الثقافات توليد الخلايا الليفية الأولية من ماوس الأذن والذيل الأنسجة

1Immunology Program, Department of Microbiology, Yong Loo Lin School of Medicine, National University of Singapore, 2NUS Graduate School for Integrative Sciences and Engineering, National University of Singapore
Published 1/10/2016
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

نحن تصف الإجراء التجريبي بسيطة وسريعة لتوليد الخلايا الليفية الأولية من الأذنين وذيول الفئران. لا يتطلب إجراء تدريب خاص الحيوان، ويمكن استخدامها لتوليد الثقافات الليفية من آذان المخزنة في RT لمدة تصل إلى 10 يوما.

Cite this Article

Copy Citation

Khan, M., Gasser, S. Generating Primary Fibroblast Cultures from Mouse Ear and Tail Tissues. J. Vis. Exp. (107), e53565, doi:10.3791/53565 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

وتستمد الخلايا الأولية مباشرة من أنسجة ويعتقد أن يكون أكثر تمثيلا للالحالة الفسيولوجية للخلايا في الجسم الحي من خطوط الخلايا المحددة. ومع ذلك، ثقافات الخلية الأولية عادة ما يكون لها عمر محدود وتحتاج إلى كثير من الأحيان إعادة تأسيس. الليفية هي مصدر يمكن الوصول إليها بسهولة من الخلايا الأولية. هنا، نحن نناقش إجراء التجارب بسيطة وسريعة لإنشاء الثقافات الليفية الأولية من آذان وذيول الفئران. يمكن استخدامها على بروتوكول إنشاء الثقافات الليفية الأولية من آذان المخزنة في RT لمدة تصل إلى 10 يوما. عند اتباع البروتوكول بعناية، من غير المرجح أن تحدث على الرغم من استخدام الأنسجة غير معقمة تخزينها لفترة طويلة في بعض الحالات التلوث. الليفية تتكاثر بسرعة في الثقافة ويمكن توسيعها لتشمل أعداد كبيرة قبل ان يخضع الشيخوخة تنسخي.

Introduction

وتستمد الخلايا الأولية من الأنسجة ومثقف يعيشون في ظل ظروف في المختبر. ويفترض عموما أن الخلايا الأولية أكثر شبها الدولة الفسيولوجية والخلفية الوراثية من الأنسجة التي نشأت من خطوط الخلايا خلد أو ورم 1. لهذا السبب، الخلايا الأولية تمثل نموذجا مفيدا لدراسة المسائل البيولوجية 2،3. ولكن، على عكس خطوط الخلايا المنشأة التي تنمو إلى أجل غير مسمى، الخلايا الأولية تخضع في نهاية المطاف الشيخوخة في الثقافة وتحتاج إلى كثير من الأحيان إعادة تأسيس.

وتشمل الخلايا الأولية التي تستخدم عادة الخلايا الليفية، الخلايا الظهارية، وخلايا بطانة الأوعية الدموية، والخلايا T والخلايا B، الضامة المشتقة من نخاع العظام (BMDM) والعظام المستمدة من نخاع الخلايا الجذعية (BMDC). وغالبا ما تستخدم الخلايا الليفية كما الخلية الأولية نموذج ثقافة. أنها توفر مزايا رئيسية على الخلايا الأولية الأخرى. وأنشأت مزارع الخلايا بسهولة، حافظ بسهولة ولا تحتاج إلى purificaنشوئها من الخلايا السابقة للثقافة. لديهم الانتشار الأولي السريع وأي شرط لبروتوكولات متوسطة أو تفعيل المتخصصة. الليفية يمكن transfected بكفاءة باستخدام البيولوجية والكيميائية والفيزيائية بروتوكولات 4،5. هناك إمكانية لتخزين الأذنين لمدة تصل إلى 10 يوما في RT قبل إنشاء مزارع الخلايا. الثقافات الليفية تؤدي إلى تصور عمليات حشوية ومناسبة لإعادة برمجة إلى الجذعية المحفزة (آي بي إس) الخلايا 6.

الليفية هي خلايا هامة من النسيج الضام التي تفرز بروتينات الكولاجين والمصفوفة خارج الخلية 7. أنها توفر الإطار الهيكلي في العديد من الأنسجة 8 وتلعب دورا أساسيا في التئام الجروح وإصلاح الأنسجة 9،10.

هنا، نحن تصف (4 ساعات <) بروتوكول بسيطة وسريعة لإنشاء الثقافات الليفية من آذان وذيول الفئران 11. البروتوكول يتطلب الحد الأدنى من الماوستجربة لحصاد الأنسجة (وعلى النقيض من البروتوكولات الأخرى 12،13)، ويمكن استخدامها لإنشاء الثقافات من آذان المخزنة في المتوسط ​​في RT لمدة تصل إلى 10 يوما.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

وتم إيواء الفئران في ظروف خالية من مسببات الأمراض وفقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية حتى euthanization (الرعاية المؤسسية الحيوان واللجنة الاستخدام (IACUC) المبادئ التوجيهية في جامعة سنغافورة الوطنية واللجنة الوطنية الاستشارية لمختبر أبحاث الحيوان (NACLAR) المبادئ التوجيهية).

1. الفئران

  1. من أجل الماوس واحدة من الخلفية الوراثية المناسبة. ويستند هذا البروتوكول على الأنسجة المستمدة من C57BL واحد / 6 الماوس.

2. إعداد الكامل المتوسطة

  1. إعداد المتوسطة كاملة بإضافة المكونات التالية لمعهد روزويل بارك التذكاري (RPMI) 1640 المتوسطة: 10٪ مصل العجل الجنين (FCS)، 50 ميكرومتر 2-المركابتويثانول، و 100 ميكرومتر الأسباراجين، 2 ملي الجلوتامين، 1٪ محلول البنسلين ستربتومايسين.

3. إعداد حلول أنزيم

  1. يعد حل كولاجيناز D في 15 مل المخروطية أنبوب أسفل.
    1. تزن 10 ملغ من كولاجيناز D. ديssolve كولاجيناز D في 4 مل المتوسطة كاملة.
  2. يعد حل pronase في أنبوب 1.7 مل microcentrifuge ل.
    1. تزن 10 ملغ من pronase.
    2. إضافة 5 ميكرولتر من 1 M تريس العازلة (درجة الحموضة 8.0). إضافة 1 ميكرولتر من 0.5 M EDTA (8.0 درجة الحموضة).
    3. أعلى مع 494 ميكرولتر من الماء المعقم.
    4. احتضان الحل pronase عند 37 درجة مئوية في حمام مائي لمدة 30 دقيقة.

4. إعداد كولاجيناز D-pronase ميكس (≤2 الذيول)

ملاحظة: نفذ الخطوات اللاحقة في الثقافة العقيمة خلية غطاء محرك السيارة.

  1. إضافة 250 ميكرولتر من محلول pronase إلى 4 مل من محلول كولاجيناز D.
  2. تمرير كولاجيناز-D pronase خليط من خلال مرشح حقنة 0.2 ميكرون إلى 15 مل العقيمة المخروطية أنبوب أسفل.

5. استخراج الخلايا الليفية من الأذن والذيل الأنسجة

  1. الموت ببطء الفئران فقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية المناسبة.
  2. وضع تعقيمها الأدوات الجراحية (مقص وملقط) في الخلية هود الثقافة.
  3. إضافة 10 مل المتوسطة كاملة في كل منهما 10 سم أطباق زراعة الخلايا لكل منهما.
  4. قطع آذان (~ 1 سم نصف قطر) و 5 سم من الذيل (من طرف الذيل) على فأرة الحاسوب مع مقص واحتضان لمدة 5 دقائق في 40 مل 70٪ من الإيثانول في 50 مل العقيمة المخروطية أنبوب أسفل.
  5. آذان الهواء الجاف والذيل عن طريق وضعها في صحن 10 سم ثقافة الخلية مفتوحة في غطاء محرك السيارة لمدة 5 دقائق. جفت مرة واحدة، ونقل الأذن وقطع الذيل لأطباق ثقافة اثنين وصفت "آذان" و "ذيل" تحتوي على 10 مل المتوسطة كاملة كما هو موضح في الخطوة 5.3.
  6. إزالة الشعر من الأذنين والذيل باستخدام المقص.
  7. قطع الأذنين والذيل إلى قطع أصغر من 3 ملم في حجم باستخدام المقص.
  8. نقل الأنسجة يقتطع 1.8 مل قارورة cryotube المسمى "آذان" و "ذيل" وإضافة كولاجيناز كافية الحل D-pronase لحجم للوصول إلى علامة 1.8 مل في القارورة.
  9. Pالدانتيل قارورة cryotube أفقيا على شاكر ويهز العينات في 200 دورة في الدقيقة لمدة 90 دقيقة عند 37 ° C.
  10. بعد 90 دقيقة الحضانة، وإزالة قارورة cryotube من شاكر ووضع قارورة في غطاء محرك السيارة.
  11. إضافة 10 مل المتوسطة كاملة في كل منهما 10 سم أطباق زراعة الخلايا، وصفت "آذان" و "ذيل" لكل منهما، ووضع مصفاة 70 ميكرومتر خلية في كل طبق.
  12. وضع هضمها الأذن والذيل الأنسجة في مصفاة 70 ميكرومتر الخلية في أطباق وفقا لذلك وصفت أعدت في الخطوة 5.11 وبقوة طحن الأنسجة باستخدام 10 مل حقنة المكبس ل> 5 دقائق. هز مصفاة الخلية في بعض الأحيان على المدى المتوسط ​​لغسل الخلايا من مصفاة الخلية.
  13. ماصة تعليق خلية من كل طبق في أنابيب أسفل اثنين من 15 مل المخروطية المسمى "آذان" و "ذيل". غسل الطبق ومصفاة مع 10 مل إضافية المتوسطة كاملة وإضافة وسيلة لمناسبة 15 مل أنابيب أسفل المخروطية.
  14. تدور باستمرار الخليةتعليق لمدة 7 دقائق في ~ 580 x ج و 4 ° C باستخدام جهاز للطرد المركزي خلية المبردة.
  15. إزالة طاف، إضافة 10 مل المتوسطة كاملة لبيليه خلية في 15 مل المخروطية أنبوب أسفل وresuspend الخلايا.
  16. كرر الخطوة 5.14 و 5.15.

6. التثقيف من خليط الخلية

  1. إزالة طاف. تأكد من أن بيليه الخلية لا يزال دون عائق.
  2. اعادة تعليق الخلايا في 10 مل المتوسطة كاملة ويضاف خليط منهما لمدة 10 سم أطباق زراعة الخلايا المسمى "آذان" و "ذيل".
  3. إضافة 10 ميكرولتر حل الأمفوتريسين B (حل الأوراق المالية: 250 ميكروغرام / مل) إلى الثقافة.
  4. احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية في ترطيب 5٪ CO 2 الحاضنة.
  5. في اليوم الثالث، استبدال المتوسطة مع المتوسطة كاملة 10 مل الطازجة التي تحتوي على 10 ميكرولتر من الأمفوتريسين B لإزالة الأنقاض (الشكلان 1 و 2).

7. الثقافة الفرعية من الخلايا الليفية

  1. عرجثقافة ن تصل حوالي 70٪ confluency (يوم 4/3 للثقافة) إزالة المتوسطة وغسل الخلايا مع 1X الفوسفات 5 مل العقيمة مخزنة المالحة (PBS).
  2. إزالة برنامج تلفزيوني وإضافة 2 مل 1X محلول معقم التربسين- EDTA إلى الخلايا.
  3. احتضان الخلايا لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية في ترطيب 5٪ CO 2 الحاضنة.
  4. بعد 5 دقائق، اضغط بلطف الطبق الثقافة وإضافة 6 مل المتوسطة كاملة للخلايا.
  5. نقل تعليق خلية لأنبوب أسفل 15 مل مخروطي الشكل وتدور الأنبوب لمدة 5 دقائق في ~ 450 x ج و 4 ° C باستخدام جهاز للطرد المركزي خلية المبردة.
  6. إزالة طاف، وبلطف إعادة تعليق بيليه خلية في 5 مل المتوسطة كاملة.
  7. البذور 2 × 10 5 الخلايا في صحن 10 سم ثقافة الخلية واحتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية في ترطيب 5٪ CO 2 الحاضنة لمدة 3-4 أيام قبل تكرار الخطوات 7،1-7،6.

8. إعداد الآذان للشحن

ملاحظة: إجراء رانه الخطوات اللاحقة في الثقافة العقيمة خلية غطاء محرك السيارة.

  1. الموت ببطء الفئران فقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية المناسبة.
  2. وضع مقص ملقط تعقيمها وإلى الخلية هود الثقافة.
  3. إضافة 50 مل المتوسطة كاملة إلى 50 مل المخروطية أنبوب أسفل.
  4. قطع آذان (~ 1 سم نصف قطر) على فأرة الحاسوب مع مقص.
  5. نقل الأذنين في 50 مل المخروطية أنبوب أسفل (كما أعدت في الخطوة 3) باستخدام ملقط.
  6. ختم الأنبوب السفلي 50 مل المخروطية مع parafilm قبل الشحن في RT في الخانة المناسبة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

استخراج الخلايا الليفية من نتائج الأنسجة في كمية كبيرة من الحطام الأنسجة (الشكل 1). وعلى النقيض من الحطام الأنسجة، والخلايا الليفية تلتزم الأنسجة السطوح البلاستيكية الثقافة بين يوم 1 و 3 من الثقافة. وسيلة الثقافات الليفية يمكن تغيير بسلام في يوم 3 من الثقافة، والذي لا بد أن يقلل بشكل كبير من مستويات الحطام موجودة في ثقافة (الشكل 2). عرض الليفية في التشكل ممدود والسيتوبلازم واضحة للعيان (الشكلان 1 و 2). يجب أن تكون الخلايا الإنقسامية الحالي من يوم 3 من ثقافة فصاعدا، ويجب أن تصل إلى خلايا 70-80٪ من الخلية confluency في غضون 3-4 أيام الثقافة. العائد من أنسجة الأذن والذيل في طبق ثقافة 10 سم ويتراوح 4-5 × 10 5 (آذان) و5-6 × 10 5 خلايا (الذيل) في يوم 3 من الثقافة. وبعد اليوم الثالث من الخلايا الليفية العزلة، والخلايا يمكن passaged والمصنف في 2 × 10 5 خلايا لكل صحن 10 سم ثقافة.

استخراج الخلايا الليفية من آذان المخزنة في RT لمدة 10 أيام ينبغي أن يؤدي إلى 70-80٪ الخلية confluency ضمن 5-6 أيام للثقافة (الشكل 3). يجب بذر الخلايا في 2 × 10 5 خلايا لكل 10 سم صحن الثقافة بعد يوم 5 أيضا أن تؤدي إلى ما يقرب من 1 × 10 6 خلايا في غضون 3-4 أيام الثقافة. تخزين على المدى الطويل، لا يؤثر على الوقت الذي يستغرقه لالليفية للدخول الشيخوخة في تجربتنا (لا تظهر البيانات).

للتحقق من هوية الخلايا بعد 3 أيام من الثقافة، والخلايا يمكن أن توصف لvimentin الليفية علامة 14. باستخدام بروتوكول أعلاه، ونحن الحصول بشكل روتيني الثقافات الليفية نقية كما أشار vimentin تلطيخ (الشكل 4).

الشكل 1
الشكل 1. ثقافة الخلايا الليفية في يوم 3 بعد استخراج مسبق لتغيير المتوسطة. صور مشرقة مجال تمثيلية من حطام خلية (السهام البيضاء) الحالية في يوم 3 من الثقافة. تم القبض على الصور في 100 × التكبير باستخدام المجهر الضوئي. يمثل شريط مقياس 100 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 2
الشكل 2. ثقافة الخلايا الليفية في يوم 3 بعد استخراج بعد إضافة الوسيلة الجديدة. الصور الحقل مشرق التمثيلية للالليفية في يوم 3 في الثقافة. تم التقاط الصور في 100 × 320 × التكبير وباستخدام المجهر الضوئي. يمثل شريط مقياس 100 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

r.within صفحة = "دائما"> الشكل (3)
الشكل 3. ثقافة الخلايا الليفية في يوم 3 بعد الاستخراج من أنسجة الأذن المخزنة في RT لمدة 10 يوما. الصور الحقل مشرق التمثيلية للالليفية في يوم 3 في الثقافة. تم التقاط الصور في 100 × 320 × التكبير وباستخدام المجهر الضوئي. يمثل شريط مقياس 100 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 4
الرقم 4. وضع البطاقات التعريفية على الثقافات الليفية للvimentin. صورة متحد البؤر التمثيلية للالأذن والذيل الليفية في يوم 3 من الثقافة. وصفت الخلايا الليفية المستخرجة من الأنسجة لvimentin (أحمر) ودابي (الأزرق). تم الحصول على صور الفلورسنت التي كتبها مايكروين مبائرنسخ. ويمثل الشريط على نطاق و10 ميكرون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

هنا نقدم إجراء التجارب بسيطة وغير مكلفة وسريعة لإنشاء الثقافات الليفية الأولية من آذان وذيول الفئران. استخراج ينبغي أن يؤدي إلى تقسيم الخلايا الليفية ملتصقة وبسرعة في غضون 3 أيام بعد العزلة من الأنسجة. قيود هاما من الخلايا الأولية هو الشيخوخة، وتوقف نمو دائم 15. باستخدام بروتوكول والثقافات الليفية يمكن passaged لمدة 5 إلى 6 مرات قبل أن تصبح الخلايا الليفية هرمة، وأشار تسطيح الخلايا، وزيادة في الحجم (2-3 مرات الزيادة) وفشل في التوسع.

عند تنفيذ عزل الخلايا الليفية، يجب إيلاء الاهتمام خلال تعطيل الأنسجة، وعدم كفاية قطع أو الهضم سيؤدي إلى انتعاش منخفضة من الخلايا الليفية. ومن الممكن أن تجمع الأذن والذيل والخلايا الليفية إلى زيادة عدد الخلايا الليفية. ويمكن أن يضاف النسيج إضافية بما في ذلك البريتوني وأنسجة الرئة معالجتها بنفس الطريقة لزيادة ركان عدد من الخلايا الليفية. على الرغم من الحطام موجود في الثقافة بعد استخراج الخلايا الليفية، فمن المستحسن لتغيير المتوسطة فقط بعد اليوم الثالث كما الليفية تستغرق وقتا التمسك أطباق زراعة الخلايا.

وجود قيود المحتمل للبروتوكول هو استخدام أنسجة غير معقمة وإمكانية يرتبط التلوث الميكروبي. للحد من مخاطر التلوث، يتم تحضين الأذنين والذيل في الايثانول 70٪ قبل حصاد الخلايا الليفية. وعلاوة على ذلك، يتم إضافة الأمفوتريسين مضاد للفطريات وباء للثقافة الأولية لمنع نمو الخميرة والفطريات، وهي مشكلة شائعة عند إنشاء الثقافات الليفية. يحتوي على المديين المتوسط ​​أيضا البنسلين والستربتومايسين لمنع التلوث الجرثومي. باستخدام هذه الاحتياطات، ونادرا ما يلاحظ التلوث حتى عند وضع الخلايا الليفية من آذان وذيول التي تم الاحتفاظ بها في RT لعدة أيام.

واحدة من المزايا الرئيسية لهذا البروتوكول هو أبيإيتي لتوليد الخلايا الليفية من الآذان التي كانت مخزنة في المتوسط ​​في RT لمدة تصل إلى 10 يوما قبل الخلايا الليفية العزلة. لاحظنا انخفاض كفاءة متواضعة في تأسيس ثقافة الأذن الليفية بعد 10 أيام من التخزين (يتم التوصل إلى 70-80٪ confluency ضمن 5-6 أيام بالمقارنة مع 3-4 أيام للالأنسجة المعزولة حديثا). وبالتالي، آذان الفئران يمكن تبادلها من قبل الباحثين باستخدام الشحن القياسية، على الرغم من أن ينصح الشحن السريع. في تجربتنا، وسهولة الاستخدام للحصول على الأذنين وحقيقة أن الأنسجة نادرا ما يستخدم لإجراءات تجريبية في كثير من الأحيان يسمح بالوصول إلى أنسجة الفئران المعدلة وراثيا التي قد تكون للحصول على خلاف ذلك تستغرق وقتا طويلا. لذيول كفاءة الخلايا الليفية يتعافى بعد التخزين يمكن أن تختلف على نطاق واسع، وينبغي فقط ذيول ان يستخدم اذا كان آذان لا تتوفر للشحنة. وأخيرا، ينبغي أن معظم الناس تكون قادرة على أداء البروتوكول، والحصاد من الأنسجة يتطلب الحد الأدنى من الخبرة والتدريب في التعامل مع الفئران.

تم فقط اختبار البروتوكول باستخدام الأنسجة الماوس، ولكن ينبغي من الناحية النظرية تسمح للجيل الثقافات الليفية باستخدام أنسجة من الأنواع الأخرى رغم أن البروتوكول قد تحتاج إلى مزيد من التحسين.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
RPMI-1640 HyClone SH30027.01
Fetal Calf Serum HyClone SV30160.03
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Asparagine Sigma-Aldrich A4159
Glutamine Sigma-Aldrich G8540
Penicillin/Streptomycin HyClone SV30010
Ethanol Merck Millipore 107017 Absolute for analysis
Collagenase D Roche Diagnostics 11088866001 From Clostridium histolyticum, lyophilized, non-sterile
Pronase protease Merck Millipore 53702 From Streptomyces griseus 
Tris buffer (pH 8) 1st BASE 1415 Ultra pure grade
0.5M EDTA (pH 8) 1st BASE BUF-1053 Biotechnology grade
10X Phosphate Buffered Saline (PBS) 1st BASE BUF-2040-10X4L Ultra pure grade
Trypsin-EDTA solution 10X Sigma-Aldrich 59418C-100ML 0.5% trypsin, 0.2% EDTA, trypsin gamma irradiated by SER-TAIN process, without phenol red, in saline
Amphotericin B Sigma-Aldrich A2492-20ml 250 μg/ml in deionized water, sterile-filtered
Scissors Aesculap
Forcep Aesculap AE-BD312R
0.2 μM syringe filter Sartorius Stedim 16534
70 μM cell strainer SPL 93070
Syringe plunger Terumo SS+10L
Cryovial tube NUNC 368362
1.7 ml microcentrifuge tube Axygen MCT-175-C
10 cm cell culture dish Greiner 664160 Cell culture treated dish 
15 ml conical bottom tube Greiner 188271
50 ml conical bottom tube Greiner 227261
Water bath GFL 1002
Centrifuge Eppendorf 5810R
Incubation shaker Sartorius Stedim Certomat-BS1
Zeiss Axiovert 25 light microscope Carl Zeiss AG

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Fitzpatrick, L. E., McDevitt, T. C. Cell-derived matrices for tissue engineering and regenerative medicine applications. Biomater Sci. 3, (1), 12-24 (2015).
  2. Elenbaas, B., et al. Human breast cancer cells generated by oncogenic transformation of primary epithelial cells. Genes Dev. 15, (1), 50-65 (2001).
  3. Stansley, B., Post, J., Hensley, K. A comparative review of cell culture systems for the study of microglial biology in Alzheimer's disease. J Neuroinflammation. 9, (1), 115 (2012).
  4. Lim, J., Dobson, J. Improved transfection of HUVEC and MEF cells using DNA complexes with magnetic nanoparticles in an oscillating field. J Genet. 91, (2), 223-227 (2012).
  5. Li, M., et al. High-efficiency transduction of fibroblasts and mesenchymal stem cells by tyrosine-mutant AAV2 vectors for their potential use in cellular therapy. Hum Gene Ther. 21, (11), 1527-1543 (2010).
  6. Patel, M., Yang, S. Advances in reprogramming somatic cells to induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 6, (3), 367-380 (2010).
  7. Newman, A. C., Nakatsu, M. N., Chou, W., Gershon, P. D., Hughes, C. C. The requirement for fibroblasts in angiogenesis: fibroblast-derived matrix proteins are essential for endothelial cell luman formation. Mol Biol Cell. 22, (20), 3791-3800 (2011).
  8. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. J Exp Med. 211, (8), 1503-1523 (2014).
  9. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89, (3), 219-229 (2010).
  10. Werner, S., Krieg, T., Smola, H. Keratinocyte-fibroblast interactions in wound healing. J Invest Dermatol. 127, (5), 998-1008 (2007).
  11. Shen, Y. J., et al. Genome-derived cytosolic DNA mediates type I interferon-dependent rejection of B cell lymphoma cells. Cell Rep. 11, (3), 460-473 (2015).
  12. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, A. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. J Vis Exp. (44), (2010).
  13. Baglole, C. J., et al. Isolation and phenotypic characterization of lung fibroblasts. Methods Mol Med. 117, 115-127 (2005).
  14. Alt, E., et al. Fibroblasts share mesenchymal phenotypes with stem cells, but lack their differentiation and colony-forming potential. Biol Cell. 103, (4), 197-208 (2011).
  15. Kuilman, T., Michaloglou, C., Mooi, W. J., Peeper, D. S. The essence of senescence. Genes Dev. 24, (22), 2463-2479 (2010).
  16. Lander, M. R., Moll, B., Rowe, W. P. A procedure for culture of cells from mouse tail biopsies: brief communication. J Natl Cancer Inst. 60, (2), 477-478 (1978).
  17. Moore, C. B., Allen, I. C. Primary ear fibroblast derivation from mice. Methods Mol Biol. (1031), 65-70 (2013).
  18. Liu, J., et al. Generation of stable pluripotent stem cells from NOD mouse tail-tip fibroblasts. Diabetes. 60, (5), 1393-1398 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats