自动子宫组织移植手术诱发子宫内膜异位症小鼠模型

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Summary

子宫内膜异位症手术诱导小鼠和大鼠子宫组织的自动移植到肠系膜动脉级联的描述。

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Pelch, K. E., Sharpe-Timms, K. L., Nagel, S. C. Mouse Model of Surgically-induced Endometriosis by Auto-transplantation of Uterine Tissue. J. Vis. Exp. (59), e3396, doi:10.3791/3396 (2012).

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Abstract

子宫内膜异位症是一种慢性,痛苦的疾病,其病因尚不清楚。此外,子宫内膜异位症的治疗,可以要求腹腔镜切除病灶和/或慢性疼痛和不孕症状的药品管理。已与子宫内膜异位症相关的成本估计为每年220亿美元,在美国的1 。为了进一步了解我们这个谜一般的疾病的基本机制的,动物模型已被采用。灵长类动物的自发发展子宫内膜异位症,因此灵长类动物模型最接近妇女疾病。然而,啮齿动物模型更具成本效益和随时可用2。我们在这里描述的模型,涉及到肠系膜(图1)自体子宫组织转移,并首次在大鼠 3,后来转移到鼠标的4 。手术引起的子宫内膜异位症的自体啮齿动物模型的目标是模仿在女性的疾病。我们和其他人曾在小鼠或大鼠镜观察到,在妇女疾病5,6子宫内膜异位病灶观察表明,改变基因的表达模式。鼠标在执行手术的优点之一是,大量的转基因小鼠品系可以帮助研究人员确定的具体组成部分子宫内膜异位症的建立和发展中的重要作用。另一种模式,即切除子宫内膜碎片是免疫功能低下小鼠的腹膜也被广泛使用,但受限于缺乏正常的免疫系统被认为是在子宫内膜异位症2,7的重要。重要的是,手术引起的子宫内膜异位症的小鼠模型是一个通用的模型已被用于研究免疫系统8,9,10和 11,12激素环境因素如何影响子宫内膜异位症,以及子宫内膜异位症的影响,对fertility 13和痛苦14。

Protocol

1。规划活畜手术

  1. 确保相应的审批已收到与实验动物工作。
  2. 订购小鼠,并允许至少一个星期驯化新的环境。
  3. 雌性小鼠安置在接触到男性费洛蒙的情况下,可以停止循环,这种现象被称为滕效果15,16。为了保持骑自行车转移小鼠尿液浸泡过的男性床上用品的女性笼,每5天。另外,如果使用开顶式网箱,地方两个男性笼之间的女性笼保持经常骑自行车的女性。
  4. 确保通过阴道细胞学分析,老鼠是骑自行车,每天至少一个星期前手术(见表1)17。
    1. 使用蜡铅笔创建8个分区载玻片上,使阴道分泌物涂片检查可收集来自多个小鼠。
    2. 0.2-0.25 mL生理盐水或蒸馏水,用吸管冲洗阴道。是SURE的地方,只是在阴道口吸管,滴管宫颈的刺激,可能会导致假孕。将载玻片上的细胞类型分析的阴道灌洗。幻灯片可以读鲜(湿),或者固定的方法和研究使用标准光镜下17。
  5. 收集,清洗和消毒所有必要的手术设备,一个成功的无菌手术(见材料部分 ) 18。
  6. 准备在PBS镇痛使用无菌技术,提供0.2毫克/千克的最终剂量丁丙诺啡的解决方案。丁丙诺啡解决方案的浓度应为0.0333 mg / ml的假设,成人平均C57BL / 6小鼠重约0.025公斤皮下注射量的0.15%毫升鼠标。丁丙诺啡可提前准备的时间和存储作为等分。请注意,丁丙诺啡是一个附表第三类受控物质需要一个DEA许可证和详细的库存日志。
  7. 准备用青霉素(100 U /毫升)和链霉素(100微克/毫升)无菌PBS。
  8. 同步转移尿浸泡的男性床上用品的女性笼72小时 15诱导发情周期。

2。活的动物手术准备手术区

  1. 准备手术区域,如前面所述 18 。
  2. 准备通过设置电动快船,眼药膏,和手术磨砂准备区。
  3. 准备放置在手术区循环热水加热垫来维持整个手术体温手术区。放置一个以上的循环热水加热垫无菌防水垫。安排的手术器械,缝合,无菌玻璃培养皿中,活检冲床,无菌纱布,伤口剪辑和伤口无菌手术领域的剪辑撒施。
  4. 准备恢复区放置循环热水加热垫中途UNDER一个空笼子,让老鼠移动带走热量,如果需要的话。

3。准备手术的麻醉和鼠标

  1. 记录鼠标的重量和评估阴道细胞学检查,确定发情阶段。
  2. 麻醉诱导,放置在一个空的麻醉室(含固为异氟醚门户盖的空笼)鼠标。打开非再吸入异氟醚麻醉系统,蒸发器,并设置4%异氟醚(0.5至1 L / min的氧流量)。
  3. 当鼠标在麻醉状态下开关一个锥形的异氟醚流(30-60毫升注射器鞘)和地方鼠标的鼻子和嘴在编制表上的锥。低浓度的异氟醚可维持足够的麻醉,整个手术(〜2.5-3.5%异氟醚)的其余部分。足够的麻醉深度应由脚趾捏刺激了否定的答复。
  4. 应用眼药软膏吨o避免在手术过程中眼睛干燥。
  5. 使用小型电动指甲刀,刮手术的部位。
  6. 消毒和准备手术的部位与洗必泰擦洗和70%的乙醇的三个交替挥笔。
  7. 披风用无菌领域的动物。

4。子宫结扎

  1. 设为一个小正中切口(1厘米)或者使用小剪刀或手术刀刀片结束0.5 - 1.0厘米,喙阴道口。
  2. 插入刀片之间的体壁和腹壁开放封闭的剪刀。轻轻钝性解剖切口周围的区域,慢慢地打开和关闭腹壁充分从皮肤上脱落的剪刀。可仔细剪断剩余可见腹壁切口周围皮肤之间的粘连。未能充分钝性解剖切口部位将关闭腹壁更加困难。
  3. 使用小Forceps,轻轻地找到左侧子宫角。子宫是背肠,这是什么,你会看到在第一次进入切口部位。在某些情况下,最简单的方法是,首先找到卵巢和卵巢脂肪垫。轻轻拉出子宫角和幻灯片它下面的一个开放的镊子作为一个拉钩。如果需要的话,请注意此时的卵巢和子宫的诱导发情阶段(见表1)的更多信息的外观。
  4. 伸出子宫角下方,轻轻滑入两个6-8厘米5-0黑色编织丝线缝合件(不带针)。
  5. 安全结扎子宫tubual的交界处(只是尾椎输卵管)和子宫颈交界(喙宫颈)在每个位置使用一个平结的号角。离开的那一刻缝线的两端。
  6. 剪出两国结扎子宫角和地方组织在无菌玻璃培养皿conta状态寄存器〜100μL的PBS含青霉素(100 U /毫升)和链霉素(100微克/毫升)。切的丝线缝合两端。如果缝线松动或有出血,找到断端,并配合另一个结。

5。准备从切除子宫内膜异位植入

  1. 虽然切除子宫是被操纵的,用无菌纱布覆盖腹部,并用无菌PBS含青霉素和链霉素需要保持水化。
  2. 剥开的脂肪切除子宫角。
  3. 如果需要,权衡切除子宫角。
  4. 打开子宫角插入管腔小剪刀的刀片(14毫米刀片长度),并轻轻向下滑动角子宫剪刀按住钳的号角。
  5. 在玻璃培养皿中,用2毫米的活检冲床切出三个相同大小的植入。

6。缝合腹腔子宫内膜异位植入

  1. 广场灭菌发送立即以上的切口部位,彻底无菌PBS含青霉素和链霉素湿的纱布。
  2. 具有体积小,顺利钳轻轻地发现盲肠和小肠rostrally沿着。拉出的小肠小(4-5厘米)的部分,至少有两个动脉离盲肠,并安排它就像一个预湿纱布上的风扇,使肠系膜动脉级联清晰可见。一定要保持肠道湿润,在任何时候,用无菌生理盐水。注:不使用鼠齿钳,同时处理排便。
  3. 6-0黑ethilon缝合使用的P - 1,11毫米,3 / 8圈,反向切割针轻轻地缝合一个植入动脉约0.5厘米的肠管。
  4. 注:肠系膜是由薄薄的一层腹膜覆盖。周围动脉缝合时要小心,使通过这一层干净的传递。通过缓慢而仔细地拉出缝合撕裂腹膜或破裂动脉。
  5. 完成两节一抛出,小心不收紧缝合很难,因为这样做可能会导致血流量,随后坏死的小肠和死亡的损失。修剪内植入2毫米缝合。湿肠再继续保持移动到下一个植入前的水化。
  6. 在延髓的方向移动,未来3-4厘米的小肠拉出并轻轻地取代部分已经包含一个植入。从以前的植入部位跳过一个或两个动脉缝合植入未来。重复第三植入。
  7. 替换所有的肠管在腹腔。

7。深水手术

  1. 深水手术是无组织缝合肠系膜除外子宫内膜异位症手术中使用相同的步骤。
  2. 海关在左侧子宫角,在第4步。
  3. 子宫内膜异位植入物(步骤5)不准备在假手术。 “切除子宫角,可以丢弃或用于其他目的,如果需要的话。
  4. 三个动脉周围放置缝线,但没有组织,在第6步的肠系膜动脉级联。

8。关闭手术伤口

  1. 确保所有机关约回其解剖位置。
  2. 使用5-0薇乔缝线涂层在非环环相扣的连续缝合关闭腹壁。
  3. 使用9毫米伤口剪辑关闭皮肤。

9。恢复动物

  1. 0.15 ml/25克鼠标,通过剂量为0.2毫克/公斤皮下注射0.33毫克/毫升丁丙诺啡管理。丁丙诺啡是手术后管理,以防止进一步的心血管/呼吸抑制,可以延长恢复过程。
  2. 鼠标轻轻擦干kimwipes或如果它已经得到了手术过程中的湿纸巾。
  3. 广场动物腹侧面朝下笼partially之上循环加热水垫,直到动物恢复和恢复胸骨斜卧(在五分钟吸入麻醉很快消失之内)。

10。手术后的护理

  1. 老鼠应该遵守每15分钟,直到他们能够保持,直到他们恢复他们的正常行为,手术后的胸骨斜卧,然后每小时。
  2. 手术后24小时内应该会出现正常小鼠。应每天监测小鼠的复苏和健康良好的迹象七至10天。
    1. 迹象表明,在健康状况不佳,疼痛,或窘迫的动物包括活性下降,自残,ungroomed外观,或弯腰驼背的姿势。
    2. 如果动物没有出现健康良好,手术后24小时内,无论是管理丁丙诺啡(0.2毫克/千克)或安乐死的动物。如果动物补充丁丙诺啡管理动物shoul 8小时内不改善D是安乐死肠坏死可能。
  3. 删除伤口片段诱导后的7-10天。
  4. 继续监测发情的周期性阴道细胞学检查实验时间。同步发情周期,以收集前72小时尿浸泡的男性床上用品转让步骤1.3中所述的女性笼。

11。剖检和组织切除

  1. 剖检时​​机是依赖于特定的研究问题和代表性的结果,并讨论进一步讨论。
  2. 安乐死的二氧化碳窒息的鼠标。
  3. 收集心脏上1CC注射器使用的23号针头穿刺的“血液”(如果需要)。
  4. 收集阴道细胞学涂片,如上所述,以确定在发情阶段的时间收集17。
  5. 切子宫输卵管交界剩余的子宫角,子宫颈,去除脂肪,称重,和过程所需(见11.14和11.15)。
  6. 找到子宫内膜异位病灶周围的黑色缝线。照片不变,如果子宫内膜异位病灶所需。
  7. 仔细解剖用小剪刀和镊子的子宫内膜异位病灶周围的粘连,小心,不要枪的病变。快速,细致地工作,以防止RNA降解。
  8. 测量和记录使用卡钳的子宫内膜异位病灶的长度和宽度。
  9. 海关子宫内膜异位病灶和纸巾上沾用PBS。删除任何非子宫内膜异位症的病变组织。在解剖显微镜或放大镜站可用于援助在解剖。
  10. 权衡三个充满液体的子宫内膜异位病灶,以消除缝合前。
  11. 轻轻地取出缝合子宫内膜异位病灶。
  12. 对于组织学,福尔马林修复一个充满液体的子宫内膜异位症病灶我两个小时,三个30分钟的PBS洗涤和最终存储N 70%的乙醇。脱水和石蜡嵌入。
  13. 兰斯两个子宫内膜异位病灶。权衡这些了。自循环荷尔蒙的变化可以改变囊液量,这给衡量组织湿重,除了囊肿的重量加在11.10被测流体。
  14. RNA分离和基因表达研究,立即均质lanced子宫内膜异位症病灶裂解约束力的解决方案和存储(或子宫组织〜20微克),在-80 ° C RNAqueous试剂盒(Ambion公司)或其他方法为未来的RNA隔离理想。
  15. 对于未来的RNA,DNA或蛋白质隔离,立即抢购冻结第二lanced子宫内膜异位症病灶(或〜20微克子宫组织)在液氮和存储于-80 ° C。

代表性的成果

在手术引起的子宫内膜异位症小鼠模型的子宫内膜异位病灶形态和组织学与观察妇女。子宫内膜异位症的妇女和小鼠模型的组织学分析表明,子宫内膜异位病灶中含有子宫内膜腺体和间质(图2A)。在小鼠子宫内膜异位病灶中还含有含铁血黄素的巨噬细胞,这是一个妇女常见的子宫内膜异位症标志在(图2B)19。

子宫内膜异位病灶去除从小鼠诱导后3天出现红肿和出血(图3A)。经过两到四个星期在小鼠模型子宫内膜异位病灶增长囊肿样,充满液体和腹膜粘连包围(图3B及3C)。诱导病变的重量相比,充满液体的病灶分别为306%和862%在一两个月后上岗和lanced病变分别为51%和172%较大,分别(图4A和4B)。我们已取得一致的流体填补,并在一个月后上岗lanced子宫内膜异位症病灶重量超过五个不同的实验(图5)。在1个月后duction充满液体(7.44 ± 3.75毫克)和lanced(2.92 ± 1.23毫克)子宫内膜异位症病灶重量均显着相关(Pearson相关系数= 0.669,P <0.001)。

鼠标年龄不影响小鼠病灶大小为3到10之间个月的年龄。无论是充满lanced子宫内膜异位症病灶的重量,或在1个月的流体诱导后显着与动物年龄(R = -0.136,P = 0.380和r = -0.063,P = 0.698 )。

小鼠子宫发生变化的大小,液体潴留,细胞增殖和外观由于类固醇激素的在发情周期的影响。我们从不同的发情阶段的动物,其余完好的子宫角的重量相比,子宫内膜异位症病灶重量。我们没有发现显著的相关性之间的子宫重量和填充液体或lanced子宫内膜异位症升esion体重在一个月后感应(R = -0.046,P = 0.765 r = 0.232,P = 0.155,分别)。

密切观察小鼠的子宫内膜异位症病变的基因表达模式的镜子,在妇女疾病的5报道。 3天诱导后基因调控的细胞外基质重塑,细胞粘附和血管生成高度上调,这些基因中的许多人仍然通过一个月增长上调。

图和表

图1
图1。诱导自体组织移植在小鼠子宫内膜异位症手术。左侧子宫角结扎,切除,并打开纵向暴露子宫内膜。 3个2毫米2活检准备,每个缝合动脉动脉级联在肠道mesenteRY。一个月后上岗,子宫内膜异位病灶充满液体和周围粘连。

图2
图2苏木精和曙红染色部分从子宫内膜异位症的小鼠模型,在1个月后上岗的子宫内膜病变展示(一)存在子宫内膜腺体间质。比例尺= 50μm和(二)含铁血黄素巨噬细胞,其中有些是由箭头表示;比例尺= 20微米。

图3
图3。子宫内膜异位病灶,在小鼠模型以下安乐死,要么诱导后3天(A)或1个月后感应(B和C) 。

图4
图4小鼠子宫内膜异位病变手术引起的有EN 。dometriosis切除重达一两个月后上岗。数据平均± SEM。数据日志转化和不同的字母表示单因素方差分析的意义在每个小组由片面费舍尔的最小显着差Mulitple比较。 (一)一样,充满液体的子宫内膜异位病灶囊肿(N = 10,或诱导,1个月,或2个月后上岗,分别为5)。 (二)Lanced子宫内膜异位病灶(N = 10,8,或诱导,1个月或2个月后上岗7)。

图5
图5。子宫内膜异位病灶湿重流体,并在1个月5个独立的实验后诱导lanced。数据平均± SEM。小鼠N = 10,6,8,7日和7充满液体的病变和0,7,10,8,并在实验1,2,3,4和5,分别lanced病变8。

表1 表1。发情期的观察阴道细胞学和卵巢和子宫和感应的视觉外观。
卵巢和子宫的外观将随时间变化的。以下是基于牺牲每个周期日上午上午8:00左右。此外,观察是主观的,比较卵巢和子宫角,将是一个更好的估计只比子宫角。这些意见是为了补充每天阴道细胞学检查读数获得的信息。

表2
表2。手术在大鼠和小鼠的比较

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Discussion

有几个关键参数,应当指出,在执行子宫内膜异位症手术诱导小鼠。首先,子宫内膜异位症是一种雌激素依赖性疾病,应在完整的动物,或者在去卵巢动物辅以雌激素 20进行这种手术。二,缝合子宫内膜活检动脉级联必须格外小心。我们发现,只有两个有一个相对宽松的结抛出保持活检,同时防止结扎肠和随后的组织坏死和动物死亡的血液供应。我们强烈建议练上几个小鼠前实际实验,以确保缝线放置足够的安全,组织是不会丢失,但不能太紧,导致肠坏死。第三,它是非常重要的,保持在肠组织的S,用无菌PBS含青霉素和链霉素水合urgery。第四,应采取努力,以确保子宫内膜异位植入物的大小是一致的。为此,我们使用了2毫米活检冲床切除子宫组织创建的一贯大小的子宫内膜异位植入物。

有几次修改,可向本议定书,以适应个人的需要和科学问题的研究人员。一个潜在的修改涉及到荷尔蒙的动物形象。基因和蛋白表达在子宫内膜异位症病灶,其余完好的子宫角和免疫系统可直接收集在发情周期阶段的时间的影响。有几种方法来控制的发情阶段,在收集时,与自身的优势和劣势。例如,完好,骑自行车的动物,可以同步转移到女性笼前三天感应或收集等,动物尿浸泡的男性床上用品,手术INDUCED和收集在同一发情阶段15。如果使用完整的单车动物,发情期的周期性应每天监测检查阴道细胞学检查 17 。这更有关生理的优势,但实现周期同步是不是100%成功。另外,完整的动物可同步外源性促性腺激素管理21,22。这种方法虽然较为准确,产生的雌激素水平高于正常。另一种方法已ovariectomize动物,并通过一个硅橡胶囊,微型渗透泵,或每天注射 4,8的外源激素的不断水平。这种方法获得一个统一的激素轮廓在许多动物的优势,而且是不利的,因为动物不会骑自行车。

深水手术可以进行评估,其中影响接受手术与影响attributab乐子宫内膜异位症。假手术去除左侧子宫角和缝线周围动脉,肠系膜动脉级联,但没有子宫内膜异位植入缝合5,8,23。另外,从切除子宫角去除的脂肪可以缝合肠系膜 3,14 。我们最近报道,有假子宫和完整的剩余手术引起的子宫内膜异位 5动物的子宫角之间的cDNA微阵列基因表达相对较少的差异。此外,采用实时定量PCR七个子宫内膜异位症相关的基因,我们发现,只有结合珠蛋白表达显着不同,在深水和子宫内膜异位症小鼠的子宫。 Lee等人。然而,差五个从小鼠子宫的基因表达诱导子宫内膜异位症相比,深水控制 23 。这表明,存在子宫内膜异位症lesioNS可能会导致基因表达的改变,在在位子宫。

手术引起的有子宫内膜异位症的小鼠集合的时间应确定具体的研究问题。收集小鼠诱导后3天,允许一个评估的关键,早在建立子宫内膜异位症的事件,包括最初的中性粒细胞和machrophage浸润和细胞因子的产生有报道先前8。我们已经证明,收集子宫内膜异位病灶,后上岗3天小,hemorraghic,并有显著改变基因表达的相对剩余的子宫角4。两周后诱导的子宫内膜异位病灶已经非常成熟,并经常形成囊肿样结构。鼠标,子宫内膜异位病灶继续扩大规模,由充满液体的重量评估和确定病变的长度,宽度和heig量lanced病变(图4)以及通过两个月后上岗9 HT测量。

如上所述,子宫内膜异位症的手术模型首次在大鼠仍然广泛使用 3 。当在大鼠进行这种手术中,我们提出以下修改的协议,如表2总结。在大鼠,所用的缝线都是4-0大小,可以而且应该联系更加紧密。此外,我们进入腹腔肠系膜缝合6个5 毫米 2植入子宫内膜异位症。

在这个协议中,我们描述吸入麻醉剂的使用,异氟醚。另外,结合注射麻醉剂氯胺酮和Domitor(medetomidine盐酸盐),或可以用另一种α- 2激动剂组成,虽然恢复时间较长。管理,intraperiotneal注射75毫克/公斤的氯胺酮,是一个以最小的急性疼痛的分离性麻醉剂,减轻属性ND是一个附表三的药物,需要一个DEA许可证和详细的药品库存。 Domitor,1毫克/公斤管理,是一种α- 2肾上腺素受体激动剂,很容易扭转Antisedan(atipamezole盐酸盐)管理。 Domitor是一种镇静,肌肉松弛,疼痛缓解。 Domitor和氯胺酮可以提前准备的时间在使用无菌技术相结合的PBS。 Antisedan,扭转Domitor剂,可以结合丁丙诺啡在PBS准备,并应在1毫克/千克手术后管理。丁丙诺啡也是附表三药和替代品,包括非甾体类消炎药banamine(氟尼辛葡甲胺)和酮洛芬。

由于所有车型有一定的局限性,在啮齿类动物的子宫内膜异位症手术诱导。最重要的是,老鼠不会有月经周期,因此不自发发展子宫内膜异位症。在努力使啮齿动物MODEL生理类似的人类在一些研究人员选择注入自体或进入腹膜腔同源syngenic动物的子宫组织碎片的情况下直接缝合 24,25条件。在小鼠实验中,注入的组织形式子宫内膜异位囊肿样病变,然而,诱导注射方法似乎并不工作在大鼠组织未能重视和侵入腹腔 3 。

啮齿动物模型已被广泛用于研究的病因,病理,以及子宫内膜异位症的危险因素 2,8,26-29以及探索新的治疗 14,30-34 。手术引起的子宫内膜异位症的啮齿类动物模型表明在人类有许多相似之处的疾病,包括生育能力下降和繁殖力和改变基因和蛋白表达 5,6,35,36 。两者合计,其相对低廉的成本和随时可用,啮齿动物模型的手术INDUCED子宫内膜异位症是子宫内膜异位症妇女的优秀典范。

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Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgments

克里斯Kassotis这个手稿的严格审查和奥黛丽贝利和斯科特Korte博士,约瑟夫比曼,艾莉森Curfman,保罗甘,布里奇特Neibreggue,雅各Redel,艾米施罗德,迈亚斯坦伯格和Stacey Winkeler特别感谢他们在优化援助这种模式在我们的实验室。提供资助的临床Biodetectives培训资助(NIH T90的)(KEP),密苏里州的生命科学大学本科生研究机会计划研究理事会,穆,穆研究委员会的赠款和NIH R21HD056441(SCN)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Wax pencil Fisher Scientific NC9954135
Glass slide Fisher Scientific 12-550-433
Eyedropper Fisher Scientific S79383
Standard light microscope for evaluating vaginal cytology smears
Buprenorphine HCL c3 (CARJET) 10X1ml Butler Animal Health Supply 022891
Sterile phosphate buffered saline (PBS) GIBCO, by Life Technologies 14040-117
10,000U/ml Penicillin, 10,000μg/ml Streptomycin in 0.85% NaCl Hyclone SV30010
Isoflurane Abbott Laboratories 05260-05
Isoflurane non-rebreathing anesthetic system
Recirculating hot water heating pad
30 ml syringe sheath Fisher Scientific 14-823-16G
Powder free sterile gloves Fisher Scientific 19020558
Ophthalmic ointment Major Pharmaceuticals 10033691
Small electrical clippers Wahl Clipper Corp. 9861-600
Chlorhexidine scrub Fisher Scientific NC9863042
70% Ethanol
Polylined sterile field Busse Hospital Disposables 696
Size 3 scalpel Fisher Scientific 22-079-657
Number 10 scalpel blades Fisher Scientific 22-079-681
Small surgical scissors Roboz Surgical Instruments Co. RS-5850
Small serrated semi-curved forceps Roboz Surgical Instruments Co. RS-5135
5-0 black braided silk suture Ethicon Inc. K870H
Sterilized pyrex glass Petri dishes Corning 70160-101
2 mm biopsy punch Miltex Inc. 33-31
Sterile gauze Kendall 1806
6-0 black monofilament ethilon nylon suture Ethicon Inc. 697G
Needle drivers (optional) World Precision Instruments, Inc. 500023
5-0 undyed braided coated vicryl suture Ethicon Inc. J490G
9mm Autoclip wound clips BD Biosciences 427631
Autoclip applier & remover BD Biosciences 427630
23G needle BD Biosciences 305193
1cc syringe BD Biosciences 301025
5X magnifying glass stand (optional) Fisher Scientific 14-648-23
10% Buffered formalin Fisher Scientific SF100-4
Calipers Roboz Surgical Instruments Co. RS-6466
Processing/embedding cassettes Fisher Scientific 15-197-700A
Biopsy foam pads Fisher Scientific 22-038-222
RNAqueous RNA isolation kit Ambion AM1912
Liquid nitrogen
Snap cap microcentrifuge flat top tube Fisher Scientific 02-681-240
Ketamine (optional) Sigma-Aldrich K4138
Domitor (medetomidine hydrochloride) (optional) Tocris Bioscience 2023
Antisedan (atipamezole) (optional) Sigma-Aldrich A9611

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References

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