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Artículo de método

Imágenes de células vivas de cerebros larvales del tercer estadio de Drosophila melanogaster

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DOI:

10.3791/65538

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23 de junio de 2023

 , 

En este artículo

Resumen

Aquí, discutimos un flujo de trabajo para preparar, diseccionar, montar y obtener imágenes de cerebros de explante vivos de larvas del tercer estadio de Drosophila melanogaster para observar la dinámica celular y subcelular en condiciones fisiológicas.

Resumen

Las células madre neurales de Drosophila (neuroblastos, NB en adelante) experimentan divisiones asimétricas, regenerando el neuroblasto autorrenovador, al tiempo que forman una célula madre ganglionar diferenciadora (GMC), que sufrirá una división adicional para dar lugar a dos neuronas o glía. Los estudios en NB han descubierto los mecanismos moleculares subyacentes a la polaridad celular, la orientación del huso, la autorrenovación de las células madre neurales y la diferenciación. Estas divisiones celulares asimétricas son fácilmente observables a través de imágenes de células vivas, lo que hace que las larvas sean ideales para investigar la dinámica espaciotemporal de la división celular asimétrica en el tejido vivo. Cuando se diseccionan adecuadamente y se obtienen imágenes en un medio suplementado con nutrientes, los NB en los cerebros de explante se dividen robustamente durante 12-20 h. Los métodos descritos anteriormente son técnicamente difíciles y pueden ser desafiantes para aquellos nuevos en el campo. Aquí, se describe un protocolo para la preparación, disección, montaje e imágenes de explantes cerebrales larvales vivos del tercer estadio utilizando suplementos corporales gordos. También se discuten los problemas potenciales y se proporcionan ejemplos de cómo se puede utilizar esta técnica.

Introducción

La división celular asimétrica (ACD) es el proceso por el cual los componentes subcelulares como el ARN, las proteínas y los orgánulos se dividen de manera desigual entre las células hijas 1,2. Este proceso se ve comúnmente en las células madre, que se someten a ACD para dar lugar a células hijas con diferentes destinos de desarrollo. Drosophila Los NB se dividen asimétricamente para producir un NB, que conserva su tallo, y una célula madre ganglionar (GMC). El GMC sufre más divisiones para producir neuronas diferenciadoras o glía3. Los NB que se dividen asimétricamente son abu....

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Protocolo

NOTA: La figura 1 muestra los materiales necesarios para realizar este estudio.

1. Consideraciones y preparativos para el experimento

  1. Evite que las larvas se hacinen.
    NOTA: La calidad de los cerebros larvales explante está directamente relacionada con la salud y la calidad de las larvas antes de la disección. Las larvas que están desnutridas por el hacinamiento generalmente producirán cerebros de menor calidad30.
    1. Asegúrese de que no haya más de 20-30 larvas presentes por plato de tapa de comida para evitar la desnutrición. Ejemplos de estos se pueden ....

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Resultados

Disección e imágenes del lóbulo central del cerebro NBs que expresan Pins::EGFP y Cherry::Júpiter
Para mostrar este protocolo, las larvas que expresan Cherry::Jupiter13 y Pins endógenamente etiquetados::EGFP16 (w; worGal4, UAS-cherry::jupiter/CyO; Pins::EGFP/TM6B, Tb) se obtuvieron imágenes durante 4 h utilizando el protocolo descrito utilizando diapositivas de imágenes de múltiples pocillos (Figura 5C, D). .......

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Discusión

Este protocolo describe un enfoque para la obtención de imágenes de cerebros de explante vivos de larvas de Drosophila melanogaster . El protocolo descrito aquí permite observar cerebros de explante durante 12-20 h en las condiciones experimentales adecuadas. Se debe prestar especial atención a la preparación de muestras y al diseño de los experimentos deseados. Como se mencionó anteriormente, uno de los factores más críticos que determina la calidad del tejido disecado es la salud de las larvas. Para lograr la .......

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Divulgaciones

Los autores no tienen divulgaciones financieras que declarar.

Agradecimientos

Esta investigación cuenta con el apoyo de R35GM148160 (C. C.) y una subvención de capacitación T32 de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) GM007270 (R. C. S)

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0,22 y micro; m membrana de polietersulfona (PES) FiltrosGenesee25-231accionados por vacío
AgarGenesee20-248agar granulado
Ordenador analíticoCPU DellNAIntel Xeon Gold 5222 con dos procesadores de 3,80 GHz que ejecutan Windows 10 en un sistema operativo de 64 bits
Suero de crecimiento bovinoHyCloneSH30541.02
Portaobjetos deimagen con cámaraIbidi80826
Microscopio ConfocalNikonNA
Portaobjetos metálicos mecanizados a medidaNANAVer Cabernard and Doe 2013 (Ref. 34) para las especificaciones
Platos de disecciónFisher Scientific5024343placa micro spot de porcelana de 3 pocillos
Pinzas de disecciónWorld Precision InstrumentsDumont #5
Microscopio de disecciónLeicaNA
Tijeras de disecciónFine Science Tools (FST)15003-08
Jaula de recolección de embrionesGenesee59-100
Flypad con acceso a CO2 para anestesiar moscas adultasGenesee59-172
Membrana permeable al gasYSI98095Membrana permeable al gas
Cubierta de vidrio PortaobjetosMicroscopía Electrónica Ciencias72204-03# 1.5; 22 mm x 40 mm cubreobjetos de vidrio
ImarisOxford InstrumentsNAAlternativas: Fiji, Volocity, Aivia
Imaris File ConverterOxford InstrumentsNA
Levadurainstantánea Saf-InstantNA
MelazaGenesee62-117
Placa de PetriGreiner Bio-One62816160 mm x 15 mm Placa de Petri
VaselinaVaselinaNA
Medio de insectos de Schneider con L-glutamina y bicarbonato de sodiolíquido Millipore SigmaS0146
Software de adquisición de SlideBook3iNA
Unidad de filtración accionada por vacío con un 0,22 &; y micro; m Filtro de membrana PESGenesee Scientific, GenClone25-231

Referencias

  1. Delgado, M. K., Cabernard, C. Mechanical regulation of cell size, fate, and behavior during asymmetric cell division. Current Opinion in Cell Biology. 67, 9-16 (2020).
  2. Sunchu, B., Cabernard, C. Principles and mechanisms of asymmetric cell division.

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Reimpresiones y permisos

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