2,735 Views
•
09:28 min
•
April 06, 2022
DOI:
يصف هذا البروتوكول بالتفصيل ، التحضير الجراحي واستخدام نظام مستقر بالتفريغ لتصوير التصاق الكريات البيض الرئوية والتروية الشعرية في الجسم الحي. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تسمح بالتصوير المستقر عالي الدقة داخل الجسم للرئة المتطابقة السليمة مع الحد الأدنى من الصدمات الجسدية. للبدء ، قم بإعداد نافذة التصوير عن طريق إدارة طبقة رقيقة من الشحوم الفراغية إلى أعلى الحلقة الخارجية مع تجنب تلوث قناة التفريغ.
ضع غطاء زجاجي نظيف بحجم 8 ملم على النافذة واضغط برفق لأسفل لإنشاء ختم. قم بتوصيل نافذة التصوير بمضخة تفريغ مزودة بمقياس ضغط رقمي وقادرة على توفير 50 إلى 60 ملم من الشفط الثابت للزئبق. مرر طول كابل الألياف البصرية من خلال قنية القصبة الهوائية قياس 20 وغمر الطرف في يدوكائين HCL.
بعد التخدير ، أدخل منظار الأذن المعدل ، بحيث تتناسب القواطع العلوية مع الفجوة في المنظار. اضبط المنظار وموضع اللسان حتى يصبح لسان المزمار والحبال الصوتية مرئيين بوضوح. أدخل كابل الألياف البصرية من خلال الفجوة الموجودة في المنظار واستخدم حركات دائرية صغيرة لتمرير الكابل بين الحبال الصوتية ، ثم استخدم كابل الألياف البصرية كدليل ، وحرك القنية بلطف في القصبة الهوائية لتنبيب الماوس.
بعد بدء التهوية بنسبة 1.5٪ isoflurane ، تأكد من عمق التخدير عن طريق اختبار منعكس الدواسة. قم بتأمين القنية على الخطم بشريط طبي. استخدم شريط وضع العلامات لتثبيت المخلب الأمامي الأيمن على وسادة التدفئة في موضع الساعة التاسعة وتمديد المخلب الخلفي الأيسر بشكل سببي وتأمينه في وضع الساعة السادسة.
باستخدام شريط من القماش، قم بتمديد المخلب الأمامي الأيسر برفق إلى موضع الساعة 12 وقم بتثبيت الطرف الآخر من الشريط إلى أعلى منصة الفحص المجهري داخل الحيوية، ثم قم بتطبيق مسبار درجة حرارة المستقيم ومقياس التأكسج نبض المخلب لمراقبة العلامات الحيوية طوال التجربة. لإعداد الفأر للجراحة ، قم بتعقيم الصدر والبطن بمسح كحولي بنسبة 70٪ وتطبيق طبقة خفيفة من الزيت المعدني لترطيب الشعر على الجانب الأيسر من الماوس. قم بعمل شق صغير بالقرب من الجزء السفلي من القفص الصدري لفضح طبقة العضلات الأساسية ، ثم قم بتمديد الشق الأولي واستخدام تشريح حاد لفضح القفص الصدري.
باستخدام ملقط مرقئ ، أمسك الأنسجة الظهارية والدهنية التشريحية ووضعها بعيدا عن المنطقة الجراحية. لتسمية الكريات البيض وتدفق الدم بشكل فلوري ، قم بإعطاء 2.5 ملليلتر لكل كيلوغرام من Rhodamine 6G و FITC-albumin عبر الوريد الذيلي. باستخدام ملقط مسنن ، أمسك الضلع على الفور أدنى من موضع قاعدة الرئة في نهاية الإلهام.
اسحب الملقط قليلا لسحب الضلع بعيدا عن الرئة ثم قطع الضلع للحث على استرواح الصدر. قم بتمديد الشق أفقيا في كلا الاتجاهين ، مع الحرص على عدم لمس الرئة. أمسك الضلع الأعلى التالي بملقط حاد واتراجع قليلا للسماح للرئة بالسقوط بعيدا عن جدار الصدر.
إذا لم تنفصل الرئة ، فاضغط على جدار الصدر بخفة ضد الرئة لجعل الرئة تلتصق بغشاء الجنب الأساسي وبالتالي تسقط بسهولة أكبر. استمر في الشق الأصلي في النهاية حتى القص ومن الجمجمة حتى تنكشف قمة الرئة. استخدم أدوات تطبيق القطن والشاش لتخفيف أي نزيف ينشأ.
ارفع القفص الصدري لفضح الأوعية الدموية الوربية على الجانب الظهري من التجويف الصدري ، مع الحرص على عدم إتلاف الرئة ، وكي الوعاء الوربي الأكثر شأنا بالقرب من العمود الفقري ، ثم قطع الضلع المجاور. التحرك قحفيا ، وفي النهاية ، استخدم نمطا متكررا من الكي والقطع لاستئصال جزء واحد في سنتيمتر تقريبا من القفص الصدري. للتحضير للتصوير ، انقل منصة الفحص المجهري داخل الحيوية إلى مرحلة المجهر وضع نافذة التصوير مباشرة فوق الرئة المكشوفة.
استخدم المتلاعب الدقيق لخفض نافذة التصوير بعناية حتى تلتصق بسطح الرئة وتثبته. لتصور دوران الأوعية الدقيقة الرئوية ، استخدم مجهرا فلوريا واسع المجال مزودا بأهداف 20x ومجموعات مرشحات FITC و Rhodamine القياسية. استخدم كاميرا CCD بالأبيض والأسود لتسجيل مقاطع الفيديو بتباين مثالي.
باستخدام مجموعة مرشحات FITC ، حدد مكانا رئويا بناء على النمط المتقارب لتدفق الدم وسجل مقطع فيديو مدته 30 ثانية مع التركيز على المكان ، ثم كرر التسجيل في نفس مجال الرؤية باستخدام مجموعة مرشح Rhodamine لتصور الكريات البيض. لتحديد موقع الشريان الرئوي، استخدم مجموعة مرشح FITC لتحديد وعاء ذي نمط متباعد من تدفق الدم وتسجيل فيديو مدته 30 ثانية. كرر التسجيل في نفس مجال الرؤية باستخدام مجموعة مرشح Rhodamine لتصور الكريات البيض.
لتحديد المناطق الشعرية ذات الأهمية ، استخدم مجموعة مرشح FITC لتحديد منطقة من الحويصلات الهوائية والشعيرات الدموية التي لا تتقاطع مع أوعية أكبر وتسجيل فيديو مدته 30 ثانية. كرر التسجيل في نفس مجال الرؤية باستخدام مجموعة مرشح Rhodamine لتصور الكريات البيض. يصور هذا الفيديو تصوير FITC لتدفق الدم داخل مكان رئوي كما هو موضح في السهم الأخضر.
يسمح تصوير Rhodamine بتصور الكريات البيض في نفس المكان مع اثنين من الكريات البيض الملتصقة المشار إليها بالأسهم الحمراء. تم تطبيق هذه الطرق أيضا لتصور نفس الظواهر والشرايين الرئوية والمناطق الشعرية ذات الاهتمام. لإثبات التحديد الكمي لمعلمات الدورة الدموية الدقيقة ، عولجت الفئران باستخدام LPS داخل الأنف للحث على التهاب الرئة.
يظهر هنا الاتجار بالكريات البيض في الأماكن الرئوية مع مناطق محددة تمثل المناطق البطانية التي تم تحليلها في الفئران الساذجة والمعالجة ب LPS. تم زيادة التصاق الكريات البيض والدحرجة في الفئران المعالجة ب LPS. يظهر هنا الاتجار بالكريات البيض في الشرايين الرئوية مع مناطق محددة تمثل المناطق البطانية التي تم تحليلها في الفئران الساذجة والمعالجة ب LPS.
كان التصاق الكريات البيض أعلى في الفئران المعالجة ب LPS. يوضح هذا الشكل التصاق الكريات البيض داخل الشعيرات الدموية الرئوية في الفئران الساذجة والمعالجة ب LPS. وقد تبين أن التصاق الكريات البيض أعلى في الفئران المعالجة ب LPS مقابل الساذجة.
يوضح هذا الشكل تروية الشعيرات الدموية الرئوية في الفئران الساذجة والمعالجة ب LPS. وقد تبين أن كثافة الشعيرات الدموية الوظيفية أقل في الفئران المعالجة ب LPS مقابل الساذجة. هناك الكثير من الجوانب الصعبة لهذا البروتوكول.
يعد تحسين وضع الماوس على المنصة خطوة بسيطة يمكن أن تجعل الخطوات الجراحية والتصويرية أكثر قابلية للتكرار. هذا الإجراء قابل للتكيف مع مجموعة واسعة من معلمات الدراسة ونهج الفحص المجهري. لذلك ، ينبغي أن تسهل المزيد من الأبحاث حول دوران الأوعية الدقيقة الرئوية في كل من الحالات الصحية والمريضة.
يمكن استخدام المجهر الفلوري داخل الحيوية لدراسة التفاعلات بين الكريات البيض والبطانية والتروية الشعرية في الوقت الفعلي. يصف هذا البروتوكول طرق تصوير هذه المعلمات وتحديدها كميا في دوران الأوعية الدقيقة الرئوي باستخدام نظام تصوير رئوي مستقر بالفراغ.
10:08
Intravital Imaging of the Mouse Thymus using 2-Photon Microscopy
Related Videos
16867 Views
10:07
Highly Resolved Intravital Striped-illumination Microscopy of Germinal Centers
Related Videos
9927 Views
07:24
Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model
Related Videos
18405 Views
06:56
Influenza Virus Propagation in Embryonated Chicken Eggs
Related Videos
42694 Views
11:44
Long Term Intravital Multiphoton Microscopy Imaging of Immune Cells in Healthy and Diseased Liver Using CXCR6.Gfp Reporter Mice
Related Videos
11859 Views
09:28
Imaging Neutrophils and Monocytes in Mesenteric Veins by Intravital Microscopy on Anaesthetized Mice in Real Time
Related Videos
10405 Views
08:30
Intraperitoneal Glucose Tolerance Test, Measurement of Lung Function, and Fixation of the Lung to Study the Impact of Obesity and Impaired Metabolism on Pulmonary Outcomes
Related Videos
14008 Views
08:01
Imaging Cell Interaction in Tracheal Mucosa During Influenza Virus Infection Using Two-photon Intravital Microscopy
Related Videos
8214 Views
00:07
A Model of Self-limited Acute Lung Injury by Unilateral Intra-bronchial Acid Instillation
Related Videos
8873 Views
09:15
Studying Effects of Cigarette Smoke on Pseudomonas Infection in Lung Epithelial Cells
Related Videos
5802 Views
Read Article
Cite this Article
Hall, S., Faridi, S., Euodia, I., Tanner, S., Chojnacki, A. K., Patel, K. D., Zhou, J., Lehmann, C. Intravital Widefield Fluorescence Microscopy of Pulmonary Microcirculation in Experimental Acute Lung Injury Using a Vacuum-Stabilized Imaging System. J. Vis. Exp. (182), e63733, doi:10.3791/63733 (2022).
Copy