Summary
Животная модель приобретенного гипопаратиреоза (HypoPT) имеет решающее значение для понимания того, как HypoPT влияет на гомеостаз минеральных ионов, и для проверки эффективности новых методов лечения. Здесь представлена методика создания модели крысы с приобретенным гипопаратиреозом (AHypoPT) путем паратиреоидэктомии (PTX) с использованием углеродных наночастиц.
Abstract
Гипопаратиреоз (HypoPT) - это редкое заболевание, поражающее паращитовидные железы, которое характеризуется снижением секреции или активности паратиреоидного гормона (ПТГ), что приводит к высокому уровню фосфора в сыворотке и низкому уровню кальция в сыворотке. ГипоПТ чаще всего возникает в результате случайного повреждения желез или их удаления во время операций на щитовидной железе или других передних операциях на шее. Хирургия паращитовидных желез / щитовидной железы стала более распространенной в последние годы, с соответствующим увеличением частоты возникновения HypoPT в качестве послеоперационного осложнения. Существует острая необходимость в животной модели HypoPT, чтобы лучше понять механизмы, лежащие в основе воздействия HypoPT на гомеостаз минеральных ионов, и проверить терапевтическую эффективность новых методов лечения. Здесь сообщается о методе создания приобретенного HypoPT у самцов крыс путем выполнения паратиреоидэктомии (PTX) с использованием углеродных наночастиц. Крысиная модель показывает большие перспективы по сравнению с мышиными моделями гипопаратиреоза. Важно отметить, что область связывания рецептора ПТГ человека имеет сходство последовательности на 84,2% с таковой у крысы, что выше, чем сходство с мышами на 73,7%. Кроме того, эффекты эстрогена, которые могут влиять на сигнальный путь рецептора PTH/PTHrP, не были полностью исследованы у самцов крыс. Углеродные наночастицы представляют собой лимфатические индикаторы, которые окрашивают лимфатические узлы щитовидной железы в черный цвет, не влияя на их функцию, но они не окрашивают паращитовидные железы, что облегчает их идентификацию и удаление. В этом исследовании уровни ПТГ в сыворотке крови не определялись после PTX, и это приводило к значительной гипокальциемии и гиперфосфатемии. Таким образом, клиническое состояние послеоперационного ГипоПТ может быть замечательно представлено на крысиной модели. Таким образом, PTX с помощью углеродных наночастиц может служить чрезвычайно эффективной и легко реализуемой моделью для изучения патогенеза, лечения и прогноза HypoPT.
Introduction
Паратиреоидный гормон (ПТГ) секретируется паращитовидными железами. Он является основным модулятором кальциевого баланса, поддерживает фосфатный обмен и участвует в обновлении костной ткани 1,2. Гипопаратиреоз (HypoPT) проявляется снижением секреции или функциональной потерей ПТГ. Это редкое эндокринное заболевание с распространенностью примерно 9-37 на 100 000 человеко-лет 3,4,5. ГипоПТ характеризуется снижением уровня ПТГ и кальция в сыворотке, сопровождающимся повышением уровня фосфора в сывороткекрови 6,7. ГипоПТ классифицируется в зависимости от его причины: приобретенный гипопаратиреоз (AHypoPT) или идиопатический гипопаратиреоз (IHypoPT)8. AHypoPT чаще встречается в клинической практике; около 75% случаев AHypoPT вызваны резекцией или случайным повреждением паращитовидных желез во время операции на щитовидной железе или других операций на голове и шее. Другие причины включают лучевую терапию и химиотерапию опухолей головы и шеи и лекарственную токсичность 1,8. Совершенствование методов диагностики и расширение скрининга на заболевания щитовидной железы привели к увеличению количества хирургических операций на щитовидной железе. Это привело к соответствующему увеличению соответствующих осложнений со стороны паращитовидных желез 9,10.
Для лучшего исследования AHypoPT и проверки терапевтической эффективности новых методов лечения необходимы легко устанавливаемые модели животных со стабильными характеристиками. Паратиреоидэктомия (PTX), выполненная на крысах и мышах, была зарегистрирована в предыдущих исследованиях 6,11; Однако из-за чрезвычайно малых размеров паращитовидных желез и вариабельности их анатомического распределения вероятность успеха на практике относительно низкая. Таким образом, тиреопаратиреоидэктомия (TPTX) (т.е. полное удаление щитовидной и паращитовидных желез) обычно выполняется для обеспечения резекции паращитовидных желез12. Однако результирующий низкий уровень тироксина может осложнить исследования с этой животной моделью13. Модели HypoPT, созданные другими методами, такими как лекарственная стимуляция и редактирование генов, не могут должным образом представлять наиболее распространенный патогенез AHypoPT. Наша группа ранее использовала нокаутные мышиные модели для маркировки паращитовидных желез и позволяет удалять паращитовидные железы без повреждения щитовидной железы и окружающих анатомических структур14,15. Однако в этом методе используются модели трансгенных мышей, которые требуют более длительного времени развития из-за требований к спариванию и размножению.
Поэтому мы стремились создать легко генерируемую модель AHypoPT. В этом исследовании описывается модель крысы для PTX с использованием маркировки углеродными наночастицами. Суспензия углеродных наночастиц 50 мг/мл, которая обычно используется в хирургии щитовидной железы, равномерно распределяется в щитовидной железе после местной инъекции16. Щитовидная железа становится черной, но паращитовидные железы остаются неокрашенными17, что четко отличает паращитовидные железы от щитовидных желез и позволяет выполнять PTX, не затрагивая щитовидные железы. Этот способ подходит для крыс разного возраста. Инъекция суспензии углеродных наночастиц безопасна и оказывает незначительное влияние на функцию щитовидной железы18. Модель крыс PTX, меченная углеродными наночастицами, созданная в этом исследовании, показала значительные фенотипы гипокальциемии и гиперфосфатемии в течение 4-недельного периода наблюдения. Таким образом, эта модель AHypoPT проста в установлении и имеет воспроизводимый фенотип.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Это исследование было одобрено Институциональным комитетом по уходу за животными и их использованию в Государственной ключевой лаборатории заболеваний полости рта Сычуаньского университета. Перед экспериментом было получено разрешение от соответствующих местных агентств. Для настоящего исследования использовали восемь 8-10-недельных крыс-самцов Sprague-Dawley (SD) со средним весом 200-250 г. Животные были получены из коммерческого источника (см. Таблицу материалов). Пища и вода обеспечивались ad libitum на протяжении всего экспериментального периода.
1. Предоперационная подготовка к получению крыс PTX с помощью углеродных наночастиц
- Анестезируют 8-10-недельных крыс, используя ингаляцию изофлурана 2,0%-2,5% с последующей внутрибрюшинной (в/) инъекцией трибромэтанола в дозе 10 мл/кг массы тела. Гарантируйте достаточную глубину анестезии, проверив отсутствие зрачкового светового рефлекса. Используйте ветеринарную мазь на глазах, чтобы предотвратить сухость под наркозом.
ПРИМЕЧАНИЕ: Крысы в возрасте 8-10 недель признаются взрослыми крысами. Однако этот метод моделирования можно использовать на крысах в возрасте 7 дней. - Подготовьте анестезированных крыс SD к операции, сбрив шерсть вентральной области шеи в положении лежа на спине. Продезинфицируйте операционную зону с помощью ватных тампона повидон-йода (см. Таблицу материалов).
- Накройте животное хирургическими простынями (см. Таблицу материалов) и обнаживите хирургическую область, чтобы свести к минимуму микробное загрязнение.
2. Паратиреоидэктомия (PTX)
- Начните с середины между двумя ушами и сделайте разрез длиной 2 см в продольном направлении к хвосту с помощью хирургического скальпеля. Рассеките фасцию и жировой слой последовательно острыми, изогнутыми, зазубренными щипцами.
- Отделите паратрахеальные мышцы и обнажьте трахею с помощью относительно тупых щипцов под стереомикроскопом с 4-5-кратным увеличением.
- Найдите левую и правую доли щитовидной железы в форме бабочки сбоку от трахеи.
- Введите 1 мкл суспензии углеродных наночастиц (см. Таблицу материалов) под мембрану щитовидной железы с помощью шприца 10 мкл со скошенной иглой 30 г. Через 5 минут оросите операционную область физиологическим раствором, чтобы удалить лишнюю суспензию углеродных наночастиц, покрывающую мембрану щитовидной железы.
ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуемой точкой инъекции является мезиальная часть доли щитовидной железы, которая имеет меньше кровеносных сосудов. Суспензия углеродных наночастиц обычно используется в хирургии щитовидной железы из-за ее способности обнаруживать лимфатические узлы. Окрашивание щитовидной железы и оставление паращитовидных желез неокрашенными облегчает идентификацию последних. - Убедитесь, что щитовидная железа почернела, в то время как паращитовидные железы остаются неокрашенными в течение ~ 5 минут. Наблюдайте за выделенными паращитовидными железами при обычном освещении, используя свет стереомикроскопа или настольной лампы.
ПРИМЕЧАНИЕ: Как правило, грызуны имеют две каплевидные паращитовидные железы, расположенные на левой и правой поверхностях щитовидной железы. Иногда дополнительные паращитовидные железы могут быть расположены дальше. - Точно разрежьте неокрашенные паращитовидные железы микрохирургическими щипцами и ножницами. Используйте стерильные ватные тампоны для гемостаза или желатиновую губку, если кровотечение.
- Закройте мышцы, жировые слои и кожу, слой за слоем, прерывистым горизонтальным швом матраса с использованием швов полиглактина 910 6-0 (см. Таблицу материалов).
- Для фиктивной группы выполните все этапы предоперационной подготовки и PTX, кроме шага 2.6. Обезболивают крыс и отделяют ткани над трахеей. Найдите паращитовидные железы, но не удаляйте их. Проводят послеоперационное восстановление и наблюдение совместно с крысами группы ПТХ.
3. Послеоперационное восстановление и наблюдение
- После операции поместите крыс на термостатическое электрическое одеяло (37 ° C), чтобы поддерживать температуру их тела. Вводят бупренорфина гидрохлорид 0,01 мг/кг подкожно (/к) каждые 12 ч в качестве послеоперационной анальгезии. Переведите крыс в стерильную клетку, когда они начнут двигаться и пытаться ползать.
- Внимательно наблюдать за крысами после операции в течение 2 ч. Верните крыс в комнату для выращивания, регулярно наблюдайте за ними и записывайте их состояние.
- Возьмите 10 мкл крови из хвостовой вены через 7 дней после операции. Измерьте сыворотку Ca2+, сыворотку Pi и сывороточный ПТГ с помощью соответствующих коммерческих наборов (см. Таблицу материалов). Успешная паратиреоидэктомия приводит к снижению сывороточного ионизированного Ca2+ уровня 2 SD ниже, чем у фиктивных крыс (9,00 ммоль / л, n = 16).
ПРИМЕЧАНИЕ: Для статистического анализа использовалось программное обеспечение для статистики и построения графиков (см. Таблицу материалов). t-критерий Стьюдента использовался для сравнения параметров сыворотки и мочи между фиктивной и PTX-группами. p < 0,05 считался статистически значимым. Сыворотку и моче Ca2+ и Pi, а также мочевину и креатинин сыворотки измеряли с помощью коммерческих наборов в соответствии с инструкциями производителя (см. Таблицу материалов). Сывороточный С-телопептид коллагена I типа и остеокальцина измеряли с помощью коммерчески доступных наборов ИФА (см. Таблицу материалов).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Расположение и количество паращитовидных желез первоначально наблюдались у крыс под микроскопом вскрытия. До инъекции углеродных наночастиц щитовидная железа была полупрозрачного красного цвета, а паращитовидные железы были едва различимы под микроскопом (рис. 1А). После инъекции наночастиц щитовидная железа окрашивалась в черный цвет, в то время как паращитовидные железы оставались неокрашенными (рис. 1B). Тщательное вскрытие светлых паращитовидных желез оставило щитовидную железу нетронутой (рис. 1В). Как правило, паращитовидные железы были распределены по боковым или задним краям щитовидной железы.
Рисунок 1: Внешний вид щитовидной и паращитовидных желез во время хирургических процедур. (А) Щитовидная железа (белая пунктирная линия) расположена сбоку от трахеи. (В,В) Щитовидная железа показала черное окрашивание (белая пунктирная линия) после инъекции углеродных наночастиц, в то время как паращитовидные железы (желтая пунктирная линия) показали светлый цвет. Масштабные линейки = 2 мм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Время операции от предоперационной подготовки до завершения ПТХ составило около 20 минут. 4-недельная выживаемость послеоперационных крыс составила 90,9% (60/66). Крысы PTX были сгорблены через 1 неделю после операции. Одновременно была создана фиктивная контрольная группа, выполняющая все этапы протокола, за исключением шага 2.6. Все выжившие крысы PTX, меченные углеродными наночастицами, имели более низкий средний уровень ионизированного Ca2+ , который был на 2 SD ниже, чем у фиктивной группы. Фенотип гипопаратиреоза у крыс PTX, меченных углеродными наночастицами, о чем свидетельствует снижение уровня кальция в сыворотке, повышение уровня фосфата в сыворотке крови и необнаруженный ПТГ, оставался стабильным в течение 4-недельного периода мониторинга.
Через 7 дней после операции уровни Ca 2+ и ПТГ в сыворотке крови были значительно снижены у крыс с ПТХ по сравнению с фиктивной группой (Ca 2+ = 4,97 ммоль/л ± 0,99 ммоль/л против 8,98 ммоль/л ± 0,58 ммоль/л, p < 0,05; ПТГ = 13,13 пг/мл ± 6,58 пг/мл с. 313,06 пг/мл ± 75,24 пг/мл, p < 0,05). Сывороточный Pi был значительно увеличен после операции PTX (Pi = 13,90 ммоль/л ± 1,77 ммоль/л против 7,46 ммоль/л ± 1,28 ммоль/л). Уровни мочевины и креатинина в сыворотке крови были сопоставимы между фиктивной группой и группой PTX через 7 дней после операции PTX (мочевина = 8,71 ммоль/л ± 0,81 ммоль/л против 8,84 ммоль/л ± 0,89 ммоль/л, p > 0,05; креатинин = 49,03 мкмоль/л ± 13,14 мкмоль/л против 53,15 мкмоль/л ± 18,28 мкмоль/л, p > 0,05). Через 14 дней после операции PTX уровни Ca 2+ и Pi в моче были значительно снижены (Ca 2+ = 2,33 ммоль/л ± 0,53 ммоль/л против 7,18 ммоль/л ±4,27 ммоль/л, p < 0,05; Pi = 2,40 ммоль/л ± 1,90 ммоль/л против 5,29 ммоль/л ± 1,52 ммоль/л, p < 0,05) (рис. 2).
Рисунок 2: Уровни Ca 2+, Pi, ПТГ, мочевины и креатинина в сыворотке крови, а также уровни Ca2+ и Pi в моче после паратиреоидэктомии с помощью углеродных наночастиц. (A) У крыс PTX наблюдалась стабильная гипокальциемия и гиперфосфатемия в течение 4-недельного периода наблюдения (N = 4). (B) Сывороточный ПТГ не обнаруживался у крыс PTX через 7 дней после операции (N = 8). (С,Д) Уровни мочевины и креатинина в сыворотке крови были сопоставимы между фиктивной и PTX группами через 7 дней после операции (N = 5). (Е,Ж) Уровни Ca2+ и Pi в моче были значительно снижены через 14 дней после операции PTX (N = 8). Полосы погрешности указывают стандартное отклонение. Сокращения: PTX = паратиреоидэктомия; Ca++ = ионизированный кальций в сыворотке крови; ПТГ = паратиреоидный гормон; Pi = ионизированный фосфор в сыворотке. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Не было выявлено существенных различий в массе тела между группами PTX и фиктивными на 7-й день (POD7), POD14 и POD28 (масса тела на POD0 = 256,40 г ± 4,76 г против 252,56 г ± 6,69 г, p > 0,05; масса тела на POD7 = 266,00 г ± 6,93 г против 257,44 г ± 30,56 г, p > 0,05; масса тела на POD14 = 294,80 г ± 25,90 г против 288,22 г ± 37,35 г, р > 0,05; масса тела на POD28 = 327,75 г ± 24,82 г против 324,17 г ± 57,97 г, p > 0,05). Кроме того, сывороточный С-телопептид коллагена I типа (CTX-1) был статистически снижен на POD28 (CTX-1 = 82,03 пг/мл ± 8,98 пг/мл против 100,33 пг/мл ± 6,36 пг/мл, p < 0,05). Сывороточный остеокальцин не показал существенной разницы на POD28 (остеокальцин = 913,66 пг/мл ± 378,03 пг/мл против 1066,17 пг/мл ± 549,80 пг/мл, p > 0,05) (рис. 3).
Рисунок 3: Масса тела, уровень С-телопептида коллагена I типа в крови и остеокальцина после паратиреоидэктомии с помощью углеродных наночастиц. (A) Не было существенных различий в массе тела между PTX и фиктивными группами на POD7, POD14 и POD28 (N = 14). (B) У крыс PTX наблюдалось статистическое снижение сывороточного С-телопептида коллагена I типа (N = 4). (C) Не было существенных различий в уровнях остеокальцина в сыворотке крови (N = 5). Полосы погрешности указывают стандартное отклонение. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Эпидемиологические отчеты свидетельствуют о том, что выявление заболеваний щитовидной железы значительно возросло, а количество проведенных операций соответственно увеличилось на19,20. Частота послеоперационного гипопаратиреоза составляет примерно 7,6%8,21, в то время как повышенная заболеваемость приобретенным гипопаратиреозом привела к тому, что это редкое заболевание привлекло больше внимания исследователей. Поэтому особенно важно создать подходящую модель на животных для изучения патогенеза заболевания, а также для проверки результатов новых терапевтических методов лечения. Однако в настоящее время существует ограниченное количество доступных моделей животных. Более того, вероятность успеха, выживаемость и сложность хирургических процедур при создании таких моделей остаются проблематичными. Наша группа ранее сообщала о двух моделях HypoPT у мышей. У мышей PTHcre+/Rosa-mTmG паращитовидные железы были флуоресцентно помечены, чтобы помочь точно рассечь паращитовидные железы, и этот метод также был полезен для поиска паращитовидных желез с аномальным анатомическим распределением для повышения успешности операции14. В другом подходе к моделированию использовались трансгенные мыши, у которых клетки паращитовидных желез могли быть нацелены на дифтерийный токсин. Затем паращитовидные железы могут быть разрушены системным введением дифтерийного токсина без хирургического вмешательства14,15. Однако вышеупомянутые методы требуют обширного скрещивания трансгенных мышей, что приводит к относительно высоким требованиям по времени и стоимости. Более того, системное введение дифтерийного токсина может иметь широко распространенные побочные эффекты. В настоящее время тиреопаратиреоидэктомия (TPTX) является обычной процедурой, выполняемой для обеспечения резекции паращитовидных желез12. Несмотря на то, что техника легко выполняется и имеет высокий уровень успеха, повреждение щитовидной железы нельзя игнорировать. Потенциальное влияние повреждения или разрушения щитовидной железы на экспериментальные результаты может быть значительным, что означает, что это является основным ограничением всех исследований в этой области21,22.
В текущем исследовании суспензия углеродных наночастиц, обычно используемая для визуализации щитовидной железы в клинической практике, была введена для улучшения операции PTX. Этот метод безопасен, быстр и осуществим. Он может эффективно маркировать щитовидную железу черным пятном и оставлять паращитовидные железы неокрашенными, что позволяет точно идентифицировать и рассекать паращитовидные железы, избегая при этом повреждения щитовидной железы. Этот метод мечения имеет тот же эффект, что и тот, который достигается с использованием флуоресцентной маркировки трансгенных мышей, но не ограничен генотипом. Кроме того, время операции PTX с помощью углеродных наночастиц составляет около 20 минут, что экономит время по сравнению с 2-часовой операцией, необходимой для идентификации флуоресценции 5-ALA23. Кроме того, из-за биобезопасности углеродных наночастиц24 этот метод моделирования может быть использован на крысах в возрасте от 7 дней. Одним из важных шагов, на который следует обратить внимание во время операции, является то, что дозировка суспензии углеродных наночастиц может быть скорректирована в соответствии с весом крыс. Объем суспензии углеродных наночастиц, использованной в этом исследовании (1 мкл), достаточен для операции на взрослых крысах, даже если некоторое количество потеряно в шприце. Новичкам трудно определить распределение всех паращитовидных желез, и рекомендуется много практиковаться.
Нынешнее исследование имеет некоторые ограничения. Например, невозможно идентифицировать удаленные паращитовидные железы, не прикрепленные к щитовидной железе, с помощью углеродных наночастиц. Если параметры сыворотки остаются неизменными после операции, это может указывать на то, что некоторые удаленные паращитовидные железы присутствовали и не были удалены. Период окрашивания, необходимый для оптимальной дифференцировки и идентификации паращитовидных желез, не измерялся; Тем не менее, щитовидная железа была должным образом окрашена в течение 5 минут после введения наночастиц и сохраняла пятно в течение всей хирургической процедуры. Функционирование щитовидной железы в период наблюдения в данном исследовании не регистрировалось. Однако в нашем предыдущем исследовании, которое включало использование модели трансгенных мышей для идентификации и удаления паращитовидных желез, было показано, что функция щитовидной железы сохраняется15. Толерантность крыс к углеродным наночастицам также не проверялась в этом исследовании; Однако эти наночастицы коммерчески используются в качестве фармацевтических препаратов в клинических операциях16. Как правило, этот метод позволяет исследователям выбрать животное с желаемым генотипом и моментом времени операции. В конечном счете, ожидается, что этот подход обеспечит полезные модели приобретенного гипопаратиреоза на крысах.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.
Acknowledgments
Эта работа была поддержана грантом NSFC 81800928, финансированием исследований Западно-Китайской школы/больницы стоматологии Сычуаньского университета (No RCDWJS2021-1) и грантом открытого финансирования Государственной ключевой лаборатории заболеваний полости рта SKLOD-R013.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.9% Sodium Chloride Solution | Kelun Co. Sichuan, China | ||
| 10 µL 30G NanoFil Syringe | WPI | ||
| 6-0 polyglactin 910 suture with needle | Ethicon, Inc | J510G | |
| Calcium LiquiColor test | EKF | 0155-225 | For Ca2+ analysis |
| Carbon Nanoparticles Suspension Injection | Lummy, Chongqing, China | H20073246 | 1 mL : 50 mg |
| Creatinine (Cr) Assay kit ( sarcosine oxidase ) | Jiancheng, Nanjing, China | C011-2-1 | For creatinine analysis |
| Disposable Scalpel | Shinva, China | ||
| Dumstar Biology forceps | Shinva, China | ||
| Micro Dissecting Spring Scissors | Shinva, China | ||
| MicroVue Rat intact PTH ELISA | Immunotopics | 30-2531 | For the measurement of PTH in rat serum |
| Needle Holder | Shinva, China | ||
| Phosphorus Liqui-UV test | EKF | 0830-125 | For Pi analysis |
| Ply gauze | Weian Co. Henan, China | ||
| Povidone-Iodine | Yongan pharmaceutical Co.Ltd. Chengdu, China | ||
| Prism 9.0 (statistics and graphing software) | GraphPad Software, Inc., San Diego, CA, USA | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | |
| Rat C-telopeptide of type I collagen (CTX-I) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E12776r | For CTX-I analysis |
| Rat Osteocalcin/Bone Gla Protein (OT/BGP) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E05129r | For osteocalcin analysis |
| Safety Single Edge Razor Blades | American Safety Razor Company | 66-0089 | |
| Sprague-Dawley Rats | 8 to 10 weeks old | ||
| Surgical Incise Drapes | Liangyou Co. Sichuan, China | ||
| Urea Assay Kit | Jiancheng, Nanjing, China | C013-2-1 | For urea analysis |
References
- Bilezikian, J. P., et al. Hypoparathyroidism in the adult: Epidemiology, diagnosis, pathophysiology, target-organ involvement, treatment, and challenges for future research. Journal of Bone and Mineral Research. 26 (10), 2317-2337 (2011).
- Bilezikian, J. P.
- Underbjerg, L., Sikjaer, T., Mosekilde, L., Rejnmark, L. Postsurgical hypoparathyroidism-Risk of fractures, psychiatric diseases, cancer, cataract, and infections. Journal of Bone and Mineral Research. 29 (11), 2504-2510 (2014).
- Underbjerg, L., Sikjaer, T., Mosekilde, L., Rejnmark, L. The epidemiology of nonsurgical hypoparathyroidism in Denmark: A nationwide case finding study. Journal of Bone and Mineral Research. 30 (9), 1738-1744 (2015).
- Astor, M. C., et al. Epidemiology and health-related quality of life in hypoparathyroidism in Norway. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 101 (8), 3045-3053 (2016).
- Rodriguez-Ortiz, M. E., et al. Calcium deficiency reduces circulating levels of FGF23. Journal of the American Society of Nephrology. 23 (7), 1190-1197 (2012).
- Davies, B. M., Gordon, A. H., Mussett, M. V. A plasma calcium assay for parathyroid hormone, using parathyroidectomized rats. The Journal of Physiology. 125 (2), 383-395 (1954).
- Clarke, B. L., et al.
- Liu, Y., Shan, Z. Expert consensus on diagnosis and treatment for elderly with thyroid diseases in China. Aging Medicine. 4 (2), 70-92 (2021).
- Sulejmanovic, M., Cickusic, A. J., Salkic, S., Bousbija, F. M. Annual incidence of thyroid disease in patients who first time visit department for thyroid diseases in Tuzla Canton. Materia Socio-Medica. 31 (2), 130-134 (2019).
- Liao, H. W., et al. Relationship between fibroblast growth factor 23 and biochemical and bone histomorphometric alterations in a chronic kidney disease rat model undergoing parathyroidectomy. PloS One. 10 (7), 0133278 (2015).
- Russell, P. S., Gittes, R. F. Parathyroid transplants in rats: A comparison of their survival time with that of skin grafts. The Journal of Experimental Medicine. 109 (6), 571-588 (1959).
- Sakai, A., et al. Osteoclast development in immobilized bone is suppressed by parathyroidectomy in mice. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 23 (1), 8-14 (2005).
- Bi, R., Fan, Y., Luo, E., Yuan, Q., Mannstadt, M. Two techniques to create hypoparathyroid mice: parathyroidectomy using GFP glands and diphtheria-toxin-mediated parathyroid ablation. Journal of Visualized Experiments. (121), e55010 (2017).
- Bi, R., et al. Diphtheria toxin- and GFP-based mouse models of acquired hypoparathyroidism and treatment with a long-acting parathyroid hormone analog. Journal of Bone and Mineral Research. 31 (5), 975-984 (2016).
- Huang, Y., et al. Carbon nanoparticles suspension injection for photothermal therapy of xenografted human thyroid carcinoma in vivo. MedComm. 1 (2), 202-210 (2020).
- Zhang, R. J., Chen, Y. L., Deng, X., Yang, H. Carbon nanoparticles for thyroidectomy and central lymph node dissection for thyroid cancer. The American Surgeon. , (2022).
- Long, M., et al. A carbon nanoparticle lymphatic tracer protected parathyroid glands during radical thyroidectomy for papillary thyroid non-microcarcinoma. Surgical Innovation. 24 (1), 29-34 (2017).
- Li, Y., et al. Efficacy and safety of long-term universal salt iodization on thyroid disorders: Epidemiological evidence from 31 provinces of mainland China. Thyroid. 30 (4), 568-579 (2020).
- Powers, J., Joy, K., Ruscio, A., Lagast, H. Prevalence and incidence of hypoparathyroidism in the United States using a large claims database. Journal of Bone and Mineral Research. 28 (12), 2570-2576 (2013).
- Zihao, N., et al. Promotion of allogeneic parathyroid cell transplantation in rats with hypoparathyroidism. Gland Surgery. 10 (12), 3403-3414 (2021).
- Goncu, B., et al. Xenotransplantation of microencapsulated parathyroid cells as a potential treatment for autoimmune-related hypoparathyroidism. Experimental and Clinical Transplantation. , (2021).
- Jung, S. Y., et al. Standardization of a physiologic hypoparathyroidism animal model. PLoS One. 11 (10), 0163911 (2016).
- Chen, W., Lv, Y., Xie, R., Xu, D., Yu, J. Application of lymphatic mapping to recognize and protect parathyroid in thyroid carcinoma surgery by using carbon nanoparticles. Journal of Clinical Otorhinolaryngology, Head, and Neck Surgery. 28 (24), 1918-1920 (1924).
