תרבויות יצירה ראשיות פיברובלסטים מרקמות אוזן וזנב עכבר

1Immunology Program, Department of Microbiology, Yong Loo Lin School of Medicine, National University of Singapore, 2NUS Graduate School for Integrative Sciences and Engineering, National University of Singapore
Published 1/10/2016
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

אנו מתארים הליך ניסוי פשוט ומהיר ליצירת fibroblasts העיקרי מהאוזניים והזנבות של עכברים. ההליך אינו דורש הכשרה מיוחדת ובעלי חיים יכול לשמש לדור של תרבויות פיברובלסטים מאוזניים מאוחסנות על RT עד 10 ימים.

Cite this Article

Copy Citation

Khan, M., Gasser, S. Generating Primary Fibroblast Cultures from Mouse Ear and Tail Tissues. J. Vis. Exp. (107), e53565, doi:10.3791/53565 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

תאים ראשוניים נגזרים ישירות מהרקמה ונחשבים לנציג נוסף של המצב הפיזיולוגי של תאים בגוף חי משורות תאים הוקמו. עם זאת, יש לי תרביות תאים ראשוניות בדרך כלל אורך חיים סופי וצריכה להיות הוקמו מחדש בתדירות גבוהה. פיברובלסטים הם מקור נגיש של תאים ראשוניים. כאן, אנו דנים בהליך ניסיוני פשוט ומהיר להקמת תרבויות פיברובלסטים עיקריות מאוזניים וזנבות של עכברים. הפרוטוקול ניתן להשתמש כדי להקים תרבויות עיקריות פיברובלסטים מאוזניים מאוחסנות על RT עד 10 ימים. כאשר הפרוטוקול ואחריו בזהירות, זיהומים צפויים להתרחש למרות השימוש ברקמות שאינן סטרילי מאוחסנות לזמן ממושך ובמקרים מסוימים. Fibroblasts להתרבות במהירות בתרבות ובניתן להרחיב למספרים משמעותיים לפני שעברנו הזדקנות replicative.

Introduction

תאים ראשוניים נגזרים מרקמת חיה ותרבותית בתנאים במבחנה. מקובל להניח כי תאים ראשוניים דומים למצב הפיזיולוגי ורקע גנטי של הרקמה שממנו הם מקורו משורות תאים הונצחו או גידול 1 באופן הדוק יותר. מסיבה זו, תאים ראשוניים מייצגים מודל שימושי לחקר 2,3 שאלות ביולוגי. עם זאת, בניגוד לשורות תאים קבעו כי לגדול ללא הגבלת זמן, תאים ראשוניים סופו של דבר לעבור הזדקנות בתרבות ובצריכים להיות הוקמו מחדש בתדירות גבוהה.

תאים ראשוניים נפוצים כוללים fibroblasts, תאי אפיתל, תאי אנדותל, תאי T, תאי B, מקרופאגים נגזר מח עצם (BMDM) ותאים דנדריטים נגזר מח עצם (BMDC). Fibroblasts לעתים קרובות מנוצלים כמודל תרבית תאים ראשוניים. הם מציעים יתרונות מרכזיים על פני תאים ראשוניים אחרים. תרביות תאים בקלות הוקמו, מתוחזק בקלות ולא דורשות purification של תאים לפני התרבות. יש להם תפוצה ראשונית מהירה ואין דרישה לפרוטוקולים בינוניים או הפעלה מיוחדות. Fibroblasts ניתן transfected ביעילות באמצעות ביולוגי, כימי, ופרוטוקולים פיזיים 4,5. יש אפשרות לאחסן את האוזניים של עד 10 ימים בRT לפני הקמת תרביות תאים. תרבויות פיברובלסטים הם תורמים להדמיה של תהליכי cytoplasmic ומתאימים לתכנות מחדש לתאי גזע pluripotent המושרה (iPS) 6.

פיברובלסטים הם תאים חשובים של רקמת החיבור שמפרישים חלבוני קולגן ומטריקס 7. הם מספקים את המסגרת המבנית ברקמות רבות 8 ולשחק תפקיד חיוני בריפוי פצעים ו9,10 תיקון רקמות.

