Author Produced

Органотипической Анализ фрагментов для высокого разрешения Time-Lapse Визуализация миграции нейронов в послеродовой мозга

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Этот протокол описывает органотипической анализа ломтик оптимизирован для послеродового мозга и высоким разрешением, замедленная съемка нейробластов миграции в ростральной миграционных потоков.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Jacquet, B. V., Ruckart, P., Ghashghaei, H. T. An Organotypic Slice Assay for High-Resolution Time-Lapse Imaging of Neuronal Migration in the Postnatal Brain. J. Vis. Exp. (46), e2486, doi:10.3791/2486 (2010).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Нейрогенез в послеродовом мозга зависит от поддержания трех биологических мероприятий: распространение клеток-предшественников, миграцию нейробластов, а также дифференциации и интеграции новых нейронов в существующие нейронные цепи. Для послеродового нейрогенез в обонятельной луковицы, эти события были разделены в течение трех анатомически различных областях: распространение в значительной степени происходит в subependymal зоны (ОЭЗ) боковые желудочки, миграции нейробластов пройти через ростральной миграционных потоков (RMS), а также новые нейроны дифференцировать и интегрировать в обонятельные луковицы (OB). Трех областей служат идеальной платформой для изучения клеточном, молекулярном и физиологических механизмов, которые регулируют каждое из биологических событий отчетливо. Эта статья описывает органотипической анализа ломтик оптимизирован для послеродового ткани мозга, в котором внеклеточных условиях, максимально имитирующие в естественных условиях среды для миграции нейробластов. Мы показываем, что наш анализ обеспечивает равномерное, ориентированной, и быстрое движение нейробластов в RMS. Этот анализ будет весьма подходящим для исследования клеточных автономных и неавтономных регулирования миграции нейронов, используя кросс-трансплантации подходов от мышей на разных генетических фон.

Protocol

I. Процедуры

Следующие методы должны выполняться в стерильных условиях, в ламинарном боксе, с использованием стерилизованных инструментов.

Подготовка блюд со стеклянным дном для органотипической ломтиками

  1. Блюда должны быть подготовлены в стерильных условиях и используя стерилизовать инструменты.
  2. 150 мкл каплю ломтик среды (см. рецепты) помещается в центр со стеклянным дном часть блюдо с осторожностью, чтобы избежать воздушных пузырей в среду.
  3. С одноразовый шприц оснащен 23 иглы, несколько пятен клея (резиновый клей -, кот Элмер # E904) размещены на площади полосы, прилегающей к круговой покровное, что находится в центре культуры блюдо, оставляя одну сторону слабины для обмена жидкости (рис. 1). Перечисленных типов клея не токсичен для ломтиками или клетки, которые применяются в этом протоколе. Забота должна быть предоставлена, чтобы избежать создания каких-либо клея на скольжение покровного стекла, так как это посягает и препятствовать визуализации ломтиками позже. Мембраны nucleopore (диаметр 25 мм, размер пор 8.0μm - ватмана, кошка # 110614) помещается в верхней части стекло покровное, с использованием клея, пятна, чтобы закрепить ее на месте. Это должно быть сделано с помощью микро-щипцы, обеспечивая при этом пузырьки воздуха, не находящуюся между покровным стеклом и мембраной.
  4. Добавьте 1 мл ломтик среды на верхней части мембраны. Посуду помещают в термостат на 30 минут, а затем на льду, пока не готово к использованию.

Добыча раннем постнатальном мозге

Лучшие результаты получаются, когда ломтики готовятся из молодых послеродовых мышей (Р1-Р10).

  1. Щенки неизлечимо анестезии (передозировка) по isofluorane или других одобренных методов. Голова может быть распылена на 70% этанола увеличить стерильности, с последующим быстрым обезглавливание острыми ножницами.
  2. Голова стабилизируется зажима челюсти с микро щипцами. Кожа вырезали продольно от шеи до морды. Череп разрезаются вдоль и вперед, начиная с цистерны Magna, сделав 1 медиальных и 2 боковыми разрезами (по одному на каждой стороне - Рисунок 2А). Следует проявлять осторожность, чтобы свести к минимуму контакты с основными корковой ткани черепной закрылки будут удалены от головного мозга.
  3. Для повышения устойчивости тканей при секционирования vibratome, бокового большинство аспектов мозга удаляют, сделав два сагиттальной сокращений. Хвостового аспект мозга также удаляется, делая разрез на ростральной базе мозжечка (рис. 2В).
  4. Два полушария разделены, делая гладкой разрезать вдоль средней линии трещину, и два полушария тщательно черпали из черепа и помещен, медиальной поверхности вниз, вложение формы (рис. 2C-D).

Секционирование принимающей мозга

  1. Двух полушарий в форме вложения сразу же покрыты растопленным 3% низкой температурой плавления ДНК-класса агарозном геле (Fisher, кошка # BP1360-100), растворенный в тканях подготовки буфер, который поддерживается на уровне 37 ° С (см. рецепты). Через 2 минуты стабилизации на плоской горизонтальной поверхности, чтобы обеспечить еще упрочнения агарозы, формы расположены на лед, чтобы завершить настройку.
  2. Как только гель, содержащий полушарий установлен, он будет удален из формы и обрезать, оставив 2-3мм геля вокруг мозговой ткани.
  3. Гель встраиваемый ткань затем монтируется на образец диска vibratome, с медиальной поверхности вверх, и закрепляется цианакрилатного клея (клей Krazy или эквивалент). Необходимо соблюдать осторожность применять только минимальное количество клея, так как слишком многое будет оказывать токсическое действие на кусочки и миграции клеток. Слишком много клея по бокам блока также может препятствовать резки, в результате чего потенциальный ущерб ткани.
  4. Диск устанавливается в лоток vibratome образец заполненной ледяной средой подготовки ткани.
  5. Ткань подразделяется на 150 мкм толщиной, с vibratome скорости установлен на медленное и среднего диапазона (будет зависеть от vibratome используются, и, следовательно, должны быть определены независимо для достижения оптимального результата). В наших руках, частота колебаний становится оптимальной во время установлена ​​на максимум. Первые несколько ломтиков может быть отброшено.
  6. Как только RMS-содержащих ломтиками освобождаются от лезвия (RMS видна невооруженным глазом как серые U-образная структура простирается от ОЭЗ до OB), они тщательно дразнили из геля плесень, и черпали с помощью небольшого шпателя отвертка. Ломтики размещаются на nucleopore оболочки стеклянным дном блюд, содержащих часть среды (рис. 3А-В). Типичный ранний постнатальный мозг мыши получается примерно 2-3 RMS разделы в полушарии при разрезании на 150 мкм. Очень важно, чтобы обращение ломтиками сведено к минимуму, так как они очень хрупкие. Блюда с ломтиками, затем переведен в инкубаторе.

Доноры мозгасекционирования и RMS трансплантации

  1. Доноры мозга (мозг выражения флуоресцентные журналистам в миграции нейробластов) подразделяются на 250 мкм толщины и ломтиками собираются в ледяной буфера подготовки ткани.
  2. Ломтики немедленно помещены под микроскоп с рассекает epifluorescence возможностями, и RMS мягко микродиссекции, используя микро щипцами. Один щипцы для стабилизации срез, а другая используется, чтобы сделать небольшие разрезы вокруг RMS, пока не будет освобожден от среза. Вырезали RMS затем разрезается на мелкие эксплантов (около 200-500 мкм в диаметре) до трансплантации.
  3. Стекло-дно блюд, содержащих хост ломтиками расположен на nucleopore фильтры удаляют из инкубатора и помещен под рассекает микроскопом. Использование видимого света, RMS четко определены и небольшой надрез в начальном сегменте RMS.
  4. Использование пипетки оснащен 20 мкл наконечник, одного донора RMS эксплантов передается надрезанные сайта в принимающей RMS. Эксплантов мягко толкнул в разрез, чтобы наладить контакт между 2 тканях. Чтобы обеспечить этот контакт является стабильной, эксплантаты выталкиваются слегка между нарезать и мембранные nucleopore.
  5. После того как все хост ломтики с RMS пересаживают, блюда вернулся в инкубаторе в течение по крайней мере 1 час, чтобы разделы поселиться на мембране. Нейробластов должны начать мигрировать из эксплантов в принимающее RMS примерно через 1-2 часов.

Покадровый изображений миграцию нейронов

  1. Стеклянным дном блюд передаются из инкубатора в инкубировали камеры на микроскоп (рис. 3С). Флуоресцентные нейробластов может быть отображены с интервалом в диапазоне от 0 до 10 минут в зависимости от типа анализа лучшего. Например, мы цитоскелета изображение динамики в процессе миграционного цикла отдельных нейробластов, установив наши интервалы меньше или равна 2,5 минуты. Тем не менее, динамика популяций, таких как ориентация и скорость миграции лучше захватил с интервалом от 5 до 10 минут. Выбор целей сильно варьирует в зависимости от марки микроскоп. Для Nikon C1 конфокальной микроскопии, получаем, что 20-кратный объектив сухой (Nikon Пан Fluor, Н. А. 0.75, WD 0,35 мм) является наиболее подходящим для нашего анализа. Для достижения наилучших результатов по этому конфокальной системы, отверстие открывается для среднего размера (диаметром 60μm). Для наиболее подходящего миграционного поведения, работы с изображениями ограничивается клетки глубоко в толщину RMS, по крайней мере 20 мкм от одного из разреза поверхности среза. Мощность лазера должны быть оптимизированы так, чтобы она как минимум, но это детали отдельных нейробластов остаются видимыми.
  2. После завершения визуализации ломтиками может быть исправлено с ледяной холод, и свежеприготовленный 4% параформальдегида, immunostained, и установлены на салазках для дальнейшей обработки изображений. Так как мы не пальто наши мембраны с любого приверженца субстратов, таких как ламинин, ломтики обычно уплывают от мембраны, как только они погружаются в окрашивании буферов. Разделы изображаются при сохранении их толщину 150 мкм. Возможно также, чтобы cryopreserve и заморозить ломтиками и использования криостата для получения тонких разделов оригинальной ломтиками. Однако, это приведет к увеличению заболеваемости артефакты в окрашивании, а также изменить целостности тканей.

II. Материалы / оборудование

Подготовка блюд со стеклянным дном для органотипической ломтиками

  • Малый шприцы (1 мл)
  • 23-иглы
  • Nucleopore Трек-Etch Мембрана - диаметр 25 мм, поры 8.0μm размера - Ватман, кошка # 110614
  • Со стеклянным дном культуры блюда - 35 мм чашки Петри, 14мм Microwell, № 1,5 покровного стекла - Маттех, кошка # P35G-1.5-14-C
  • Резиновые Цемент -, кошка Элмер # E904
  • Базальные Средний Орел - Gibco, кошка # 21010
  • 1M Hepes (pH7.4)
  • 1M D-глюкозы
  • 100mM CaCl 2
  • 100mM MgSO 4
  • 1M NaHCO 3
  • дН 2 O
  • 200 мМ L-глутамина
  • Пенициллин-стрептомицин

Извлечение мозга и вложение

  • Анестетики (isofluorane и т.д.)
  • Микроволновая печь
  • Низкий плавления агарозы - Фишер, кошка # BP1360-100
  • Krazy клея - кошка # KG585
  • Пил-A-Way Одноразовые Формы Вложение (R-40) - 22mmx40mm прямоугольная, 20 мм в глубину - Polysciences, кошка # 18646C

Срезов мозга и трансплантации RMS

  • Vibratome - Leica VT1000S и все комплектующие детали для подготовки ломтик
  • Сбалансированный Соль 10X Хэнка Solution - Gibco, кошка # 14185
  • Microdissecting щипцов # 5 - Roboz, кошка # RS-4976
  • Microspatula - Фишер, кошка # 21-401-15
  • Стереомикроскоп

Покадровый изображенийорганотипической ломтиками

  • Увлажненный инкубатор, 5% СО 2
  • Перевернутый Микроскоп оснащен камерой инкубатор и междугородние рабочих целей (NA 0.6 или выше)

III. Рецепты

Буферный раствор для вскрытия ткани и нарезать подготовки (буфер ткани подготовки)

Основной раствор Объем Заключительные Concetration
10X HBSS 50 мл 1X
1M Hepes (рН 7,4) 1,25 мл 2,5 мм
1M D-глюкозы 15 мл 30 мм
1М CaCl 2 0,5 мл 1mM
1M MgSO 4 0,5 мл 1mM
1M NaHCO 3 2 мл 4мм
дН 2 O 430,75 мл

Фильтр стерилизуют при 0,2 мкм фильтр и хранить при 4 ° C.

Культура средой для органотипической ломтиками, тканей и обработки изображений (часть среды)

Основной раствор Объем Конечная концентрация
Базальные Средний Eagle 35 мл
Буфер подготовки ткани 12,9 мл
1M D-глюкозы 1,35 мл 20 мМ
200 мМ L-глутамина 0,25 мл 1mM
Пенициллин-стрептомицин 0,5 мл 100units / мл пенициллина и 0,1 мг / мл стрептомицина

Фильтр стерилизуют при 0,2 мкм фильтр и хранить при 4 ° C.

Подготовка низкой температурой плавления агарозном геле

Низкий температурой плавления агарозы разводят в ткани буфера подготовку на 0,3 г / мл в 50 мл коническую трубку (см. рецепты). Трубка микроволновой печи с шагом 5-10 секунд при высокой мощности. Количество шагом зависит от общего объема, по 10 мл, три шага (10-8-5 секунд каждый) должно быть достаточно. Трубки колпачок тщательно отвинтил между отопления шагом для освобождения давления воздуха и избежать взрыва трубы. Внимание должно быть принято как трубка содержание будет очень жарко. После агарозном полностью растворяется, трубки поддерживается в 37 ° С водяной бане в течение не менее 5 минут, чтобы дать стабилизации температуры перед использованием. Длительное воздействие комнатной температуры затвердевает гель. Хотя это должно избегать, насколько это возможно, закаленные гель можно разогревать и повторно расплавленного к немедленному использованию в течение 24 часов начальной подготовки.

Immunohistochemistry на органотипической ломтиками

После изображений по конфокальной микроскопии, ломтики может быть установлен в течение ночи при 4 ° С с 4% формальдегида в PBS. Разделы затем блокируют течение ночи при 4 ° С, в 10% сыворотки козьего с 1% Тритон Х (Sigma, кат. # S26-36-23) в PBS последующей инкубации в течение ночи с первичными антителами при 4 ° C. Флуоресцентно с метками козу вторичные антитела используются для визуализации (все разбавленный 1:1000, 1 час инкубации при комнатной температуре). Маркированный ломтики тщательно промывают 5-6 раз с ледяным PBS до монтажа на стеклах и coverslipping.

IV. Представитель Результаты

Наши органотипической протокол культуры ломтик была тщательно протестирована и оптимизирована за что последние несколько лет на предмет соответствия шаблону в миграции и ориентации. Анализ клеток эмиграции из эксплантов, полученных от мышей, в которых выражение красного флуоресцентного белка, АДС-помидор, индуцируется под промоутер нестин (нестин-Td помидор), показывает высокую направленность и быстрой миграции tdTomato + нейробластов в принимающее RMS ( Рисунок 4а). Высокая увеличение покадровой анализ показывает превосходное разрешение всей длине миграции нейробластов во время 20-минутной сессии визуализации (рис. 4В).

Ломтики с донорскими Td-помидор + клетки фиксировали и immunostained для различных клеточных компонентов в RMS. GFAP + астроциты и CD31 + судов крови были выявлены с помощью флуоресцентного иммуногистохимии (рис. 5А). Высокая увеличение анализ срезов окрашивали цитоскелета актина и тубулина белков выявить неоднородное выражение этих компонентов ячейки в разгар миграции (рис. 5B).

Антитела, используемые вэти примеры: кролик анти-RFP (Abcam, 1:250), кролика против GFAP (Dako, 1:1000), крысы анти-CD31 (BD Pharmigen, 1:100), мышь анти-актин (Санта-Крус, 1: 500), кролика против тубулина (Sigma, 1:1000), антимышиного Cy3 (Chemicon, 1:1000), козий анти-кролик AlexaFluor 647 (Invitrogen, 1:1000), козий анти-крыса AlexaFluor 488 (Invitrogen , 1:1000), козий анти-кролик AlexaFluor 488 (Invitrogen, 1:1000).

Рисунок 1
Рисунок 1. Подготовка стеклянным дном блюда для органотипической ломтиками. Множественные пятна клея расположены вокруг круглого стеклянным дном компонент блюда (красный), в результате чего одна сторона открыта для обмена среду из-под фильтра. 150 мкл каплю ломтик среда находится в центре стекло покровное. Мембраны nucleopore (синий) применяется затем, блестящей стороной вниз, обеспечивая при этом не быть пузырьков воздуха между покровным стеклом и мембраной. Один миллилитр ломтик среды (серый) распространяется в верхней части мембраны, и блюда инкубируют при 37 ° С до использования.

Рисунок 2
Рисунок 2. Извлечение мозга и подготовка к секционирования. (А) череп, предоставляемые надрезание кожу головы от шеи к морде (пунктирная линия вдоль средней линии). Череп затем разрезается вдоль и вперед, начиная с цистерны Magna, сделав 1 медиальных и 2 боковыми разрезами (по одному на каждой стороне, 2А). (B) бокового большинство аспектов коры и хвостового аспект ЦНС резекции для повышения стабильности ткани при vibratome секционирования. (CD) двух полушарий затем разделяют и помещен медиальной лицом вниз в форме вложения перед нанесением 3% агарозном геле, растворенный в тканях буфера подготовки.

Рисунок 3
Рисунок 3. Срезов мозга и кросс-трансплантации. (А) тканей хозяина подразделяется на 150 мкм толщины, и RMS-содержащие разделы тщательно позиционируется квартира на nucleopore оболочки холодным стеклянным дном посуды. (Б) Донор мозги (мозги выражения флуоресцентные журналистам в RMS) подразделяются на 250 мкм толщина и ломтиками собираются в ледяной буфера подготовки ткани. Доноров RMS является микродиссекции и нарезать небольшими эксплантов. Использование пипетки оснащен 20 мкл наконечник, индивидуальный эксплантов RMS передаются надрезанные сайта в принимающей RMS. (С) Через 1-2 часа инкубации, блюда передаются инкубировали этап на конфокальной микроскопии и миграции захватывается использованием покадровой съемки. Микрофотография является представителем низким увеличением образ типичного ломтик (серый) создана 1 час после трансплантации (красный эксплантов из tdTomato + RMS из доноров мыши; красная пунктирная линия линий RMS в принимающей срез).

Рисунок 4
Рисунок 4. Миграция нейробластов из эксплантов в принимающее RMS. (А) нестин-tdTomato + нейробластов (красный) мигрируют из эксплантов в принимающее RMS (пунктирная зеленая линия) 1 час после трансплантации. tdTomato + клеток вторжения RMS принимающей органотипической ломтиками двигаться в высоко ориентированные и быстрым способом от ОЭЗ и в сторону Оби. (B) миграционный цикл можно наблюдать в мощных покадровой образы нейробластов в течение примерно 20-минутный период. Шкала бар = 10 мкм.

Рисунок 5
Рисунок 5. Иммуногистохимическое оценки органотипической ломтиками. Эксплантированных нейробластов (красный) были зафиксированы в разгар миграции 12 ч после трансплантации. () Флуоресцентные иммуногистохимического окрашивания срез показывает плотные пул GFAP + астроциты (синий) и рассеянного CD31 + кровеносных сосудов (зеленый) в RMS принимающей срез. (B) цитоскелета изолированных tdTomato + мигрирующие клетки (красный) в хост RMS раскрывается путем совместного иммуноокрашивания с использованием антител против актина (синий) и тубулина (зеленый).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Миграцию нейронов в RMS является важным компонентом постнатального нейрогенез в обонятельной луковицы 1. Миграция через RMS происходит в плоскости, касательной к поверхности мозга. Касательной миграции нейробластов отличаются от радиально мигрирующих клеток по месту нахождения своих предшественников источника, а также различные судьбы их окончательного нейронных продукты 1, 2, 3. Относительно чистых населения касательно миграции клеток в послеродовом RMS делает это анатомически определяемых регионе оптимальной платформой для изучения механизмов тангенциальной миграции. Расшифровка клеточных и молекулярных механизмов миграции нейронов имеет решающее значение для понимания многих нервной болезни (например, в работе. 4). Это знание может еще больше облегчить выявление механизмов, которые лежат в основе формирования и распространения опухоли головного мозга (например, в работе. 5), и имеет важное значение для направления перепрограммировать нейробластов на сайты травмы или нейродегенерации в будущем нейронов стратегии замены.

Несмотря на огромный прогресс в последние несколько лет, современные представления о генетических и молекулярных механизмов, лежащих миграцию нейронов и их связи с конкретными событиями субклеточных остается фрагментированным. Большая часть трудностей в принятии вглубь развиваются в этом занятии происходит из-за уверенности в большинстве исследований миграции на фиксацию ткани и иммуногистохимии, которые были использованы, чтобы сделать косвенные выводы о механизмах миграции в RMS и других миграционных потоков в эмбриональном мозге. "Фиксированных" подход субоптимальные поскольку он только представляет собой срез клетки, в то время как временное разрешение является ключевым требованием для понимания весьма динамичный процесс, таких как сотовые миграции. Некоторые глубоких исследований обратились механизмы клеточной миграции с использованием в пробирке метод, посредством которого эксплантов, похожие на те, которые используются в нашем протоколе, высевали на пластиковые или стеклянные подложки покрыта компонентов внеклеточного матрикса (например, работы. 6, 7). Хотя исследований с использованием этого теста выявили ряд механизмов, с четким распределением ролей в миграции, актуальность их выводов в естественных условиях остается неясной. Совсем недавно, в естественных условиях прямой визуализации нейробластов помощью расслоенных конфокальной микроскопии и МРТ было проведено 8-10. Тем не менее, такие методы выхода изображений с низким разрешением и, таким образом, недостаточным в субклеточных оценки миграции нейронов. Другой подход, всю подготовку горе разработанный Альварес-Buylla группы 11, был использован для получения важных физиологических открытий в регулировании subependymal нишу стволовых клеток 12-14. Тем не менее, этот элегантный подход не может быть использована для изучения миграции нейробластов в RMS. Предыдущие доклады использованием органотипической срезы для анализа миграции в эмбриональном 15 мозга и послеродовой RMS были опубликованы 16-18. Мы усовершенствовали этот подход, и представить здесь протокол, который обеспечивает высокую пропускную способность записи ориентацию, скорость и внутри-и межклеточных динамика миграции в RMS с высоким разрешением.

Представлен протокол создает некоторые проблемы, которые требуют практики, терпения, и посвятил время как подготовка и анализ результатов. Следующие рекомендации помогут с проведением данного протокола:

  • По нашему опыту, мышей в возрасте от P1 до P10 обеспечивает лучшие результаты. Возраст сопоставления между донором и реципиентом мозг и улучшает воспроизводимость экспериментов.
  • Так как большинство реагентов и культуры блюд должна быть свежеприготовленной, наш срез анализа требует нескольких часов непрерывной подготовки и обработки изображений в один день. Как только мозг собирают последующим шаги должны быть выполнены как можно быстрее.
  • Между обезглавливание и подготовка ломтиками, все шаги должны быть выполнены с использованием ледяной реактивов и ткань манипуляции должны быть сведены к минимуму, чтобы избежать анатомические нарушения.
  • Инструментов, используемых для этих вскрытия должны быть стерильными и зарезервированные для живых тканей манипуляции только. Никогда не использовать средства, которые когда-либо были в контакте с фиксаторов, таких как формальдегид.
  • Ломтиками, как правило, жизнеспособной в течение 36 часов, с видимым снижением скорости миграции и ориентации от 24 до 36 часов. Остерегайтесь этого ограничения при планировании экспериментов и анализов.

Насколько нам известно, представлен анализ органотипической ломтик предлагает лучшие нынешний подход для расшифровки генетических и молекулярных механизмов нейробластов миграции из ОЭЗ в OB. С учетом новой информации относительно выражения сигнализации сетей в RMS 19, будущие эксперименты по ссылке определенысигнальные каскады на миграцию нейронов будут массово пользоваться нашим анализом. Наш протокол будет содействовать идентификации новых сигнальных молекул, которые могут регулировать миграцию нейробластов автономно, а также позволит исследователям для оценки роли хемокинов и выделяются факторы в регулировании миграции в неавтономных образом, как мы недавно продемонстрировали 18, 20 . Наша представлены методика может быть легко модифицирована для изучения стволовых клеток, дендритных / аксонального нарост, и целый ряд других тем, в развитии нейробиологии и взрослого нейрогенеза.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами установленными Университета штата Северная Каролина и ее колледжа ветеринарной медицины. Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgements

Мы благодарим Дэн Мак-Ухортер для повествующая протокол в видео. Эта работа проводится при поддержке гранта NIH 5R01NS062182, грант от Американской федерации по проблемам старения исследований и институциональных фондов присуждена HTG.

References

  1. Ghashghaei, H. T., Lai, C., Anton, E. S. Neuronal migration in the adult brain: are we there yet. Nat. Rev. Neurosci. 8, 141-151 (2007).
  2. Valiente, M., Marin, O. Neuronal migration mechanisms in development and disease. Curr. Opin. Neurobiol. 20, 68-78 (2010).
  3. Rakic, P. Evolution of the neocortex: a perspective from developmental biology. Nat. Rev. Neurosci. 10, 724-735 (2009).
  4. Jaglin, X. H., Chelly, J. Tubulin-related cortical dysgeneses: microtubule dysfunction underlying neuronal migration defects. Trends Genet. 25, 555-566 (2009).
  5. Carro, M. S. The transcriptional network for mesenchymal transformation of brain tumours. Nature. 463, 318-325 (2010).
  6. Wu, W. Directional guidance of neuronal migration in the olfactory system by the protein Slit. Nature. 400, 331-336 (1999).
  7. Hu, H., Tomasiewicz, H., Magnuson, T., Rutishauser, U., U, The role of polysialic acid in migration of olfactory bulb interneuron precursors in the subventricular zone. Neuron. 16, 735-743 (1996).
  8. Shapiro, E. M., Gonzalez-Perez, O., Garcia-Verdugo, M. anuel, Alvarez-Buylla, J., &, A., Koretsky, A. P. Magnetic resonance imaging of the migration of neuronal precursors generated in the adult rodent brain. Neuroimage. (2006).
  9. Vreys, R. MRI visualization of endogenous neural progenitor cell migration along the RMS in the adult mouse brain: validation of various MPIO labeling strategies. Neuroimage. 49, 2094-2103 (2010).
  10. Davenne, M., Custody, C., Charneau, P., Lledo, P. M. In vivo imaging of migrating neurons in the mammalian forebrain. Chem. Senses. 30, Suppl 1. 115-116 (2005).
  11. Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal. J. Vis. Exp. (2010).
  12. Shen, Q. Adult SVZ stem cells lie in a vascular niche: a quantitative analysis of niche cell-cell interactions. Cell Stem Cell. 3, 289-300 (2008).
  13. Tavazoie, M. A specialized vascular niche for adult neural stem cells. Cell Stem Cell. 3, 279-288 (2008).
  14. Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural Stem Cells Confer Unique Pinwheel Architecture to the Ventricular Surface in Neurogenic Regions of the Adult Brain. Cell Stem Cell. 3, 265-278 (2008).
  15. Polleux, F. &, Ghosh, A. The slice overlay assay: a versatile tool to study the influence of extracellular signals on neuronal. Sci. STKE. L9-L9 (2002).
  16. Murase, S. &, Horwitz, A. F. Deleted in colorectal carcinoma and differentially expressed integrins mediate the directional migration of neural precursors in the rostral migratory stream. J. Neurosci. 22, 3568-3579 (2002).
  17. Suzuki, S. O. &, Goldman, J. E. Multiple cell populations in the early postnatal subventricular zone take distinct migratory pathways: a dynamic study of glial and neuronal progenitor migration. J. Neurosci. 23, 4240-4250 (2003).
  18. Ghashghaei, H. T. The role of neuregulin-ErbB4 interactions on the proliferation and organization of cells in the subventricular zone. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 103, 1930-1935 (2006).
  19. Khodosevich, K., Seeburg, P. H., Monyer, H. Major signaling pathways in migrating neuroblasts. Front Mol. Neurosci. 2, 7-7 (2009).
  20. Jacquet, B. V. Analysis of neuronal proliferation, migration and differentiation in the postnatal brain using equine infectious anemia virus-based lentiviral vectors. Gene Ther. 16, 1021-1033 (2009).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics