En opdateret EPA metode 1623, der bruger Tangential Flow Hollow-fiber Ultrafiltrering og Heat dissociationshastigheder trin til Detect Vandbaseret

Immunology and Infection
 

Summary

Denne protokol beskrives anvendelsen af ​​en tangentiel strømning hulfiber-ultrafiltrering prøvekoncentration system og en varme dissociation som alternative trin til påvisning af vandbårne

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Rhodes, E. R., Villegas, L. F., Shaw, N. J., Miller, C., Villegas, E. N. A Modified EPA Method 1623 that Uses Tangential Flow Hollow-fiber Ultrafiltration and Heat Dissociation Steps to Detect Waterborne Cryptosporidium and Giardia spp.. J. Vis. Exp. (65), e4177, doi:10.3791/4177 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Cryptosporidium og Giardia arter er to af de mest udbredte protozoer, der forårsager vandbårne diarré sygdomsudbrud på verdensplan. For bedre at karakterisere forekomsten af disse patogener, blev EPA metode 1623 udviklet og anvendt til at overvåge niveauer af disse organismer i USA drikkevandsforsyningerne 12. Metoden har tre hoveddele: den første er den prøvekoncentration, hvor mindst 10 L af rå overfladevand filtreres. Organismer og fanget rester derefter elueres fra filteret og centrifugeret for yderligere at koncentrere prøven. Den anden del af fremgangsmåden anvender en immunomagnetisk separation procedure, hvor den koncentrerede vand-prøve påføres immunomagnetiske perler, som specifikt binder til Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster muliggør specifik fjernelse af parasitter fra den koncentrerede debris. Disse (oo) cyster derefter adskilles fra de magnetiske perler med en syre dissociation procedure. Den sidste del af metoden er immunofluorescensfarvning og optælling hvor (oo) cyster anvendes på et dias, farves, og optælles ved mikroskopi.

Fremgangsmåden 1623 har fire angivne prøvekoncentration systemer til at fange Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster i vand: Envirochek filtre (Pall Corporation, Ann Arbor, MI), Envirochek HV filtre (Pall Corporation), Filta-Max filtre (IDEXX, Westbrook, MA), eller Fortløbende Flow Centrifugering (Haemonetics, Braintree, MA). Imidlertid har Cryptosporidium og Giardia (oo) cyster inddrivelser varierede meget afhængigt af kilden vandet matrix og filtre anvendt 1,14. En ny tangential flow hulfiber-ultrafiltrering (HFUF) er for nylig blevet vist at være mere effektive og mere robust på genvinding Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster fra forskellige vand matricer, og desuden er det billigere end andre kapsel filters og kan koncentrere flere patogener samtidigt 1-3,5-8,10,11. Hertil kommer, viste tidligere undersøgelser af Hill og hans kolleger at HFUF væsentligt forbedret Cryptosporidium oocyster inddrivelser, når sammenlignes direkte med de Envirochek HV filtre 4. Yderligere modifikationer af de eksisterende metoder er også blevet rapporteret at forbedre metoden ydeevne. Erstatte syredissociations procedure med varme dissociation blev vist at være mere effektive til adskillelse Cryptosporidium fra de magnetiske perler i nogle matricer 9,13.

Denne protokol beskriver en modificeret metode 1623, der bruger det nye HFUF filtreringssystem med varmen dissociationstrinnet. Brugen af ​​HFUF med denne ændrede metode er et billigere alternativ til de nuværende EPA-metode 1623 filtrering muligheder og giver mere fleksibilitet ved at tillade koncentrationen af ​​flere organismer.

Protocol

1. Tangential Flow Hollow-fiber Ultrafiltrering Fremgangsmåde

  1. Fremstilling af buffere og opløsninger:

    Elueringsopløsning (1 L):
    Til 1 liter reagenskvalitet vand tilsættes 0,1 g natriumpolyphosphat, 0,1 ml Tween-80 og 0,01 ml Y-30 antiskummiddel.

  2. Forberede filterkonstruktion (figur 1) i en biologisk sikkerhedsskab:
    1. Indsæt Masterflex I / P 73 Lab slange gennem en Masterflex I / P Easy-Load pumpehovedet forbundet til en Masterflex I / P præcision børsteløs drev.
    2. Fastgøre slangen til en 0-60 psi, glycerin fyldt trykmåler forsynet med et NPT gren T-konnektor opstrøms pumpehovedet med en skrueklemme, og en HDPE T-konnektor nedstrøms pumpehovedet.
    3. Samle retentatet flasken ved at anbringe en Nalgene 53-B fyldning / udluftningshætte med Masterflex L / S 15 lab slange og en T-konnektor og fæstnes til en 1 L Nalgene tunge polypropylenflaske.
    4. Fit Masterflex L / S 24 slanger wed en knivspids klemme (klemme klemme 2) og tilslut det fra retentat flasken til HDPE T-stik.
    5. Forbinde Masterflex L / S 24 lab rør fra trykmåleren til Asahi Kasei Rexeed 25S høj flux dialysator med en skrueklemme, og fra dialysatoren til retentatet flasken. Anvende skræddersyede DIN adaptere konstrueret til ¼ "ID rør til at forbinde slangen med hulfiber-ultrafilter.
    6. Fit Masterflex L / S 24 lab rør, med en knivspids klemme (knivspids klemme 1) og tilslut den til en 10 ml plastik pipette med spidsen og bomuld stikket fjernes for at fungere som prøven optagelse linje og derefter fastgør slangen til HDPE T- stik.
    7. Passer den ene ende af Masterflex L/S-36 lab rør med en rampe klemme og forbinder slangen med effluenten port placeret nær udløbsenden af ​​filteret. Anbring den anden ende i affaldscontaineren.
  3. Tilsættes 0,01% (w / v) natriumpolyphosphat med 10 L vand prøve og blandes i 3 minutter.
  4. Lukke knivspids klemme 2og fjerne udluftningsåbningen hætten fra retentatet flasken. Alle andre klemmer skal være åben.
  5. Indstille pumpens retning for at flytte væske fra T-konnektor til trykmåleren (højre til venstre følgende figur 1). Justere pumpehastigheden til 25% af den maksimale hastighed og tænde pumpen.
  6. Når retentatet flasken er 2/3 fuld, åben knivspids klemme 2 og hurtigt erstatte udluftning hætten til retentatet flasken. Tjek alle de linjer og fittings til at sikre, at der ikke er utætheder.
  7. Langsomt øger pumpens hastighed til det ønskede filtrationshastighed (ca. 1,5 L / min), kontrol for utætheder. Ved anvendelse af en gradueret cylinder og en timer eller en strømningsmåler, se filtratet hastigheden af vandet kommer ud fra afgangsledningen (blå L / S 36 rør i figur 1). Luftbobler kan typisk dannes ved udgangsenden af ​​filteret gør det vanskeligt at opnå et stabilt tryk og filtreringshastighed. Dette korrigeres ved at knibe spildevand linje med hånden et øjeblik. Denne handlingvil generelt coax luftboblen til filtratet port og afslutte via afgangsledningen. Gentag efter behov, holde sig for øje, at ært størrelse luftbobler er ofte uundgåelige.
  8. Overvåge filtreringsprocessen. Måle og registrere tryk og filtreringshastigheden efter behov. Trykket bør aldrig overstige 20 psi. Det anbefales, at filtreringshastigheden ikke bør overstige 2,0 L / min. Det er vigtigt, at mængden af ​​vand i retentatet flasken overvåges for at sikre, at det aldrig tømmes. Det er normalt for volumen for at øge eller falde en smule. Hvis vandmængden i retentatet flasken falder til under 1/3 fuld, og fjern derefter udluftning hætte og tæt knivspids klemme 2 på retentatet flasken linje. Bring lydstyrken tilbage til omkring 2/3 fuld, skal du åbne klemmen og hurtigt udskifte ventilen hætten, hvilket sikrer en tæt forsegling. Hvis volumen i retentatet flasken falder hurtigt og kontinuerligt, så sikrer den retentatet flasken låget er tæt og udluftning hætten er sikkert på plads, og at Tubing stadig er i kontakt med vandet prøven. Hvis disse spørgsmål ikke forekommer, så er det sandsynligt, at forseglingen i retentatet flasken låget er dårlig og skal udskiftes.
  9. Når prøven beholderen er tom, umiddelbart tæt knivspids klemme 1 reducere pumpehastigheden til 20% af sin maksimale, fjernes udluftningsåbningen hætten fra retentatet flasken og lukke rampen klemmen.
  10. Juster lydstyrken på prøven i retentatet flasken til ca 200 ml ved at stramme eller løsne rampen klemme. Når volumen er ca 200 ml, spænd rampen klemme for elueringstrin (1,11-1,12).
  11. Tilsættes 500 ml af elueringsopløsningen til prøvebeholderen og skyl indersiden af ​​beholderen. Anbring 10 ml pipette forbundet med prøven optagelse linie i beholderen, der indeholder elueringsopløsning. Sørg for, at rampen klemmen er lukket. Open knivspids klemme 1 og tæt knivspids klemme 2 et øjeblik for at udarbejde elueringsopløsningen.
  12. Efter at 500 ml af elueringsopløsningen er opstilletTæt klemme klemme 1 og åben pinch klemme 2. Tillade elueringsopløsning at cirkulere i 5 minutter med en pumpehastighed på 20% af dens maksimum.
  13. Justere volumenet af prøven i retentatet flasken til omkring 100 ml ved at stramme eller løsne rampen klemmen på afgangsledningen. Stramme rampen klemmen og tillade prøven til at cirkulere i 1 minut. Undgå at trække luft ind i røret ved at sikre volumenet af prøven i retentatet flasken er høj nok til at dække L / S 15 slangen ind i retentatet flasken.
  14. Vende retningen af ​​pumpen, der tvinger prøven i retentatet flasken. Tillade pumpen at køre baglæns i 20 sekunder resulterede i en total på ~ 225 ml i retentatet flasken. Sluk for pumpen.
  15. Fjern Masterflex I / P 73 slangen fra pumpehovedet og fjern trykmåleren. Tag Masterflex L / S 24 slanger forlader hule-fiber ultrafilter. Hold røret over retentatet flasken for at tvinge eventuelle resterende prøve iretentat flaske.
  16. Afbryde alle rør fra flasken og erstatte udluftningshætte med en ikke-udluftningshætte.
  17. Fortsæt til IMS / IFA procedure med ~ 225 ml retentat.