כאן, אנו מתארים פרוטוקול פשוט ומהיר (<4 שעות) להקים תרבויות פיברובלסטים מאוזניים וזנבות של עכברים 11. הפרוטוקול מחייב עכבר מינימאליניסיון לקצור את הרקמות (בניגוד לפרוטוקולים אחרים 12,13) ​​וניתן להשתמש בם כדי להקים תרבויות מאוזניים מאוחסנות במדיום ב RT לעד 10 ימים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

עכברים שוכנו בתנאי הפתוגן ללא בעמידה בהנחיות המוסדית עד מתת חסד (המוסדי הטיפול בבעלי חיים והנחיות ועדת שימוש (IACUC) באוניברסיטה הלאומית של סינגפור והוועדה הלאומית המייעצת למחקר בבעלי חיים מעבדה (NACLAR) הנחיות).

1. עכברים

  1. להזמין עכבר אחד הרקע הגנטי המתאים. פרוטוקול זה מבוסס על רקמה נובעת מC57BL אחד / 6 עכבר.

2. הכנת בינונית מלא

  1. הכן בינוני מלא על ידי הוספת הרכיבים לרוזוול פרק זיכרון המכון (RPMI) מדיום 1640 הבאים: 10% בסרום עגל עוברי (FCS), 50 מיקרומטר 2-mercaptoethanol, 100 מיקרומטר asparagine, גלוטמין 2 מ"מ, 1% פתרון פניצילין, סטרפטומיצין.

3. הכנת פתרונות אנזים

  1. הכן פתרון collagenase D בצינור תחתון חרוטי 15 מיליליטר.
    1. שוקל 10 מ"ג של collagenase ד דיD ssolve collagenase ב 4 מיליליטר בינוני שלם.
  2. הכן פתרון pronase בצינור 1.7 מיליליטר microcentrifuge.
    1. לשקול 10 מ"ג של pronase.
    2. הוסף 5 μl של 1 חיץ M טריס (pH 8.0). הוסף 1 μl של 0.5 M EDTA (pH 8.0).
    3. ראש עם 494 μl של מים סטריליים.
    4. דגירה פתרון pronase על 37 מעלות צלזיוס באמבט מים למשך 30 דקות.

4. הכנת Collagenase D-pronase מיקס (≤2 זנבות)

הערה: בצע את השלבים הבאים במכסת מנוע תרבית תאים סטריליים.

  1. הוסף 250 μl של פתרון pronase 4 מיליליטר של תמיסת collagenase D.
  2. להעביר את תערובת D-pronase collagenase דרך פילטר מזרק 0.2 מיקרומטר לתוך צינור תחתון סטרילי 15 מיליליטר חרוטי.

