnitieerd, was er een daling van MAP en PuO2. Na de aanvankelijke daling in PuO2 nam het geleidelijk toe tot nadat de REBOA-ballon was leeggelopen. De geleidelijke toename kwam overeen met een periode van drastisch verminderde urineproductie als gevolg van door bloedingen geïnduceerde hypovolemie gevolgd door aorta-occlusie. Tijdens de periode van lage urineproductie waren PuO2-gegevens niet betrouwbaar vanwege zuurstofuitwisseling met omringend weefsel en lucht terwijl urine van de uitlaat van de nier naar de niet-invasieve meetplaats reisde. Tijdens de intensive care-fase was er een significante drop-off in PuO2, wat overeenkwam met een toename van de urineproductie. De toename van de urineproductie beperkte de impact van de zuurstofuitwisseling met het omliggende weefsel en PuO2-gegevens werden geldig verklaard. Niet-invasieve PuO2-gegevens die tijdens perioden van het experiment zijn verzameld, kunnen worden vergeleken met andere gegevens, zoals MAP. Bij deze proefpersoon lijkt MAP constant te blijven tijdens de intensive care-periode en bereikt PuO2 een maximum van ongeveer 180 minuten, gevolgd door een afname tot 240 minuten, gevolgd door een geleidelijke toename tot het einde van het experiment.

Figure 1
Figuur 1: Een afbeelding van de niet-invasieve PuO2-monitor . Het apparaat maakt verbinding tussen de katheter en de opvangzak. Het apparaat bevat een temperatuursonde, een op luminescentie gebaseerde zuurstofsensor en bijbehorende glasvezelkabel en een thermische stroomsensor. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 2
Figuur 2: Niet-invasieve PuO2 en MAP gemeten tijdens het beschreven hemorragische shock varkensmodel. Alle gegevens werden bemonsterd bij 1 Hz. HEM = Bloeding, MAP = gemiddelde arteriële druk. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

AKI is een veel voorkomende complicatie bij patiënten met trauma en momenteel is er geen gevalideerde bedmonitor voor nierweefseloxygenatie, die eerdere AKI-detectie mogelijk zou kunnen maken en potentiële interventies zou kunnen begeleiden. Dit manuscript beschrijft het gebruik en de instrumentatie van een varkens hemorragisch shockmodel om niet-invasieve PuO2 vast te stellen als een vroege indicator van AKI en een nieuw reanimatie-eindpunt in trauma-instellingen.

Een van de duidelijke voordelen van dit varkensmodel is de mogelijkheid om zuurstofmetingen op drie verschillende locaties te vergelijken, waaronder direct in de medulla. Hoewel het mogelijk is om blaas en niet-invasieve PuO2 bij mensen te meten, is het niet mogelijk om het zuurstofgehalte direct in de medulla te meten. Eerdere diermodellen die de toepassing van PuO2-monitoring bij sepsis en hartchirurgie bestudeerden, vertrouwden meestal op niet-invasieve of blaaszuurstofmetingen, met slechts een handvol studies die tegelijkertijd ook het zuurstofgehalte van medullair weefsel meten23. Ook zijn veel van de eerdere studies uitgevoerd bij kleinere dieren zoals muizen of konijnen, wat de translationele impact beperkt. Het gebruik van varkens is voordelig omdat de dieren groot genoeg zijn om monitoring en kritieke zorg mogelijk te maken, vergelijkbaar met wat ernstig zieke patiënten ondergaan. Het is belangrijk op te merken dat de zuurstofsensor onder ultrasone begeleiding in de medulla wordt geplaatst. De echografie wordt gebruikt om te bevestigen dat de katheter en sensor zich inderdaad in het merggebied van de nier bevinden. Bovendien bevat de niet-invasieve monitor een urinestroomsensor. Dit is belangrijk omdat een van de verstorende factoren van het meten van PuO2 distaal van het nierbekken zuurstofindringing langs de urinewegen24 is. De impact van het binnendringen van zuurstof werd gezien in de gegevens van het eerdere experiment. Tijdens perioden van aorta-occlusie en de bijbehorende lage urinestroom was PuO2 kunstmatig verhoogd in vergelijking met de kritieke zorgfase, wanneer de urineproductie werd verhoogd. Met behulp van de urinestroomsnelheidsgegevens is het mogelijk om alleen geldige niet-invasieve PuO 2-gegevens te vergelijken met blaas-PuO 2- en medullaire weefselzuurstofniveaus, en een stroomsnelheidsdrempel te bepalen waaronder niet-invasieve PuO2-gegevens niet langer renale oxygenatie vertegenwoordigen.

Naast het vergelijken van zuurstofgegevens op verschillende meetlocaties, zal dit model helpen vergelijken welke reanimatieproducten het meest effectief zijn voor het verbeteren van de renale zuurstofafgifte, renale weefseloxygenatie en indicatoren van wereldwijde perfusie zoals MAP. De huidige iteratie van het model zal volbloed en kristalloïden vergelijken. De huidige richtlijnen suggereren het gebruik van kristalloïden als de eerste behandelingslijn bij patiënten met hypotensieve bloedingstrauma's25. Anderen hebben aangetoond dat vloeistofreanimatie met kristalloïden de oxygenatie van nierweefsel niet herstelde, terwijl bloedtransfusie dat wel deed26. Het optimale transfusie-eindpunt is echter onduidelijk en de middelen kunnen beperkt zijn in sommige trauma-omgevingen (landelijke, afgelegen of gewapende conflictomgevingen). Op basis van de gegevens van deze studie kan de niet-invasieve PuO2-monitor dienen als een nieuw eindpunt voor het bepalen van een geschikte transfusiedrempel bij patiënten met trauma. Na validatie van de niet-invasieve PuO2-monitor in deze studie, kunnen toekomstige iteraties van dit model het gebruik van andere reanimatievloeistoffen onderzoeken, zoals hypertone oplossingen en het gebruik van synthetische colloïden.

Net als bij het vergelijken van verschillende reanimatieproducten, kunnen gegevens uit dit model worden gebruikt om wereldwijde perfusiemetingen te vergelijken met regionale oxygenatie en de relatie tussen systemische en regionale oxygenatie en uitkomsten. De huidige richtlijnen voor traumazorg adviseren een MAP van 60-65 mmHg25 aan te houden. Studies hebben geen sluitende optimale target MAP gevonden tijdens hemorragische shock om de nierfunctie te behouden27. De resultaten van het eerdere experiment suggereren dat MAP mogelijk slechts één factor is die PuO2 beïnvloedt. Hoewel MAP constant was tijdens de kritieke zorgfase, was PuO 2 gevarieerd, wat betekent dat er waarschijnlijk andere factoren zijn die PuO2 beïnvloeden. Een methode om de nieroxygenatie te monitoren, zoals niet-invasieve PuO2-monitoring, kan dus nuttig zijn voor het begeleiden van interventies in vergelijking met metingen van globale perfusie zoals MAP. Niet-invasieve PuO2-monitoring heeft het potentieel om de nierfunctie te behouden door weefselhypoxie te verminderen en orgaandisfunctie te minimaliseren.

Een van de belangrijkste beperkingen van de niet-invasieve monitor die in dit model wordt gebruikt, is dat er geen urine wordt geproduceerd tijdens de bloedings- of aorta-occlusiefasen. Dit beperkt vergelijkingen tussen niet-invasieve PuO2, blaas PuO2 en medullaire oxygenatie tot de reanimatiefase, waar gegevens verzameld uit vergelijkbare experimenten aantonen dat de urinestroom voldoende is tijdens deze periode. Een tweede beperking van dit model is dat REBOA in beide behandelgroepen wordt gebruikt. Op basis van de huidige klinische praktijk wordt REBOA meestal alleen gebruikt in niet-samendrukbare rompbloedingsscenario's28. Daarom moeten toekomstige studies het gebruik van niet-invasieve PuO2-monitoring met conventionele bloedingscontrole- en reanimatiemethoden onderzoeken.

Dit model zal helpen bij het valideren van niet-invasieve PuO2-monitoring als een hulpmiddel voor vroege detectie van AKI en het beoordelen van de respons op reanimatiemethoden. Dit is belangrijk omdat deze nieuwe monitor mogelijk vroege en vertraagde morbiditeit en mortaliteit gerelateerd aan trauma kan verminderen. Dit methodedocument geeft een stapsgewijze beschrijving van hoe het model moet worden geïmplementeerd.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

N. Silverton, K. Kuck en L. Lofgren zijn uitvinders van een patent en patentaanvraag rond de niet-invasieve monitor die in deze studie wordt gebruikt. Dit prototype is in ontwikkeling voor commerciële overweging door N. Silverton en K. Kuck, maar tot nu toe heeft er nog geen commerciële activiteit plaatsgevonden. De andere auteurs verklaren geen tegenstrijdige belangen te hebben. De interpretatie en rapportage van deze gegevens zijn uitsluitend de verantwoordelijkheid van de auteurs.

Acknowledgments

Het werk in deze beurs wordt gefinancierd door het University of Utah Clinical and Translational Science Institute via het Translational and Clinical Studies Pilot Program en het Department of Defense office van de Congressionally Directed Medical Research Programs (PR192745).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1/8" PVC tubing Qosina SKU: T4307 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/16" PVC tubing Qosina SKU: T4310 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/8" TPE tubing  Qosina SKU: T2204 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/32" (1), 1/8" (1), 5/32" (1) drill bit Dewalt N/A For building noninvasive PuO2 monitor
Biocompatible Glue Masterbond EP30MED Part of noninvasive PuO2 monitor
Bladder PuO2 sensor Presens DP-PSt3 Oxygen dipping probe
Bladder oxygen measurement device Presens Fibox 4 Stand-alone fiber optic oxygen meter
Chlorhexidine 4% scrub Vetone N/A For scrubbing insertion or puncture sites
Conical connector with female luer lock Qosina SKU: 51500 Part of noninvasive PuO2 monitor
Cuffed endotracheal tube Vetone 600508 For sedating the subject and providing respiratory support
Euthanasia solution (pentobarbital sodium|pheyntoin sodium) Vetone 11168 For euthanasia after completion of experiment
General purpose temperature probe, 400 series thermistor Novamed 10-1610-040 Part of noninvasive PuO2 monitor
HotDog veterinary warming system HotDog V106 For controlling subject temperature during experiment
Invasive tissue oxygen measurement device Optronix N/A OxyLite™ oxygen monitors
Invasive tissue oxygen sensor Optronix NX-BF/OT/E Oxygen/Temperature bare-fibre sensor
Isoflurane Vetone 501017 To maintain sedation throughout the experiment
Isotonic crystalloid solution HenrySchein 1537930 or 1534612 Used during resuscitation in the critical care period
Liquid flow sensor Sensirion LD20-2600B Part of noninvasive PuO2 monitor
Male luer lock to barb connector Qosina SKU: 11549 Part of noninvasive PuO2 monitor
Male to male luer connector Qosina SKU: 20024 Part of noninvasive PuO2 monitor
Norepinephrine HenrySchein AIN00610 Infusion during resuscitation
Noninvasive oxygen measurement device Presens EOM-O2-mini Electro optical module transmitter for contactless oxygen measurements
Non-vented male luer lock cap  Qosina SKU: 65418 Part of noninvasive PuO2 monitor
O2 sensor stick Presens SST-PSt3-YOP Part of noninvasive PuO2 monitor
PowerLab data acquisition platform AD Instruments N/A For data collection
REBOA catheter Certus Critical Care N/A Used in experimental protocol
Super Sheath arterial catheters (5 Fr, 7 Fr, 9 Fr) Boston Scientific C1894 for intravascular access
Suture Ethicon C013D For securing catheter to skin and closing incisions
T connector, all female luer locks Qosina SKU: 88214 Part of noninvasive PuO2 monitor

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Gomes, E., Antunes, R., Dias, C., Araújo, R., Costa-Pereira, A. Acute kidney injury in severe trauma assessed by RIFLE criteria: a common feature without implications on mortality. Scandinavian Journal of Trauma, Resuscitation and Emergency Medicine. 18, 1 (2010).
  2. Bihorac, A., et al. Incidence, clinical predictors, genomics, and outcome of acute kidney injury among trauma patients. Annals of Surgery. 252 (1), 158-165 (2010).
  3. Perkins, Z. B., et al. Trauma induced acute kidney injury. Plos One. 14 (1), 0211001 (2019).
  4. Lai, W. H., et al. Post-traumatic acute kidney injury: a cross-sectional study of trauma patients. Scandinavian Journal of Trauma, Resuscitation and Emergency Medicine. 24 (1), 136 (2016).
  5. Khwaja, A. KDIGO clinical practice guidelines for acute kidney injury. Nephron Clinical Practice. 120 (4), 179-184 (2012).
  6. Saour, M., et al. Assessment of modification of diet in renal disease equation to predict reference serum creatinine value in severe trauma patients: Lessons from an observational study of 775 cases. Annals of Surgery. 263 (4), 814-820 (2016).
  7. Ostermann, M., Joannidis, M. Acute kidney injury 2016: diagnosis and diagnostic workup. Critical Care. 20 (1), 299 (2016).
  8. Koeze, J., et al. Incidence, timing and outcome of AKI in critically ill patients varies with the definition used and the addition of urine output criteria. BMC Nephrology. 18 (1), 70 (2017).
  9. Ralib, A., Pickering, J. W., Shaw, G. M., Endre, Z. H. The urine output definition of acute kidney injury is too liberal. Critical Care. 17 (3), 112 (2013).
  10. Ostermann, M. Diagnosis of acute kidney injury: Kidney disease improving global outcomes criteria and beyond. Current Opinion Critical Care. 20 (6), 581-587 (2014).
  11. Harrois, A., Libert, N., Duranteau, J. Acute kidney injury in trauma patients. Current Opinion Critical Care. 23 (6), 447-456 (2017).
  12. Ow, C. P. C., Ngo, J. P., Ullah, M. M., Hilliard, L. M., Evans, R. G. Renal hypoxia in kidney disease: Cause or consequence. Acta Physiologica. 222 (4), 12999 (2018).
  13. Leonhardt, K. O., Landes, R. R., McCauley, R. T. Anatomy and physiology of intrarenal oxygen tension: Preliminary study of the effets of anesthetics. Anesthesiology. 26 (5), 648-658 (1965).
  14. Stafford-Smith, M., Grocott, H. P. Renal medullary hypoxia during experimental cardiopulmonary bypass: a pilot study. Perfusion. 20 (1), 53-58 (2005).
  15. Kitashiro, S., et al. Monitoring urine oxygen tension during acute change in cardiac output in dogs. Journal of Applied Physiology. 79 (1), 202-204 (1995).
  16. Sgouralis, I., et al. Bladder urine oxygen tension for assessing renal medullary oxygenation in rabbits: experimental and modeling studies. American Journal of Physiology. Regulatory, Integrative, and Comparative Physiology. 311 (3), 532-544 (2016).
  17. Kainuma, M., Kimura, N., Shimada, Y. Effect of acute changes in renal arterial blood flow on urine oxygen tension in dogs. Critical Care Medicine. 18 (3), 309-312 (1990).
  18. Zhu, M. Z. L., et al. Urinary hypoxia: an intraoperative marker of risk of cardiac surgery-associated acute kidney injury. Nephrology Dialysis Transplantation. 33 (12), 2191-2201 (2018).
  19. Silverton, N. A., et al. Noninvasive urine oxygen monitoring and the risk of acute kidney injury in cardiac surgery. Anesthesiology. 135 (3), 406-418 (2021).
  20. Lankadeva, Y. R., et al. Intrarenal and urinary oxygenation during norepinephrine resuscitation in ovine septic acute kidney injury. Kidney International. 90 (1), 100-108 (2016).
  21. Evans, R. G., et al. Renal hemodynamics and oxygenation during experimental cardiopulmonary bypass in sheep under total intravenous anesthesia. American Journal of Physiology. Regulatory, Integrative, and Comparative Physiology. 318 (2), 206-213 (2020).
  22. Sgouralis, I., Evans, R. G., Layton, A. T. Renal medullary and urinary oxygen tension during cardiopulmonary bypass in the rat. Mathematical Medicine and Biology. 34 (3), 313-333 (2017).
  23. Lankadeva, Y. R., Kosaka, J., Evans, R. G., Bellomo, R., May, C. N. Urinary oxygenation as a surrogate measure of medullary oxygenation during angiotensin II therapy in septic acute kidney injury. Critical Care Medicine. 46 (1), 41-48 (2018).
  24. Ngo, J. P., et al. Factors that confound the prediction of renal medullary oxygenation and risk of acute kidney injury from measurement of bladder urine oxygen tension. Acta Physiologica. 227 (1), 13294 (2019).
  25. Spahn, D. R., et al. The European guideline on management of major bleeding and coagulopathy following trauma: fifth edition. Critical Care. 23 (1), 98 (2019).
  26. Legrand, M., et al. Fluid resuscitation does not improve renal oxygenation during hemorrhagic shock in rats. Anesthesiology. 112 (1), 119-127 (2010).
  27. Badin, J., et al. Relation between mean arterial pressure and renal function in the early phase of shock: a prospective, explorative cohort study. Critical Care. 15 (3), 135 (2011).
  28. Ribeiro Junio, M. A. F., et al. The complications associated with resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA). World Journal of Emergency Surgery. 13, 20 (2018).

Tags

Bioengineering Nummer 188

Erratum

Formal Correction: Erratum: Noninvasive and Invasive Renal Hypoxia Monitoring in a Porcine Model of Hemorrhagic Shock
Posted by JoVE Editors on 05/09/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: Noninvasive and Invasive Renal Hypoxia Monitoring in a Porcine Model of Hemorrhagic Shock. The Protocol section was updated.

Step 2.3.1 - 2.3.1.2 of the Protocol was updated from:

  1. Measure PuO2 in the bladder.
    1. Remove all air from the bladder by slowly squeezing the bladder while ensuring urine does not leak out.
    2. Place the tip of the luminescence quenching-based PuO2 sensor in the bladder via a cystotomy, similar to the catheter.
    3. Connect the fiber optic cable from the bladder sensor to the data collection device.

to:

  1.  Measure PuO2 at the outlet of the bladder
    1. Identify the balloon on the catheter. Just below the balloon make an incision along the long axis of the catheter, ensuring that you do not cut the lumen that connects to the balloon. 
    2. After making the incision, insert a t-connector that contains the sensing material into the incision. 
    3. Use tissue glue to secure the t-connector in place. 
    4. Connect the fiber optic cable from the bladder data collection device to the connector that contains the sensing material. 

Step 2.3.2.2 - 2.3.2.7 of the Protocol was updated from:

  1. Make a flank incision large enough to expose the kidney (approx. 2-3 in) on the side of the pig at approximately the same location where the kidney was identified.
  2. With the tips of a retractor together, introduce the retractor into the incision and then spread the tips of the retractor to expose the kidney.
  3. Use a micro-manipulator or similar tool to hold the oxygen probe steady. If possible, attach this tool to the end of an articulating arm.
  4. Attach the other end of the articulating arm to the surgical table so that the other end that will hold the oxygen probe is near the opened incision. If the tool that is used to hold the oxygen probe is not connected to an articulating arm, position the tool so the oxygen sensor is near the opened incision and is stable.
  5. Unlock all articulating joints of the arm. Using ultrasound, place the tip of the oxygen probe in the medulla region of the kidney. Lock all articulating joints on the arm.
  6. After confirming placement of the tip of the sensor in the medulla with ultrasound, use the micromanipulator to retract the needle housing the luminescence-based oxygen sensor. Connect the other end of the sensor to the data collection device connected to the computer running the data collection software. Start recording.

to:

  1. Move the bowel so that you have a clear line of site and access to the entire kidney. 
  2. Insert the sensor into 2" 18 gauge catheter. Adjust the luer lock connector on the sensor so that the tip of the sensor is exposed. Remove the catheter and place it over an 18 gauge needle.
  3. Place the 18 gauge needle and 2 in catheter into the renal medulla under ultrasound guidance.
  4. Remove the needle, keeping the catheter in place. Thread the tissue sensor through the catheter and use the luer lock to connect the sensor to the catheter. 
  5. Use tissue glue to secure the catheter in place. 
  6. Connect the tissue sensor to the data collection box.

The Table of Materials was updated from:

Name Company Catalog Number Comments
1/8" PVC tubing Qosina SKU: T4307 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/16" PVC tubing Qosina SKU: T4310 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/32" (1), 1/8" (1), 5/32" (1) drill bit Dewalt N/A For building noninvasive PuO2 monitor
3/8" TPE tubing  Qosina SKU: T2204 Part of noninvasive PuO2 monitor
Biocompatible Glue Masterbond EP30MED Part of noninvasive PuO2 monitor
Bladder oxygen measurement device Presens Fibox 4 Stand-alone fiber optic oxygen meter
Bladder PuO2 sensor Presens DP-PSt3 Oxygen dipping probe
Chlorhexidine 4% scrub Vetone N/A For scrubbing insertion or puncture sites
Conical connector with female luer lock Qosina SKU: 51500 Part of noninvasive PuO2 monitor
Cuffed endotracheal tube Vetone 600508 For sedating the subject and providing respiratory support
Euthanasia solution (pentobarbital sodium|pheyntoin sodium) Vetone 11168 For euthanasia after completion of experiment
General purpose temperature probe, 400 series thermistor Novamed 10-1610-040 Part of noninvasive PuO2 monitor
Hemmtop Magic Arm 11 inch Amazon B08JTZRKYN Holding invasive oxygen sensor in place
HotDog veterinary warming system HotDog V106 For controlling subject temperature during experiment
Invasive tissue oxygen measurement device Presens Oxy-1 ST  Compact oxygen transmitter
Invasive tissue oxygen sensor Presens PM-PSt7 Profiling oxygen microsensor
Isoflurane Vetone 501017 To maintain sedation throughout the experiment
Isotonic crystalloid solution HenrySchein 1537930 or 1534612 Used during resuscitation in the critical care period
Liquid flow sensor Sensirion LD20-2600B Part of noninvasive PuO2 monitor
Male luer lock to barb connector Qosina SKU: 11549 Part of noninvasive PuO2 monitor
Male to male luer connector Qosina SKU: 20024 Part of noninvasive PuO2 monitor
Noninvasive oxygen measurement device Presens EOM-O2-mini Electro optical module transmitter for contactless oxygen measurements
Non-vented male luer lock cap Qosina SKU: 65418 Part of noninvasive PuO2 monitor
Norepinephrine HenrySchein AIN00610 Infusion during resuscitation
O2 sensor stick Presens SST-PSt3-YOP Part of noninvasive PuO2 monitor
PowerLab data acquisition platform AD Instruments N/A For data collection
REBOA catheter Certus Critical Care N/A Used in experimental protocol
Super Sheath arterial catheters (5 Fr, 7 Fr, 9 Fr) Boston Scientific C1894 For intravascular access
Suture Ethicon C013D For securing catheter to skin and closing incisions
T connector, all female luer locks Qosina SKU: 88214 Part of noninvasive PuO2 monitor

to:

Name Company Catalog Number Comments
1/8" PVC tubing Qosina SKU: T4307 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/16" PVC tubing Qosina SKU: T4310 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/8" TPE tubing  Qosina SKU: T2204 Part of noninvasive PuO2 monitor
3/32" (1), 1/8" (1), 5/32" (1) drill bit Dewalt N/A For building noninvasive PuO2 monitor
Biocompatible Glue Masterbond EP30MED Part of noninvasive PuO2 monitor
Bladder PuO2 sensor Presens DP-PSt3 Oxygen dipping probe
Bladder oxygen measurement device Presens Fibox 4 Stand-alone fiber optic oxygen meter
Chlorhexidine 4% scrub Vetone N/A For scrubbing insertion or puncture sites
Conical connector with female luer lock Qosina SKU: 51500 Part of noninvasive PuO2 monitor
Cuffed endotracheal tube Vetone 600508 For sedating the subject and providing respiratory support
Euthanasia solution (pentobarbital sodium|pheyntoin sodium) Vetone 11168 For euthanasia after completion of experiment
General purpose temperature probe, 400 series thermistor Novamed 10-1610-040 Part of noninvasive PuO2 monitor
HotDog veterinary warming system HotDog V106 For controlling subject temperature during experiment
Invasive tissue oxygen measurement device Optronix N/A OxyLite™ oxygen monitors
Invasive tissue oxygen sensor Optronix NX-BF/OT/E Oxygen/Temperature bare-fibre sensor
Isoflurane Vetone 501017 To maintain sedation throughout the experiment
Isotonic crystalloid solution HenrySchein 1537930 or 1534612 Used during resuscitation in the critical care period
Liquid flow sensor Sensirion LD20-2600B Part of noninvasive PuO2 monitor
Male luer lock to barb connector Qosina SKU: 11549 Part of noninvasive PuO2 monitor
Male to male luer connector Qosina SKU: 20024 Part of noninvasive PuO2 monitor
Norepinephrine HenrySchein AIN00610 Infusion during resuscitation
Noninvasive oxygen measurement device Presens EOM-O2-mini Electro optical module transmitter for contactless oxygen measurements
Non-vented male luer lock cap  Qosina SKU: 65418 Part of noninvasive PuO2 monitor
O2 sensor stick Presens SST-PSt3-YOP Part of noninvasive PuO2 monitor
PowerLab data acquisition platform AD Instruments N/A For data collection
REBOA catheter Certus Critical Care N/A Used in experimental protocol
Super Sheath arterial catheters (5 Fr, 7 Fr, 9 Fr) Boston Scientific C1894 for intravascular access
Suture Ethicon C013D For securing catheter to skin and closing incisions
T connector, all female luer locks Qosina SKU: 88214 Part of noninvasive PuO2 monitor
Niet-invasieve en invasieve renale hypoxiemonitoring in een varkensmodel van hemorragische shock
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Lofgren, L. R., Hoareau, G. L.,… More

Lofgren, L. R., Hoareau, G. L., Kuck, K., Silverton, N. A. Noninvasive and Invasive Renal Hypoxia Monitoring in a Porcine Model of Hemorrhagic Shock. J. Vis. Exp. (188), e64461, doi:10.3791/64461 (2022).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter