Summary
Um modelo animal de hipoparatireoidismo adquirido (HypoPT) é crucial para entender como o HypoPT afeta a homeostase de íons minerais e para verificar a eficácia de novos tratamentos. Aqui, uma técnica é apresentada para gerar um modelo de hipoparatireoidismo adquirido (AHypoPT) em ratos por paratireoidectomia (PTX) usando nanopartículas de carbono.
Abstract
O hipoparatireoidismo (HypoPT) é uma doença rara que envolve as glândulas paratireoides, caracterizada por uma reduzida secreção ou potência do paratormônio (PTH), o que leva a níveis elevados de fósforo sérico e baixos níveis de cálcio sérico. O hipoTP resulta mais comumente de danos acidentais às glândulas ou sua remoção durante a cirurgia da tireoide ou outra cirurgia do pescoço anterior. A cirurgia de paratireoide/tireoide tornou-se mais comum nos últimos anos, com um aumento correspondente na ocorrência de HipoTP como complicação pós-operatória. Há uma necessidade crítica de um modelo animal de HypoPT para entender melhor os mecanismos subjacentes aos efeitos do HypoPT na homeostase de íons minerais e verificar a eficácia terapêutica de novos tratamentos. Aqui, uma técnica é relatada para criar HypoPT adquirido em ratos machos realizando paratireoidectomia (PTX) usando nanopartículas de carbono. O modelo de rato mostra-se muito promissor em relação aos modelos de camundongos de hipoparatireoidismo. É importante ressaltar que a região de ligação do receptor PTH humano tem uma similaridade de sequência de 84,2% com a do rato, que é maior do que a similaridade de 73,7% compartilhada com camundongos. Além disso, os efeitos do estrogênio, que podem afetar a via de sinalização do receptor PTH/PTHrP, não foram totalmente investigados em ratos machos. As nanopartículas de carbono são traçadores linfáticos que mancham os linfonodos da tireoide de preto sem afetar sua função, mas não mancham as glândulas paratireoides, o que as torna fáceis de identificar e remover. Neste estudo, os níveis séricos de PTH foram indetectáveis após PTX, o que resultou em hipocalcemia e hiperfosfatemia significativas. Assim, o estado clínico do HypoTP pós-operatório pode ser notavelmente representado no modelo de ratos. A PTX assistida por nanopartículas de carbono pode, portanto, servir como um modelo extraordinariamente eficaz e prontamente implementável para estudar a patogênese, o tratamento e o prognóstico da HypoPT.
Introduction
O paratormônio (PTH) é secretado pelas glândulas paratireoides. É um importante modulador do balanço de cálcio, mantém o metabolismo do fosfato e participa da remodelaçãoóssea1,2. O hipoparatireoidismo (HypoTP) manifesta-se como diminuição da secreção ou perda funcional do PTH. É uma desordem endócrina rara, com prevalência de aproximadamente 9-37 por 100.000 pessoas-ano 3,4,5. O hipoTP é caracterizado pela diminuição dos níveis séricos de PTH e cálcio acompanhada de aumento do fósforo sérico 6,7. A hipoTP é classificada com base em sua causa: hipoparatireoidismo adquirido (AHypoPT) ou hipoparatireoidismo idiopático (IHypoPT)8. A TPH é mais comumente encontrada na prática clínica; cerca de 75% dos casos de AHypoPT são causados por ressecção ou lesão acidental das glândulas paratireoides durante cirurgia de tireoide ou outras cirurgias de cabeça e pescoço. Outras causas incluem radioterapia e quimioterapia para tumores de cabeça e pescoço e toxicidade de drogas 1,8. Métodos diagnósticos aprimorados e um aumento no rastreamento de doenças associadas à glândula tireoide aumentaram o número de operações cirúrgicas da glândula tireoide. Isso levou a um aumento correspondente nas complicações relacionadas à glândula paratireoide 9,10.
Modelos animais facilmente estabelecidos e com características estáveis são necessários para melhor investigar a AHypoPT e verificar a eficácia terapêutica de novos tratamentos. A paratireoidectomia (PTX) realizada em ratos e camundongos foi relatada em estudos anteriores 6,11; no entanto, devido ao tamanho extremamente pequeno das glândulas paratireoides e à variabilidade em sua distribuição anatômica, a taxa de sucesso é relativamente baixa na prática. Assim, a tireoparatireoidectomia (TPTX) (ou seja, a remoção total das glândulas tireoide e paratireoides) é geralmente realizada para garantir a ressecção das glândulas paratireoides12. No entanto, os baixos níveis de tiroxina resultantes podem complicar os estudos com esse modelo animal13. Modelos de hipoPT estabelecidos por outros métodos, como estimulação de drogas e edição gênica, não podem representar adequadamente a patogênese mais comum da AHypoPT. Nosso grupo utilizou previamente modelos knockout em camundongos para marcar as glândulas paratireoides e permitir a remoção das glândulas paratireoides sem danificar as glândulas tireoides e estruturas anatômicas adjacentes14,15. No entanto, este método utiliza modelos de camundongos transgênicos, que requerem um tempo de desenvolvimento maior devido às exigências de acasalamento e reprodução.
Portanto, nosso objetivo foi estabelecer um modelo de AHypoPT de fácil geração. Este estudo descreve um modelo de PTX em ratos usando marcação de nanopartículas de carbono. Uma suspensão de nanopartículas de carbono de 50 mg/mL, comumente utilizada em cirurgia de tireoide, distribui-se uniformemente nas glândulas tireoides após injeção local16. As glândulas tireoides ficam pretas, mas as paratireoides não são coradas17, distinguindo claramente as glândulas paratireoides das tireoides e permitindo que a PTX seja realizada sem afetar as glândulas tireoides. Este método é adequado para ratos de diferentes idades. A injeção da suspensão de nanopartículas de carbono é segura e tem efeito desprezível sobre a função tireoidiana18. O modelo de PTX marcado com nanopartículas de carbono em ratos gerado neste estudo mostrou fenótipos significativos de hipocalcemia e hiperfosfatemia durante o período de observação de 4 semanas. Assim, este modelo AHypoPT é fácil de estabelecer e tem um fenótipo reprodutível.
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Protocol
Este estudo foi aprovado pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais do Laboratório Estadual de Doenças Bucais da Universidade de Sichuan. A permissão foi obtida de agências locais relevantes antes do experimento. Oito ratos machos da raça Sprague-Dawley (SD), com 8-10 semanas de idade, com peso médio de 200-250 g, foram utilizados para o presente estudo. Os animais foram obtidos de fonte comercial (ver Tabela de Materiais). Água e ração foram fornecidas ad libitum durante todo o período experimental.
1. Preparação pré-operatória para a geração de ratos PTX assistidos por nanopartículas de carbono
- Anestesiar os ratos de 8-10 semanas de idade usando inalação de isoflurano a 2,0%-2,5%, seguida de uma injeção intraperitoneal (i.p.) de tribromoetanol a 10 mL/kg de peso corporal. Garanta uma profundidade suficiente de anestesia testando a ausência do reflexo de luz pupilar. Use pomada veterinária nos olhos para evitar o ressecamento durante a anestesia.
NOTA: Ratos com 8-10 semanas de idade são reconhecidos como ratos adultos. No entanto, este método de modelagem pode ser usado em ratos a partir de 7 dias de idade. - Preparar os ratos SD anestesiados para a cirurgia raspando a pele da região ventral do pescoço na posição supina. Desinfetar a área operatória com bolas de algodão de iodopovidona (ver Tabela de Materiais).
- Cobrir o animal com campos cirúrgicos (ver Tabela de Materiais) e expor a região cirúrgica, visando minimizar a contaminação microbiana.
2. Paratireoidectomia (PTX)
- Iniciar no ponto médio entre as duas orelhas e cortar uma incisão de 2 cm longitudinalmente em direção à cauda com bisturi cirúrgico. Dissecar a fáscia e a camada de gordura sucessivamente com pinças afiadas, curvas e serrilhadas.
- Separe os músculos paratraqueais e exponha a traqueia usando pinças relativamente rombas sob um microscópio estéreo em aumento de 4x-5x.
- Localize os lobos esquerdo e direito das glândulas tireoides em forma de borboleta ao lado da traqueia.
- Injectar 1 μL da suspensão de nanopartículas de carbono (ver Tabela de Materiais) sob a membrana das glândulas tiroide utilizando uma seringa de 10 μL com uma agulha chanfrada de 30 G. Após 5 min, irrigar a região operatória com soro fisiológico para limpar a suspensão extra de nanopartículas de carbono que cobre a membrana da glândula tireoide.
NOTA: O ponto de injeção recomendado é a porção mesial do lobo da glândula tireoide, que tem menos vasos sanguíneos. Uma suspensão de nanopartículas de carbono é comumente usada em cirurgia da tireoide devido à sua capacidade de detectar os gânglios linfáticos. Colorir as glândulas tireoides e deixar as glândulas paratireoides sem coloração facilita a identificação das últimas. - Verifique para garantir que as glândulas tireoides ficam pretas enquanto as glândulas paratireoides permanecem sem manchas em ~5 min. Observe as glândulas paratireoides destacadas sob luz comum usando a luz de um microscópio estéreo ou uma lâmpada de mesa.
NOTA: Normalmente, os roedores têm duas glândulas paratireoides em forma de gota localizadas nas superfícies esquerda e direita das glândulas tireoides. Ocasionalmente, glândulas paratireoides adicionais podem estar localizadas mais longe. - Corte precisamente as glândulas paratireoides não manchadas com pinça e tesoura de microcirurgia. Use bolas de algodão estéreis para hemostasia ou uma esponja de gelatina se houver mais sangramento.
- Fechar os músculos, as camadas de gordura e a pele, camada por camada, com uma sutura horizontal interrompida do colchão usando pontos de poliglactina 910 6-0 (ver Tabela de Materiais).
- Para o grupo sham, realizar todas as etapas do preparo pré-operatório e PTX, exceto o passo 2.6. Anestesiar os ratos e separar os tecidos acima da traqueia. Localize as glândulas paratireoides, mas não removê-las. Realizar recuperação e observação pós-operatória em conjunto com os ratos do grupo PTX.
3. Recuperação e observação pós-operatória
- Após a cirurgia, colocar os ratos sobre uma manta elétrica termostática (37 °C) para manter a temperatura corporal. Injetar cloridrato de buprenorfina 0,01 mg/kg por via subcutânea (s.c.) a cada 12 h como analgesia pós-operatória. Transfira os ratos para uma gaiola estéril quando eles começarem a se mover e tentar rastejar.
- Observar atentamente os ratos no pós-operatório por 2 h. Devolver os ratos à sala de criação, observá-los rotineiramente e registrar seu estado.
- Retirar 10 μL de sangue da veia caudal 7 dias após a cirurgia. Medir o Ca2+ sérico, o Pi sérico e o PTH sérico usando kits comerciais apropriados (consulte a Tabela de Materiais). Uma paratireoidectomia bem-sucedida produz um nível 2 de SD de Ca2+ ionizado reduzido menor do que o de ratos sham-operados (9,00 mmol/L, n = 16).
NOTA: Para a análise estatística foi utilizado um software estatístico e gráfico (ver Tabela de Materiais). O teste t de Student foi utilizado para comparar os parâmetros séricos e urinários entre os grupos sham e PTX. p < 0,05 foi considerado estatisticamente significante. Ca2+ e Pi séricos e urinários e ureia e creatinina séricas foram dosados com kits comerciais de acordo com as instruções do fabricante (ver Tabela de Materiais). O telopeptídeo C sérico do colágeno tipo I e osteocalcina foi medido com kits de ELISA disponíveis comercialmente (ver Tabela de Materiais).
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Representative Results
A localização e o número de glândulas paratireoides foram inicialmente observados em ratos sob um microscópio de dissecção. Antes da injeção de nanopartículas de carbono, as glândulas tireoides eram de coloração vermelha translúcida e as paratireoides eram pouco distinguíveis ao microscópio (Figura 1A). Após a injeção das nanopartículas, as glândulas tireoides foram coradas de preto, enquanto as glândulas paratireoides permaneceram sem coloração (Figura 1B). A dissecção cuidadosa das glândulas paratireoides de cor clara deixou as glândulas tireoides intocadas (Figura 1C). Geralmente, as glândulas paratireoides estavam distribuídas nas bordas laterais ou posteriores das glândulas tireoides.
Figura 1: Aspecto das glândulas tireoide e paratireoide durante os procedimentos cirúrgicos. (A) As glândulas tireoides (linha pontilhada branca) estão localizadas lateralmente à traqueia. (B,C) As glândulas tireoides apresentaram coloração preta (linha pontilhada branca) após a injeção das nanopartículas de carbono, enquanto as glândulas paratireoides (linha pontilhada amarela) exibiram coloração clara. Barras de escala = 2 mm. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
O tempo cirúrgico desde o preparo pré-operatório até o término da PTX foi de aproximadamente 20 min. A sobrevida de 4 semanas dos ratos no pós-operatório foi de 90,9% (60/66). Os ratos PTX foram observados com apoio em curva 1 semana após a cirurgia. Um grupo controle simulado foi estabelecido simultaneamente realizando todas as etapas do protocolo, exceto a etapa 2.6. Todos os ratos PTX marcados com nanopartículas de carbono sobreviventes apresentaram um nível médio de Ca2+ ionizado mais baixo, que foi 2 DP menor do que o do grupo operado com simulação. O fenótipo de hipoparatireoidismo nos ratos PTX marcados com nanopartículas de carbono, evidenciado por cálcio sérico reduzido, fosfato sérico elevado e PTH não detectado, permaneceu estável durante o período de monitoramento de 4 semanas.
Aos 7 dias após a cirurgia, os níveis séricos de Ca 2+ e PTH foram significativamente reduzidos nos ratos PTX em comparação com o grupo sham (Ca 2+ = 4,97 mmol/L ± 0,99 mmol/L vs. 8,98 mmol/L ± 0,58 mmol/L, p < 0,05; PTH = 13,13 pg/mL ± 6,58 v pg/mL s. 313,06 pg/mL ± 75,24 pg/mL, p < 0,05). O Pi sérico aumentou significativamente após a cirurgia de PTX (Pi = 13,90 mmol/L ± 1,77 mmol/L vs. 7,46 mmol/L ± 1,28 mmol/L). Os níveis séricos de ureia e creatinina foram comparáveis entre os grupos sham e PTX 7 dias após a cirurgia de PTX (ureia = 8,71 mmol/L ± 0,81 mmol/L vs. 8,84 mmol/L ± 0,89 mmol/L, p > 0,05 ; creatinina = 49,03 μmol/L ± 13,14 μmol/L vs. 53,15 μmol/L ± 18,28 μmol/L, p > 0,05). Aos 14 dias após a cirurgia de PTX, os níveis urinários de Ca 2+ e Pi estavam significativamente reduzidos (Ca 2+ = 2,33 mmol/L ± 0,53 mmol/L vs. 7,18 mmol/L ±4,27 mmol/L, p < 0,05; Pi = 2,40 mmol/L ± 1,90 mmol/L vs. 5,29 mmol/L ± 1,52 mmol/L, p < 0,05) (Figura 2).
Figura 2: Níveis séricos de Ca 2+, Pi, PTH, ureia e creatinina e níveis urinários de Ca2+ e Pi após paratireoidectomia assistida por nanopartículas de carbono. (A) Os ratos PTX exibiram hipocalcemia e hiperfosfatemia estáveis durante o período de observação de 4 semanas (N = 4). (B) O PTH sérico foi indetectável nos ratos PTX 7 dias após a operação (N = 8). (C,D) Os níveis séricos de ureia e creatinina foram comparáveis entre os grupos sham e PTX 7 dias após a cirurgia (N = 5). (E,F) Os níveis urinários de Ca2+ e Pi foram significativamente reduzidos 14 dias após a cirurgia de PTX (N = 8). As barras de erro indicam o desvio padrão. Abreviações: PTX = paratireoidectomia; Ca++ = cálcio ionizado no soro; PTH = hormônio da paratireoide; Pi = fósforo ionizado no soro. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Não houve diferenças significativas no peso corporal entre os grupos PTX e sham no 7º dia de pós-operatório (DPO7), DPO14 e DPO28 (peso corporal no DPO0 = 256,40 g ± 4,76 g vs. 252,56 g ± 6,69 g, p > 0,05; peso corporal no DPO7 = 266,00 g ± 6,93 g vs. 257,44 g ± 30,56 g, p > 0,05; peso corporal no DPO14 = 294,80 g ± 25,90 g vs. 288,22 g ± 37,35 g, p > 0,05; peso corporal no DPO28 = 327,75 g ± 24,82 g vs. 324,17 g ± 57,97 g, p > 0,05). Além disso, o C-telopeptídeo sérico do colágeno tipo I (CTX-1) foi estatisticamente reduzido no POD28 (CTX-1 = 82,03 pg/mL ± 8,98 pg/mL vs. 100,33 pg/mL ± 6,36 pg/mL, p < 0,05). A osteocalcina sérica não apresentou diferença significativa no POD28 (osteocalcina = 913,66 pg/mL ± 378,03 pg/mL vs. 1066,17 pg/mL ± 549,80 pg/mL, p > 0,05) (Figura 3).
Figura 3: Peso corporal, C-telopeptídeo sanguíneo do colágeno tipo I e níveis de osteocalcina após paratireoidectomia assistida por nanopartículas de carbono. (A) Não houve diferenças significativas no peso corporal entre os grupos PTX e sham no POD7, POD14 e POD28 (N = 14). (B) Os ratos PTX exibiram diminuição estatística no telopeptídeo C sérico do colágeno tipo I (N = 4). (C) Não houve diferenças significativas nos níveis séricos de osteocalcina (N = 5). As barras de erro indicam o desvio padrão. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Relatórios epidemiológicos indicam que a detecção de doenças tireoidianas tem aumentado significativamente, e o número de cirurgias relacionadas realizadas tem aumentado emconformidade19,20. A taxa de incidência de hipoparatireoidismo pós-cirúrgico é de aproximadamente 7,6%8,21, enquanto o aumento da morbidade do hipoparatireoidismo adquirido fez com que essa doença rara ganhasse maior atenção da pesquisa. É, portanto, particularmente importante estabelecer um modelo animal adequado para investigar a patogênese da doença, bem como testar os resultados de novos tratamentos terapêuticos. No entanto, atualmente, existem modelos animais limitados disponíveis. Além disso, a taxa de sucesso, a sobrevida e a dificuldade dos procedimentos cirúrgicos na produção desses modelos permanecem problemáticas. Nosso grupo relatou anteriormente dois modelos de HypoPT em camundongos. Em camundongos PTHcre+/Rosa-mTmG, as glândulas paratireoides foram marcadas fluorescentemente para ajudar a dissecar com precisão as glândulas paratireoides, e esse método também foi útil para encontrar glândulas paratireoides com distribuição anatômica anormal para melhorar a taxa de sucesso da cirurgia14. Outra abordagem de modelagem utilizou camundongos transgênicos, nos quais as células da glândula paratireoide poderiam ser alvo da toxina diftérica. As glândulas paratireoides poderiam então ser destruídas pela administração sistêmica da toxina diftérica sem a necessidade de cirurgia14,15. No entanto, os métodos acima mencionados requerem cruzamento extensivo de camundongos transgênicos, resultando em requisitos de tempo e custo relativamente altos. Além disso, a administração sistêmica de toxina diftérica pode ter efeitos colaterais generalizados. Atualmente, a tireoparatireoidectomia (TxTx) é o procedimento usual realizado para garantir a ressecção das glândulas paratireoides12. Embora a técnica seja de fácil execução e tenha uma alta taxa de sucesso, os danos às glândulas tireoides não podem ser ignorados. O impacto potencial da lesão ou destruição das glândulas tireoides nos resultados experimentais pode ser significativo, sendo esta uma grande limitação de todos os estudos nessaárea21,22.
No presente estudo, uma suspensão de nanopartículas de carbono, comumente usada para visualizar as glândulas tireoides na prática clínica, foi injetada para melhorar a cirurgia de PTX. Este método é seguro, rápido e altamente viável. Ele pode efetivamente rotular as glândulas tireoides com uma mancha preta e deixar as glândulas paratireoides sem manchas, o que permite a identificação precisa e dissecção das glândulas paratireoides, evitando lesões nas glândulas tireoides. Este método de marcação tem o mesmo efeito que o obtido usando a marcação fluorescente de camundongos transgênicos, mas não é limitado pelo genótipo. Além disso, o tempo cirúrgico da PTX assistida por nanopartículas de carbono é de cerca de 20 min, o que economiza tempo em comparação com as 2 h de cirurgia necessárias para a identificação da fluorescência do 5-ALA23. Além disso, devido à biossegurança das nanopartículas decarbono24, esse método de modelagem pode ser utilizado em ratos a partir de 7 dias de idade. Um passo crítico a ser observado durante a cirurgia é que a dosagem da suspensão de nanopartículas de carbono pode ser ajustada de acordo com o peso dos ratos. O volume de suspensão de nanopartículas de carbono utilizado neste estudo (1 μL) é suficiente para cirurgia em ratos adultos, mesmo que alguma quantidade seja perdida na seringa. A distribuição de todas as glândulas paratireoides é difícil para iniciantes identificarem, e muita prática é recomendada.
O presente estudo apresenta algumas limitações. Por exemplo, é impossível identificar glândulas paratireoides remotas desligadas das tireoides usando nanopartículas de carbono. Se os parâmetros séricos permanecerem inalterados após a cirurgia, isso pode indicar que algumas glândulas paratireoides remotas estavam presentes e não foram removidas. O período de coloração necessário para a ótima diferenciação e identificação das glândulas paratireoides não foi medido; no entanto, as glândulas tireoides foram coradas adequadamente dentro de 5 min da administração das nanopartículas e mantiveram a coloração durante todo o procedimento cirúrgico. A função das glândulas tireoides durante o período de seguimento não foi registrada neste estudo. No entanto, em nosso estudo anterior, que envolveu a utilização de um modelo de camundongo transgênico para identificar e remover as glândulas paratireoides, a função da glândula tireoide mostrou-se preservada15. A tolerância dos ratos às nanopartículas de carbono também não foi testada neste estudo; entretanto, essas nanopartículas têm sido utilizadas comercialmente como fármacos em cirurgias clínicas16. Geralmente, esse método permite que os pesquisadores escolham um animal com genótipo e tempo de operação desejados. Em última análise, espera-se que essa abordagem forneça modelos úteis em ratos para o hipoparatireoidismo adquirido.
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Disclosures
Os autores declaram não ter interesses financeiros concorrentes.
Acknowledgments
Este trabalho foi apoiado pela concessão NSFC 81800928, financiamento de pesquisa da escola da China ocidental / Hospital da Universidade de Sichuan de estomatologia (No. RCDWJS2021-1), e o State Key Laboratory of Oral Diseases Open Funding grant SKLOD-R013.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.9% Sodium Chloride Solution | Kelun Co. Sichuan, China | ||
| 10 µL 30G NanoFil Syringe | WPI | ||
| 6-0 polyglactin 910 suture with needle | Ethicon, Inc | J510G | |
| Calcium LiquiColor test | EKF | 0155-225 | For Ca2+ analysis |
| Carbon Nanoparticles Suspension Injection | Lummy, Chongqing, China | H20073246 | 1 mL : 50 mg |
| Creatinine (Cr) Assay kit ( sarcosine oxidase ) | Jiancheng, Nanjing, China | C011-2-1 | For creatinine analysis |
| Disposable Scalpel | Shinva, China | ||
| Dumstar Biology forceps | Shinva, China | ||
| Micro Dissecting Spring Scissors | Shinva, China | ||
| MicroVue Rat intact PTH ELISA | Immunotopics | 30-2531 | For the measurement of PTH in rat serum |
| Needle Holder | Shinva, China | ||
| Phosphorus Liqui-UV test | EKF | 0830-125 | For Pi analysis |
| Ply gauze | Weian Co. Henan, China | ||
| Povidone-Iodine | Yongan pharmaceutical Co.Ltd. Chengdu, China | ||
| Prism 9.0 (statistics and graphing software) | GraphPad Software, Inc., San Diego, CA, USA | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | |
| Rat C-telopeptide of type I collagen (CTX-I) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E12776r | For CTX-I analysis |
| Rat Osteocalcin/Bone Gla Protein (OT/BGP) ELISA Kit | CUSABIO, Wuhan, China | CSB-E05129r | For osteocalcin analysis |
| Safety Single Edge Razor Blades | American Safety Razor Company | 66-0089 | |
| Sprague-Dawley Rats | 8 to 10 weeks old | ||
| Surgical Incise Drapes | Liangyou Co. Sichuan, China | ||
| Urea Assay Kit | Jiancheng, Nanjing, China | C013-2-1 | For urea analysis |
References
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