5. הפקת פיברובלסטים מרקמות אוזן וזנב

  1. להרדים עכברים על פי ההנחיות מוסדיות המתאימות.
  2. מקום מכשירים (מספריים ומלקחיים) autoclaved כירורגית בשכונה תרבית תאים.
  3. להוסיף 10 מיליליטר בינוני שלם לשתי מנות תרבות תא 10 סנטימטרים כל אחת.
  4. חותך את האוזניים (~ רדיוס 1 סנטימטר) ו -5 סנטימטרים של זנב (מקצה הזנב) של עכבר עם מספריים ודגירה של 5 דקות ב 40 מיליליטר אתנול 70% בצינור תחתון סטרילי 50 מיליליטר חרוטי.
  5. אוזני אוויר יבשות וזנב על ידי הצבת אותם בצלחת תרבית תאי 10 סנטימטרים פתוחות בשכונה במשך 5 דקות. ברגע שהתייבש, אוזן העברה וחתיכות זנב לשתי מנות התרבות שכותרתו "אוזניים" ו- "זנב" המכיל 10 מיליליטר בינוני שלם כמתואר בשלב 5.3.
  6. הסרת שיער מהאוזניים וזנב המספריים באמצעות.
  7. חותך את האוזניים וזנב לחתיכות קטנות יותר מ 3 מ"מ בגודל באמצעות מספריים.
  8. העבר את הרקמות לחתוך לתוך 1.8 מיליליטר בקבוקוני cryotube שכותרתו "אוזניים" ו- "זנב" ולהוסיף פתרון D-pronase collagenase מספיק לנפח להגיע הסימן 1.8 מיליליטר בבקבוקון.
  9. Pתחרה בקבוקוני cryotube אופקית על שייקר ולנער את הדגימות ב 200 סל"ד 90 דקות ב 37 מעלות צלזיוס.
  10. לאחר 90 דקות דגירה, להסיר את בקבוקוני cryotube מייקר ומניח את צלוחיות במכסת המנוע.
  11. להוסיף 10 מיליליטר בינוני שלם לשתי מנות תרבות תא 10 סנטימטר, "אוזניים" שכותרתו ו" זנב "כל אחד, ולשים את מסננת 70 מיקרומטר תא בכל מנה.
  12. מניחים את רקמות אוזן וזנב מתעכלים במסננת 70 מיקרומטר התא במנות מסומנות בהתאם מוכנות בשלב 5.11 וכוח לטחון את הרקמות באמצעות בוכנת מזרק 10 מ"ל ל> 5 דקות. לנער את מסננת התא מדי פעם במדיום לשטוף תאים מתוך מסננת התא.
  13. פיפטה ההשעיה תא מכל מאכל לתוך צינורות תחתון שני 15 מיליליטר חרוטי שכותרתו "אוזניים" ו- "זנב". לשטוף את הצלחת ומסננת עם מדיום מלא נוסף 10 מ"ל ולהוסיף הבינוני לצינורות תחתון חרוטי 15 מיליליטר המתאים.
  14. ספין למטה התאהשעיה למשך 7 דקות ב~ 580 XG ו -4 מעלות צלזיוס באמצעות צנטריפוגות תא קירור.
  15. הסר supernatant, להוסיף 10 מיליליטר בינוני שלמה לתא גלולה בשפופרת 15 מיליליטר חרוטי תחתון וresuspend התאים.
  16. חזור על שלב 5.14 ו5.15.

6. Culturing של תערובת תאים

  1. הסר supernatant ודא שהתא גלולה נשאר באין מפריע.
  2. להשעות מחדש תאים ב 10 מיליליטר בינוני שלם ולהוסיף את התערובת המתאימה לשתי מנות תרבות תא 10 סנטימטרים שכותרתו "אוזניים" ו- "זנב".
  3. הוסף 10 amphotericin B פתרון μl (פתרון מניות: 250 מיקרוגרם / מיליליטר) לתרבות.
  4. דגירה תאים ב 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified.
  5. ביום השלישי, להחליף בינוני עם בינוני 10 מיליליטר טרי שלם המכיל 10 μl של amphotericin B כדי להסיר שאריות (איורים 1 ו -2).

7. תת-תרבות של פיברובלסטים

  1. Wheתרבות n מגיעה סביב 70% confluency (יום 3-4 של תרבות) להסיר את המדיום ולשטוף את התאים עם מי מלח 5 מיליליטר סטרילי פוספט 1x שנאגרו (PBS).
  2. הסר PBS ולהוסיף פתרון טריפסין-EDTA 1x סטרילי 2 מיליליטר לתאים.
  3. דגירה התאים למשך 5 דקות על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified.
  4. לאחר 5 דקות, לטפוח בעדינות את המנה התרבות ולהוסיף 6 מיליליטר בינוני שלמה לתאים.
  5. מעבירים את ההשעיה תא צינור תחתון 15 מיליליטר חרוטי ולסובב את הצינור במשך 5 דקות ב~ 450 XG ו -4 מעלות צלזיוס באמצעות צנטריפוגות תא קירור.
  6. הסר supernatant, ובעדינות מחדש להשעות את התא גלולה ב 5 מיליליטר בינוני שלם.
  7. זרע 2 x 10 5 תאים בצלחת תרבית תאי 10 סנטימטרים ודגירת התאים על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified במשך 3-4 ימים לפני חזרה על שלבי 7.1-7.6.

8. הכנת אוזניים למשלוח

הערה: בצע tהוא השלבים הבאים במכסת מנוע תרבית תאים סטריליים.

  1. להרדים עכברים על פי ההנחיות מוסדיות המתאימות.
  2. הנח מספריים ומלקחי autoclaved למכסה מנוע תרבית תאים.
  3. הוסף 50 מיליליטר בינוני שלם לתוך צינור תחתון חרוטי 50 מיליליטר.
  4. חותך את האוזניים (~ רדיוס 1 סנטימטר) של עכבר עם מספריים.
  5. העבר את האוזניים לתוך הצינור התחתון חרוטי 50 מיליליטר (כפי שהוכן בשלב 3) מלקחיים באמצעות.
  6. לאטום את הצינור תחתון 50 מיליליטר חרוטי עם parafilm לפני המשלוח ב RT בתיבה מתאימה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

הפקה של fibroblasts מתוצאות רקמה בכמות משמעותית של רקמת פסולת (איור 1). בניגוד לפסולת רקמות, fibroblasts לדבוק משטחי פלסטיק בתרבית רקמה בין יום 1 ו -3 של התרבות. הבינוני של תרבויות פיברובלסטים ניתן לשנות בבטחה ביום 3 של תרבות, שאמור להקטין באופן משמעותי את הרמות של הווה פסולת בתרבות (איור 2). Fibroblasts להציג מורפולוגיה מוארכת והציטופלסמה נראית בבירור (איורים 1 ו -2). תאי mitotic צריכים להיות נוכחים מיום 3 של התרבות ואילך ותאים צריכים להגיע 70-80% מconfluency התאים בתוך 3-4 ימים של התרבות. התשואה מרקמות אוזן וזנב בצלחת תרבות 10 סנטימטר נעה בין 4 ל -5 x 10 5 (אוזניים) ו- 5 x 6 10 5 תאים (זנב) ביום 3 של התרבות. בעקבות היום השלישי של בידוד fibroblasts, ניתן passaged תאי זרע ועל 2 x 10 5 תאים לכל צלחת תרבות 10 סנטימטרים.

הפקה של fibroblasts מאוזניים מאוחסנות על RT במשך 10 ימים אמורה לגרום 70-80% confluency תאים בתוך 5 עד 6 ימים של התרבות (איור 3). זריעת התאים ב 2 x 10 5 תאים לכל צלחת תרבות 10 סנטימטרים לאחר היום 5 צריכה גם להצמיח כ 1 x 10 6 תאים בתוך 3-4 ימים של התרבות. אחסון לטווח ארוך אינו משפיע על המשך הזמן שלוקח לfibroblasts להיכנס הזדקנות בניסיון שלנו (מידע לא מוצג).

כדי לאמת את זהותם של תאים לאחר 3 ימים של תרבות, יכולים להיות שכותרתו תאים לvimentin סמן fibroblasts 14. שימוש בפרוטוקול לעיל, אנו מקבלים באופן שגרתי תרבויות פיברובלסטים טהורות כפי שצוין על ידי צביעת vimentin (איור 4).

איור 1
תרבות 1. פיברובלסטים איור ביום 3 לאחר חילוץ לפני לשנות בינונית. נציג תמונות בהירות תחום פסולת תא (חצים לבנים) קיים ביום 3 של התרבות. תמונות שנתפסו ב 100 × הגדלה באמצעות מיקרוסקופ אור. סרגל קנה המידה מייצג 100 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
תרבות איור 2. פיברובלסטים ביום 3 לאחר חילוץ לאחר תוספת של מדיום חדש. תמונות שדה בהירות נציג של fibroblasts ביום 3 בתרבות. תמונות שנתפסו ב 100 × 320 × והגדלה באמצעות מיקרוסקופ אור. סרגל קנה המידה מייצג 100 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

r.within עמודים = "תמיד"> איור 3
איור 3. תרבות פיברובלסטים ביום 3 לאחר חילוץ מרקמות אוזן מאוחסנות על RT במשך 10 ימים. נציג תמונות בהירות שדה של fibroblasts ביום 3 בתרבות. תמונות שנתפסו ב 100 × 320 × והגדלה באמצעות מיקרוסקופ אור. סרגל קנה המידה מייצג 100 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
תוויות איור 4. תרבויות פיברובלסטים לvimentin. תמונת confocal נציג של fibroblasts אוזן והזנב ביום 3 של התרבות. Fibroblasts מופק מהרקמות תויגו עבור vimentin (אדום) וDAPI (כחול). תמונות הניאון נרכשו על ידי מיקרו confocalלְהַעְתִיק. סרגל קנה המידה מייצג 10 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

כאן אנו מספקים הליך ניסוי פשוט, זול ומהיר להקמת תרבויות פיברובלסטים עיקריות מאוזניים וזנבות של עכברים. החילוץ צריך לגרום fibroblasts החלוקה חסיד ומהירות תוך 3 ימים לאחר בידוד של הרקמה. מגבלה חשובה של תאים ראשוניים היא הזדקנות, מעצר צמיחה קבוע 15. שימוש בפרוטוקול, ניתן passaged תרבויות פיברובלסטים במשך 5 עד 6 פעמים לפני fibroblasts הפך מזדקן, שצוין על ידי השטחה של תאים, להגדיל בגודל (2-3 פעמים עליה) וכישלון להרחיב.

בעת ביצוע בידוד של fibroblasts, יש לשים לב במהלך ההפרעה של רקמות, כמו חיתוך או עיכול לא מספק יגרום התאוששות נמוכה של fibroblasts. אפשר בריכת fibroblasts האוזן והזנב להגדיל את מספר fibroblasts. רקמה נוספות, לרבות הצפק ורקמת ריאה מעובד באותו אופן ניתן להוסיף כדי להגדיל את tהוא מספר fibroblasts. למרות שהפסולת קיימת בתרבות הבאה חילוץ fibroblasts, מומלץ לשנות את המדיום רק לאחר היום השלישי כfibroblasts לקחת את הזמן כדי לדבוק מנות תרבית תאים.

הגבלת פוטנציאל של הפרוטוקול היא השימוש ברקמות שאינן סטרילי והאפשרות קשורה של זיהום מיקרוביאלי. כדי להפחית את הסיכון של זיהום, אוזניים וזנב מודגרת באתנול 70% לפני קצירת fibroblasts. יתר על כן, amphotericin B נגד הפטריות מתווסף לתרבות העיקרית למניעת תולדה של שמרים ופטריות, בעיה נפוצה בעת הקמת תרבויות פיברובלסטים. הבינוני מכיל גם פניצילין וסטרפטומיצין כדי למנוע זיהום חיידקים. שימוש באמצעי זהירות אלה, זיהומים לעתים רחוקות נצפו גם כאשר הקמת fibroblasts מאוזניים וזנבות שהוחזקו על RT במשך כמה ימים.

אחד היתרונות המרכזיים של פרוטוקול זה הוא אבילity ליצור fibroblasts מאוזניים שהיו מאוחסנות במדיום ב RT עד 10 ימים לפני בידוד fibroblasts. אנו נצפו יעילות ירידה בצניעות בהקמת תרבות פיברובלסטים אוזן לאחר 10 ימים של אחסון (הוא הגיע 70-80% confluency בתוך 5-6 ימים לעומת 3-4 ימים לרקמה מבודדת טרי). לפיכך, אוזניים של עכברים יכולות להיות מוחלפות על ידי חוקרים באמצעות משלוח רגיל, אם כי משלוח אקספרס מומלץ. מניסיוננו, את קלות שימוש כדי להשיג אוזניים ועובדה שהרקמה משמשת רק לעתים נדירות לפרוצדורות לעתים קרובות מאפשר גישה לרקמה של עכברים מהונדסים גנטי שעשויה להיות להשיג בדרך אחרת זמן רב. לזנבות היעילות של fibroblasts מתאושש לאחר האחסון יכולה להשתנות במידה רבה ויש להשתמש בי זנבות רק אם אוזניים אינן זמינות למשלוח. לבסוף, רוב האנשים צריכים להיות מסוגלים לבצע את הפרוטוקול, כקציר של רקמה דורש מינימאלית מומחיות והכשרה בטיפול בעכברים.

הפרוטוקול בלבד נבדק באמצעות רקמת עכבר, אבל צריך בתאוריה מאפשר את הדור של תרבויות פיברובלסטים באמצעות רקמה של מינים אחרים, למרות שהפרוטוקול אולי צריך אופטימיזציה נוספת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
RPMI-1640 HyClone SH30027.01
Fetal Calf Serum HyClone SV30160.03
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Asparagine Sigma-Aldrich A4159
Glutamine Sigma-Aldrich G8540
Penicillin/Streptomycin HyClone SV30010
Ethanol Merck Millipore 107017 Absolute for analysis
Collagenase D Roche Diagnostics 11088866001 From Clostridium histolyticum, lyophilized, non-sterile
Pronase protease Merck Millipore 53702 From Streptomyces griseus 
Tris buffer (pH 8) 1st BASE 1415 Ultra pure grade
0.5M EDTA (pH 8) 1st BASE BUF-1053 Biotechnology grade
10X Phosphate Buffered Saline (PBS) 1st BASE BUF-2040-10X4L Ultra pure grade
Trypsin-EDTA solution 10X Sigma-Aldrich 59418C-100ML 0.5% trypsin, 0.2% EDTA, trypsin gamma irradiated by SER-TAIN process, without phenol red, in saline
Amphotericin B Sigma-Aldrich A2492-20ml 250 μg/ml in deionized water, sterile-filtered
Scissors Aesculap
Forcep Aesculap AE-BD312R
0.2 μM syringe filter Sartorius Stedim 16534
70 μM cell strainer SPL 93070
Syringe plunger Terumo SS+10L
Cryovial tube NUNC 368362
1.7 ml microcentrifuge tube Axygen MCT-175-C
10 cm cell culture dish Greiner 664160 Cell culture treated dish 
15 ml conical bottom tube Greiner 188271
50 ml conical bottom tube Greiner 227261
Water bath GFL 1002
Centrifuge Eppendorf 5810R
Incubation shaker Sartorius Stedim Certomat-BS1
Zeiss Axiovert 25 light microscope Carl Zeiss AG

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Fitzpatrick, L. E., McDevitt, T. C. Cell-derived matrices for tissue engineering and regenerative medicine applications. Biomater Sci. 3, (1), 12-24 (2015).
  2. Elenbaas, B., et al. Human breast cancer cells generated by oncogenic transformation of primary epithelial cells. Genes Dev. 15, (1), 50-65 (2001).
  3. Stansley, B., Post, J., Hensley, K. A comparative review of cell culture systems for the study of microglial biology in Alzheimer's disease. J Neuroinflammation. 9, (1), 115 (2012).
  4. Lim, J., Dobson, J. Improved transfection of HUVEC and MEF cells using DNA complexes with magnetic nanoparticles in an oscillating field. J Genet. 91, (2), 223-227 (2012).
  5. Li, M., et al. High-efficiency transduction of fibroblasts and mesenchymal stem cells by tyrosine-mutant AAV2 vectors for their potential use in cellular therapy. Hum Gene Ther. 21, (11), 1527-1543 (2010).
  6. Patel, M., Yang, S. Advances in reprogramming somatic cells to induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 6, (3), 367-380 (2010).
  7. Newman, A. C., Nakatsu, M. N., Chou, W., Gershon, P. D., Hughes, C. C. The requirement for fibroblasts in angiogenesis: fibroblast-derived matrix proteins are essential for endothelial cell luman formation. Mol Biol Cell. 22, (20), 3791-3800 (2011).
  8. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. J Exp Med. 211, (8), 1503-1523 (2014).
  9. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89, (3), 219-229 (2010).
  10. Werner, S., Krieg, T., Smola, H. Keratinocyte-fibroblast interactions in wound healing. J Invest Dermatol. 127, (5), 998-1008 (2007).
  11. Shen, Y. J., et al. Genome-derived cytosolic DNA mediates type I interferon-dependent rejection of B cell lymphoma cells. Cell Rep. 11, (3), 460-473 (2015).
  12. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, A. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. J Vis Exp. (44), (2010).
  13. Baglole, C. J., et al. Isolation and phenotypic characterization of lung fibroblasts. Methods Mol Med. 117, 115-127 (2005).
  14. Alt, E., et al. Fibroblasts share mesenchymal phenotypes with stem cells, but lack their differentiation and colony-forming potential. Biol Cell. 103, (4), 197-208 (2011).
  15. Kuilman, T., Michaloglou, C., Mooi, W. J., Peeper, D. S. The essence of senescence. Genes Dev. 24, (22), 2463-2479 (2010).
  16. Lander, M. R., Moll, B., Rowe, W. P. A procedure for culture of cells from mouse tail biopsies: brief communication. J Natl Cancer Inst. 60, (2), 477-478 (1978).
  17. Moore, C. B., Allen, I. C. Primary ear fibroblast derivation from mice. Methods Mol Biol. (1031), 65-70 (2013).
  18. Liu, J., et al. Generation of stable pluripotent stem cells from NOD mouse tail-tip fibroblasts. Diabetes. 60, (5), 1393-1398 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats