Automatic Translation

This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Immunology and Infection

Yüzeyler İnsan Norovirus Tespiti sürüntü Örnekleme Yöntemi

1, 1, 1

1Division of Viral Diseases, Centers for Disease Control and Prevention

Article
    Downloads Comments Metrics Publish with JoVE

    You must be subscribed to JoVE to access this content.

    Enter your email to receive a free trial:

    Welcome!

    Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!


    By clicking "Submit", you agree to our policies.

    Admit it, you like to watch.

     

    Summary

    Cite this Article

    Park, G. W., Chhabra, P., Vinjé, J. Swab Sampling Method for the Detection of Human Norovirus on Surfaces. J. Vis. Exp. (120), e55205, doi:10.3791/55205 (2017).

    Abstract

    İnsan Noroviruses salgın ve dünya çapında dağınık gastroenteritin önde gelen nedenidir. En enfeksiyonlar ya çevresel yüzeylerde ya da gıda yoluyla dolaylı olarak kişiden kişiye yolla doğrudan yayılır ya, çünkü kirlenen fomitler ve cansız yüzeyler norovirus salgınları sırasında virüsün yayılması için önemli araçlardır.

    Biz geliştirdik ve algılama ve sert yüzeylerde insan Noroviruses bir tiplemesi için macrofoam bezlerden kullanarak bir protokol değerlendirildi. Fiber uçlu bezlerden veya antistatik mendil ile karşılaştırıldığında, macrofoam bezlerden 700 cm2 klozet yüzeylerinden virüs kurtarma (aralık 1,2-33,6%) izin verir. Protokol spin sütunları kullanılarak viral RNA'nın bezlerden virüsün çıkarma ve bir daha konsantrasyon yapılması adımlarını içerir. norovirus gastroenterit olmuştu yolcu gemileri ve uzun süreli bakım tesislerinde yüzeylerinden toplanan olmuştu 217 sürüntü örneklerinin toplam olarak, 127 (% 58.5)RT-qPCR GII norovirusa için pozitif test bildirildi. Bu 29 (% 22.8) başarıyla genotip olabilir. Sonuç olarak, klinik örnekler mevcut olmadığında virüsün saptanması yanı sıra salgınlar sırasında çevresel kirlilik düzeyinin belirlenmesinde yardımcı olabilir geliştirilen protokolü kullanılarak çevresel yüzeylerde norovirusa tespiti; aynı zamanda iyileştirme stratejilerinin etkinliğinin izlenmesi kolaylaştırabilir.

    Introduction

    İnsan Noroviruses salgın ve sporadik akut gastroenterit, dünya çapında 1, 2, 3 lider nedenidir. Virüs son derece bulaşıcıdır ve iletim kişi etkileşim ya da dolaylı kirlenmiş yiyecek, su ya da çevresel yüzeylerle temas yoluyla doğrudan kişi aracılığıyla gerçekleşir. Noroviruses uzun süre tutacak ve uzun süreli çevresel yüzeyler üzerinde virüs yaşam 1, 2, 3, belgelenmiştir edilebilir. Pik ağızlık açma işlemi esnasında, virüs partiküllerinin milyarlarca dışkıların gramı başına serbest bırakılır, ve kusmuk da enfeksiyonu 4, 5, 6, 7, 8 neden viral parçacıkların yeterli sayı içerir,ef "> 9, 10. Buna ek olarak, cansız yüzeyler ve insan cilt arasındaki virüsün transferi kolayca oluşabilir 2, 11, 12. Dolayısıyla, çevresel kirlilik izleme salgını soruşturmalarda yardımcı ve temiz-up etkinliğini değerlendirmede olabilir ve dezenfeksiyon işlemleri.

    Bir çok çevresel numune alma protokolleri rotavirüs saptanması için tarif edilmiştir, kolifaj MS2, kedigiller calicivirüs (FCV) ve bakteriyofaj P22 13, 14, 15, 16. Ancak, hızlı kurumaya (<1 saat) ve küçük yüzey alanları da dahil olmak üzere bu çalışmalarda, açıklanan doğrulama koşulları (25 x 100 cm 2), yeterli alan ayarlarını temsil etmeyebilir. Buna ek olarak, Çevreyi düşük kirlilik seviyeleri tahminnmental yüzeyler çok az virüs partiküllerini tespit edebiliyoruz protokolleri gerektirir.

    Biz Norovirüs tespiti ve yazmak için bir macrofoam esaslı yüzey örnekleme yöntemi geliştirdi. Bu yöntem, birkaç norovirus salgınlar sırasında valide edilmiştir. protokol içerir 1) (2) nasıl en iyi laboratuvara toplama ve nakliye sırasında numunelerin bütünlüğünü korumak için, ve norovirusa 3) laboratuvar testleri ve yazarak çevresel yüzeylerden sürüntü örnekleri toplamak için nasıl.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Protocol

    Alanında 1. Swab Örnekleme

    1. eldiven temiz bir çifti giymek.
    2. bir ölçüm bandı veya cetvel kullanarak yüzeyine dokunmadan örnekleme alanının boyutunu ölçün. Mümkün olduğu kadar doğru bölgeyi tahmin ve bir rapor formu (Ek Tablo 1) doldurmak için deneyin.
    3. olası sızıntı ve etiket örneği taşıma çantaları ve çubukla kitleri için sürüntü kiti edin.
    4. şu şekilde numune alanı boyunca çubukla hareket Yatay yönde bir felç, dikey yönde bir vuruş ve bir köşegen yönünde bir vuruş. 700 cm 2 den bir yüzey alanı büyük çubukla etmeyin.
    5. bir tüp içine her bezi yerleştirin ve güvenli kapağı sıkın.

    Laboratuvara Swablar 2. Depolama ve Taşıma

    1. en fazla 48 saat boyunca 4 ° C 'de bezlerden tutun. daha uzun süreler boyunca depolama gerekli ise, -20 ° C 'de bezlerden saklamak (ya da -70 ° C).
    2. 0-4 ° C'de tüpler tutmak (örn. Toplama 24-48 saat içinde laboratuar ve gemiye taşıma sırasında izole edilmiş bir kap içinde) soğuk paketleri kullanır.

    3. Virüs Konsantrasyon, Viral RNA Ekstraksiyonu ve Saflaştırılması

    NOT: Aksi belirtilmedikçe tüm santrifüj adımları, oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 5000 x g'de bir masa üstü santrifüjü kullanabilirsiniz. evrensel nükleik asit ekstraksiyon (UNEX) tamponu ile çalışırken ekstra dikkatli olun. gözlük veya yüz siperi takın.

    1. bir 15 ml tüp ve her bir numune için bir RNA Midi sütun etiketleyin. Her deneyde negatif çıkarma kontrolü içerir.
    2. 10 çubuklar için lizis çözeltisinin hazırlanması PBST 25 mL UNEX tamponu 25 ml karışımı (% 0.02 oranında içeren PBS pH 7.2 Tween-80).
    3. Lizis çözeltisinin 50 mL kolifaj MS2 süspansiyonu (10 6 PFU / ml) 50 ul ekleyin.
    4. 15 ml bir tüp içinde bir çubukla yerleştirilir ve 5 mi liz çözeltisi ilave edin. Karıştırınız ve oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edilir.
    5. 10 sn için, her bir tüp ve vorteks 5 mi% 100 etanol ilave edin.
    6. Dikkatle 15 ml tüp çubukla kaldırmak aşırı sıvı kaldırmak ve sonra çubukla atmak için tüpün kenarına hafifçe bastırarak (o UNEX tampon içerir). Geri kalan hacim 9-10 ml arasında olmalıdır.

    4. Midi Sütun Viral Nükleik Asit Ekstraksiyon

    1. Dikkatle bir midi sütun, santrifüj üzerine adım 3.6 4.5 mL UNEX / etanol karışımı aktarın ve süzüntü atın.
    2. Aynı sütun, santrifüj üzerine aynı karışımdan başka 4.5 mL yükleyin ve süzüntü atın.
    3. İlk yıkama için, Midi kolonu, santrifüjün üzerine,% 70 etanol 3.5 ml ilave edilir ve filtrat atılır.
    4. İkinci yıkama için, Midi kolonu üzerine% 70 etanol bir 3,5 ilave edin. Santrifüj süzüntü atın ve.
    5. kuru spin için, etanol tüm izlerini (olumsuz viral RNA kurtarma etkileyebilir) kaldırmak için Midi sütunları santrifüj.
    6. yeni bir 15 ml'lik santrifüj tüpüne Midi sütun. Midi kolonuna 250 ul elüsyon tamponu ekleyin; En yüksek Viral RNA iyileşmeyi elde etmek santrifüj edilmeden önce 1 dakika boyunca bekleyin.
    7. -70 ° C'de çıkarılan nükleik asidi saklayın veya adım 5'e hemen geçin.

    RNA Temiz ve Konsantratörü Setlerini Kullanma Viral Nükleik Asit 5. Konsantrasyon

    1. RNA 10 saniye süreyle yukarıda adım 4.7 ve vorteks yıkandı RNA 250 uL Bağlama Tamponu 500 mcL ekleyin.
    2. 10 sn için 750 mcL% 100 etanol ve vorteks ekleyin.
    3. Her bir numune için bir spin kolon etiketleyin. spin kolona 750 uL örnek yükleyin.
    4. 1 dakika boyunca 12.000 xg'de dönüş sütunları santrifüj. flow-through atın.
    5. 1 dakika boyunca 12.000 xg'de bir spin kolon ve santrifüj üzerine kalan 750 uL yükleyin.
    6. ön yıkama için 1 dakika boyunca 12.000 xg'de her spin kolon ve santrifüj 400 uL RNA Hazırlık tampon ekleyin. flow-through atın.
    7. İlk yıkama için, 1 dakika için 12,000 x g'de her spin kolon ve santrifüj 800 uL RNA yıkama tamponu ilave edin. flow-through atın.
    8. İkinci yıkama için, 1 dakika için 12,000 x g'de sütun ve santrifüj dönmeye 400 uL RNA yıkama tamponu ilave edin. flow-through atın.
    9. kuru spin için, 2 dakika süreyle 12,000 xg'de yıkama tamponu tüm izlerini silmek için spin kolon santrifüj.
    10. Dikkatle temiz bir 1.5 mL mikrosantrifüj tüp spin kolon aktarın.
    11. Spin kolonu üzerine 25 uL elüsyon tamponu ilave edin ve oda sıcaklığında 1 dakika boyunca inkübe edin. Bu sütundan viral RNA kurtarma artacaktır.
    12. 1 dakika 10.000 xg'de spin kolon santrifüj edilerek RNA toplayın.
    13. Her iki durumda da, -70 ° C'de, RT-qPCR (aşama 6) veya mağaza RNA doğrudan devam edin.

    6. Genogroup I Mutiplex RT-qPCR Algılama ve II Noroviruses ve Kolifaj MS 2 (Ek Tablo 2)

    1. Temiz çalışma yüzeyleri, pipettes, RNaz dekontaminasyon solüsyonu ile ve santrifüjler olası kirlenmeyi azaltmak için.
    2. buz üzerinde RT-qPCR reaktifler çözülme. (Ayrı bir alan / oda) buz üzerinde Çözülme RNA.
    3. Reaksiyonların sayısını belirlemek ve bunların en az% 10 daha fazla eklemek (10 reaksiyonlar gerektiği takdirde, örneğin, 11 master karışımı olun).
    4. 5 saniye için 25x RT-qPCR enzimi haricinde Vortex bireysel master miks bileşenleri. Dikkatli bir parmak ile tüp hafifçe vurarak enzimi karıştırın.
    5. 5 saniye süreyle kısaca santrifüj master miks bileşenleri.
    6. Kiti talimatlarına göre Norovirus GI ve GII gerçek zamanlı RT-PCR tespiti için ana karışım hazırlanarak, 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü (Ek Tablo 3) norovirus spesifik oligonükleotid primerler ve problar ekleyin.
    7. yukarı ve aşağı 5-10 kez pipetleme ana karışımı karıştırın (vorteks tavsiye edilmez). Gerçek zamanlı PCR, 96 oyuklu plakanın her bir master karışımı kısım 22 uL.
    8. Vortex örnek RNA5 saniye için, ve kısa (5 s) santrifüjle toplanır.
    9. RT-qPCR plaka (Tablo 2 şablonu izleyin) örnek RNA ve GI ve GII pozitif kontroller 3 mcL ekleyin. no-şablon kontrolü (NTC) kuyularda nükleaz Freewater 3 mcL ekleyin.
    10. Optik yapışkan film ile gerçek zamanlı plaka basım.
    11. 1 dakika kuyularda mevcut olabilecek herhangi bir hava kabarcığı veya sıvı damlaları kaldırmak için dikkatlice 1,300 xg'de gerçek zamanlı plaka santrifüj.
    12. 10 dakika 1) RT adım: Bir gerçek zamanlı PCR cihazı ve set-up aşağıdaki thermocycling koşullar ayarlayın. Taq polimeraz, 45 ° C (2) aktivasyonu, 10 dak. 95 ° C ve (3) 95 ° C'de 15 saniye, 45 döngü, 60 ° C'de 60 s.

    Çubuğu Örneklerinde Norovirus 7. sayısallaştırılması

    1. RT-qPCR sonuçları (Ek Tablo 3) doğrulamak için pozitif ve negatif kontrollerin sonuçlarını kontrol edin.
    2. Her bir standart eğri karşılayıp karşılamadığını belirlemekkabul edilebilir değerler Ek Tablo 2'de verilmiştir ve Eşitlik 1 kullanılarak standart eğri için genel standart sapmayı hesaplar.
      (Denklem 1)% verim = 100 x 10 (ortalama Ct Değerleri-Intercept) / Eğim.
    3. PCR termal döngü cihazı yazılımı her standart eğri için eğimi hesaplamak etmezse, eğim ve R istatistik yazılımı kullanılarak regresyon ile 2 değerleri (örneğin Excel, SPSS, ya da SAS) belirler. Buna ek olarak, denklem I aşağıdaki standart eğriler için% verimliliğini hesaplamak
    4. Ek Tablo 4'te belirtilen kriterlere uygun standart eğrileri dayalı tüm test numuneleri için termal döngü cihazı yazılımı tarafından hesaplanan RNA kopya numarasını kaydedin. Kriterlere uygun ya da yanlış pozitif kontroller yok, standart eğrileri t şapka ile herhangi bir örnekleri yeniden. PCR inhibisyonunu izlemek için bir iç kontrol olarak eklenmiştir kolifajla MS2, Ct değerlerini kontrol edin.
    5. RNA kopyası p sayısını belirlemekRT-qPCR Reaksiyon için kullanılan RNA (3 uL 5), bu, toplam RNA, yıkama sıvısı hacmi (25 ila 50 uL) oranında adım 7.2 hesaplanan RNA kopya sayısı ile çarpılarak er örneği. Alternatif olarak, analiz nesne yüzey alanı (cm2) toplam RNA kopya sayısına bölünmesi ile RNA yoğunluğunu hesaplamak.

    Yan yerleştirilmiş geleneksel PCR amplifikasyonu ile gerçek zamanlı RT-PCR pozitif örnek 8. Genotiplendirme

    1. RT-PCR testinin her bir primer seti için ana karışımı ilk turda hazırlayın (Ek Tablo 2 ve 5).
    2. ana karışımı 20 mcL norovirus pozitif RNA 5 mcL ekleyin.
    3. aşağıdaki koşullar altında, RT-PCR deneyinde (1) içinde oda sıcaklığında 95 ° C'de, Taq polimeraz, 42 ° C (2) aktivasyonu, 15 dakika, 30 dakika boyunca aşama, ve (3) 95 ° C'de 30 saniyelik 40 döngü 50 ° C'de 30 saniye ve 72 ° C'de 60 san. 40 döngü sonrasında, 72 ° C'de ek bir 10 dakika boyunca inkübe edin.
    4. RT-PCR testinin her bir primer seti (Ek Tablo 2 ve 5) için mater karışımı ikinci tur hazırlayın.
    5. 23 uL ana karışımı ekleyin ve her tüp (ideal ilk tur ürünü RNaz içermeyen su içinde 1/10 seyreltilmiş olmalıdır) için (ilk turdan) ilk tur RT-PCR ürünlerinin 2 mcL ekleyin.
    6. Adımı tekrarlayın 8.3.
    7. (PH 8.3, 40 mM Tris, 20 mM asetik asit ve 1 mM EDTA) 100 mL 1x Tris-asetat EDTA,% 2 agaroz jel hazırlayın. Bir mikrodalga fırında karışımın ısıtılmasıyla agaroz çözüldükten sonra, 60-70 ° C'ye kadar soğutulduktan sonra karışım hazırlanmış jel, 100 ml başına nükleik asit leke 10 mcL jel dökün ve tarak yerleştirin. Jel en az 30 dakika süreyle dinlendiriniz.
    8. 6x yükleme boyası 3 uL her bir RT-PCR ürünü 15 ul karıştırın. Yük Her numunenin 15 uL ve 1 saat boyunca 100 V'ta agaroz jeli Electrophorese.
    9. Jel An uygun büyüklükte (GI için 330 bp ve GII 341 bp) tüketim hedefi RT-PCR fragmanlarıticari bir jel özütleme kiti kullanılarak RNA'yı saflaştırmak d. Arıtılmış PCR ürünü, artık Sanger sekanslama için de kullanılabilir.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Representative Results

    Şekil 1 sürüntü örnekleme protokolünün bir akış şemasını göstermektedir. Bu protokol dört ana aşamadan oluşmaktadır; 1) numune toplama, 2) örnek depolama ve nakliye, 3) viral RNA arıtma ve konsantrasyon ve 4) RT-qPCR tahlil ve genotiplendirme.

    Şekil 1
    Şekil 1: norovirusa çevresel yüzey örnekleme için nihai protokolün akış şeması , bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Tablo 1 bir yolculuk sırasında şüpheli norovirus gastroenterit vakaları rapor eden bir gemisi toplanan 34 sürüntü örneklerinden sonuçlarını özetlemektedir. Sürüntü örnekleri çıkarılan ve te edildiçoklu gerçek zamanlı RT-qPCR Norovirus için iki kopya halinde sted. Onyedi (% 18.5) numuneleri norovirus belirtileri olan yolcular gemideki ortak alanlardan kaldı ve 9 olan kabinler yüzeylerden 8 örneklerin de dahil olmak üzere pozitif çıktı. Örnek başına genomik kopya sayısı Norovirus GII.7 RNA transkriptinin bir standart eğri kullanılarak (16 ile 31 arasında değişen) Ct değerleri hesaplandı. Ortak alanlarda (aralık: 1,2-2,1 log 10 genom kopya) den genom kopya anlamlı derecede yüksek olduğu: - (4.5 log 10 RNA kopya 2.4 aralık), (kabinlerde sürüntü örneklerinden genom kopya ortalama sayısı 3.6 log 10 oldu p <0.001). 17 pozitif sürüntü örneklerinin dört (% 23.5) genotip için başardık ve tüm örnekler aynı GII.1 dizileri vardı.

    Lido
    Yer çevre takas toplanan bir Ortalama Ct değeri (test edilen numunelerin toplam sayısının pozitif #) Genotip Norovirüs RNA örneklenmiş alan c başına kopya sayısı
    kulakçık Korkuluk 34.3 (1/2) GII 16
    Kabin A Klozet 31.4 (2/2) GII. b 31.217
    Kabin A Musluk 37.5 (1/2) GII 491
    Kabin A Kapı kolu 35.0 (2/2) GII 2675
    Kabin A Uzaktan kumanda 38.6 (2/2) GII.1 b 233
    Kabin B Klozet 33.5 (2/2) GII.1 b 986
    Dondurma makinesi 34.2 (2/2) GII 16
    Lido Masa Bal 35.2 (1/2) GII 15
    Lido Masaüstü 35.3 (1/2) GII 14
    Pizzacı karşı yüzey 35.7 (1/2) GII 14
    ana Gale Fun-time Makinası 37.1 (1/2) GII 64
    Otomat dokunmatik yüzeyler 38.8 (1/2) GII 18
    ekip salonu Klavye ve Fare Yüzey 36.8 (1/2) GII 80
    Kabin C Musluk ve kapı kolu 31.6 (2/2) GII.1 b 26458
    Kabin C Telefon 36.4 (2/2) GII 1035
    Kabin C Tuş takımı 33.0 (2/2) GII 1317
    Sağlık Merkezi Pano 36.0 (2/2) GII 113
    Bir kabin A, B ve C viral gastoenteristis belirtileri ile klinik olarak hasta olmuştu bireyler tarafından işgal edilmiştir.
    b 17 GII pozitif sürüntü örneklerinin Dört genotip olabilir.
    RNA kopyası norovirus GII.7 RNA transkriptlerinin standart bir eğri göre caluated edildi.
    Not: Bugüne biraz üzerinde orijinal 6 ncı modifiye edildi.

    Tablo 1: Bir yolculuk sırasında şüpheli norovirus gastroenterit vakaları rapor eden bir gemisi toplanan 34 sürüntü örneklerinden sonuçları.

    Şekil 2, RT-qPCR ve bu örnekleri sırası yeteneği belirlenir Ct değerleri arasındaki ilişkiyi göstermektedir. Toplamda 127 217 üzerinden sürüntü örnekleri RT-qPCR GII norovirusa testi pozitif. Numuneler Ct değerleri geniş bir (12-40) göstermiştir. Toplam olarak, RT-qPCR pozitif örnek 29 (% 22.8) genotip olabilir. Ct değerleri 27 altında ve 28-31 arasında değişen ile sürüntü örnekleri sırasıyla% 100 ve% 72,2, oranlarında genotiplendirilmiştir. Buna karşılık, sadece% 22.0 ve 32-36 ve 37-40 Ct değerleri ile svap örneklerinin% 1.6, sırasıyla başarılı bir şekilde dizildi olabilir, yarı-iç içe amplikonları üretti.


    Şekil 2: RT-qPCR tarama ve teyit norovirus salgınları sırasında toplanan olmuştu sürüntü örneği sıralama sonuçları. Beyaz barlar RT-qPCR pozitif sürüntü örnekleri virüs sayısını temsil. Bu RT-qPCR pozitif örneklerin İnsan Norovirus nükleik asitler yarı iç içe PCR deneyi kullanılarak büyütülmüş ve daha sonra genotipleme onay sekanslandı. Siyah çubuklar ve satır numarası ve genotip yüzdesi sırasıyla çubukla örnekleri doğruladı temsil etmektedir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Ct değeri aralığı RT-qPCR pozitif örneklerin sayısından Dizisi teyit numune sayısı (%) Bir
    20-23 4 3 (75)
    24-27 3 3 (100)
    28-31 18 13 (72.2)
    32-36 41 9 (22.0)
    37-40 61 1. (1.6)
    a) yarı iç içe PCR

    Tablo 2: RT-qPCR ve sürüntü örneği genotiplendirme sonuçları.

    örnek Numarası YER Yüzey Açıklaması Yüzey alanı (cm2) Numune toplama Tarih / saat Temiz (E / H) Temizlenmiş, hangi dezenfektan kullanılmıştır? </ Strong> Yüzey malzemesinin ve yer ayrıntılı açıklaması
    1 Room # 7-1302 Klozet 700 cm2 2016/06/26; 09:00 Yok hayır uygulanamaz Tuvalet koltuk [üst yüzeyler) ve sabit plastoc
    2 Room # 7-1330 telefon sap 500 cm 2 2016/06/26; 09:25 Evet 1000 ppm ağartma Sert plastik, kauçuk düğme

    Ek Tablo 1: Örnek açıklama formu örneği.

    <td> 17
    genogroup / virüs İsim oligonükleotid primer / prob Sıra 5 → 3 & #900; Referans
    GI Cog1F CGY TGG ATG CGI TTY CAT GA 17
    Cog1R CTT AGA CGC CAT CAT CAT TYA C 17
    G1SKF CTG CCC GAA TTY GTA AAT GA 17
    G1SKR CCA ACC CAR CCA TTR TAC A 17
    Ring1E prob FAM - TGG ACA GGR GAY CGC - MGBNFQ bir Bu çalışma
    GII Cog2F ARAÇ GAR BCN ATG TTY AGR TGG ATG AG 17
    Cog2R TCG ACG CCA TCT TCA TTC ACA 17
    Ring2-astar TGG GAG GGC GAT CGC AAT CT 17
    G2SKR CCR CCN GCA TRH CCR TTR TAC AT
    Ring2 prob Cy5 veya QUASAR 670 - TGG GAG GGC GAT CGC AAT CT - BHQ2 b 17
    MS2 MS2F TGG CAC TAC CCC TCT CCG TAT TCA CG 18
    MS2R GTA CGG GCG ACC CCA CGA TGA C 18
    Ms2p-prob HEX - CAC ATC GAT AGA TCA AGG TGC CTA CAAGC - BHQ1 c 18
    Bir GI TaqMan probu 6-karboksifloresan (FAM) ve 3'-etiketli MGBNFQ (Minor-oluk Binding site) ile birlikte-5'etiketli
    b GII TaqMan probu Cy5 veya Quasar 670 ile 5'-etiketli 3'-etiketli Black Hole söndürücü ile; uygunluk durumundan dolayı kullanılan Black Hole Quencher (BHQ) 2, BHQ 3 tercih edilir.
    c MS2 TaqMan probu 5R olduğunu17; ile -etiketli HEX ve BHQ1 olan 5'-etiketli

    Ek Tablo 2: Oligonükleotid primerleri ve probları bilgileri.

    Cog 2F (10 uM)
    Bileşen Reaksiyon başına hacim (ul) Nihai konsantrasyon
    2x RT-PCR Tampon * 12.5 1x
    Nükleaz içermeyen su * 1.08 N / A
    Algılama Arttırıcı * 1.67 N / A
    Cog 1F (10 uM) 1 400 nM
    Cog 1R (10 uM) 1 400 nM
    Halka 1E-prob (10 uM) 0.5 200 nM
    1 400 nM
    Cog 2R (10 uM) 1 400 nM
    Halka 2-prob (10 uM) 0.5 200 nM
    MS2F (10 uM) 0.25 100 nM
    MS2R (10 uM) 0.25 100 nM
    Ms2p-prob (10 uM) 0.25 100 nM
    2x RT-PCR enzim * 1 1x
    Master Mix hacmi 22
    * Gerçek zamanlı RT-PCR kiti dahil

    Ek Tablo 3: multipleks gerçek zamanlı GI / GII / MS2 norovirus RT-PCR Master mix

    Kontrol tipi Sonuç yorumlama
    Numune Negatif kontrol negatif olmalıdır
    Pozitif kontrol pozitif olmalı
    negatif örnek Her Ct değeri GI / GII için saptanamaz ise örnek negatiftir
    pozitif örnek Her iki çoğaltır Ct değerleri (GI / GII) <38 ise; Bu (keyfi) kesme her gerçek zamanlı PCR platformu ve kit için deneysel olarak tespit edilmesi gerekmektedir
    Geçici pozitif numune Örnek bir çoğaltmak Ct değeri (GI / GII) ise geçici pozitiftir <38
    İç proses kontrol (MS2) ≥32 f bir eşik döngüsü olan numuneler (Ct) değeriveya MS2 sulandırılmamış tekrar test edilmeli ve 1/10 seyreltilmiş.
    Parametre Kabul edilebilir değer
    Standart eğri norovirus RNA transkriptleri kullanarak R2 > 0.97
    verim % 115% 90

    Ek Tablo 4: Çevre sürüntü örneklerinde norovirusa tespiti için her bir RT-qPCR testi dahil etmek denetler.

    Bileşen Nihai konsantrasyon hacim / rxn (ul)
    5x RT-PCR tamponu 1x 5.00
    dNTP karışımı (10 mM) 0.4 mM 1.00
    Enzim karışımı (RT ve Taq) 1.00
    İleri primer bir 0.5 uM 0.50
    Ters primer bir 0.5 uM 0.50
    RNaz inhibitörü (20 U / ul) 20 u 1.00
    RNaz içermeyen su 11.00
    Toplam ses 20.00
    ileri ve GI ve GII grubu için primer setleri ters sırasıyla Cog1F + G1SKR ve Cog2F + G2SKR vardır.
    İkinci tur RT-PCR
    Bileşen Nihai konsantrasyon hacim / rxn (ul)
    5x RT-PCR tamponu < / Td> 1x 5.00
    dNTP karışımı (10 mM) 0.4 mM 1.00
    Enzim karışımı (RT ve Taq) 1.00
    İleri primer b 0.5 uM 0.50
    Ters astar b 0.5 uM 0.50
    RNaz inhibitörü (20 U / ul) 20 u 1.00
    RNaz içermeyen su 14.00
    Toplam ses 23.0
    b ileri ve GI ve GII grubu için primer setleri ters sırasıyla G1SKF + G1SKR ve Ring2 astar + G2SKR vardır.
    Not: bilgilerden biraz üzerinde orijinal 19. madde modifiye edilmiş
    1 "> Ek Tablo 5: Hemi-nested RT-PCR Master mix:" keep-together.within-page = fo "_content.

    faz I saha Örnekleme 1. Kontrol macrofoam sürüntü kitleri (örneğin, son kullanma tarihi, tüp kaçakları ve çubukla ıslaklık)
    2. Çubuğu yüzeyi (sınır yüzey alanı ≤100 inç 2 (645 cm2) için)
    3. taşıma tüpleri içine Swab ve nakliye sırasında sızıntı önlemek için sıkıca kapaklarını sıkın
    Bir Kilitli-çanta içinde 4. çubukla kiti
    Faz II Numune taşıma ve depolama 1. Örneklenmiş çubuklar saklanmalıdır -70 ° C (ya da -20 ° C)
    2. Nakliye çubuklatoplama bezlerden 48 saat içinde yalıtılmış bir kap ve gemi 0-4 ° C (soğuk-paketleri) de laboratuvara numuneleri
    faz III RNA etraction 1. Kontrol lizis tamponu (örneğin, son veriler)
    2.% 100 etanol eklenmesinden önce parçalama tamponu içinde bir iç kontrol olarak MS2 ekleme
    RNA saflaştırma ve konsantrasyon 3. Temiz laboratuvar tezgah ve RNA RNaz kaldırma çözümü kullanarak küçük ekipman
    Bir RNA çapraz bulaşmayı önlemek için sık sık adımları sırasında 4. eldivenleri değiştirin
    faz IV RT-PCR Testi (QA / QC) 1. Her bir PCR çalışması için Ct değerleri varyasyonlarının kontrol etmek için her bir RT-qPCR deneyi için sayısal norovirus transkript RNA (Gl ve GII) gibi
    2.PCR inhibitörleri varlığını izlemek için MS2 sinyal yokluğu kullanın

    Ek Tablo 6: CDC çevre örnekleme prosedürü için kontrol listesi.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Discussion

    Noroviruses 18 ve 10 3 virüs parçacıkları 20 arasında% 50 insan bulaşıcı dozu var. Bu nedenle, yüzeylerin bile düşük seviyeli kirlenme bir halk sağlığı riski doğurabilir. iç çıkarma kontrolü olarak taşıma sırasında 1) farklı sürüntü malzemeleri, 2) depolama koşulu bezlerden, 3) viral RNA konsantrasyonu ve 4) kolifaj MS2: çubukla örnekleme protokolünün çeşitli yönleri de dahil olmak üzere değerlendirildi.

    Yakın zamana kadar, pamuk, polyester, naylon ve benzeri) silin antistatik yapılan bezlerden sadece performansı değerlendirilmiştir edildiğini ve saha kullanımı 13, 14, 15, 21, 22 için önerdi. Bunlardan, pamuklu Norovirusla ve hepatit gıda hazırlama yüzeyleri ve fomitler 23 A virüsü tespiti için ISO 15216 protokol tarafından tavsiye edilmiştir. NasılHiç sık Noroviruses 24, 25 iletilmesi suçlanmıştır gibi doorknobs, bilgisayarlar ve klozet gibi büyük yüksek dokunmatik yüzeyli saha şartlarında pamuklu test performansı üzerinde sınırlı veri vardır. Ayrıca, bu çevresel yüzeylerin büyüklüğü fiber uçlu bezlerden kapasitesini aşıyor. Bizim çalışmamızda, 700 cm 2 kadar bir alana sahip çevre yüzeyleri örnekleme zaman fiber uçlu bezlerden daha büyük bir çubukla kafasına sahip macrofoam bezlerden, insan norovirusa için daha yüksek geri kazanım oranlarına sahip olduğunu göstermiştir.

    çözelti içinde Noroviruses çevre sıcaklığında nispeten kararsızdır ve en soğutma yapılmasını gerektirir. Bu nedenle, laboratuvara kargo bezlerden toplandıktan sonra 48 saat içinde 0-4 ° C'de gerçekleşmelidir. tipik olarak, bir PCR reaksiyonunda test edilebilir örneğin hacmi miktarının çok daha küçüktürÖrnek konsantrasyonu olmadan, önemli ölçüde pozitif oranını azaltır, çubukla (5-10 mL vs 3-5 ul) elüsyon sonra. Çevre viroloji olarak, polietilen glikol (PEG) çevresel suların büyük hacimli virüsleri konsantre başarıyla kullanılmaktadır. Bununla birlikte, en fazla 10 ml hacim kolaylıkla ekstre edilmiş ve 250 uL kadar düşük miktarlar Midi spin sütunları kullanılarak konsantre edildi, ve daha fazla yüksek verimli kullanarak kolonlanyla ile 10 kat konsantre edilebilir.

    RT-qPCR hassas algılama ve norovirusa ölçümü için altın standart olmasına rağmen, bu deneylerin duyarlılığı kolayca çubukla örneklerinden birlikte ekstre edilir PCR inhibitörlerinin varlığı ile etkilenebilir. Bu nedenle, MS2 yanı sıra her iki Norovirus algılayan bir multipleks PCR formatında, böyle kolifajla MS2 virüs partikülleri gibi bir ekstraksiyon kontrolü, dahil PCR inhibisyonu varlığını izlemek ve farklı deneyler arasında varyasyon değerlendirmek için yardımcı olur. </ P>

    Bir laboratuvar doğrulama yönteminin test değişkenleri test yöntemi ayrımcı gücünü belirlemek için kritiktir ve daha fazla yöntemin muhtemel saha örnekleme performansı çevrilir. Gerçek dünya alan koşulu alarak (örneğin, 700 cm 2 büyük yüzey alanları gecikmeli örnekleme) dikkate, norovirusa için algılama sınırı 3.4 log 10 (paslanmaz çelik) ve 4 günlük 10 (klozet) yüzey başına kopya norovirus örneklenen oldu 6. Sonuç olarak, negatif sürüntü sonucu viral kontaminasyon oluştu olduğu kesin değildir. Norovirus hastalığın klinik ve epidemiyolojik bilgiler her zaman 6, çevresel bulgulara göre 2 koz.

    Bir cruise gemisi bizim veriler, telefonlar, bilgisayar klavyeleri, ve kapı gibi yüksek dokunmatik yüzeyler kabin nerede insanlar norovirusa testinin pozitif kolları olduğunu gösterdiile bildirilen viral gastroenterit kalmıştı. Bu yüzeyler tuvalet kızarma veya kusma atakları 6, 7, 8, 9, 10 sırasında üretilen damlacıklar yoluyla dolaylı olarak doğrudan temas yoluyla kontamine veya olmuş ya.

    Klinik örnekler mevcut ve temizlik uygulamalarının etkinliğinin izlenmesinde değilken Sonuç olarak, salgınlar sırasında çevresel kirlilik düzeyinin belirlenmesinde yardımcı olabilir bu yeni geliştirilen çubukla protokolünü kullanarak çevresel yüzeylerde norovirusa tespiti, virüs tespit. Fiber (örn rotavirüs ve adenovirüs) 27, 28, 29 yüzey örnekleme yöntemleri yaygın diğer enterik virüsler araştırmak için kullanılmıştır tabanlı bez (pamuk ve ipekten) uçlu. yüksek göz önüne alındığındaBu liflerin üzerinde macrofoam bezlerden norovirusa kurtarma verimliliği biz macrofoam bezlerden de diğer enterik virüsleri tespit etmek mümkün olması beklenmektedir, bezlerden 6 uçlu.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Disclosures

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Generic name for kits
    Macrofoam swab Premoistened EnviroMax Swab kit  Puritan 2588060PFUW
    RNA Lysis buffer  CDC UNEX buffer Microbiologics Cat No MR0501
    RNA extraction spin column Midi column Omega Biotek Cat No R6664-02
    RNA purification spin column Zymol RNA Clean and Concentrator kit  Zymo Research Cat No R1016
    Real time RT-PCR kit AgPath kit One-Step RT-PCR Kit Life Technologies Cat No 4387391
    Conventional RT-PCR kit Qiagen one step RT-PCR kit Qiagen kit Cat No 210212
    Gel extraction kit Qiagen QIAquick gel extraction kit Qiagen kit Cat No 28704 or 28706
    Coliphage MS2 ATCC Cat No 15597-B1
    RNA run-off transcripts
    Realtime PCR platform Applied Biosystems Model ABI 7500
    Optical 96-well reaction plate Thermo Scientific Cat No 4316813
    MicroAmp Clear Adhesive Film  Thermo Scientific Cat No 4306311

    References

    1. Isakbaeva, E. T., et al. Norovirus transmission on cruise ship. Emerg. Infect. Dis. 11, 154-158 (2005).
    2. Lopman, B. A., Gastañaduy, P., Park, G. W., Hall, A. J., Parashar, U. D., Vinjé, P. Environmental transmission of norovirus gastroenteritis. Curr. Opin. Virol. 2, (1), 1-7 (2011).
    3. Malek, M., et al. Outbreak of norovirus infection among river rafters associated with packaged delicatessen meat, Grand Canyon, 2005. Clin Infect Dis. 48, (1), 31-37 (2009).
    4. Atmar, R. L., et al. Norwalk virus shedding after experimental human infection. Emerg. Infect. Dis. 14, (10), 1553-1557 (2008).
    5. Norovirus gastroenteritis. N. Engl. J. Med. Glass, R. I., Parashar, U. D., Estes, M. K. 361, (18), 1776-1785 (2009).
    6. Park, G. W., et al. Evaluation of a New Environmental Sampling Protocol for Detection of Human Norovirus on Inanimate Surfaces. Appl. Environ. Microbiol. 81, (17), 5987-5992 (2015).
    7. Barker, J., Jones, M. V. The potential spread of infection caused by aerosol contamination of surfaces after flushing a domestic toilet. J. Appl. Microbiol. 99, 339-347 (2005).
    8. Tung-Thompson, G., Libera, D. A., Koch, K. L., de Los Reyes, F. L., Jaykus, L. A. Aerosolization of a Human Norovirus Surrogate, Bacteriophage MS2, during Simulated Vomiting. PloS one. 10, 0134277 (2015).
    9. Atmar, R. L., et al. Determination of the 50% human infectious dose for Norwalk virus. J. Infect. Dis. 209, (7), 1016-1022 (2014).
    10. Petrignani, M., van Beek, J., Borsboom, G., Richardus, J. H., Koopmans, M. Norovirus introduction routes into nursing homes and risk factors for spread: a systematic review and meta-analysis of observational studies. J. Hosp. Infect. 89, (3), 163-178 (2015).
    11. Centers for Disease Control Prevention. Norovirus outbreak in an elementary school--District of Columbia, February 2007. MMWR. Morb. Mortal. Wkly. Rep. 56, (51-52), 1340-1343 (2008).
    12. Cheesbrough, J. S., Barkess-Jones, L., Brown, D. W. Possible prolonged environmental survival of small round structured viruses. J. Hosp. Infect. 35, 325-326 (1997).
    13. Julian, T. R., Tamayo, F. J., Leckie, J. O., Boehm, A. B. Comparison of surface sampling methods for virus recovery from fomites. Appl. Environ. Microbiol. 77, 6918-6925 (2011).
    14. Taku, A., et al. Concentration and detection of caliciviruses from food contact surfaces. J. Food. Prot. 65, 999-1004 (2002).
    15. Scherer, K., Ellerbroek, L., Schulenburg, J., Johne, R., Klein, G. Application of a swab sampling method for the detection of norovirus and rotavirus on artifically contaminated food and environmental surfaces. Food. Environ. Virol. 1, (42), 42-49 (2009).
    16. Herzog, A. B., et al. Evaluation of sample recovery efficiency for bacteriophage P22 on fomites. Appl. Environ. Microbiol. 78, 7915-7922 (2012).
    17. Vega, E., et al. CaliciNet: A Novel Surveillance Network for Norovirus Gastroenteritis Outbreaks in the United States. Emerging Infectious Diseases. 17, (8), 1389-1395 (2011).
    18. Rolfe, K. J., et al. An internally controlled, one-step, real-time RT-PCR assay for norovirus detection and genogrouping. J Clin Virol. 39, (4), 318-321 (2007).
    19. Kittigul, L., et al. Norovirus GII-4 2006b variant circulating in patients with acute Thailand during a 2006-2007 study. J. Med. Virol. 82, (5), 854-860 (2010).
    20. Teunis, P. F., et al. Norwalk virus: how infectious is it. J. Med. Virol. 80, (8), 1468-1476 (2008).
    21. Wollants, E., et al. Evaluation of a norovirus sampling method using sodium dodecyl sulfate/EDTA-pretreated chromatography paper strips. J. Virol. Methods. 122, 45-48 (2004).
    22. Weir, M. H., Shibata, T., Masago, Y., Cologgi, D., Rose, J. B. The Effect of Surface Sampling and Recovery of Viruses and Non-Spore Forming Bacteria on a QMRA Model for Fomites. Environ. Sci. Technol. 50, (11), 5945-5952 (2016).
    23. Microbiology of food and animal feed-Horizontal method for determination of hepatitis A virus and norovirus in food using real-time RT-PCR. International Organization for Standardization (ISO). Report No. ISO/TS 15216-1:2013(E) (2013).
    24. Huslage, K., Rutala, W. A., Sickbert-Bennett, E., Weber, D. J. A quantitative approach to defining "high-touch" surfaces in hospitals. Infect. Control. Hosp. Epidemiol. 31, (8), 850-853 (2010).
    25. Wu, H. M., et al. A norovirus outbreak at a long-term-care facility: the role of environmental surface contamination. Infect. Control. Hosp. Epidemiol. 26, (10), 802-810 (2005).
    26. Ikner, L. A., Gerba, C. P., Bright, K. R. Concentration and recovery of viruses from water: a comprehensive review. Food Environ. Virol. 4, (2), 41-67 (2012).
    27. Gallimore, C. I., et al. Environmental monitoring for gastroenteric viruses in a pediatric primary immunodeficiency unit. J. Clin. Microbiol. 44, (2), 395-399 (2006).
    28. Ganime, A. C., et al. Dissemination of human adenoviruses and rotavirus species A on fomites of hospital pediatric units. Am J Infect Control. (2016).
    29. Verani, M., Bigazzi, R., Carducci, A. Viral contamination of aerosol and surfaces through toilet use in health care and other settings. Am J Infect Control. 42, (7), 758-762 (2014).

    Comments

    0 Comments

    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Metrics

    Waiting
    simple hit counter