2. Immunomagnetisk separation Fremgangsmåde

  1. Fremstilling af buffere og opløsninger:
    1. Lad buffere, der indgår i de Dynabeadsene: Cryptosporidium / Giardia kombosæt at nå stuetemperatur.
    2. 1X SL-buffer A: Tilsæt 1 ml af 10X SL-puffer A til 9 ml af reagenskvalitet vand.
  2. Overføre ~ 225 ml af væske fra retentatet flasken til en mærket 250 ml konisk centrifugerør. Skyl retentatet flasken to gange med 10 ml af reagens vand og tilsæt skylninger med konisk centrifugerør. Centrifugeres suspensionen ved 1500 x g i 15 minutter ved 4 ° C uden bremse.
  3. Omhyggeligt aspirere supernatanten fra luft-vand grænsefladen til 5 ml over det pakkede pelleten for hver 0,5 ml pellet volumen (dvs. aspirat til en5 ml over en pellet volumen på 1,3 ml og aspirat til 5 ml af en pellet af 0,5 ml eller mindre).
  4. Grundigt pellet resuspenderes i supernatanten ved hvirvelblanding og / eller pipette blanding. Overfør hver 5 ml volumen af ​​væsken til fladsidet Dynal L10 rør indeholdende 1 ml hver af 10X SL-puffer A og 10X SL-puffer B. skylles konisk centrifugerør to gange med 2,5 ml af reagens vand og tilsæt skylning med Den L10 røret, hvorved det samlede volumen i L10 røret til 12 ml, herunder buffere.
  5. Tilsæt 100 pi hver af velblandet resuspenderede anti-Cryptosporidium og anti-Giardia Dynabeads til L10 røret. Rotere L10 røret ved 18 rpm i 1 time ved stuetemperatur på en rotator blander.
  6. Anbring den flade side af L10 røret mod MPC-6 magnet og forsigtigt hånd klippe røret ende-til-ende 180 ° C i 2 minutter.
  7. Holde L10 røret i MPC-6 magnet med magneten opad, dekanteres fra vulsten / (oo) cyste komplekser Bound til magneten. Fjerne L10 røret fra magneten, og der tilsættes 0,5 ml 1X SL-puffer A til røret. Overføre suspensionen ved hjælp af to yderligere skylninger med 0,5 ml 1X SL-puffer A til et 1,5 ml mikrocentrifugerør holdes i MPC-S med magnet i den lodrette stilling.
  8. Ryst forsigtigt røret i MPC-S magnet 180 ° C i 1 minut. Med magneten på plads, aspireres supernatanten under anvendelse af en Pasteur-pipette rettet mod bunden af ​​mikrocentrifugerør.
  9. Tilsæt 1 ml 1X PBS til forsiden af ​​mikrocentrifugerør, fjerne magneten og vippe røret forsigtigt lige indtil perlerne resuspenderes. Erstatte magnet i den lodrette stilling og forsigtigt rokke røret 180 ° C i 1 minut. Aspirer PBS skylning, uden at forstyrre kuglepelleten under anvendelse af en Pasteur-pipette for at fjerne så meget affald som muligt.
  10. Fjerne magneten og der tilsættes 50 ul reagens vand til bagsiden af ​​mikrocentrifugerør. Vortex røret ved fuld hastighed i 50 sekunder,Derefter inkuberes røret ved 80 ° C i 10 minutter efterfulgt af en 30 sekunders vortex. Erstatte magnet MPC-S i den skrå stilling, binding til perler til magneten og forlader (oo) cyster i væsken. Påfør (oo) cyster suspension til en SingleSpot godt slide.
  11. Gentage trin 2.10, anvender væsken til det samme brønd indeholdende det første dissociation. Sted glider på en 37 ° C objektglasvarmeanordning i 1 time for at tørre suspensionen til objektglasset brønd.

3. Farvning og Undersøgelse

  1. Fremstilling af buffere og opløsninger:
    Arbejder DAPI opløsning: Tilsæt 25 gl DAPI stamopløsning (2 mg / ml i methanol) til 25 ml 1X PBS. Store lager-og arbejdsvilkår løsninger mellem 1 ° C og 10 ° C i mørke.
  2. Anvendes 50 pi methanol til objektglasset godt og lad det tørre ved stuetemperatur.
  3. Tilsættes 50 ul af den arbejdende DAPI løsning på objektglasset brønd og inkuberes i 2 minutter ved stuetemperatur.
  4. Brug en Kimwipe til vægen af ​​DAPI fra brønden. Anvend 50 pi EasyStain. Inkuber ved 35 ° C i 30 minutter.
  5. Væge pletten fra brønden med en Kimwipe, og tilsæt derefter langsomt 300 gl koldt EasyStain fastsættelse buffer, som gør det muligt at strømme over brønden kanten. Inkuber i 2 minutter ved stuetemperatur.
  6. Anvender en Kimwipe at opsuge bufferen fra brønden og anvende 10 ul EasyStain Mounting Medium.
  7. Påfør forsigtigt et dækglas, fjerne eventuelle bobler, der opstår. Forsegl dækglasset med klar neglelak.
  8. Scan hele diaset ved hjælp af FITC-filter, ved 200X samlet forstørrelse, for ægformede eller sfærisk æble-grønne fluorescerende objekter, der ligner en Oocysten eller cyste. Undersøg alle sådanne objekter med DAPI-filter ved 1000 total forstørrelse og derefter med DIC, også på 1000X total forstørrelse. Optage størrelse ved hjælp af et kalibreret okular mikrometer og morfologiske karakteristika.
  9. Document resultater.

Bemærk: Yderligere oplysningeroplysninger om den oprindelige procedure kan findes i december 2005 versionen af EPA metode 1623 12. Den tangentielle strømning hulfiber-ultrafiltrering beskrevne fremgangsmåde anvendes i stedet for afsnit 12,0 EPA metode 1623. Varmen dissociation ændrer § 13.3.3 af EPA metode 1623. Fremgangsmåden beskriver også en yderligere PBS skylning under IMS proces, som kan indsættes i december 2005-udgaven af ​​Metode 1623 efter afsnit 13.3.2.16. Den komplette liste over forbrugsvarer, reagenser og udstyr, der anvendes til EPA metode 1623, herunder disse ændringer er opført på liste over udstyr.

4. Repræsentative resultater

Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster genvindes gennem processer filtrering og immunomagnetisk separation detekteres ved mikroskopisk analyse. Ved 200X total forstørrelse, udviser hver organisme en typisk farvningsmønster, størrelse og form som vist i fig 2 Cryptosporidium er en ægformet til sfærisk objekt 4 til 6 um i diameter, der udviser fremragende æble-grønne FITC fluorescens med stærkt fremhævet kanter (fig. 3A ). Med DAPI UV, vil en oocyst udviser en af ​​de følgende typiske træk kategorier: lyseblå indre farvning med en grøn rand og ingen tydelig kerner (DAPI negativ), intens blå indre farvning, eller op til fire forskellige, himmelblå kerner (DAPI positiv - figur 3B). Atypiske funktioner omfatter afvigelser i farve, struktur eller DAPI fluorescens (f.eks, for mange farvede kerner, rød fluorescerende interne strukturer). Hvis fluorescerende objekt har opfyldt kriterierne for typiske FITC og DAPI farvning, er det undersøgt ved hjælp af forskellen interferens conman derimod (DIC). Objektet er undersøgt for atypiske ydre eller indre morfologiske karakteristika såsom cellevæg ornamentering, eller en eller to store kerner fyldning af cellen. Hvis atypiske strukturer ikke overholdes, er genstanden registreres i alt IFA tæller og kategoriseres som en tom amorf struktur eller med en til fire sporozoiter foreliggende (fig. 3C). Tilsvarende er Giardia-lignende genstande undersøgt med hensyn til FITC og DAPI farvning samt DIC egenskaber, som axonemes, median organer, og kerner Giardia cyster er runde til ægformede strålende æble-grønne genstande, 8 -. 18 um lange med 5 - 15 um bred med stærkt fremhævede kanter (figur 3D). Med DAPI UV vil Giardia cyste udviser DAPI-negativ farvning eller DAPI-positive egenskaber (fig. 3E). Den fluorescerende objekt undersøges ved DIC for typiske og atypiske træk på samme måde som beskrevet for Cryptosporidium.Hvis atypiske funktioner ikke overholdes, bliver objektet registreret i det samlede IFA tæller og kategoriseret som tomme indeholder amorf struktur, eller med en eller flere typer af interne strukturer til stede (figur 3F).

Enhver organisme, der er observeret at have atypiske funktioner, bør ikke medregnes som en (oo) cyste. Mikroskopisk analyse af miljøprøver kan være en udfordring, som der er organismer, som kan automatisk fluorescerer eller krydsreagere med det FITC-konjugeret anti-Cryptosporidium og / eller anti-Giardia-antistoffer 1. Det anbefales, at en analytiker være fortrolig med akvatiske mikrober og gennemgå et stort antal dias at få erfaring identificere Cryptosporidium og Giardia. Mindst tre (oo) cyster på den positive farvning styreglideren skal karakteriseres forud for hver session ved mikroskopet.

Kvalitetskontrol prøver kan spiket med (oo) cyster til at bestemme procent recOvery for hver protozo ved hjælp af beregning:
(Oo) cyster Procent Recovery = ((QC Sample Count - Tæl fra Unspiked Sample) / Spike) x 100.

Figur 1
Figur 1. Grafisk repræsentation af den tangentielle strømning hulfiber-ultrafiltreringssystemet. Slangen er farvekodet for at støtte samling af systemet.

Figur 2
Figur 2. Repræsentativt fluorescens billede af Cryptosporidium og Giardia (oo) cyster. Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster blev farvet med FITC-mærket anti-Cryptosporidium / Giardia antistoffer. Arrows, Giardia cyster, pilespidser, Cryptosporidium oocyster. I alt fire Cryptosporidium-oocyster og seks Giardia cyster blev fundet i fokusplanet. Prøver obsered under 200X forstørrelse.

Figur 3
Figur 3 Repræsentative mikroskopiske billeder af Cryptosporidium-oocyster og Giaridia cyster, der anvendes til karakterisering Cryptosporidium-oocyster (A - C).. Brilliant æble-grønne FITC fluorescens af sfæriske objekter 4 til 6 um i diameter med klart markerede kanter (A), som indeholder op til fire særskilte, himmelblå DAPI kerner (B) og en til fire sporozoitter (S) pr Oocysten (C). Giardia cyster (D - F). Brilliant æble-grøn FITC fluorescens af runde til ægformede objekter 8 - 18 um lang og 5 - 15 um bred med stærkt fremhævede kanter (D) indeholdende op til fire himmelblå DAPI kerner (E) og med en eller flere skelnelig indre struktur, såsom som kerner (N), median organ (M) og eller axonemes (A) (F). Hvide pile, strålende æblegrøn fluorescensfarvning Cryptosporidium oocyster og Giardia cyster wVægge; hvide pilespidser, DAPI positive kerner. Prøverne observeret under 1000X forstørrelse.

Discussion

Tangential flow hulfiber-ultrafiltrering er en alternativ og effektiv teknik til den oprindelige koncentration af Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster fra vand. Hulfiber-ultrafiltrering er billigere end traditionelle filtre. Idet det har evnen til at koncentrere Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster fra en række forskellige vand matricer er et nyttigt alternativ til de nuværende filtreringsteknikker, der anvendes til EPA metode 1623. Som med de fleste andre filtreringsmetoder er hule fiber ultrafiltrering tilbøjelige til tilstopning med ekstremt uklare prøver. Højt vandtryk ville resultere fra filteret begroning, og derfor anbefales det at overvåge trykket under filtrerings-kørsel. Ud over Cryptosporidium-oocyster og Giardia cyster er hule fiber ultrafiltrering blevet vist at være i stand til at koncentrere bakterier og vira 1-3,5,8. Hulfiber-ultrafiltrering outlined ved denne fremgangsmåde kan anvendes til at koncentrere flere organismer i en enkelt prøve. Det er bemærkelsesværdigt, at opnå et endeligt volumen mellem 200 og 250 ml er den kritiske sidste trin i koncentrationen proceduren, således at ekstra centrifugeringstrin, der kan resultere i (oo) cyste tab undgås (trin 2.2). Men kan så lydstyrken i flasken til at falde for lavt have negative konsekvenser for de inddrevne beløb, da der ikke vil være nok væske volumen til at tvinge alle oocysterne eller cyster i retentatet flasken. Derfor anbefales det at opretholde et slutvolumen mellem 200 og 250 ml.

Varme dissociation er et alternativ til syredissociations trin i fremgangsmåde 1623. Denne alternative trin har vist sig at forbedre Cryptosporidium oocyst genvinding og reducerer fremgangsmåden variation, når isoleret fra enten flod-eller reagens vand 9. En side-ved-side sammenligning af syre og varme dissociations fremgangsmåder vist, at ved anvendelse af varme til dissociate organismer fra de immunomagnetiske perler fremstillet højere gennemsnitlig inddrivelser for både Cryptosporidium og Giardia. Desuden var præcisionen af Cryptosporidium og Giardia genfindelse bedre i prøver der er behandlet med varme dissociation sammenlignet med syredissociations 9.

Inkorporeringen af ​​HFUF som koncentrationen trin tillader større fleksibilitet ved at tilvejebringe evnen til at koncentrere flere organismer. Desuden er det et billigere alternativ til nuværende metode 1623 filtrering muligheder.

Disclosures

United States Environmental Protection Agency via kontoret for Forskning og Udvikling i samarbejde med Office af grundvand og drikkevand Tekniske Support Center finansieret forskning beskrevet her. Alt arbejde blev støttet on-site på US EPA, Cincinnati, Ohio. Selv om oplysningerne beskrevet i denne artikel er blevet finansieret helt eller delvist af United States Environmental Protection Agency under kontrakt (kontrakt EP-C-06-031) til Shaw Miljø og Infrastruktur, Inc, betyder det ikke nødvendigvis afspejler de synspunkter, agenturet, og ingen officiel godkendelse skal udledes. Det er blevet udsat for agenturets og godkendt til offentliggørelse.

Acknowledgments

Vi vil gerne takke Ann Grimm og Michael Zimmerman for kritisk gennemgang af dette manuskript og Doug Hamilton for hans teknisk support.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Asahi Kasei Rexeed 25 S/R wet hollow-fiber ultrafilters Dial Medical REXEED25S/R
I/P 73 (Masterflex R-3603), or equivalent Cole-Parmer EW-06408-73
L/S 24 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-24
L/S 15 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-15
L/S 36 (Masterflex Platinum-Cured), or equivalent Cole-Parmer EW-96410-36
I/P Precision Brushless Drive Cole-Parmer EW-77410-10
I/P Easy Load Pump Head Cole-Parmer EW-77601-10
Black HDPE Tee, 1/4"x 3/8" x 3/8" US Plastics 62064
Masterflex T-connector L/S 15-25 Cole-Parmer EG-30613-12
Nalgene heavy-duty pp 1 L bottle Cole-Parmer EW-06257-10
10 ml pipettes Fisher Scientific 13-678-11C
Nalgene filling/venting cap for 1/4" tubing, 53B Cole-Parmer EW-06258-10
Pressure gauge Cole-Parmer A-680-46-10
Straight coupling, NPT(F), 1/4" Cole-Parmer EW-06469-18
NPT branch tee, natural pp Cole-Parmer A-30610-75
Pinch clamps, 1/2" Cole-Parmer EW-06833-00
Custom fit DIN adapters Molded Products Corp MPC-855NS.250
Ring stand Fisher Scientific 14-670B
Ring stand clamps Fisher Scientific 05-769-6Q
Keck ramp clamp, 14mm Cole-Parmer EW-06835-10
Sodium polyphosphate Sigma-Aldrich 305553
Sodium thiosulfate pentahydrate Sigma-Aldrich 72050
Antifoam Y-30 emulsion Sigma-Aldrich A5758
Tween-80 Sigma-Aldrich P1754
10 L Collapsible high-density polyethylene cubitainer VWR international IR314-0025
Centrifuge bottle rack Fisher Scientific 05-663-103
250 ml conical centrifuge tubes Corning 430776
Disposable funnel Cole-Parmer U-6122-10
Wash bottle Cole-Parmer U-06252-40
Centrifuge Beckman Coulter Inc. Allegra X-15R
Swinging bucket rotor Beckman Coulter Inc. ARIES SX4750
Centrifuge bucket adapters for 250 ml conical tubes Beckman Coulter Inc. 349849
200 μl large bore pipette tips Fisher Scientific 02-707-134
VacuShield Filter Gelman 629-4402
5 ml pipettes Fisher Scientific 13-678-11D
Dynabeads: Cryptosporidium/Giardia combo kit IDEXX 73002
50 ml conical centrifuge tubes Falcon BD 352098
Dynal L10 flat sided tubes IDEXX 74003
Timer VWR international 23609-202
Dynal MPC-6 magnet IDEXX 12002D
1 ml pipettes VWR international 53283-700
1.5 ml low adhesion microcentrifuge tubes Fisher Scientific 02-681-320
1000 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P1000/DF1000ST
100 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P100/DF100ST
9 inch Pasteur pipettes VWR international 14672-412
Dynal MPC-S magnet IDEXX 12020D
Vortex VWR international 14216-188
Dynabeads rotator mixer IDEXX 94701
Heat block Fisher Scientific 11-718-2
Lab Armor Beads Lab Armor 42370-750
Digital thermometer Fisher Scientific 15-077-60
Phosphate-buffer saline 1X pH 7.4 (1X PBS) Sigma-Aldrich P4417
Single Spot slides IDEXX 30201
Cover glass Corning 287018
EasyStain direct kit BTF -
10 μl pipette & corresponding barrier tips Gilson, Inc. P10 & DF10ST
4',6'-Diamidino-2-phenyl indole dihydrochloride (DAPI) Sigma-Aldrich D9542
Clear nail polish Fisher Scientific S30697
Methanol Fisher Scientific L6815
Kimwipes Kimberly Clark 34155
Incubator Boekel Scientific 133000
slide warmer Fisher Scientific 11-474-521
Immersion oil, Type A ND= 1.515 Nikon Instruments MXA20234
Nikon 90i microscope with DIC capabilities Nikon Instruments MBA 77000
Plan APO 100X oil objective Nikon Instruments MRD01901
Plan Achro 20X Nikon Instruments MRL00202
FITC filter Nikon Instruments 96302
DAPI filter Nikon Instruments 96301
X-cite fluorescence illuminator Nikon Instruments 87540
Lens paper Nikon Instruments 76997
Biohazard disposable bag Fisher Scientific 01-829D
Biohazard sharps container Fisher Scientific 14-827-117
3 % hydrogen peroxide VWR international BDH3540-2
Bleach Fisher Scientific 1952030
Wypall Kimberly Clark 34790

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. DiGiorgio, C. L., Gonzalez, D. A., Huitt, C. C. Cryptosporidium and Giardia recoveries in natural waters by using Environmental Protection Agency Method 1623. Appl. Environ. Microbiol. 68, 5952 (2002).
  2. Hill, V. R., Kahler, A. M., Jothikumar, N., Johnson, T. B., Hahn, D., Cromeans, T. L. Multistate evaluation of an ultrafiltration-based procedure for simultaneous recovery of enteric microbes in 100-liter tap water samples. Appl. Environ. Microbiol. 73, 4218-4225 (2007).
  3. Hill, V. R., Polaczyk, A. L., Hahn, D., Narayanan, J., Cromeans, T. L., Roberts, J. M., Amburgey, J. E. Development of a rapid method for simultaneous recovery of diverse microbes in drinking water by ultrafiltration with sodium polyphosphate and surfactants. Appl. Environ. Microbiol. 71, 6878-6884 (2005).
  4. Hill, V. R., Polaczyk, A. L., Kahler, A. M., Cromeans, T. L., Hahn, D., Amburgey, J. E. Comparison of hollow-fiber ultrafiltration to the USEPA VIRADEL technique and USEPA method 1623. J. Environ. Qual. 38, 822-825 (2009).
  5. Holowecky, P. M., James, R. R., Lorch, D. P., Straka, S. E., Lindquist, H. D. Evaluation of ultrafiltration cartridges for a water sampling apparatus. J. Appl. Microbiol. 106, 738-7347 (2009).
  6. Lindquist, H. D., Harris, S., Lucas, S., Hartzel, M., Riner, D., Rochele, P., Deleon, R. Using ultrafiltration to concentrate and detect Bacillus anthracis, Bacillus atrophaeus subspecies globigii, and Cryptosporidium parvum in 100-liter water samples. J. Microbiol. Methods. 70, 484-492 (2007).
  7. Polaczyk, A. L., Roberts, J. M., Hill, V. R. Evaluation of 1MDS electropositive microfilters for simultaneous recovery of multiple microbe classes from tap water. J. Microbiol. Methods. 68, 260-266 (2007).
  8. Rhodes, E. R., Hamilton, D. W., See, M. J., Wymer, L. Evaluation of hollow-fiber ultrafiltration primary concentration of pathogens and secondary concentration of viruses from. 176, 38-45 (2011).
  9. Shaw, N. J., Villegas, L. F., Eldred, B. J., Gaynor, D. H., Warden, P. S., Pepich, B. V. Modification to EPA Method 1623 to address a unique seasonal matrix effect encountered in some U.S. source waters. J. Microbiol. Methods. 75, 445-448 (2008).
  10. Simmons, O. D. 3rd, Sobsey, M. D., Heaney, C. D., Schaefer, F. W. 3rd, Francy, D. S. Concentration and detection of Cryptosporidium oocysts in surface water samples by method 1622 using ultrafiltration and capsule filtration. Appl. Environ. Microbiol. 67, 1123-1127 (2001).
  11. Sobsey, M. D., Glass, J. S. Influence of water quality on enteric virus concentration by microporous filter methods. Appl. Environ. Microbiol. 47, 956-9560 (1984).
  12. USEPA. Method 1623: Cryptosporidium and Giardia in Water by Filtration/IMS/FA. Office of Water. 815-R-05-002, EPA. (2005).
  13. Ware, M. W., Wymer, L., Lindquist, H. D., Schaefer, F. W. 3rd Evaluation of an alternative IMS dissociation procedure for use with Method 1622: detection of Cryptosporidium in water. J. Microbiol. Methods. 55, 575-583 (2003).
  14. Zuckerman, U., Tzipori, S. Portable continuous flow centrifugation and method 1623 for monitoring of waterborne protozoa from large volumes of various water matrices. J. Appl. Microbiol. 100, 1220-1227 (2006).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics