İlkel ve kesin hematopoetik ataları insan Pluripotent kök hücrelerden farklılaşma yönetmen

Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Burada, insan pluripotent kök hücre (hPSC) kültür hPSCs CD34 ayırt etmek için kullanılan iletişim kuralları, mevcut+ hematopoetik ataları. Bu yöntem kurallı WNT ya kesin veya ilkel hematopoetik program sadece hücrelere belirtmek sinyal manipülasyon sahne özgü kullanır.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Dege, C., Sturgeon, C. M. Directed Differentiation of Primitive and Definitive Hematopoietic Progenitors from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (129), e55196, doi:10.3791/55196 (2017).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Rejeneratif tıp için önemli amaçlarından biri üretimi ve hematopoetik kök hücre (HSCs) insan pluripotent kök hücrelerden (hPSCs) elde edilen bakımı sağlamaktır. Yakın zamana kadar hPSCs HSCs ayırt etmek için çabaları ağırlıklı olarak HSC potansiyel eksikliği ve bunun yerine sarısı sac hematopoiesis benzer hematopoetik ataları üretilip. Elde edilen bu hematopoetik ataları yarar vitro hastalığı modelleme çeşitli yetişkin hematopoetik bozukluklar, özellikle de lenfoid soy için sınırlı olabilir. Ancak, son zamanlarda erythro-myelo-lenfoid multilineage kesin hematopoetik ataları burada anahat bir sahne özel yönlendirilmiş ayırt etme protokolünü kullanarak hPSCs oluşturmak için yöntemleri anlatmıştık. Enzimatik ayrılma hPSCs membran matris kaplı plasticware Tarih, embryoid organları (EBs) oluşur. EBs farklı mesoderm için kesin hematopoetik programa GSK3β inhibitörü, CHIR99021 daha sonra belirtilen rekombinant BMP4 tarafından. Alternatif olarak, ilkel hematopoiesis PORCN inhibitörü, IWP2 belirtilir. Hematopoiesis daha fazla rekombinant VEGF eklenmesi ve destekleyici hematopoetik sitokinler sürülür. Bu yöntem kullanılarak oluşturulan elde edilen hematopoetik ataları hastalık ve gelişimsel modelleme, içinde vitroiçin kullanılmak üzere potansiyeline sahiptir.

Introduction

İnsan pluripotent kök hücreler (hPSCs) insan embriyonik kök hücreleri (hESCs) ve İnsan İndüklenmiş pluripotent kök hücreler (hiPSCs) kapsayan olarak tanımlanır ve uygun büyüme koşullarda kendini yenileme geçiren sadece benzersiz yeteneği var, Ama aynı zamanda, tüm hücre türleri ayırt etmek için kapasite elde edilen üç germ katmanlardan: endoderm, mesoderm ve ektoderm1. Bu benzersiz yetenekleri nedeniyle hPSCs rejeneratif tıp, hastalık modelleme ve hücre tabanlı terapiler2büyük sözü tutun. Birden çok hücre tipleri başarıyla hPSCs farklılaşmış iken, bir önemli sorun sadece yetişkin gibi hPSC kaynaklı hematopoetik kök hücre (HSCs) ve kesin hematopoetik ataları vitro belirtimidir.

Bir büyük olasılıkla insan HSCs geliştirilmesi için hPSCs gelen insan embriyo3içinde birden çok hematopoetik program varlığı engeldir. Ortaya çıkıyor, "ilkel hematopoiesis," olarak adlandırdığı ilk programı içinde extraembryonic sarısı sac doku kaynaklı ve geçici üretiminin erythroblast ataları (EryP-CFC), makrofajlar ve megakaryocytes tarafından en iyi karakterizedir. Özellikle, bu bilgisayar programı does değil vermek artış HSCs için ne o does vermek artış T ve B lenfoid ataları için. Ancak, sarısı sac geçici erythro myeloid yaratıcı (EMP4,5,6,7,8) gibi sınırlı kesin hematopoetik ataları ortaya çıkmasına ve erythroid-eksik lenfoid astarlanmalıdır multipotent progenitör (LMPP9). Ancak, tam olarak multipotent veya yetişkin alıcılar HSC benzeri engraftment yeteneğine ne EMP'leri ne de LMPPs. Buna ek olarak, daha sonra gelişmede, embriyonun uygun, HSC dahil olmak üzere tüm yetişkin hematopoetik soy için sebebiyet veren aort-erbezi-mesonephros bölgesinde klasik tanımlamak "kesin" hematopoetik bilgisayar programı belirtilir. Endotel-için-hematopoetik geçişe hemogenic endotel (o)3,10,11 üzerinden bir çentik bağımlı moda bu içi embriyonik kesin hematopoetik hücreler tayini oluşur ,12,13,14. Sulandırma kapasitesi dışında EMP ve (gözden başvuruları3' te,13 LMPP bu kesin hematopoetik ataları ayırmak için multilineage potansiyel ve çentik-bağımlılık bu hücre kullanılabilir ).

HPSCs ilkel ve kesin hematopoetik belirtiminden yöneten mechanism(s) anlama olası hPSC hatları çeşitli genelinde kesin hematopoetik ataları tekrarlanabilir üretimi için önemlidir. Yakın zamana kadar multipotent ilkel ve kesin hematopoetik ataları ayrı hPSC farklılaşma protokolleri15,16,17,18yoktu, 19,20,21,22,23,24,25. Pek çok yaklaşım fetal sığır serum (FBS) ve/veya stromal ortak kültür ilk kullanarak ilkel kesin hematopoetik potansiyel15,ve16karışımları ile hPSC farklılaşma potansiyeli hematopoetik özetlenen, 17,19,22,23,25. Ayrıca, birçok serum-Alerjik hematopoetik protokolleri mesoderm hematopoetik potansiyel18,20,21, liman hPSCs üzerinden tayini için sinyal gereksinimleri tarif var 24. ancak, bu yöntemleri hala her iki program heterojen karışımları için doğuran gibi kullanımları klinik uygulamaları ve anlayış gelişimsel mekanizmaları sınırlı olabilir.

Biz son zamanlarda AKTİVİN/NODAL ve hPSC elde edilen mesoderm18,26 hematopoetik belirtiminde ilkel ve kesin WNT sinyal için sahne özel sinyal gereksinimleri ana hatlarıyla bu çalışmalar, yerleşik . İkincisi özellikle benzersiz sahne özgü WNT sinyal işleme kullanımı sadece ilkel ya da sadece kesin hematopoetik ataları26belirtimi için sağlar. Sırasında mesoderm belirtimi, kurallı WNT sinyal PORCN inhibitörü IWP2 ile inhibisyon CD43 belirtiminde sonuç+ EryP-CFC ve hiçbir tespit lenfoid potansiyeli ile Miyeloid ataları. Keskin aksine, kurallı WNT GSK3β inhibitörü ile CHIR99021, farklılaşma aynı aşaması sırasında sinyal stimülasyon tespit CD43 tam yokluğunda sonuçlandı.+ aynı anda lider ise EryP-CFC, için CD34 tayini+CD43 o. Bu nüfus sahip Miyeloid, HBG-erythroid ve T-lenfoid potansiyeli ifade etmek. Daha sonraki analizler bu CD7327,28 ve CD18428ve hematopoetik potansiyel ifadesi eksik olarak ÇENTİK bağımlı28olduğunu tespit etti. Ayrıca, tek hücreli klonal analizleri bu kesin hematopoetik soy multipotent tek hücreleri28elde edilebilir gösterdi. Birlikte ele alındığında, bu çalışmalar sahne özgü WNT sinyal işleme saf ilkel hematopoetik ataları veya multipotent ÇENTİK bağımlı kesin hematopoetik ataları belirtebilirsiniz gösteriyor.

Burada, biz sadece ilkel veya kesin hematopoetik ataları, kurallı WNT Mezodermal desenlendirme ve onların aşağı akım hematopoetik soyu sırasında deneyleri sinyal manipülasyonu yoluyla verir bizim farklılaşma strateji anahat. Bu ilkel veya kesin hematopoetik ataları hPSCs rejeneratif tıp uygulamaları için gelen üretiminde ilgilenen araştırmacılar için çok değerli bir protokoldür.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. reaktifler

  1. elde edilir hücre çizgileri; hESCs veya hiPSCs 1, fare embriyonik fibroblastlar (MEFs) 29, OP9-DL4 stroma 30 , 31.
  2. reaktif hazırlık
    1. PBS içinde jelatin % 0,1 w/v çözeltisi hazırlamak. Tarafından ısıyla sterilize ve aliquoting sonra 4 ° C'de depolayın.
      1. Hazırla jelatin kaplı plasticware. 6-iyi yemekleri 1,5 mL %0,1 jelatin çözeltisi ile kat. 15 dakika oda sıcaklığında kuluçkaya. Kullanımdan hemen önce kalan jelatin çözüm Aspire edin.
    2. % 15 v/v FBS ve 1 x antibiyotik ile IMDM yaparak MEF ortam hazırlamak. Ek 2 mM L-glutamin ve 400 µM monothioglycerol (MTG) ile kullanımdan önce ve depolamak saat 4'te ° C.
    3. HPSC kültür ortamı olarak DMEM/F12 bir çözüm ile % 20 v/v nakavt serumu değiştirme (KOSR), 1 x esansiyel olmayan amino asitler (NEAA), 1 x antibiyotik, 55 µM β-mercaptoethanol, 2 mM L-glutamin ve 10 ng/mL bFGF hazırlayın. 2 µm filtre ile sterilize ve karanlıkta da saat 4'te depolamak için filtre ° C.
    4. DMEM/F12 ile % 5 v/v KOSR ve 4 mM HCl. filtre 2 µm filtre ile aliquot, sterilize ve karanlıkta da saat 4'te depolamak için bir çözüm olarak hazırlama serum ücretsiz yıkama medya ° C.
    5. 1 mg/mL Dnaz olun ben Dnaz eriterek tarafından çözüm ben 3-4 h on Ice buz gibi steril deiyonize su içine için. 2 µm filtre ile sterilize ve aliquots -20, depolamak için filtre ° C.
    6. Hazırlamak yıkama medya ile DURMAK eriyik: 10 Ekle % FBS ve 10 µg/mL Dnaz ben. DURMAK eriyik hazırlanmalıdır hemen önce kullan.
    7. Hazırlamak membran matris (örneğin, matrigel, bu andan MAT anılacaktır) karışım çözüm.
      Not: hazırlama ve MAT karışımı kullanarak tüm adımları 4 veya buz üzerinde gerçekleştirilmesi gereken ° C. gecede MAT buz 4 ° C'de dondurulmuş tezcan. 10 mL ekleyerek MAT 1:1 oranında seyreltin buz gibi IMDM ve buz 4 ° C'de soğuk bir gecede. MAT karışımı ile bir ek 20 mL seyreltik buz gibi IMDM ve buz 4 ° C'de soğuk bir gecede. Aliquot önceden soğutulmuş tüpler ve mağaza-20 ° c kadar kullan. Kullanım için hazır olduğunuzda gecede 4 ° C'de MAT karışımı tezcan
      1. Kat MAT hücre kültür plakaları.
        Not: Tüm adımları kaplama MAT plakaların buz üzerinde gerçekleştirilmesi gerekiyor. 6-iyi ve 24-iyi tabaklar-20 ° c en az 1 h için önceden chill. Kat kaplamalar için hazır olduğunuzda buza koy. Her şey ile kaldırma ve yeniden kullanarak herhangi bir aşırı çözüm 4 x seyreltilmiş MAT, kat. 30-60 dakika buzda bırakın ve aşırı MAT Aspire edin. MAT kaplamalı plakalar 3 h. kullanım kaplama 72 h içinde en az 37 ° C % 5 CO 2 Kuluçka Makinası.
    8. % 10 çözüm hazırlamak sığır Serum Albumin (BSA % 10 w/v BSA buz gibi distile, deiyonize su 3-4 h. 2 µm filtre ile bir şişe ışık engelleme ve mağaza içine 4'te sterilize etmek için filtre için 4 ° C'de eriyen tarafından) ° C.
    9. İçin bir çözüm askorbik asit hazırlayın. Yavaş yavaş 5 mg/mL solüsyon buz gibi distile, deiyonize su buz 3-4 h. bazen eriyene kadar girdap için L-askorbik asit geçiyoruz. 2 µm filtre ile sterilize ve aliquots -20, depolamak için filtre ° C.
    10. IMDM:Ham 75:25 bir çözüm yaparak serum-Alerjik farklılaşma (SFD) ortam hazırlamak ' s F-12, sonra % 0.5 BSA, 1 x B27 ve 0.5 x N2 takviyeleri ekleyin. Mağaza 4 ° C. Ekle 1 x 50 µg/mL askorbik asit, 400 µM MTG ve 150 µg/mL holo-transferrin hemen önceki kullanmak için L-glutamin.
    11. Hazırlamak serum-Alerjik kök hücre kültür medya (örneğin, StemPro, bu andan SP34 anılacaktır) Üretici ' s yönergeleri. Mağaza 4 ° C. Ekle 1 x 50 µg/mL askorbik asit, 400 µM MTG ve 150 µg/mL holo-transferrin hemen önceki kullanmak için L-glutamin.
    12. % 0,2 Collagenase II çözüm eriterek Collagenase II % 0,2 w/v 1:4 FBS:PBS çözümünde son bir konsantrasyon için hazırlayın. Filtre çözümü ile 2 µm filtre sterilize ve aliquots -20, saklamak için en az 15 dakika süreyle 37 ° C su banyosunda dağıtılması ° C.
    13. Floresan aktif hücre sıralama (FACS) arabellek % 5 bir çözüm olarak hazırlamak kullanmak için hemen önceki IMDM FBS.
    14. Hazırlamak OP9 medya α-MEM, %20 FBS, 2 mM L-glutamin bir çözüm olarak ve 1 x antibiyotik. 2 µm filtre ile sterilize ve 4'te depolamak için filtre ° C.
    15. Methylcellulose tabanlı medya (örneğin, MethoCult, bu andan MeC anılacaktır) öncesi bölünmemeli 3 mL miktarları veya 100 mL şişe olarak elde edilir. Girişte, 100 mL MeC, kullanıyorsanız 14 mL konik tüpler içinde 2.5 mL aliquots bölün.
      Not: Tüm aliquots aliquots için hemen öncesinde çözdürülen-20 ° c MeC orta saklanmalıdır kullanın.

2. Mesoderm farklılaşma hPSCs

  1. Grow hPSC hücre satırlarda MEFs 37 ° C kuluçka %5 CO 2 ile % 70-80 confluency.
    Not: HPSCs keskin, farklılaşmamış sınırları olmalıdır.
  2. Hazırlamak MAT boyalı plasticware hPSCs passaging önce 24 saat.
    Not: MAT kaplamalı 6-iyi yemekler toplam sayısı hPSC hatları arasında değişir. Normalde, üç 6-iyi yemekler Konfluent hPSCs MEFs üzerinde 6-şey fincan başına yeterlidir.
    1. Yerine bir deneme besleyici-tükenmesi Konfluent hPSCs:MAT Wells (1:4, 1:3, 1:2, vb) daha önce kaç MAT kaplamalı 6-iyi yemekler için sonraki saptamaları kullanılması gerektiğini belirlemek için ilk farklılaşma farklı oranlara sahip.
      Not: 24 h kaplama MAT, hPSCs üzerine sonra boyutu yaklaşık 10-20 hücrelerde hücre kümeleri ile % 80-90 birleşmesi olmalıdır.
  3. HPSC medya Aspire edin ve 1 mL 37 ° C % 0.25 tripsin-EDTA her şey 1 dk. aspiratı ve her şey için 1 mL STOP medya ekleyin ekleyin. Bir hücre kazıyıcı kullanarak, hücreleri plaka dışına kazı. Her şey için 1 mL yıkama arabellek ekleyin.
    1. Hücreler büyük kümeleri kadar kırmak ve hücreleri 50 mL konik tüp aktarmak için serolojik 2 mL damlalıklı ile 3 - 5 kere triturate. HPSCs vasıl 330 x g 5 dakika süreyle santrifüj kapasitesi
  4. HPSC medya için 2 mL eşdeğer toplam hacmi hücrelerde kullanılmak üzere MAT kaplanmış plasticware kuyu resuspend. 2 mL/iyi hPSCs için plasticware ekleyin ve gecede 37 ° C kuluçka %5 CO 2 kuluçkaya.
  5. 24 saat sonra medya Aspire edin ve yerine 37 ° C % 0.05 tripsin-EDTA 1 dk. tripsin-EDTA Aspire edin ve 1 mL STOP medya ekleyin. Hücreleri şiddetle bir hücre sıyırıcı kazı. 1 mL yıkama medya her şey için ekleyin. 2 mL serolojik damlalıklı ile hücreleri 1 - 2 defa triturate ve 50 mL konik tüp aktarın. Santrifüj kapasitesi 220 x g 5 dakika süreyle, hücre
    Not: Tripsin-EDTA tedavi shou zamanın uzunluğuld her hPSC satırı için araştırmacı tarafından belirlenecektir. Tripsin tedavi, tek hücreli ayrılma neden olmadan mümkün olduğunca uzun bir süre için uygulanmalıdır. Bu adım MAT kaplamalı plakalar üzerinden tüm hPSCs ayırmak ancak tek hücreli ayrışma sonucu değil. Sonuç EBs ortalama 6-10 hücre olmalıdır.
  6. Medya Aspire edin. 5 mL serolojik damlalıklı kullanarak, yavaşça 20 mL yıkama medya hücrelerde resuspend. 220 x g de 5 dakika süreyle santrifüj
  7. Yavaşça gün 0 medya (Tablo 1) EBs resuspend. EBs 10 mL serolojik damlalıklı kullanarak bir 6-şey düşük-yapışık hücre kültür yemek her kuyuya içeren farklılaşma medya 2 mL dağıtmak. Yerine bir 37 ° C % 5 CO 2 %5 O 2 (çoklu gaz) kuluçka makinesi.
    Not: Gün 0 medya: 10 ng/mL ile BMP4 takıma SFD medya (Tablo 1). HPSCs her iki tabak için bir 6-şey düşük-yapışık hücre kültür tabak kullanın.
  8. 24 saat sonra 2 mL gün 1 kitle iletişim araçları (Tablo 1) ekleyin. Bir çok Yakıt Ekstraktörü gecede hücrelerde kuluçkaya.
    Not: 1. gün medya: SFD medya ile 10 ng/mL BMP4 ve 10 ng/mL bFGF için her şey (Tablo 1).
  9. 18 h daha sonra hafifçe EBs serolojik 5 mL damlalıklı ve 100 x g 5 dk. yıkama için spin ile hasat ve tüm kültür 10 mL IMDM ile birleştirir. 100 x g 5 dk. aspiratı medya için spin.
    Not: Enkaz kültürlerde yer alır. Bu Santrifüjü adım düşük bir hızda (100 x g) enkaz kaldırır.
  10. Hafifçe 2 gün medya (tablo 1) ile desteklenmiş SFD medya EBs resuspend ve iyi başına 2 mL 6-şey düşük-yapışık hücre kültür kalıplara dağıtmak. 37 ° C çok Yakıt Ekstraktörü 30 h. için kuluçkaya
    Not: 2. gün medya: 10 ng/mL BMP4 ve 5 ng/mL bFGF ve uygun WNT agonist ve antagonist (Tablo 1).
    1. Ekleyin 3 µM kesin hematopoetik ataları belirtmek için CHIR99021. Alternatif olarak, 3 µM eklemek IWP2 ve 1 ng/mL aktivin A ilkel hematopoetik ataları belirtmek için.
  11. Devam hematopoetik progenitör belirtimi için Bölüm 3.

3. CD34 tayini + hematopoetik ataları

  1. 30 h sonra 2 mL serolojik damlalıklı gün 3 farklılaşma ile EBs yalıtmak. 50 mL konik tüp aktarmak ve 5 dk. hafifçe resuspend ve IMDM 10 mL ile yıkamak için de 330 x g santrifüj kapasitesi. Hücreleri yeniden vasıl 330 x g 5 dakika süreyle santrifüj kapasitesi
  2. EBs gün 3 medya (Tablo 2) resuspend ve 2 mL düşük-yapışık 6-şey plakaların her kuyuya dağıtmak. 37 ° C çok Yakıt Ekstraktörü 72 h. için hücrelerde kuluçkaya
    Not: 3. gün medya: SP34, 15 ng/mL VEGF ve 5 ng/mL bFGF (Tablo 2). Farklılaşma 3 gün hasat ortam pH (Yani, sarı-turuncu medya) önemli ölçüde değiştirildi şey başına daha fazla medya ekleyin. Alternatif olarak, daha az EBs iyi gün 0 kullanın.
  3. Sonra 72 h, kuluçka, her şey için gün 6 medya (Tablo 2) 2 mL ekleyin. 37 ° C çok Yakıt Ekstraktörü ek 48 h için kuluçkaya
    Not: Günde 6 medya: SP34 medya 15 ng/mL VEGF, 5 ng/mL bFGF, 200 ng/mL SCF, 4 IU EPO, 20 ng/mL Il-6, 10 ng/mL IL-11 ve 50 ng/mL IGF-1 (Tablo 2) ile desteklenmiştir. Daha fazla medya 3.1 adımda eklediyseniz, son sitokin konsantrasyonları aynı kalır sonra medya eşdeğer miktarda adım 3.2 ekleyin.
  4. Gün 8 farklılaşma CHIR99021 tedavi EBs yalıtmak. Bölüm 4'e devam.
  5. IWP2-tedavi EBs gün 8 50 mL konik tüp içine farklılaşma hasat. 5 dakika süreyle santrifüj 330 x g de hafifçe resuspend gün 8 medya (Tablo 2). 24 h 37 ° C % 5 CO 2 kuluçka düşük yapisan yemekler için kuluçkaya. Bölüm 4'e devam.
    Not: Gün 8 medya: SP34 medya 100 ng/mL SCF, 2 IU EPO, 10 ng/mL Il-6, 5 ng/mL IL-11, 25 ng/mL IGF-1, 30 ng/mL TPO, 10 ng/mL Flt3-L ve 30 ng/mL IL-3 (Tablo 2) ile desteklenmiş.

4. Enzimatik EBs ayrılma ve hematopoetik progenitör yalıtım

  1. izole EBs ile serolojik damlalıklı 50 mL konik içine tüp. 5 dk. aspiratı süpernatant kapalı için 330 x g, santrifüj.
  2. 2 mL % 0.25 tripsin-EDTA EBs için ekleyin. 8 dk. eklemek 5 mL DURMAK eriyik için 37 ° C su banyosunda 5 s. Incubate için girdap. 5 dk. aspiratı süpernatant kapalı için 330 x g, santrifüj.
  3. 5 mL Collagenase II EBs resuspend. 5 için girdap s ve bir 37 ° C su banyosunda kuluçkaya. 60 dk, 5 için girdap sonra s ve DURMAK eriyik 5 mL ekleyin. Spin vasıl 330 x g 5 dk. aspiratı süpernatant kapalı için.
  4. 1 mL FACS arabelleği, hücreleri resuspend. Hücreleri bir 40 µm hücre süzgeç aracılığıyla geçmek. Bu herhangi bir undissociated hücre kümeleri kaldırır.
  5. Hücreleri saymak. Aliquot 1 x 10 6 hücrelere 14 mL konik tüp. 330 x g 5 dk. Resuspend için hücreleri, 5 x 10 6 hücre/mL FACS arabellekte bir konsantrasyon hücreleri spin. Her koşul için akış sitometrik renk denetimleri hücrelerde aliquot ve havuzu %10. Buz, karanlıkta 30 dk antikor hücrelerde kuluçkaya.
    Not: Bkz: önerilen Malzemeler tablo kombinasyonlarda fluorophore.
    1. Hücreleri, IWP2 için tedavi anti-CD34 ve anti-CD43 antikorları kullanın.
    2. Hücreleri, CHIR99021 için tedavi anti-CD34, anti-CD43, anti-CD73 ve anti-CD184 antikorlar kullanın.
  6. İki kez FACS tampon kullanarak hücreleri durulayın. Spin de 330 x g 5 dk. Resuspend için 5 x 10 6 hücre/mL nihai bir konsantrasyon hücreleri.
  7. Akış Sitometresi tarafından
  8. analiz veya izole hücreler. İlkel hematopoetik ataları için CD34 ve CD43 ifade ( şekil 2A) analiz. O kesin hematopoetik ataları için izole (CD34 + CD43 CD73 CD184 ) tarafından FACS ( şekil 2B). Tüpler soğutulmuş FACS arabellek içeren hücrelerde toplamak.
  9. Dan kesin hematopoetik potansiyeli değerlendirmek için o izole, Bölüm 5 endotel-için-hematopoetik geçişi için veya bölüm 7 T-lenfoid tahlil için devam edin. İlkel hematopoetik CFC deneyleri için Bölüm 6 için devam.

5. Endotel-için-hematopoetik geçiş

  1. Spin izole CD34 + CD43 CD73 CD184 5 dakika süreyle 330 x g hücreleri Resuspend o hücrelerde medya 200.000 hücre/mL (at Tablo 2). 50 µL aliquots bir 96-şey düşük-yapışık hücre kültür plaka hücrelerde dağıtın. Bir 37 ° C % 5 CO 2 %5 O 2 çoklu Yakıt Ekstraktörü gecede hücrelerde kuluçkaya.
    Not: O medya: takıma 5 ng/mL VEGF, 5 ng/mL bFGF, 100 ng/mL SCF, 2 IU EPO, 10 ng/mL Il-6, 5 ng/mL IL-11, 25 ng/mL IGF-1, 30 ng/mL TPO, 10 ng/mL FLT3-L, 30 ng/mL IL-3 ile SP34 medya, 10 ng/mL BMP4, 20 ng/mL ŞŞŞ, 10 µg/mL Anjiyotensin II ve 100 µM Losartan potasyum, 2 x 10 5 hücre/mL (Tablo 2).
  2. (Bkz. Adım 1.2.7.1) 24-şey MAT kaplamalı plakalar gerektiğinde hazırlayın.
  3. Hücreleri gecede 6-10 hücre kümeleri toplamak. Her 50 µL hacmi reaggregated hücreleri için ertesi sabah hücreleri hafifçe MAT kaplanmış bir 24-şey plaka merkezi haline aktarın. Hücreleri bağlı kadar yavaşça 37 ° C çok gaz kuluçka için 4-6 h, tabak koyun.
  4. Hücreleri ilişik sonra
  5. her şey için 1 mL taze o medya ekleyin. Hematopoetik hücrelerin görünür hale gelene kadar bir 37 ° C % 5 CO 2 %5 O 2 çoklu Yakıt Ekstraktörü hücrelerde kuluçkaya (genellikle 5-7 gün; şekil 2B). Küçük 100 X büyütme hafif bir mikroskop kullanarak görselleştirmek.
  6. o medya hücrelerden hafifçe kaldırarak kesin hematopoetik ataları hasat. Bu ortam bir 40 µm hücre süzgeç aracılığıyla geçmek ve toplamak. İyi yapisan hücrelere 0.5 mL % 0.25 ekleme tripsin-EDTA hücrelere ve 5 dk. Ekle 0.5 mL DURMAK eriyik için her şey için 37 ° C'de kuluçkaya. Tüm yapışık havuzu için aynı 40 µm hücre süzgeç ile hücreleri ve yapışık olmayan hücreleri ile birlikte geçmektedir. Spin 330 x g 5 dakika süreyle,
    1. Bu toplu kültür CFC potansiyelini değerlendirmek için Bölüm 6 için devam.
  7. Hücreleri FACS arabelleğinde iki kez yıkayın. Spin 330 x g 5 dakika süreyle,
  8. 5 x 10 6 hücre/mL, FACS arabellek hücrelerde resuspend. Karanlıkta buzda 30 dk için anti-CD45 ve anti-CD34 antikorları içeren hücreleri leke (fluorophores Malzemeler tablo önerilir).
  9. Hücreleri FACS arabelleğinde iki kez yıkayın. Spin 330 x g 5 dakika süreyle,
  10. İzole CD34 + CD45 + hücreleri FACS tarafından ( 2E rakam). Soğutulmuş FACS arabelleğe hücreleri sıralamak.
  11. Kesin CD34 değerlendirmek + CD45 + hematopoetik ataları olarak gerekli (CFC tahlil Bölüm 6, Bölüm 7'deki lenfoid potansiyel veya başka bir araştırmacı tarafından başlatılan tahlil).

6. CFC tahlil

  1. çözülme CFC tahlil için kullanılan her örnek için MEC aliquots.
  2. Bölümü (4.5, 4.7, 5.5 veya 5,9 merdiven) MeC içinde olmak için hücreleri ekleyin. Girdap iyice ve MeC kültürler stand için 5-10 dk kadar hava kabarcıkları, üretici göre dağılımı ' s yönergeleri. Bir 16 kullanarak ½ iğne 3 mL şırınga üzerinde ölçmek, dikkatli bir şekilde çıkarın MeC 2 mL.
    Not: Tipik kaplama yoğunlukları aralığı 1.000-20 000 hücre/mL, beklenen progenitör Frekansa bağlı olarak gelen.
  3. Dikkatle, 1 mL MeC hücre karışımı her iki 35 mm doku kültürü yemekleri dağıtmak. 35 mm yemeklerinde MeC hafifçe dokunarak ve çanak dönen dağıtabilmenizi. Her biri yukarıdaki yemekleri su 15 cm doku kültürü çanak içine koyun. 37 ° C % 5 CO 2 kuluçka makinesine kuluçkaya.
  4. 40 X büyütme kullanarak ışık mikroskop kullanarak MeC kültürler görselleştirin. Elde edilen çeşitli CFC ölçmek. İlkel CFC deneyleri 8-10 gün sonra ( şekil 2C) kaplama analiz. Kesin CFC deneyleri 14 gün sonra kaplama analiz. Temsilcisi CFC tahlil koloni türleri Morfoloji şekil 2F içinde görülebilir.

7. T hücre tahlil kesin hematopoetik potansiyel kurmak için

  1. , birleşmesi 100 mm doku kültürü çanak 30 kadar Grow OP9-DL4 hücreleri 31 , 32.
    1. OP9-DL4 tezcan hücreleri 72-96 h T hücre deneyleri kaplama önce. 10 mL OP9 medya OP9-DL4 hücrelerde resuspend ve 10 cm tabak dağıtmak. 37 ° C % 5 CO 2 kuluçka makinesine % 70-90 birleşmesi kadar büyümek.
    2. 100 mm çanak OP9 DL4 hücrelerden hasat için medyayı çıkarın ve 5 mL % 0.25 ekleyin tripsin-EDTA 5 dakika süreyle durdurmak tripsin aktivite 5 mL OP9 medya ile. 1 mL OP9 medya hücrelerde hücre 330 x g 5 dk. Resuspend de spin ve hücreleri saymak.
      Not: Bir 10 cm tabak Konfluent OP9 DL4 hücre OP9-DL4 hücreleri yaklaşık 10 x 10 6 verecektir.
    3. 48 h T hücre tahlil, plaka 2 x 10 6 hücreler 12 ml OP9 önce medya 24-şey tabak (0.5 mL/de). 37 ° C % 5 CO 2 kuluçka makinesine büyümek.
  2. 1 OP9 medya ile takıma OP9-DL4 hücrelerinin de 2.000-10,000 (4.5, 4.7, 5.5 veya 5,9 adımda elde gibi) denetlesinler hücrelere eklemek: 30 ng/mL SCF (sadece ilk 6 gün), 5 ng/mL 7 Il ve 5 ng/mL FLT3-L. kuluçkaya 37 ° C % 5 CO 2 Inc ubator. Bu adımda hiçbir medya değişikliklerden.
  3. Her 4 - 5 gün, T hücre ataları bir 6-iyi yemek taze OP9 DL4 stromal hücreler üzerine geçiş. 1 mL damlalıklı hücrelerle triturate ve kümeleri kaldırmak için bir 40 µm filtreden geçmek. 330 x g 5 dk. aspiratı basına kapalı için de spin. 2 mL 5 ng/mL 7 Il ve 5 ng/mL Flt3-L ve taze OP9-DL4 hücreleri üzerinde yer ile takıma taze OP9 medya hücrelerde resuspend.
    Not: passaging önce 48 h, 2 x 10 6 taze OP9 DL4 hücrelerde 12 mL OP9 medya plaka ve 2 mL/iyi 6-iyi yemekleri dağıtmak.
  4. Ortak kültür en az 21 gün sonra şiddetle hücreleri triturate ve hücre artıkları kaldırmak için 40 µm filtreden geçmek. 330 x g 5 min için de spin ve süpernatant Aspire edin.
  5. Soğuk FACS arabellek iki kez hücrelerde yıkayın. Spin 330 x g 5 dakika süreyle,
  6. 5 x 10 6 hücre/mL, FACS arabellek hücrelerde resuspend. Leke hücrelerle anti-CD45, anti-CD56, anti-CD4 ve CD8 anti antikorlar (önerilen fluorophore Malzemeler tablo bileşimleridir) karanlıkta buzda 30 dk için. Analizinden enkaz kaldırmak için bir canlı/ölü hücre leke (DAPI, vb) uygulamak.
  7. Hücreleri FACS arabelleğinde iki kez yıkayın. Spin 330 x g 5 dakika süreyle,
  8. T-lenfosit ataları ( şekil 3) varlığını değerlendirmek için bir Akış Sitometresi kullanarak hücreleri analiz.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

İlkel ve kesin hematopoetik ataları hPSCs üzerinden indüksiyon resmeden bir şematik Resim 1' de gösterilmiştir. Kurallı WNT gün 2-3 farklılaşma, hematopoetik progenitör belirtimine göre takip sırasında ortaya çıkan sinyal tarafından biçimlenme mesoderm.

Temsilcisi akış sitometrik çözümlemesi ve methylcellulose deneyleri hematopoetik farklılaşma hPSC kaynaklı kültürlerin oluşturan colony Şekil 2' de gösterilmiştir. IWP2 tedavi farklılaşma kültürleri farklı CD34 verecek+CD43 ve CD34düşük /CD43+ Ise CHIR tedavi farklılaşma kültürler olacak nüfus, < %1 CD43+ hücreleri günü 8 farklılaşma (şekil 2AB)26. Süre CHIR tedavi kültürler-ecek var olmak büyük ölçüde CFC yoksun gün 9 tarihinde izole IWP2 koşullarda elde edilen ilkel hematopoetik ataları ağırlıklı olarak ilkel erythroid (EryP-CFC) ve methylcellulose deneyleri, myeloid ataları ortaya çıkmasına potansiyel bu aşamada (şekil 2CF). Bunun yerine, CD34+CD43- nüfus CHIR99021 tedaviden türetilmiş olan endotel ataları gibi CD34 içeren türdeş olmayan bir nüfus+CD43-CD73-CD184- o () Şekil 2B), hangi zaman FACS tarafından izole, yuvarlak, refractile sigara-yapışık kaynaklanan bir endotel-için-hematopoetik geçiş sonra uğrar bir monolayer gibi endotel hücre (2D rakam, sol panelde), başlangıçta oluşturacak hematopoetik hücreler (şekil 2B, doğru kapı aynası). Bu hematopoetik hücreler Akış Sitometresi CD34 ve CD45 ifade tarafından tespit edilebilir (şekil 2E). Hematopoetik ataları EHT deneyleri izole methylcellulose deneyleri içinde kullanılabilir ve çıkmasına neden büyük patlama benzeri erythroid koloni oluşturan birimler (BFU-E), küçük erythroid koloni oluşturan birimler (CFU-E) ve myeloid ataları (CFU-M; Şekil 2F).

Şekil 3 gösteriyor temsilcisi akış sitometrik analizlerini T-lenfosit deneyleri CHIR99021 kaynaklı CD34 olası+CD43CD73CD184 hematopoetik ataları (şekil 3A) ve IWP2 elde edilen (şekil 3B) CD34+CD43 hematopoetik ataları, OP9-DL4 ortak kültür 21 gün takip. Bir CD45 varlığı+CD56CD4+CD8+ ataları CHIR elde edilen nüfus içinde giriş CD34 kesin hematopoetik potansiyel göstergesidir+ nüfus. CD34+ ve CD43+ IWP2 elde edilen saptamaları izole ataları vermeyin artış T-lenfositler için bu farklılaşma koşulları18,26altında bu tahlil.

Figure 1
Şekil 1: kesin ve ilkel hematopoetik ataları tayini için iletişim kuralı şematik diyagramı. Başlıca deneysel adımlar ve zaman çizelgeleri üzerinden EBs farklılaşma kesin ve ilkel hematopoetik ataları için tasviri. EBs hPSCs MAT kaplanmış plasticware üzerinde 0 günden üzerinde oluşturulur. EBs BMP4 bir çok Yakıt Ekstraktörü içeren SFD medya büyüdü. Farklılaşma gün 1'de, kültür BMP4 ve bFGF ile desteklenen medya ile beslenir. Gün 2'de, ortam değişikliği WNT manipülasyon ilkel hematopoetik ataları için kesin hematopoetik ataları ve IWP2 için CHIR99021 (CHIR) eklenmesi ile oluşur. Gün 3, medya SP34, VEGF ve bFGF ile değiştirilir. Gün 6'kültürler ile hematopoetik sitokinler desteklenen medya ile beslenir. Gün 8 ilkel hematopoetik belirtiminin medya değiştirilir ve hücreleri bir % 5 CO2 kuluçka makinesi 24 h, hematopoetik progenitör hücre (HPC) tahlil tarafından takip için taşınır. Gün 8 kesin hematopoetik belirtimi, CD34+CD43-CD73-CD184- hücreleri tarafından FACS izole ve kesin hemogenic endotel potansiyel veya T-lenfoid potansiyel (değil tasvir) denetlesinler. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 2
Şekil 2: farklılaşma kültürler ve ilkel hematopoetik ataları nesil analizi. (A)temsilcisi akış sitometrik analizlerini ilkel hematopoetik ataları IWP2 tedavi EBs gün 8 üzerinden. (B) temsilcisi akış sitometrik analizleri CHIR99021 tedavi EBs gün 8 üzerinden. Tespit ve CD34 izole Hemogenic endotel (o)+CD43-CD73-CD184- nüfus. (C) gün 9 hematopoetik ataları IWP2 - ve CHIR99021 - koloni oluşturan potansiyelini (CHIR) tedavi farklılaşma kültürler. n = 3, hata çubukları temsil SD değerlerin ortalamasının, yıldız gösteren istatistiksel anlamlılık, Öğrenci t-testi kullanarak *** p < 0,0001. (D) temsilcisi fotoğraflarını izole 4 gün (sol) veya 7 + gün (sağda) büyüme üzerinde MAT kaplanmış plasticware sonra hücreleri. Özgün büyütmeye, 100 X. Ölçek çubukları 100 µm. (E) temsilcisi Akış Sitometresi kültürünün 9 gün sonra kesin hematopoetik ataları CD34 ve CD45 ifade =. (F) temsilcisi fotoğrafı EryP-CFC (solda), CFU-M (orta), BFU-E ve CFU-E (sağda) Morfoloji gösteren. Özgün büyütmeye, 40 X. Ölçek çubukları = 100 µm. okları gösterir adlı koloniler. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 3
Şekil 3: kesin hematopoetik potansiyel analizini. Temsilcisi akış sitometrik analizlerini CHIR kaynaklı CD34 potansiyelini T lenfosit+CD43CD73CD184 hematopoetik ataları(a)veya (B) CD34 IWP2 elde edilen+CD43 hematopoetik ataları, 28 gün sonra OP9-DL4 hücreleri ile ortak kültür. T-lenfosit potansiyel bir örnekten fazla 100 CD45 ise pozitif olarak kabul edilir+ olaylar algılandı. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

yaş = "her zaman" > SFD medya Gün 0 Gün 1 2. gün kesin 2. gün ilkel BMP4 10 ng/mL 10 ng/mL 10 ng/mL 10 ng/mL bFGF - 10 ng/mL 5 ng/mL 5 ng/mL Aktivin A - - - 1 ng/mL CHIR99021 - - 3 ΜM - IWP2 - - - 3 ΜM

Tablo 1: SFD tabanlı medya için yaşam 0 - 2.

SP34 medya 3. gün Gün 6 Günü 8 O
VEGF 15 ng/mL 15 ng/mL - 5 ng/mL
bFGF 5 ng/mL 5 ng/mL - 5 ng/mL
SCF - 200 ng/mL 100 ng/mL 100 ng/mL
EPO - 4 IU 2 IU 2 IU
IL-6 - 20 ng/mL 10 ng/mL 10 ng/mL
IL-11 - 10 ng/mL 5 ng/mL 5 ng/mL
IGF-1 - 50 ng/mL 25 ng/mL 25 ng/mL
TPO - - 30 ng/mL 30 ng/mL
Flt - 3L - - 10 ng/mL 10 ng/mL
IL-3 - - 30 ng/mL 30 ng/mL
BMP4 - - - 10 ng/mL
SUS - - - 20 ng/mL
Anjiyotensin II - - - 10 µg/mL
Losartan potasyum - - - 100 ΜM

Tablo 2: SP34 tabanlı medya gün 3 - 8 ve.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Bu iletişim kuralı için ilkel veya kesin hematopoetik ataları farklılaşma hızlı, serum-Alerjik, stroma ücretsiz yöntemi açıklar. Mezodermal ilkel veya kesin hematopoetik ataları tayini güvenilir benzersiz olarak kanonik WNT sinyal, küçük molekül inhibitörleri patlatır bizim iletişim kuralı kullanılarak elde edilebilir. WNT inhibisyon PORCN inhibitörü IWP234 tarafından ilkel hematopoetik mesoderm26belirtir, ancak sahne alanı özgü WNT etkinleştirme GSK3β inhibitörü CHIR9902133 tarafından kesin hematopoetik mesoderm için açmaktadır. Belirtmek gerekirse bu yöntem sağlam artış (gösterilmez) engraftable bir HSC benzeri popülasyona vermez. Ancak, bu yaklaşım ile oluşturulan kesin hematopoetik ataları potansiyel gelecekte translasyonel uygulamaları vurgulayarak transgene kaynaklı engraftment potansiyel35' e, mükellef bulunmaktadır.

Başarılı hPSC farklılaşma için çok önemli bir belirleyici hPSCs kurulan EBs ilk boyutudur. EBs çevresinde ideali, 6-10 hücre boyutunda. EBs çok büyük, büyük olasılıkla yanlış sinyal etkinleştirme EB içinde nedeniyle farklılaşma kültürler aberrantly her iki program karışımı belirtebilirsiniz. Farklılaşma kültürler farklılaşma ilk 24 saat içinde en uygun EB boyutu için görsel olarak kontrol edilmelidir. Alternatif olarak, hPSCs tamamen tek hücrelere ayrışmış Eğer hPSCs bunun yerine zavallı hematopoetik farklılaşma kaynaklanan anoikis hücre ölüm36, tabi.

IWP2 sırasında gün 2 ve 3 Bu farklılaşma protokol Mezodermal belirtimi kullanıldığında başarılı bir farklılaşma sadece ilkel hematopoetik ataları için neden olmaktadır. Gün 8 farklılaşma, IWP2 elde edilen kültür farklı CD34 oluşan+CD43, CD34Orta/düşükCD43+ve CD34CD43+ nüfusu (şekil 2A). CD34Orta/düşükCD43+ nüfus verir artış ilkel erythroid ve myeloid ataları; süre CD34CD43+ nüfus öncelikle erythroid ataları ile sınırlı Miyeloid potansiyel18için artış verir. İlkel hematopoetik potansiyel methylcellulose tahlil için EryP-CFC (Bölüm 6), hangi çoğunlukla hızlı fetal HBG26ile karşılaştırıldığında embriyonik globin HBE varlığı tarafından onaylanması, 28,37. Benzer şekilde, CD43 varlığı+ bu aşamada hematopoetik ataları güvenilir ilkel hematopoetik ataları18,23,26varlığı belirtmek için kullanılabilir. CD43 ifade ilkel hematopoetik programı18,23,26ataları için özel değildir ve tek ölçü olarak ilkel hematopoetik değerlendirmek için kullanılamaz unutulmamalıdır potansiyel, immunophenotype ve ÇENTİK-bağımlılık insan EMP (3gözden geçirme) uncharacterized kalır.

CHIR99021 sırasında 2 ve farklılaşma 3 gün boyunca Mezodermal desenlendirme kullanıldığında, belirtilen sadece kesin hematopoetik ataları nüfusu. Gün 8 farklılaşma protokolü, CHIR99021 elde edilen kültürler kendine özgü bir CD34 oluşan+CD43 nüfus, küçük hiçbir CD43 ifade26. CD34+CD43 nüfus olduğunu CD73 ve CD184 ifade, her iki ifadesi eksik o hücreleri ile temel demarcated hematopoetik, Venöz ve Arteryel potansiyel ile endotel hücreleri türdeş olmayan bir nüfusa 27,28. O izole bir ÇENTİK-bağımlı endotel-için-hematopoetik geçiyor sonra kesin geçiş zaman (Bölüm 5)28 CD34 verecektir+CD45+ BFU-E ve myeloid hücrelerin çıkmasına hematopoetik ataları methylcellulose, ama değil EryP-CFC26,28 (Şekil 2). Buna ek olarak, BFU-E kolonileri izole olabilir ve hangi çoğunlukla hızlı embriyonik (gösterilmez) HBE 26,28, ile karşılaştırıldığında fetal globin HBG globin analiz için değerlendirilen 37. buna ek olarak, lenfoid potansiyel doğrudan tespit edilebilir ÇENTİK bağımlı endotel-için-hematopoetik geçiş OP9-DL4 stroma18,26,28tarihinde gerçekleştiği sırada--dan o, izole. Bu yöntem ile belirtilen kesin EMP veya LMPP ataları3geçerli anlayışımız bu işlevsel olarak ayıran bir klonal düzey28, erythro-myelo-lenfoid ataları içerir. Bu, T-lenfoid ve HBGvarlığı olarak-EryP-CFC potansiyeli, bir yokluğu ile birleştiğinde erythroid potansiyel, ifade güvenilir hPSCs kesin hematopoetik belirtiminden belirtmek için kullanılabilir. Notun sadece HBGiçin çıkmasına neden olabilir ataları değerlendirilmesi-erythroblasts ifade doğru değil belirlemek gibi yukarıda açıklanan, insan EMP ve sinyal gereksinimleri benzer kesin potansiyel, olmamıştır (başvuru3gözden geçirme) Tarih ile karakterizedir.

Sadece ilkel nesil veya sadece kesin hematopoetik ataları karşılaştırmalı çalışmalar, hasta kaynaklı iPSCs iki programlarının modelleme hastalığı etkinleştirme, izin veren bir yayın gibi bu basit farklılaşma stratejisi çok güçlüdür veya gen-modified hPSCs. Benzer şekilde, insan gelişim süreçleri, ne ilave sinyal pathway(s) kendini yenileme kapasitesi ve kesin hematopoetik ataları üzerinden bu nedenle HSC gibi potansiyel tanımak gereklidir keşfetmek gibi sorguya.

Özetle, WNT düzenleme sırasında hPSCs Mezodermal desenlendirme ilkel CD43 belirtir+ veya kesin CD34+CD45+ hematopoetik ataları, izole ve hPSC elde edilen hematopoiesis çalışırdım.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Acknowledgments

Bu eser Bakanlığı iç hastalıkları, Hematoloji bölümü, Washington Üniversitesi Tıp Fakültesi tarafından desteklenmiştir. CD T32HL007088 Ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü tarafından desteklenmiştir. CMS bir Amerikan Derneği, Hematoloji bilim adamı Ödülü tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMD) Corning 10-016
Fetal Bovine Serum (FBS), ES cell rated Gemini Bioproducts 100-500
Fetal Bovine Serum (FBS) Hyclone SH30396.03
L-glutamine, 200 mM solution Life Technologies 25030-081
Penicillin-streptomycin Life Technologies 15070-063
0.25% Trypsin-EDTA Life Technologies 25200056
0.05% Trypsin-EDTA Life Technologies 25300054
Gelatin, porcine skin, Type A Sigma-Aldrich G1890
Alpha-MEM Life Technologies 12000-022
DMEM-F12 Corning 10-092-CV
Knock-out serum replacement Life Technologies 10828028 "KOSR"
Non-essential amino acids (NEAA) Life Technologies 11140050
b-mercaptoethanol, 55 mM solution Life Technologies 21985023
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich H1758
Fraction V, Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP1605
Ham's F12 Corning 10-080
N2 supplement Life Technologies 17502048
B27 supplement, no vitamin A Life Technologies 12587010
Stempro-34 (SP34) Life Technologies 10639011 "SP34"
Growth factor reduced Matrigel Corning 354230 "MAT"
L-absorbic acid Sigma-Aldrich A4403
Human serum transferrin Sigma-Aldrich 10652202001
Monothioglycerol (MTG) Sigma-Aldrich M6145
Collagenase B Roche 11088831001
Collagenase II Life Technologies 17101015
DNaseI Calbiochem 260913
Phosphate Buffered Saline (PBS) Life Technologies 14190144
bFGF R&D Systems 233-FB
BMP4 R&D Systems 314-BP
Activin A R&D Systems 338-AC
VEGF R&D Systems 293-VE
SCF R&D Systems 255-SC
IGF-1 R&D Systems 291-G1
IL-3 R&D Systems 203-IL
IL-6 R&D Systems 206-IL
IL-7 R&D Systems 207-IL
IL-11 R&D Systems 218-1L
TPO R&D Systems 288-TP
EPO Peprotech 100-64
Flt-3 ligand (FLT3-L) R&D Systems 308-FK
CHIR99021 Tocris 4423
IWP2 Tocris 3533
Angiotensin II Sigma-Aldrich A9525
Losartan Potassium Tocris 3798
CD4 PerCP Cy5.5 Clone RPA-T4 BD Biosciences 560650 Dilution 1:100; T cell assay
CD8 PE Clone RPA-T8 BD Biosciences 561950 Dilution 1:10; T cell assay
CD34 APC Clone 8G12 BD Biosciences 340441 Dilution 1:100; EHT assay
CD34 PE-Cy7 Clone 8G12 BD Biosciences 348801 Dilution 1:100; Hemogenic endothelium
CD43 FITC Clone 1G10 BD Biosciences 555475 Dilution 1:10; Hemogenic endothelium
CD45 APC-Cy7 Clone 2D1 BD Biosciences 557833 Dilution 1:50; T cell assay
CD45 eFluor450 Clone 2D1 BD Biosciences 642284 Dilution 1:50; EHT assay
CD56 APC Clone B159 BD Biosciences 555518 Dilution 1:20; T cell assay
CD73 PE Clone AD2 BD Biosciences 550257 Dilution 1:50; Hemogenic endothelium
CD184 APC Clone 12G5 BD Biosciences 555976 Dilution 1:50; Hemogenic endothelium
4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) BD Biosciences 564907 Dilution 1:10,000; T cell assay
OP9 DL4 cells Holmes, R. and J.C. Zuniga-Pflucker. Cold Spring Harb Protoc, 2009. 2009(2): p. pdb prot5156
MethoCult H4034 Stemcell Technologies 4034 "MeC"
Milli-Q water purification system EMD Millipore
5% CO2 incubator Set at 37 C
Multigas incubator Set at 37 C, 5% CO2, 5% O2
6 well tissue culture plate Corning 353046
24 well tissue culture plate Corning 353226
6 well low-adherence tissue culture plate Corning 3471
24 well low-adherence tissue culture plate Corning 3473
35 mm tissue culture dishes Corning 353001
Blunt-end needle, 16 gauge Corning 305198
3 cc syringes Corning 309657
5 mL polypropylene test tube Corning 352063
5 mL polystyrene test tube Corning 352058
15 mL polypropylene conical Corning 430791
50 mL polypropylene conical Corning 430921
2 mL serological pipette Corning 357507
5 mL serological pipette Corning 4487
10 mL serological pipette Corning 4488
25 mL serological pipette Corning 4489
Cell scrapers Corning 353085
2.0 mL cryovials Corning 430488
5 mL test tube with 40 µM cell strainer Corning 352235
40 µM cell strainer Corning 352340
Cell culture centrifuge
Biosafety hood
FACS AriaII or equivalent
LSRii or equivalent
FlowJo software TreeStar
Water bath Set at 37 C
0.22 µM filtration system Corning
Autoclave
4 C refrigerator
-20 C Freezer
-80 C Freezer

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, (5391), 1145-1147 (1998).
  2. Murry, C. E., Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell. 132, (4), 661-680 (2008).
  3. Ditadi, A., Sturgeon, C. M., Keller, G. A view of human haematopoietic development from the Petri dish. Nat Rev Mol Cell Biol. 18, (1), 56-67 (2017).
  4. Chen, M. J., et al. Erythroid/myeloid progenitors and hematopoietic stem cells originate from distinct populations of endothelial cells. Cell Stem Cell. 9, (6), 541-552 (2011).
  5. McGrath, K. E., et al. Distinct Sources of Hematopoietic Progenitors Emerge before HSCs and Provide Functional Blood Cells in the Mammalian Embryo. Cell Rep. 11, (12), 1892-1904 (2015).
  6. McGrath, K. E., et al. A transient definitive erythroid lineage with unique regulation of the beta-globin locus in the mammalian embryo. Blood. 117, (17), 4600-4608 (2011).
  7. Palis, J., et al. Spatial and temporal emergence of high proliferative potential hematopoietic precursors during murine embryogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, (8), 4528-4533 (2001).
  8. Palis, J., Robertson, S., Kennedy, M., Wall, C., Keller, G. Development of erythroid and myeloid progenitors in the yolk sac and embryo proper of the mouse. Development. 126, (22), 5073-5084 (1999).
  9. Boiers, C., et al. Lymphomyeloid contribution of an immune-restricted progenitor emerging prior to definitive hematopoietic stem cells. Cell Stem Cell. 13, (5), 535-548 (2013).
  10. Bertrand, J. Y., et al. Haematopoietic stem cells derive directly from aortic endothelium during development. Nature. 464, (7285), 108-111 (2010).
  11. Hadland, B. K., et al. A requirement for Notch1 distinguishes 2 phases of definitive hematopoiesis during development. Blood. 104, (10), 3097-3105 (2004).
  12. Kumano, K., et al. Notch1 but not Notch2 is essential for generating hematopoietic stem cells from endothelial cells. Immunity. 18, (5), 699-711 (2003).
  13. Medvinsky, A., Rybtsov, S., Taoudi, S. Embryonic origin of the adult hematopoietic system: advances and questions. Development. 138, (6), 1017-1031 (2011).
  14. Robert-Moreno, A., Espinosa, L., de la Pompa, J. L., Bigas, A. RBPjkappa-dependent Notch function regulates Gata2 and is essential for the formation of intra-embryonic hematopoietic cells. Development. 132, (5), 1117-1126 (2005).
  15. Chadwick, K., et al. Cytokines and BMP-4 promote hematopoietic differentiation of human embryonic stem cells. Blood. 102, (3), 906-915 (2003).
  16. Davis, R. P., et al. Targeting a GFP reporter gene to the MIXL1 locus of human embryonic stem cells identifies human primitive streak-like cells and enables isolation of primitive hematopoietic precursors. Blood. 111, (4), 1876-1884 (2008).
  17. Kaufman, D. S., Hanson, E. T., Lewis, R. L., Auerbach, R., Thomson, J. A. Hematopoietic colony-forming cells derived from human embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, (19), 10716-10721 (2001).
  18. Kennedy, M., et al. T lymphocyte potential marks the emergence of definitive hematopoietic progenitors in human pluripotent stem cell differentiation cultures. Cell Rep. 2, (6), 1722-1735 (2012).
  19. Ledran, M. H., et al. Efficient hematopoietic differentiation of human embryonic stem cells on stromal cells derived from hematopoietic niches. Cell Stem Cell. 3, (1), 85-98 (2008).
  20. Ng, E. S., et al. The primitive streak gene Mixl1 is required for efficient haematopoiesis and BMP4-induced ventral mesoderm patterning in differentiating ES cells. Development. 132, (5), 873-884 (2005).
  21. Pick, M., Azzola, L., Mossman, A., Stanley, E. G., Elefanty, A. G. Differentiation of human embryonic stem cells in serum-free medium reveals distinct roles for bone morphogenetic protein 4, vascular endothelial growth factor, stem cell factor, and fibroblast growth factor 2 in hematopoiesis. Stem Cells. 25, (9), 2206-2214 (2007).
  22. Vodyanik, M. A., Bork, J. A., Thomson, J. A., Slukvin, I. I. Human embryonic stem cell-derived CD34+ cells: efficient production in the coculture with OP9 stromal cells and analysis of lymphohematopoietic potential. Blood. 105, (2), 617-626 (2005).
  23. Vodyanik, M. A., Thomson, J. A., Slukvin, I. I. Leukosialin (CD43) defines hematopoietic progenitors in human embryonic stem cell differentiation cultures. Blood. 108, (6), 2095-2105 (2006).
  24. Yu, C., et al. Retinoic acid enhances the generation of hematopoietic progenitors from human embryonic stem cell-derived hemato-vascular precursors. Blood. 116, (23), 4786-4794 (2010).
  25. Zambidis, E. T., Peault, B., Park, T. S., Bunz, F., Civin, C. I. Hematopoietic differentiation of human embryonic stem cells progresses through sequential hematoendothelial, primitive, and definitive stages resembling human yolk sac development. Blood. 106, (3), 860-870 (2005).
  26. Sturgeon, C. M., Ditadi, A., Awong, G., Kennedy, M., Keller, G. Wnt Signaling Controls the Specification of Definitive and Primitive Hematopoiesis From Human Pluripotent Stem Cells. Nat Biotechnol. 32, (6), 554-561 (2014).
  27. Choi, K. D., et al. Identification of the hemogenic endothelial progenitor and its direct precursor in human pluripotent stem cell differentiation cultures. Cell Rep. 2, (3), 553-567 (2012).
  28. Ditadi, A., et al. Human Definitive Haemogenic Endothelium and Arterial Vascular Endothelium Represent Distinct Lineages. Nat Cell Biol. 17, (5), 580-591 (2015).
  29. Conner, D. A. Mouse embryo fibroblast (MEF) feeder cell preparation. Curr Protoc Mol Biol. Chapter 23, Unit 23.2 (2001).
  30. La Motte-Mohs, R. N., Herer, E., Zuniga-Pflucker, J. C. Induction of T-cell development from human cord blood hematopoietic stem cells by Delta-like 1 in vitro. Blood. 105, (4), 1431-1439 (2005).
  31. Schmitt, T. M., et al. Induction of T cell development and establishment of T cell competence from embryonic stem cells differentiated in vitro. Nat Immunol. 5, (4), 410-417 (2004).
  32. Holmes, R., Zuniga-Pflucker, J. C. The OP9-DL1 system: generation of T-lymphocytes from embryonic or hematopoietic stem cells in vitro. Cold Spring Harb Protoc. 2009, (2), (2009).
  33. Polychronopoulos, P., et al. Structural basis for the synthesis of indirubins as potent and selective inhibitors of glycogen synthase kinase-3 and cyclin-dependent kinases. J Med Chem. 47, (4), 935-946 (2004).
  34. Chen, B., et al. Small molecule-mediated disruption of Wnt-dependent signaling in tissue regeneration and cancer. Nat Chem Biol. 5, (2), 100-107 (2009).
  35. Sugimura, R., et al. Haematopoietic stem and progenitor cells from human pluripotent stem cells. Nature. (2017).
  36. Ohgushi, M., et al. Molecular pathway and cell state responsible for dissociation-induced apoptosis in human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 7, (2), 225-239 (2010).
  37. Peschle, C., et al. Embryonic----Fetal Hb switch in humans: studies on erythroid bursts generated by embryonic progenitors from yolk sac and liver. Proc Natl Acad Sci U S A. 81, (8), 2416-2420 (1984).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics