Модифицированного метода EPA 1623, в котором используются Тангенциальный поток полые волокна ультрафильтрации и тепловой диссоциации шаги для обнаружения водной основе

Immunology and Infection
 

Summary

Этот протокол описывает использование тангенциального потока полые волокна ультрафильтрации система концентрации образца и тепло диссоциации в качестве альтернативных шагов для обнаружения водной

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Rhodes, E. R., Villegas, L. F., Shaw, N. J., Miller, C., Villegas, E. N. A Modified EPA Method 1623 that Uses Tangential Flow Hollow-fiber Ultrafiltration and Heat Dissociation Steps to Detect Waterborne Cryptosporidium and Giardia spp.. J. Vis. Exp. (65), e4177, doi:10.3791/4177 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Protocol

1. Тангенциальный поток полые волокна ультрафильтрации процедур

  1. Подготовка буферов и решения:

    Элюирование Решение (1 л):
    Для 1 л воды реагентом класс добавить 0,1 г полифосфат натрия, 0,1 мл Твин-80 и 0,01 мл Y-30 пеногаситель.

  2. Подготовить фильтр в сборе (рис. 1) в биологическом кабинете по безопасности:
    1. Вставьте Masterflex I / P 73 лаборатории трубы через Masterflex I / P Easy-Load напор насоса подключен к Masterflex I / P диск бесщеточный точности.
    2. Закрепить трубы на 0-60 бар, заполненный глицерином манометр оснащен ДНЯО филиала T-разъем на входе в насос голову с винтовым зажимом, и HDPE T-разъем на выходе из насоса голову.
    3. Соберите ретентат бутылку установки Nalgene 53-B заполнения / Вентиляция шапка с Masterflex L / S 15 лаборатории труб и Т-коннектор и обеспечение его 1 л бутылка Nalgene тяжелых полипропилена долг.
    4. Установите Masterflex L / S 24 т трубго щепотку зажим (зажим щепотку 2) и соедините его с ретентат бутылки HDPE T-разъем.
    5. Подключите Masterflex L / S 24 лабораторий из трубы манометр для Asahi Kasei Rexeed 25S высокого потока диализаторов с винтовым зажимом, а от диализа в ретентат бутылку. Использование заказных DIN адаптеры предназначены для размещения ¼ "ID трубы для подключения трубки к полые волокна ультрафильтр.
    6. Установите Masterflex L / S 24 лаборатории трубы с щепоткой зажим (зажим щепотку 1) и подключите его к 10 мл пластиковые пипетки с наконечником и хлопка зажигания в качестве линии поглощения образца, а затем присоединить шланг к HDPE T- разъем.
    7. Вставьте один конец Masterflex L/S-36 лаборатории трубы с рампой зажим и подключить трубку к стоков порт, расположенный рядом с выходом конце фильтра. Поместите другой конец в контейнер для отходов.
  3. Добавить 0,01% (вес / объем) полифосфат натрия на 10 л пробы воды и перемешать в течение 3 мин.
  4. Закрыть щепотку зажим 2и снимите вентиляционные крышки от ретентат бутылку. Все остальные зажимы должны быть открыты.
  5. Установка насоса направлении, чтобы переместить жидкость из T-разъем датчика давления (справа налево следующий рисунок 1). Регулировка скорости вращения насоса до 25% от максимальной скорости и включить насос.
  6. Когда ретентат бутылки на 2/3, открытый зажим щепотку 2 и быстро заменить вентиляционную крышку ретентат бутылку. Проверьте все строки и фитингов, чтобы убедиться в отсутствии утечек.
  7. Медленно увеличивайте скорость насоса к желаемой скорости фильтрации (примерно 1,5 л / мин), проверки на герметичность. Используя мерный цилиндр и таймера или расходомера, проверьте уровень фильтрата воды на выходе из канализационная линия (синяя L / S 36 трубки на рисунке 1). Воздушные пузырьки могут обычно образуются на выходе конце фильтра делает его трудно добиться стабильного давления и скорости фильтрации. Это исправляется, зажимая канализационная линия от руки на мгновение. Это действиеобычно коаксиальный пузырек воздуха в порту фильтрата и выйти через канализационная линия. Повторять по мере необходимости, имея в виду, что горох размер пузырьков воздуха часто неизбежны.
  8. Мониторинг процесса фильтрации. Измерьте и запишите давления и скорости фильтрации по мере необходимости. Давление не должно превышать 20 фунтов на квадратный дюйм. Рекомендуется, чтобы скорость фильтрации не должна превышать 2,0 л / мин. Важно, что объем воды в бутылке ретентат быть проверены, чтобы гарантировать, что он никогда не впадает. Это нормально, объем можно увеличить или уменьшить немного. Если объем воды в ретентат бутылка падает ниже 1/3, затем снимите вентиляционные крышки и близких щепотку зажим 2 на ретентат линии бутылки. Довести объем обратно около 2/3, откройте зажим и быстро заменить вентиляционные крышки, что обеспечивает плотное прилегание. Если объем в ретентат бутылка падает быстро и непрерывно, то обеспечить ретентат крышка бутылки плотно и вентиляционные крышки надежно встал на место, и что Tubiнг-прежнему находится в контакте с водой образца. Если эти вопросы не происходит, то вполне вероятно, что печать в ретентат крышкой бутылки плохо и должны быть заменены.
  9. Когда образец контейнер пуст, сразу близкий контакт 1 щепотка, снизить скорость насоса до 20% от своего максимума, удалить вентиляционные крышки от бутылок и ретентат закрыть рампы зажимом.
  10. Регулировка громкости образца в ретентат бутылку около 200 мл на ужесточение или ослабление рампы зажимом. После того, как объем составляет примерно 200 мл, затяните рампу зажим для элюирования шагов (1.11-1.12).
  11. Добавить 500 мл элюирования решение образца контейнера и промойте внутри контейнера. Поместите 10 мл пипетки, подключенного к линии поглощения образца в контейнер, содержащий элюирования решение. Убедитесь, что на съезд зажим закрыт. Открытое щепотку зажим 1 и близких щепотку зажим 2 мгновение составить элюирования решение.
  12. После 500 мл элюирования решение составлен, Близкие зажать зажим 1 и открытым зажимом щепотку 2. Позвольте элюирования решение распространить в течение 5 минут с помощью насоса со скоростью 20% от своего максимума.
  13. Регулировка громкости образца в ретентат бутылку около 100 мл на ужесточение или ослабление рампы зажим канализационная линия. Затяните зажим и рампы позволяет образца циркулировать в течение 1 минуты. Избегайте потянув воздух в трубы, обеспечивая объем образца в ретентат бутылку достаточно высок, чтобы покрыть L / S 15 трубы ввода ретентат бутылку.
  14. Обратное направление насос, который заставляет образца в ретентат бутылку. Дайте насосу работать в обратном направлении в течение 20 секунд в результате чего в общей сложности ~ 225 мл в ретентат бутылку. Выключите насос.
  15. Удалить Masterflex I / P 73 труб из головки насоса и отсоедините манометр. Отключите Masterflex L / S 24 трубы на выходе из полого волокна ультрафильтр. Держите трубку над ретентат бутылку, чтобы заставить оставшихся образца вретентат бутылку.
  16. Отключите все трубы из бутылки и заменить крышку вентиляции с не-вентиляционные крышки.
  17. Продолжайте IMS / IFA процедуру с ~ 225 ретентат мл.

2. Процедура разделения иммуномагнитных

  1. Подготовка буферов и решения:
    1. Позвольте буферы включены в Dynabeads: Cryptosporidium / Giardia комбинированный комплект до комнатной температуры.
    2. 1X SL-буфер: Добавить 1 мл 10X SL-буфера до 9 мл воды класса реагентов.
  2. Передача ~ 225 мл жидкости из бутылки ретентат помечены 250 мл коническую трубку центрифуги. Промойте ретентат бутылку в два раза по 10 мл реагента воды и добавьте полоскания в конической трубе центрифуги. Центрифуга подвески на 1500 мкг в течение 15 мин при 4 ° C, без тормозов.
  3. Тщательно аспирации супернатант из воздух-вода до 5 мл над упакованы для гранул, каждые 0,5 мл объема гранул (например, аспирация 15 мл над объем гранул 1,3 мл, и аспирата по 5 мл для гранул по 0,5 мл или менее).
  4. Тщательно ресуспендируют осадок в супернатант встряхивая и / или пипетки смешивания. Передача каждого 5 мл объема жидкости в плоской односторонней Dynal L10 пробирку, содержащую 1 мл каждый из 10х SL-буфер и 10Х SL-буфера B. Промыть конические трубки центрифуги в два раза с 2,5 мл реагента воды и добавьте в полоскание L10 трубы, в результате чего общий объем в L10 трубки 12 мл, в том числе буферов.
  5. Добавить 100 мкл хорошо перемешанных ресуспендированного против Cryptosporidium и анти-Giardia Dynabeads к L10 трубку. Поверните L10 трубы на 18 мин в течение 1 часа при комнатной температуре на поворотное устройство смесителя.
  6. Поместите плоскую сторону L10 трубки от MPC-6 магнитов и осторожно рукой рок конца трубы к концу, 180 ° в течение 2 минут.
  7. Ведение L10 трубки в MPC-6 магнита с магнитом вверх, перелить супернатант от борта / (оо) кисты комплексов бой к магниту. Снимите трубку L10 от магнита и добавляют 0,5 мл 1X SL-буфера к трубе. Передача подвески с использованием двух дополнительных полосканий по 0,5 мл 1X SL-буфер в 1,5 мл микроцентрифужных трубка проходит в MPC-S с магнитом в вертикальном положении.
  8. Осторожно покачайте трубу в MPC-S магнита 180 ° в течение 1 минуты. С магнитом в месте, аспирации супернатант помощью пипетки Пастера, направленных на дне микроцентрифужных трубку.
  9. Добавить 1 мл 1X PBS на передней стороне микроцентрифужных трубки, снимите магнит и рок трубку осторожно только до бисер ресуспендировали. Заменить магнит в вертикальном положении и мягко раскачивать трубы на 180 ° в течение 1 минуты. Аспирируйте PBS полоскания, не нарушая шарик шарик, с помощью пипетки Пастера, чтобы удалить как можно больше мусора, как это возможно.
  10. Удаление магнита и добавить 50 мкл реагента воды в обратную сторону микроцентрифужных трубку. Вихревые трубки на полной скорости в течение 50 секунд,затем инкубировать трубки при температуре 80 ° С в течение 10 минут, затем 30-секундный вихрь. Замена магнита в MPC-S в наклонном положении, связывая бисер с магнитом и оставить (оо) кисты в жидкости. Применить (оо) кисты подвески SingleSpot и слайдов.
  11. Повторите шаг 2.10, применение жидкого к тому же и содержащий первый диссоциации. Место слайдов на 37 ° C теплее слайд в течение 1 часа, чтобы высушить подвески на слайд хорошо.

3. Окрашивание и экспертиза

  1. Подготовка буферов и решения:
    Рабочие DAPI решение: добавить 25 мкл DAPI маточного раствора (2 мг / мл в метаноле) до 25 мл 1X PBS. Фондовый магазин и рабочих растворов от 1 ° C и 10 ° С в темноте.
  2. Применение 50 мкл метанола в слайд хорошо и дайте ему высохнуть при комнатной температуре.
  3. Добавить 50 мкл рабочего DAPI решения слайдов и инкубировать в течение 2 минут при комнатной температуре.
  4. Используйте KimwiPE для отвода DAPI из колодца. Применение 50 мкл EasyStain. Инкубировать при температуре 35 ° С в течение 30 минут.
  5. Вика пятно от хорошо Kimwipe, а затем медленно добавляют 300 мкл холодного буфера фиксации EasyStain, что позволяет ей течь над колодцем края. Выдержите в течение 2 минут при комнатной температуре.
  6. Используйте Kimwipe для отвода буфер из колодца и применять 10 мкл EasyStain Монтаж среднего.
  7. Осторожно применять покровное стекло, удаляя пузырьки, которые происходят. Закройте крышку скольжения с прозрачного лака для ногтей.
  8. Проверять весь слайд с помощью фильтра FITC, на общее увеличение 200Х, на яйцевидные или сферических яблочно-зеленый флуоресцентный объектов, которые похожи на ооцисты или кисты. Проверьте все такие объекты с фильтром 1000X DAPI на общее увеличение, а затем с ДВС, а также на общее увеличение 1000X. Запишите размер с помощью калиброванного микрометра глаз и морфологических характеристик.
  9. Документ результаты.

Примечание: Дополнительная информаразмещение информации об оригинальной методике, можно найти в декабре 2005 версия EPA Method 1623 12. Тангенциального потока полые волокна ультрафильтрации процедуру, описанную используется вместо раздела 12,0 из EPA Method 1623 году. Тепло диссоциации изменяется раздел 13.3.3 из EPA Method 1623 году. Эта процедура также описывает дополнительные PBS промыть в процессе IMS, который может быть вставлен в декабре 2005 года версия Метод 1623 после раздела 13.3.2.16. Полный список расходных материалов, реактивов и оборудования, используемых для EPA Method 1623 в том числе эти изменения перечислены в списке оборудования.

4. Представитель Результаты

Cryptosporidium и Giardia ооцист кисты возмещаться за счет процессов фильтрации и разделения иммуномагнитных обнаружен микроскопический анализ. На общее увеличение 200X, каждый организм выставке типичная картина окрашивания, размер и форму, как показано на рисунке 2 Cryptosporidium является яйцевидные, чтобы сферический объект от 4 до 6 мкм в диаметре, обладающего блестящей светло-зеленого цвета флуоресценции FITC с ярко подчеркнул края (рис. 3А ). С DAPI УФ, ооцисты представит одну из следующих категорий типичные функции: голубой внутреннее окрашивание с зеленой оправе и не отдельные ядра (DAPI отрицательный), интенсивный синий внутреннее окрашивание, или до четырех различных, небесно-голубой ядер (DAPI положительный - рис. 3б). Атипичная функции включают в себя отклонения в цвете, структуре, или DAPI флуоресценции (например, слишком много окрашенных ядер, красный флуоресцирующий внутренних структур). Если люминесцентные объекта соответствовали критериям для типичных FITC и DAPI окрашивания, она рассматривается использование кон дифференциальных помехконтраст (DIC). Объект проверяется на атипичные внешних или внутренних морфологических характеристик, таких как клеточная стенка орнаментом, либо один или два больших ядер заполнения ячейки. Если атипичных структур не наблюдается, объект регистрируется в общем количестве IFA и классифицируются как пустой аморфной структурой или с 3:59 спорозоитов настоящее время (рис. 3). Точно так же, как лямблии, объекты рассматриваются в связи с FITC и DAPI окрашивания, а также характеристики ДВС, как axonemes, средний органов, а также ядер Giardia кист раунд яйцевидные блестящей светло-зеленого цвета объектов, 8 -. 18 мкм в длину и 5 - 15 мкм, шириной с ярко подчеркнул края (рис. 3). С DAPI УФ, киста Giardia покажут DAPI-отрицательной окраски, или DAPI-позитивных характеристик (рис. 3Е). Люминесцентные объект рассматривается ДВС для типичных и нетипичных особенностей в том же порядке, как описано для Cryptosporidium.Если атипичных особенностей не наблюдается, объект регистрируется в общем количестве IFA и классифицируются как пустой содержащих аморфную структуру, или с одним или более типов внутренней структуры настоящее время (рис. 3F).

Любой организм, который наблюдается у атипичных особенностей не должны учитываться как (со) кисты. Микроскопический анализ проб окружающей среды, может оказаться сложной задачей, поскольку есть организмы, которые могут автоматически светиться или перекрестно реагируют с FITC-сопряженных против Cryptosporidium и / или анти-Giardia антител 1. Рекомендуется, чтобы аналитик быть знакомы с водной микробов и обзор десятков слайдов, чтобы получить опыт выявления Cryptosporidium и Giardia. По крайней мере, три (со) кисты на положительный слайд контроль окрашивания должна характеризоваться до каждой сессии в микроскоп.

Образцы для контроля качества может быть с шипами (оо) кист, чтобы определить процент RECOvery для каждого использования простейших расчетов:
(Оо) кисты Процент восстановления = ((КК Пример графа - граф из Unspiked Sample) / Spike) х 100.

Рисунок 1
Рисунок 1. Графическое представление тангенциального потока полые волокна ультрафильтрации системы. Трубка имеет цветовую маркировку, чтобы помочь является сборка системы.

Рисунок 2
Рисунок 2. Представитель флюоресценции образ Cryptosporidium и Giardia (оо) кист. Ооцист Cryptosporidium и Giardia кист окрашивали FITC меченые анти-Cryptosporidium / Giardia антител. Стрелки, Giardia кист, наконечники стрел, Cryptosporidium ооцист. В общей сложности четыре Cryptosporidium ооцист и шесть Giardia кист были обнаружены в плоскости фокуса. Образцы наблюдаемыхред под 200X увеличения.

Рисунок 3
Рисунок 3. Представитель микроскопические изображения и ооцист Cryptosporidium Giaridia кист используется для характеристики Cryptosporidium ооцист (А - С).. Блестящий яблочно-зеленый флуоресценции FITC сферические объекты от 4 до 6 мкм в диаметре, с ярко выделены ребра (A), содержащий до четырех различных, небесно-голубой DAPI ядер (B) и 3:59 спорозоитов (S) в ооцисты (C). Giardia кист (D - F). Блестящий яблочно-зеленый флуоресценции FITC раунд яйцевидные объекты 8 - 18 мкм в длину и 5 - 15 мкм, с ярко выделены ребра (D), содержащие до четырех небесно-голубой DAPI ядер (E) и с одним или более заметной внутренней структуры таких в качестве ядра (N), средний тела (M) и axonemes или (A) (F). Белые стрелки, блестящие яблоки зеленая флуоресценция окраски ооцист Cryptosporidium и Giardia кист WЗнайки, белые стрелки, DAPI положительных ядер. Образцы наблюдается при увеличении 1000X.

Discussion

Тангенциальный поток полые волокна ультрафильтрации является альтернативным и эффективный метод для начальной концентрации ооцист Cryptosporidium и Giardia кист из воды. Полые волокна ультрафильтрации дешевле, чем традиционные фильтры. Поскольку у него есть способность к концентрации ооцист Cryptosporidium и Giardia кист различных матриц воде является полезной альтернативой современные методы фильтрации для EPA Method 1623 году. Как и в большинстве других методов фильтрации, полые волокна ультрафильтрации подвержены загрязнению с очень мутной образцов. Высокое давление воды может возникнуть в результате загрязнения фильтра, поэтому он рекомендуется для контроля давления при фильтрации перспективе. В дополнение к Cryptosporidium и Giardia ооцист кисты, полые волокна ультрафильтрации было показано, что способен концентрировать бактерии и вирусы 1-3,5,8. Полые волокна ультрафильтрации оutlined в этот метод может быть использован для нескольких организмов концентрировать в одном образце. Стоит отметить, что получение конечного объема от 200 до 250 мл является критической последний шаг в концентрации процедуры, чтобы дополнительные шаги, центрифугирования, которые могут привести к (оо) кисты потери можно избежать (шаг 2.2). Тем не менее, благодаря чему объем в бутылке падает слишком низко может иметь неблагоприятное воздействие на восстановление, так как не будет достаточного объема жидкости, чтобы заставить всех ооцист или кисты в ретентат бутылку. Поэтому рекомендуется поддерживать конечный объем от 200 до 250 мл.

Тепло диссоциации является альтернативой кислоты шаг диссоциации Метод 1623. Этот альтернативный шаг приводит к улучшению восстановления ооцист Cryptosporidium и уменьшить метод изменения, когда изолированы от любой реке или реагентом вода 9. Бок о бок сравнение кислоты и тепловой диссоциации методов показали, что использование тепла диссоциациите организмы из бисера иммуномагнитных производства выше средних возмещений для Cryptosporidium и Giardia. Кроме того, точность Cryptosporidium и Giardia восстановление было лучше в образцах, обработанных с тепловой диссоциации по сравнению с кислотной диссоциации 9.

Включение HFUF как концентрация шаг позволяет более гибко, предоставляя возможность сконцентрироваться нескольких организмов. Кроме того, он является менее дорогой альтернативой текущим Метод 1623 вариантов фильтрации.

Disclosures

Окружающей среды США Агентство по охране через свое Бюро по исследованиям и развитию в сотрудничестве с Управлением грунтовых вод и Центр технической поддержки питьевой воды финансировала исследование описано здесь. Вся работа была поддержана на месте в охране окружающей среды США, Цинциннати, штат Огайо. Хотя информация, описанная в этой статье было профинансировано полностью или частично по охране окружающей среды США Агентство по охране по контракту (контракт EP-C-06-031) Шоу окружающей среды и инфраструктуры, Inc, это не обязательно отражают точку зрения Агентства и не официального утверждения должны быть выведены. Он был подвергнут агентства рассмотрения и одобрен для публикации.

Acknowledgments

Мы хотели бы поблагодарить Энн и Майкл Гримм Циммерман для критического обзора этой рукописи и Дуг Гамильтон за его техническую поддержку.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Asahi Kasei Rexeed 25 S/R wet hollow-fiber ultrafilters Dial Medical REXEED25S/R
I/P 73 (Masterflex R-3603), or equivalent Cole-Parmer EW-06408-73
L/S 24 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-24
L/S 15 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-15
L/S 36 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-36
I/P Precision Brushless Drive Cole-Parmer EW-77410-10
I/P Easy Load Pump Head Cole-Parmer EW-77601-10
Black HDPE Tee, 1/4"x 3/8" x 3/8" US Plastics 62064
Masterflex T-connector L/S 15-25 Cole-Parmer EG-30613-12
Nalgene heavy-duty pp 1 L bottle Cole-Parmer EW-06257-10
10 ml pipettes Fisher Scientific 13-678-11C
Nalgene filling/venting cap for 1/4" tubing, 53B Cole-Parmer EW-06258-10
Pressure gauge Cole-Parmer A-680-46-10
Straight coupling, NPT(F), 1/4" Cole-Parmer EW-06469-18
NPT branch tee, natural pp Cole-Parmer A-30610-75
Pinch clamps, 1/2" Cole-Parmer EW-06833-00
Custom fit DIN adapters Molded Products Corp MPC-855NS.250
Ring stand Fisher Scientific 14-670B
Ring stand clamps Fisher Scientific 05-769-6Q
Keck ramp clamp, 14mm Cole-Parmer EW-06835-10
Sodium polyphosphate Sigma-Aldrich 305553
Sodium thiosulfate pentahydrate Sigma-Aldrich 72050
Antifoam Y-30 emulsion Sigma-Aldrich A5758
Tween-80 Sigma-Aldrich P1754
10 L Collapsible high-density polyethylene cubitainer VWR international IR314-0025
Centrifuge bottle rack Fisher Scientific 05-663-103
250 ml conical centrifuge tubes Corning 430776
Disposable funnel Cole-Parmer U-6122-10
Wash bottle Cole-Parmer U-06252-40
Centrifuge Beckman Coulter Inc. Allegra X-15R
Swinging bucket rotor Beckman Coulter Inc. ARIES SX4750
Centrifuge bucket adapters for 250 ml conical tubes Beckman Coulter Inc. 349849
200 μl large bore pipette tips Fisher Scientific 02-707-134
VacuShield Filter Gelman 629-4402
5 ml pipettes Fisher Scientific 13-678-11D
Dynabeads: Cryptosporidium/Giardia combo kit IDEXX 73002
50 ml conical centrifuge tubes Falcon BD 352098
Dynal L10 flat sided tubes IDEXX 74003
Timer VWR international 23609-202
Dynal MPC-6 magnet IDEXX 12002D
1 ml pipettes VWR international 53283-700
1.5 ml low adhesion microcentrifuge tubes Fisher Scientific 02-681-320
1000 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P1000/DF1000ST
100 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P100/DF100ST
9 inch Pasteur pipettes VWR international 14672-412
Dynal MPC-S magnet IDEXX 12020D
Vortex VWR international 14216-188
Dynabeads rotator mixer IDEXX 94701
Heat block Fisher Scientific 11-718-2
Lab Armor Beads Lab Armor 42370-750
Digital thermometer Fisher Scientific 15-077-60
Phosphate-buffer saline 1X pH 7.4 (1X PBS) Sigma-Aldrich P4417
Single Spot slides IDEXX 30201
Cover glass Corning 287018
EasyStain direct kit BTF -
10 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P10 & DF10ST
4',6'-Diamidino-2-phenyl indole dihydrochloride (DAPI) Sigma-Aldrich D9542
Clear nail polish Fisher Scientific S30697
Methanol Fisher Scientific L6815
Kimwipes Kimberly Clark 34155
Incubator Boekel Scientific 133000
slide warmer Fisher Scientific 11-474-521
Immersion oil, Type A ND= 1.515 Nikon Instruments MXA20234
Nikon 90i microscope with DIC capabilities Nikon Instruments MBA 77000
Plan APO 100X oil objective Nikon Instruments MRD01901
Plan Achro 20X Nikon Instruments MRL00202
FITC filter Nikon Instruments 96302
DAPI filter Nikon Instruments 96301
X-cite fluorescence illuminator Nikon Instruments 87540
Lens paper Nikon Instruments 76997
Biohazard disposable bag Fisher Scientific 01-829D
Biohazard sharps container Fisher Scientific 14-827-117
3 % hydrogen peroxide VWR international BDH3540-2
Bleach Fisher Scientific 1952030
Wypall Kimberly Clark 34790

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. DiGiorgio, C. L., Gonzalez, D. A., Huitt, C. C. Cryptosporidium and Giardia recoveries in natural waters by using Environmental Protection Agency Method 1623. Appl. Environ. Microbiol. 68, 5952 (2002).
  2. Hill, V. R., Kahler, A. M., Jothikumar, N., Johnson, T. B., Hahn, D., Cromeans, T. L. Multistate evaluation of an ultrafiltration-based procedure for simultaneous recovery of enteric microbes in 100-liter tap water samples. Appl. Environ. Microbiol. 73, 4218-4225 (2007).
  3. Hill, V. R., Polaczyk, A. L., Hahn, D., Narayanan, J., Cromeans, T. L., Roberts, J. M., Amburgey, J. E. Development of a rapid method for simultaneous recovery of diverse microbes in drinking water by ultrafiltration with sodium polyphosphate and surfactants. Appl. Environ. Microbiol. 71, 6878-6884 (2005).
  4. Hill, V. R., Polaczyk, A. L., Kahler, A. M., Cromeans, T. L., Hahn, D., Amburgey, J. E. Comparison of hollow-fiber ultrafiltration to the USEPA VIRADEL technique and USEPA method 1623. J. Environ. Qual. 38, 822-825 (2009).
  5. Holowecky, P. M., James, R. R., Lorch, D. P., Straka, S. E., Lindquist, H. D. Evaluation of ultrafiltration cartridges for a water sampling apparatus. J. Appl. Microbiol. 106, 738-7347 (2009).
  6. Lindquist, H. D., Harris, S., Lucas, S., Hartzel, M., Riner, D., Rochele, P., Deleon, R. Using ultrafiltration to concentrate and detect Bacillus anthracis, Bacillus atrophaeus subspecies globigii, and Cryptosporidium parvum in 100-liter water samples. J. Microbiol. Methods. 70, 484-492 (2007).
  7. Polaczyk, A. L., Roberts, J. M., Hill, V. R. Evaluation of 1MDS electropositive microfilters for simultaneous recovery of multiple microbe classes from tap water. J. Microbiol. Methods. 68, 260-266 (2007).
  8. Rhodes, E. R., Hamilton, D. W., See, M. J., Wymer, L. Evaluation of hollow-fiber ultrafiltration primary concentration of pathogens and secondary concentration of viruses from. 176, 38-45 (2011).
  9. Shaw, N. J., Villegas, L. F., Eldred, B. J., Gaynor, D. H., Warden, P. S., Pepich, B. V. Modification to EPA Method 1623 to address a unique seasonal matrix effect encountered in some U.S. source waters. J. Microbiol. Methods. 75, 445-448 (2008).
  10. Simmons, O. D. 3rd, Sobsey, M. D., Heaney, C. D., Schaefer, F. W. 3rd, Francy, D. S. Concentration and detection of Cryptosporidium oocysts in surface water samples by method 1622 using ultrafiltration and capsule filtration. Appl. Environ. Microbiol. 67, 1123-1127 (2001).
  11. Sobsey, M. D., Glass, J. S. Influence of water quality on enteric virus concentration by microporous filter methods. Appl. Environ. Microbiol. 47, 956-9560 (1984).
  12. USEPA. Method 1623: Cryptosporidium and Giardia in Water by Filtration/IMS/FA. Office of Water. 815-R-05-002, EPA. (2005).
  13. Ware, M. W., Wymer, L., Lindquist, H. D., Schaefer, F. W. 3rd Evaluation of an alternative IMS dissociation procedure for use with Method 1622: detection of Cryptosporidium in water. J. Microbiol. Methods. 55, 575-583 (2003).
  14. Zuckerman, U., Tzipori, S. Portable continuous flow centrifugation and method 1623 for monitoring of waterborne protozoa from large volumes of various water matrices. J. Appl. Microbiol. 100, 1220-1227 (2006).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics