Summary
Un modèle animal d’hypoparathyroïdie acquise (HypoPT) est crucial pour comprendre comment HypoPT affecte l’homéostasie des ions minéraux et pour vérifier l’efficacité des nouveaux traitements. Ici, une technique est présentée pour générer un modèle d’hypoparathyroïdie acquise (AHypoPT) chez le rat par parathyroïdectomie (PTX) en utilisant des nanoparticules de carbone.
Abstract
L’hypoparathyroïdie (HypoPT) est une maladie rare impliquant les glandes parathyroïdes qui se caractérise par une sécrétion ou une puissance réduite de l’hormone parathyroïdienne (PTH), ce qui entraîne des taux élevés de phosphore sérique et de faibles taux de calcium sérique. L’hypoPT résulte le plus souvent de dommages accidentels aux glandes ou de leur retrait lors d’une chirurgie thyroïdienne ou d’une autre chirurgie antérieure du cou. La chirurgie parathyroïdienne / thyroïdienne est devenue plus fréquente ces dernières années, avec une augmentation correspondante de la survenue de HypoPT en tant que complication postopératoire. Il existe un besoin critique d’un modèle animal HypoPT pour mieux comprendre les mécanismes sous-jacents aux effets de HypoPT sur l’homéostasie des ions minéraux et pour vérifier l’efficacité thérapeutique des nouveaux traitements. Ici, une technique est rapportée pour créer l’hypoPT acquis chez les rats mâles en effectuant une parathyroïdectomie (PTX) en utilisant des nanoparticules de carbone. Le modèle du rat est très prometteur par rapport aux modèles murins d’hypoparathyroïdie. Il est important de noter que la région de liaison au récepteur PTH humain présente une similitude de séquence de 84,2% avec celle du rat, ce qui est supérieur à la similitude de 73,7% partagée avec les souris. De plus, les effets des œstrogènes, qui peuvent affecter la voie de signalisation des récepteurs PTH/PTHrP, n’ont pas été pleinement étudiés chez les rats mâles. Les nanoparticules de carbone sont des traceurs lymphatiques qui colorent les ganglions lymphatiques thyroïdiens en noir sans affecter leur fonction, mais elles ne colorent pas les glandes parathyroïdes, ce qui les rend faciles à identifier et à enlever. Dans cette étude, les taux sériques de PTH étaient indétectables après PTX, ce qui a entraîné une hypocalcémie et une hyperphosphatémie significatives. Ainsi, l’état clinique de l’hypoPT postopératoire peut être remarquablement représenté dans le modèle du rat. Le PTX assisté par nanoparticules de carbone peut donc servir de modèle extraordinairement efficace et facilement réalisable pour étudier la pathogenèse, le traitement et le pronostic de l’hypoPT.
Introduction
L’hormone parathyroïdienne (PTH) est sécrétée par les glandes parathyroïdes. C’est un modulateur majeur de l’équilibre calcique, maintient le métabolisme du phosphate, et participe au renouvellement osseux 1,2. L’hypoparathyroïdie (HypoPT) se manifeste par une diminution de la sécrétion ou une perte fonctionnelle de PTH. Il s’agit d’une maladie endocrinienne rare, avec une prévalence d’environ 9 à 37 pour 100 000 années-personnes 3,4,5. HypoPT est caractérisé par une diminution des taux sériques de PTH et de calcium accompagnée d’une augmentation du phosphore sérique 6,7. L’hypoPT est classée en fonction de sa cause : hypoparathyroïdie acquise (AHypoPT) ou hypoparathyroïdie idiopathique (IHypoPT)8. L’AHypoPT est plus fréquemment rencontré dans la pratique clinique; environ 75% des cas d’AHypoPT sont causés par une résection ou une blessure accidentelle des glandes parathyroïdes lors d’une chirurgie de la thyroïde ou d’autres chirurgies de la tête et du cou. D’autres causes comprennent la radiothérapie et la chimiothérapie pour les tumeurs de la tête et du cou et la toxicité des médicaments 1,8. L’amélioration des méthodes de diagnostic et l’augmentation du dépistage des maladies associées à la glande thyroïde ont augmenté le nombre d’opérations chirurgicales de la glande thyroïde. Cela a conduit à une augmentation correspondantedes complications de la glande parathyroïde 9,10.
Des modèles animaux faciles à établir avec des caractéristiques stables sont nécessaires pour mieux étudier l’AHypoPT et vérifier l’efficacité thérapeutique des nouveaux traitements. La parathyroïdectomie (PTX) pratiquée sur des rats et des souris a été rapportée dans des études antérieures 6,11; Cependant, en raison de la taille extrêmement petite des glandes parathyroïdes et de la variabilité de leur distribution anatomique, le taux de réussite est relativement faible dans la pratique. Ainsi, la thyro-parathyroïdectomie (TPTX) (c’est-à-dire l’ablation totale de la thyroïde et des glandes parathyroïdes) est généralement réalisée pour assurer la résection des glandes parathyroïdes12. Cependant, les faibles niveaux de thyroxine qui en résultent peuvent compliquer les études avec ce modèle animal13. Les modèles hypoPT établis par d’autres méthodes, telles que la stimulation médicamenteuse et l’édition de gènes, ne peuvent pas représenter correctement la pathogenèse AHypoPT la plus courante. Notre groupe a précédemment utilisé des modèles de souris knockout pour marquer les glandes parathyroïdes et permettre l’ablation des glandes parathyroïdes sans endommager les glandes thyroïdes et les structures anatomiques environnantes14,15. Cependant, cette méthode utilise des modèles de souris transgéniques, qui nécessitent un temps de développement plus long en raison des exigences d’accouplement et de reproduction.
Par conséquent, nous avons cherché à établir un modèle facile à générer d’AHypoPT. Cette étude décrit un modèle de rat pour PTX utilisant le marquage des nanoparticules de carbone. Une suspension de nanoparticules de carbone de 50 mg/mL, couramment utilisée en chirurgie de la thyroïde, se répartit uniformément dans les glandes thyroïdes après injection locale16. Les glandes thyroïdes deviennent noires, mais les glandes parathyroïdes ne sont pas tachées17, ce qui distingue clairement les glandes parathyroïdes des glandes thyroïdes et permet d’effectuer le PTX sans affecter les glandes thyroïdes. Cette méthode convient aux rats d’âges différents. L’injection de la suspension de nanoparticules de carbone est sûre et a un effet négligeable sur la fonction thyroïdienne18. Le modèle de rat PTX marqué par des nanoparticules de carbone généré dans cette étude a montré des phénotypes significatifs d’hypocalcémie et d’hyperphosphatémie au cours de la période d’observation de 4 semaines. Ainsi, ce modèle AHypoPT est facile à établir et possède un phénotype reproductible.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Cette étude a été approuvée par le Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux du Laboratoire clé d’État des maladies bucco-dentaires de l’Université du Sichuan. L’autorisation a été obtenue auprès des agences locales compétentes avant l’expérience. Huit rats Sprague-Dawley (SD) mâles âgés de 8 à 10 semaines, pesant en moyenne entre 200 et 250 g, ont été utilisés pour la présente étude. Les animaux ont été obtenus d’une source commerciale (voir le tableau des matériaux). De la nourriture et de l’eau ont été fournies ad libitum tout au long de la période expérimentale.
1. Préparation préopératoire pour la génération de rats PTX assistés par nanoparticules de carbone
- Anesthésier les rats âgés de 8 à 10 semaines en inhalant de l’isoflurane de 2,0 % à 2,5 %, suivie d’une injection intrapéritonéale (i.p.) de tribromoéthanol à 10 mL/kg de poids corporel. Garantir une profondeur d’anesthésie suffisante en testant l’absence du réflexe lumineux pupillaire. Utilisez une pommade vétérinaire sur les yeux pour prévenir la sécheresse sous anesthésie.
REMARQUE : Les rats âgés de 8 à 10 semaines sont reconnus comme des rats adultes. Cependant, cette méthode de modélisation peut être utilisée sur des rats dès l’âge de 7 jours. - Préparez les rats SD anesthésiés pour la chirurgie en rasant la fourrure de la région du cou ventral en décubitus dorsal. Désinfectez la zone opératoire à l’aide de boules de coton povidone iodée (voir le tableau des matières).
- Couvrez l’animal avec des champs chirurgicaux (voir le tableau des matériaux) et exposez la région chirurgicale, dans le but de minimiser la contamination microbienne.
2. Parathyroïdectomie (PTX)
- Commencez au milieu entre les deux oreilles et coupez une incision longitudinale de 2 cm vers la queue à l’aide d’un scalpel chirurgical. Disséquez successivement le fascia et la couche de graisse avec des pinces pointues, incurvées et dentelées.
- Séparez les muscles paratrachéaux et exposez la trachée à l’aide de pinces relativement émoussées sous un stéréomicroscope à un grossissement de 4x-5x.
- Localisez les lobes gauche et droit des glandes thyroïdes en forme de papillon sur le côté de la trachée.
- Injecter 1 μL de la suspension de nanoparticules de carbone (voir le tableau des matériaux) sous la membrane des glandes thyroïdes à l’aide d’une seringue de 10 μL avec une aiguille biseautée de 30 G. Après 5 min, irriguer la région opératoire avec une solution saline pour nettoyer la suspension de nanoparticules de carbone supplémentaire recouvrant la membrane de la glande thyroïde.
REMARQUE: Le point d’injection recommandé est la partie mésiale du lobe de la glande thyroïde, qui a moins de vaisseaux sanguins. Une suspension de nanoparticules de carbone est couramment utilisée en chirurgie de la thyroïde en raison de sa capacité à détecter les ganglions lymphatiques. La coloration des glandes thyroïdes et le fait de laisser les glandes parathyroïdes non tachées facilitent l’identification de ces dernières. - Vérifiez que les glandes thyroïdes deviennent noires alors que les glandes parathyroïdes restent non tachées en ~5 min. Observez les glandes parathyroïdes mises en évidence sous une lumière ordinaire à l’aide de la lumière d’un stéréomicroscope ou d’une lampe de table.
REMARQUE: En règle générale, les rongeurs ont deux glandes parathyroïdes en forme de goutte situées sur les surfaces gauche et droite des glandes thyroïdes. Parfois, des glandes parathyroïdes supplémentaires peuvent être situées plus loin. - Coupez précisément les glandes parathyroïdes non tachées avec des pinces microchirurgicales et des ciseaux. Utilisez des boules de coton stériles pour l’hémostase ou une éponge de gélatine s’il y a plus de saignements.
- Fermez les muscles, les couches de graisse et la peau, couche par couche, avec une suture horizontale interrompue du matelas à l’aide de sutures 6-0 polyglactin 910 (voir le tableau des matériaux).
- Pour le groupe fictif, effectuer toutes les étapes de la préparation préopératoire et du PTX à l’exception de l’étape 2.6. Anesthésiez les rats et séparez les tissus au-dessus de la trachée. Localisez les glandes parathyroïdes, mais ne les enlevez pas. Effectuer une récupération postopératoire et une observation avec les rats du groupe PTX.
3. Récupération postopératoire et observation
- Après la chirurgie, placez les rats sur une couverture électrique thermostatique (37 °C) pour maintenir leur température corporelle. Injecter du chlorhydrate de buprénorphine 0,01 mg/kg par voie sous-cutanée (s.c) toutes les 12 h comme analgésie postopératoire. Transférez les rats dans une cage stérile lorsqu’ils commencent à bouger et à essayer de ramper.
- Observez attentivement les rats postopératoirement pendant 2 h. Retournez les rats dans la salle d’élevage, observez-les régulièrement et notez leur état.
- Prélever 10 μL de sang de la veine de la queue 7 jours après la chirurgie. Mesurer le sérum Ca2+, le sérum Pi et le sérum PTH à l’aide de trousses commerciales appropriées (voir le tableau des matières). Une parathyroïdectomie réussie produit une séropositivité réduite de Ca2+ ionisée de niveau 2 SD inférieure à celle des rats opérés simulés (9,00 mmol / L, n = 16).
REMARQUE : Un logiciel de statistiques et de graphiques (voir le tableau des matières) a été utilisé pour l’analyse statistique. Un test t de Student a été utilisé pour comparer les paramètres sériques et urinaires entre les groupes simulé et PTX. p < 0,05 a été considéré comme statistiquement significatif. Les Ca2+ et Pi sériques et urinaires ainsi que l’urée sérique et la créatinine ont été mesurées à l’aide de trousses commerciales conformément aux instructions du fabricant (voir le tableau des matériaux). Le sérique C-télopeptide de collagène de type I et d’ostéocalcine a été mesuré avec des trousses ELISA disponibles dans le commerce (voir le tableau des matériaux).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Les emplacements et le nombre de glandes parathyroïdes ont été initialement observés chez le rat au microscope à dissection. Avant l’injection de nanoparticules de carbone, les glandes thyroïdes étaient de couleur rouge translucide et les glandes parathyroïdes étaient à peine distinguables au microscope (Figure 1A). Après l’injection de nanoparticules, les glandes thyroïdes étaient colorées en noir, tandis que les glandes parathyroïdes restaient non colorées (Figure 1B). La dissection minutieuse des glandes parathyroïdes de couleur claire a laissé les glandes thyroïdes intactes (Figure 1C). Généralement, les glandes parathyroïdes étaient réparties sur les bords latéraux ou postérieurs des glandes thyroïdes.
Figure 1: L’apparition de la thyroïde et des glandes parathyroïdes pendant les interventions chirurgicales. (A) Les glandes thyroïdes (ligne pointillée blanche) sont situées latéralement à la trachée. (B,C) Les glandes thyroïdes présentaient une coloration noire (ligne pointillée blanche) après l’injection des nanoparticules de carbone, tandis que les glandes parathyroïdes (ligne pointillée jaune) présentaient une couleur claire. Barres d’échelle = 2 mm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Le temps d’opération entre la préparation préopératoire et l’achèvement du PTX était d’environ 20 min. Le taux de survie à 4 semaines des rats postopératoires était de 90,9 % (60/66). On a observé que les rats PTX étaient bossus 1 semaine après la chirurgie. Un groupe témoin simulé a été établi simultanément en effectuant toutes les étapes du protocole, à l’exception de l’étape 2.6. Tous les rats PTX marqués aux nanoparticules de carbone survivants avaient un niveau moyen moyen de Ca2+ inférieur, qui était inférieur de 2 SD à celui du groupe opéré fictivement. Le phénotype de l’hypoparathyroïdie chez les rats PTX marqués aux nanoparticules de carbone, mis en évidence par une réduction du calcium sérique, un taux élevé de phosphate sérique et une PTH non détectée, est resté stable pendant la période de surveillance de 4 semaines.
7 jours après la chirurgie, les taux sériques de Ca 2+ et de PTH étaient significativement réduits chez les rats PTX par rapport au groupe placebo (Ca 2+ = 4,97 mmol/L ± 0,99 mmol/L vs 8,98 mmol/L ± 0,58 mmol/L, p < 0,05; RPGC = 13,13 pg/mL ± 6,58 v pg/mL s. 313,06 pg/mL ± 75,24 pg/mL, p < 0,05). L’augmentation sérique de Pi a augmenté de façon significative après la chirurgie PTX (Pi = 13,90 mmol/L ± 1,77 mmol/L contre 7,46 mmol/L ± 1,28 mmol/L). Les taux sériques d’urée et de créatinine étaient comparables entre les groupes placebo et PTX 7 jours après la chirurgie PTX (urée = 8,71 mmol/L ± 0,81 mmol/L contre 8,84 mmol/L ± 0,89 mmol/L, p > 0,05; créatinine = 49,03 μmol/L ± 13,14 μmol/L contre 53,15 μmol/L ± 18,28 μmol/L, p > 0,05). 14 jours après la chirurgie PTX, les taux urinaires de Ca 2+ et de Pi étaient significativement réduits (Ca 2+ = 2,33 mmol/L ± 0,53 mmol/L vs 7,18 mmol/L ±4,27 mmol/L, p < 0,05; Pi = 2,40 mmol/L ± 1,90 mmol/L vs 5,29 mmol/L ± 1,52 mmol/L, p < 0,05) (figure 2).
Figure 2 : Taux sériques de Ca 2+, Pi, PTH, urée et créatinine et taux urinaires de Ca2+ et de Pi après parathyroïdectomie assistée par nanoparticules de carbone. (A) Les rats PTX ont présenté une hypocalcémie et une hyperphosphatémie stables au cours de la période d’observation de 4 semaines (N = 4). (B) La PTH sérique était indétectable chez les rats PTX 7 jours après l’opération (N = 8). (C, D) Les taux sériques d’urée et de créatinine étaient comparables entre les groupes placebo et PTX 7 jours après la chirurgie (N = 5). (E,F) Les taux urinaires de Ca2+ et de Pi ont été significativement réduits 14 jours après la chirurgie PTX (N = 8). Les barres d’erreur indiquent l’écart type. Abréviations : PTX = parathyroïdectomie; Ca++ = calcium ionisé dans le sérum; PTH = hormone parathyroïdienne; Pi = phosphore ionisé dans le sérum. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Il n’y avait pas de différences significatives de poids corporel entre les groupes PTX et simulé le 7e jour postopératoire (POD7), POD14 et POD28 (poids corporel sur POD0 = 256,40 g ± 4,76 g vs 252,56 g ± 6,69 g, p > 0,05 ; poids corporel sur POD7 = 266,00 g ± 6,93 g vs 257,44 g ± 30,56 g, p > 0,05 ; poids corporel sur POD14 = 294,80 g ± 25,90 g contre 288,22 g ± 37,35 g, p > 0,05; poids corporel sur POD28 = 327,75 g ± 24,82 g vs 324,17 g ± 57,97 g, p > 0,05). De plus, le collagène C-télopeptide sérique de type I (CTX-1) a été statistiquement diminué sur POD28 (CTX-1 = 82,03 pg / mL ± 8,98 pg / mL contre 100,33 pg / mL ± 6,36 pg / mL, p < 0,05). L’ostéocalcine sérique n’a montré aucune différence significative sur la POD28 (ostéocalcine = 913,66 pg/mL ± 378,03 pg/mL vs 1066,17 pg/mL ± 549,80 pg/mL, p > 0,05) (Figure 3).
Figure 3 : Poids corporel, taux sanguin de collagène C de type I et taux d’ostéocalcine après parathyroïdectomie assistée par nanoparticules de carbone. (A) Il n’y avait pas de différences significatives de poids corporel entre les groupes PTX et simulé sur POD7, POD14 et POD28 (N = 14). (B) Les rats PTX ont présenté une diminution statistique du sérique C-télopeptide de type I collagène (N = 4). (C) Il n’y avait pas de différences significatives dans les taux sériques d’ostéocalcine (N = 5). Les barres d’erreur indiquent l’écart type. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Les rapports épidémiologiques indiquent que la détection des maladies thyroïdiennes a considérablement augmenté et que le nombre de chirurgies connexes effectuées a augmenté en conséquence19,20. Le taux d’incidence de l’hypoparathyroïdie postopératoire est d’environ 7,6 %8,21, tandis que la morbidité accrue de l’hypoparathyroïdie acquise a fait en sorte que cette maladie rare attire davantage l’attention de la recherche. Il est donc particulièrement important d’établir un modèle animal approprié pour étudier la pathogenèse de la maladie, ainsi que pour tester les résultats de nouveaux traitements thérapeutiques. Cependant, à l’heure actuelle, les modèles animaux disponibles sont limités. De plus, le taux de réussite, le taux de survie et la difficulté des interventions chirurgicales à produire de tels modèles restent problématiques. Notre groupe a déjà rapporté deux modèles HypoPT chez la souris. Chez les souris PTHcre+/Rosa-mTmG, les glandes parathyroïdes ont été marquées par fluorescence pour aider à disséquer avec précision les glandes parathyroïdes, et cette méthode a également été utile pour trouver des glandes parathyroïdes avec une distribution anatomique anormale afin d’améliorer le taux de réussite de la chirurgie14. Une autre approche de modélisation a utilisé des souris transgéniques, dans lesquelles les cellules de la glande parathyroïde pourraient être ciblées par la toxine diphtérique. Les glandes parathyroïdes pourraient alors être détruites par l’administration systémique de la toxine diphtérique sans nécessiter de chirurgie14,15. Cependant, les méthodes susmentionnées nécessitent un croisement approfondi de souris transgéniques, ce qui entraîne des exigences relativement élevées en termes de temps et de coûts. De plus, l’administration systémique de toxine diphtérique peut avoir des effets secondaires étendus. Actuellement, la thyro-parathyroïdectomie (TPTX) est la procédure habituelle effectuée pour assurer la résection des glandes parathyroïdes12. Bien que la technique soit facile à exécuter et ait un taux de réussite élevé, les dommages causés aux glandes thyroïdes ne peuvent être ignorés. L’impact potentiel d’une lésion ou d’une destruction des glandes thyroïdes sur les résultats expérimentaux pourrait être important, ce qui signifie qu’il s’agit d’une limitation majeure de toutes les études dans ce domaine21,22.
Dans la présente étude, une suspension de nanoparticules de carbone, couramment utilisée pour visualiser les glandes thyroïdes dans la pratique clinique, a été injectée pour améliorer la chirurgie PTX. Cette méthode est sûre, rapide et hautement réalisable. Il peut étiqueter efficacement les glandes thyroïdes avec une tache noire et laisser les glandes parathyroïdes non tachées, ce qui permet l’identification précise et la dissection des glandes parathyroïdes tout en évitant les blessures aux glandes thyroïdes. Cette méthode de marquage a le même effet que celle obtenue en utilisant le marquage fluorescent de souris transgéniques, mais n’est pas limitée par le génotype. De plus, le temps de chirurgie du PTX assisté par nanoparticules de carbone est d’environ 20 min, ce qui permet de gagner du temps par rapport à la chirurgie de 2 heures requise pour l’identification de la fluorescence 5-ALA23. De plus, en raison de la biosécurité des nanoparticules de carbone24, cette méthode de modélisation peut être utilisée sur des rats dès l’âge de 7 jours. Une étape critique à noter pendant la chirurgie est que le dosage de la suspension de nanoparticules de carbone peut être ajusté en fonction du poids des rats. Le volume de suspension de nanoparticules de carbone utilisé dans cette étude (1 μL) est suffisant pour la chirurgie sur des rats adultes, même si une certaine quantité est perdue dans la seringue. La distribution de toutes les glandes parathyroïdes est difficile à identifier pour les débutants, et beaucoup de pratique est recommandée.
La présente étude comporte certaines limites. Par exemple, il est impossible d’identifier les glandes parathyroïdes distantes non attachées à la thyroïde à l’aide de nanoparticules de carbone. Si les paramètres sériques restent inchangés après la chirurgie, cela peut indiquer que certaines glandes parathyroïdes éloignées étaient présentes et n’ont pas été enlevées. La période de coloration nécessaire à la différenciation et à l’identification optimales des glandes parathyroïdes n’a pas été mesurée; Cependant, les glandes thyroïdes ont été colorées correctement dans les 5 minutes suivant l’administration de nanoparticules et ont conservé la tache pendant toute la procédure chirurgicale. Le fonctionnement des glandes thyroïdes au cours de la période de suivi n’a pas été enregistré dans cette étude. Cependant, dans notre étude précédente, qui impliquait l’utilisation d’un modèle de souris transgénique pour identifier et éliminer les glandes parathyroïdes, il a été démontré que la fonction de la glande thyroïde était préservée15. La tolérance des rats aux nanoparticules de carbone n’a pas non plus été testée dans cette étude; Cependant, ces nanoparticules ont été utilisées commercialement comme produits pharmaceutiques dans les chirurgies cliniques16. Généralement, cette méthode permet aux chercheurs de choisir un animal avec un génotype et un point de temps d’opération souhaités. En fin de compte, cette approche devrait fournir des modèles utiles chez le rat pour l’hypoparathyroïdie acquise.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.
Acknowledgments
Ce travail a été soutenu par la subvention NSFC 81800928, le financement de la recherche de l’École / Hôpital de stomatologie de l’Université du Sichuan de Chine occidentale (No. RCDWJS2021-1) et la subvention de financement ouvert SKLOD-R013 du Laboratoire clé d’État des maladies bucco-dentaires.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.9% Sodium Chloride Solution | Kelun Co. Sichuan, China | ||
| 10 µL 30G NanoFil Syringe | WPI | ||
| 6-0 polyglactin 910 suture with needle | Ethicon, Inc | J510G | |
| Calcium LiquiColor test | EKF | 0155-225 | For Ca2+ analysis |
| Carbon Nanoparticles Suspension Injection | Lummy, Chongqing, China | H20073246 | 1 mL : 50 mg |
| Creatinine (Cr) Assay kit ( sarcosine oxidase ) | Jiancheng, Nanjing, China | C011-2-1 | For creatinine analysis |
| Disposable Scalpel | Shinva, China | ||
| Dumstar Biology forceps | Shinva, China | ||
| Micro Dissecting Spring Scissors | Shinva, China | ||
| MicroVue Rat intact PTH ELISA | Immunotopics | 30-2531 | For the measurement of PTH in rat serum |
| Needle Holder | Shinva, China | ||
| Phosphorus Liqui-UV test | EKF | 0830-125 | For Pi analysis |
| Ply gauze | Weian Co. Henan, China | ||
| Povidone-Iodine | Yongan pharmaceutical Co.Ltd. Chengdu, China | ||
| Prism 9.0 (statistics and graphing software) | GraphPad Software, Inc., San Diego, CA, USA | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | |
| Rat C-telopeptide of type I collagen (CTX-I) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E12776r | For CTX-I analysis |
| Rat Osteocalcin/Bone Gla Protein (OT/BGP) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E05129r | For osteocalcin analysis |
| Safety Single Edge Razor Blades | American Safety Razor Company | 66-0089 | |
| Sprague-Dawley Rats | 8 to 10 weeks old | ||
| Surgical Incise Drapes | Liangyou Co. Sichuan, China | ||
| Urea Assay Kit | Jiancheng, Nanjing, China | C013-2-1 | For urea analysis |
References
- Bilezikian, J. P., et al. Hypoparathyroidism in the adult: Epidemiology, diagnosis, pathophysiology, target-organ involvement, treatment, and challenges for future research. Journal of Bone and Mineral Research. 26 (10), 2317-2337 (2011).
- Bilezikian, J. P.
- Underbjerg, L., Sikjaer, T., Mosekilde, L., Rejnmark, L. Postsurgical hypoparathyroidism-Risk of fractures, psychiatric diseases, cancer, cataract, and infections. Journal of Bone and Mineral Research. 29 (11), 2504-2510 (2014).
- Underbjerg, L., Sikjaer, T., Mosekilde, L., Rejnmark, L. The epidemiology of nonsurgical hypoparathyroidism in Denmark: A nationwide case finding study. Journal of Bone and Mineral Research. 30 (9), 1738-1744 (2015).
- Astor, M. C., et al. Epidemiology and health-related quality of life in hypoparathyroidism in Norway. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 101 (8), 3045-3053 (2016).
- Rodriguez-Ortiz, M. E., et al. Calcium deficiency reduces circulating levels of FGF23. Journal of the American Society of Nephrology. 23 (7), 1190-1197 (2012).
- Davies, B. M., Gordon, A. H., Mussett, M. V. A plasma calcium assay for parathyroid hormone, using parathyroidectomized rats. The Journal of Physiology. 125 (2), 383-395 (1954).
- Clarke, B. L., et al.
- Liu, Y., Shan, Z. Expert consensus on diagnosis and treatment for elderly with thyroid diseases in China. Aging Medicine. 4 (2), 70-92 (2021).
- Sulejmanovic, M., Cickusic, A. J., Salkic, S., Bousbija, F. M. Annual incidence of thyroid disease in patients who first time visit department for thyroid diseases in Tuzla Canton. Materia Socio-Medica. 31 (2), 130-134 (2019).
- Liao, H. W., et al. Relationship between fibroblast growth factor 23 and biochemical and bone histomorphometric alterations in a chronic kidney disease rat model undergoing parathyroidectomy. PloS One. 10 (7), 0133278 (2015).
- Russell, P. S., Gittes, R. F. Parathyroid transplants in rats: A comparison of their survival time with that of skin grafts. The Journal of Experimental Medicine. 109 (6), 571-588 (1959).
- Sakai, A., et al. Osteoclast development in immobilized bone is suppressed by parathyroidectomy in mice. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 23 (1), 8-14 (2005).
- Bi, R., Fan, Y., Luo, E., Yuan, Q., Mannstadt, M. Two techniques to create hypoparathyroid mice: parathyroidectomy using GFP glands and diphtheria-toxin-mediated parathyroid ablation. Journal of Visualized Experiments. (121), e55010 (2017).
- Bi, R., et al. Diphtheria toxin- and GFP-based mouse models of acquired hypoparathyroidism and treatment with a long-acting parathyroid hormone analog. Journal of Bone and Mineral Research. 31 (5), 975-984 (2016).
- Huang, Y., et al. Carbon nanoparticles suspension injection for photothermal therapy of xenografted human thyroid carcinoma in vivo. MedComm. 1 (2), 202-210 (2020).
- Zhang, R. J., Chen, Y. L., Deng, X., Yang, H. Carbon nanoparticles for thyroidectomy and central lymph node dissection for thyroid cancer. The American Surgeon. , (2022).
- Long, M., et al. A carbon nanoparticle lymphatic tracer protected parathyroid glands during radical thyroidectomy for papillary thyroid non-microcarcinoma. Surgical Innovation. 24 (1), 29-34 (2017).
- Li, Y., et al. Efficacy and safety of long-term universal salt iodization on thyroid disorders: Epidemiological evidence from 31 provinces of mainland China. Thyroid. 30 (4), 568-579 (2020).
- Powers, J., Joy, K., Ruscio, A., Lagast, H. Prevalence and incidence of hypoparathyroidism in the United States using a large claims database. Journal of Bone and Mineral Research. 28 (12), 2570-2576 (2013).
- Zihao, N., et al. Promotion of allogeneic parathyroid cell transplantation in rats with hypoparathyroidism. Gland Surgery. 10 (12), 3403-3414 (2021).
- Goncu, B., et al. Xenotransplantation of microencapsulated parathyroid cells as a potential treatment for autoimmune-related hypoparathyroidism. Experimental and Clinical Transplantation. , (2021).
- Jung, S. Y., et al. Standardization of a physiologic hypoparathyroidism animal model. PLoS One. 11 (10), 0163911 (2016).
- Chen, W., Lv, Y., Xie, R., Xu, D., Yu, J. Application of lymphatic mapping to recognize and protect parathyroid in thyroid carcinoma surgery by using carbon nanoparticles. Journal of Clinical Otorhinolaryngology, Head, and Neck Surgery. 28 (24), 1918-1920 (1924).
