Спектральная Рефлектометрические микроскопия на Миелинизированные аксоны в Situ

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Здесь мы представляем пошаговые протокол для визуализации Миелинизированные аксоны в кусочек фиксированной мозга, используя ярлык свободный наноразмерных изображения метод, основанный на спектральные рефлектометрии.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Kwon, J., Choi, M. Spectral Reflectometric Microscopy on Myelinated Axons In Situ. J. Vis. Exp. (137), e57965, doi:10.3791/57965 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

В млекопитающих нервной системы миелина обеспечивает электрической изоляции, обертыванием аксон волокон в многослойных спираль. Вдохновленный архитектурой субцеллюлярные высоко организованной, мы недавно разработали новый механизм визуализации, именем спектральных рефлектометрии (сфере), который позволяет беспрецедентную лейбл свободных наноразмерных изображений живой Миелинизированные аксоны в situ. Основополагающий принцип заключается в получении информации наноструктурных, проанализировав отражения спектр многослойных субцеллюлярные структуры. В этой статье мы опишем подробные пошаговые протокол для выполнения основной сфере изображений нервных тканей, с использованием коммерческих конфокальный микроскопические системы, с белый свет лазера и перестраиваемый фильтр. Мы охватывают процедуры пробоподготовки, приобретение спектральных данных и обработки для получения сведений о наноструктурных изображений.

Introduction

В нервной системе млекопитающих миелина обеспечивает быстрое нервной проводимости и аксональной целостность, обертыванием аксон волокон с многослойных мембранных влагалищ. Многослойная структура состоит из чередующихся наноразмерных тонких пленок-состоящий из плазменных мембран (~ 5 Нм), цитозоле (~ 3 Нм) и внеклеточного пространства (~ 7 Нм)1,2. Оптическая микроскопия, включая недавние суперразрешением микроскопии, не подходят для наблюдений за наноразмерных миелина динамика из-за их недостаточной резолюции вследствие дифракции3,4,5. Хотя электронная микроскопия может предоставить мелких деталей из наноструктурированных миелина, это не совместимо с живых биологических систем из-за очень инвазивных образец подготовки с участием химической фиксации и ultrasectioning6,7 . До недавнего времени, там было не техника применяется для наблюдения за наноразмерных динамика Миелинизированные аксоны в situ.

Schain et al. ранее сообщалось, что Миелинизированные аксоны exhibit красочные светоотражения8. Приняв спектроскопического анализа на отраженный свет, мы разработали новый механизм изображений для визуализации наноразмерных Миелинизированные аксонов, названный спектральных рефлектометрии (сфере)9. Сфере на основе тонкопленочных вмешательства, происходящих в многослойной структуре Миелиновые оболочки (рис. 1). По оптического моделирования на различных аксонов, мы показали, что спектр отражения является периодическая функция волновое и его периодичность (Equation 1) пропорциональна аксон диаметр (d). Этот простой отношения (Equation 2) предлагает снисходительный количественная оценка диаметра аксона от сфере данных. Используя это, мы показали распространены аксона, выпуклые под легкой черепно-мозговой травмы в нашем предыдущем докладе.

Сфере система основана на confocal микроскопии и состоит из специализированных лазерного источника и фильтров (рис. 2). Источник ввода является белый свет лазера, предоставление широкополосного спектральных вывода видимых инфракрасных регионов. Для спектрального сканирования, система оснащена двумя акустооптические устройства: акустооптические перестраиваемый фильтр (AOTF) для доставки выбранной длине волны от источника входного сигнала широкополосные и splitter луча Акусто оптический (AOBS) для руководства выбранного отражение Длина волны до детектора. Программное обеспечение для гиперспектрального confocal микроскопии (см. Таблицу материалы) предоставляет настраиваемый спектрального сканирования вариант последовательно получить отражения изображения на различных длинах волн ввода. Кроме того хроматические аберрации критически может вмешиваться в спектральных измерений; Поэтому рекомендуется использовать Апохромат объектива.

Следует отметить белый свет лазеры производства неравномерным спектральных и оптических компонентов также влияет на спектральные профиль. Таким образом полученные спектры должны быть откалиброваны для последующего количественного анализа. Охраняемых Серебряное зеркало обычно используется как ссылка, которая обеспечивает практически постоянный коэффициент отражения (> 97%) над полностью видимой области. Полученные спектры затем делится на ссылку спектров от зеркала.

Размер спектральных шаг спектрального сканирования определяет скорость приобретения; Таким образом он должен быть оптимизирован. Как большие аксона имеет высокий спектральных период, он требует тонкой спектральных выборки. К примеру, аксон с диаметром 10 мкм, один из крупнейших физиологического аксоны, имеет спектральный период ~ 8 Нм. Применив критерии отбора проб Найквиста, мы заняты спектральный интервал 4 Нм для покрытия всех физиологических аксоны в нервных тканях мыши. Этот подход обычно занимает более нескольких секунд для полного спектрального сканирования и таким образом не подходит для приложений в естественных условиях , где физиологическое движение (например дыхание и сердцебиение) мешает стабильной спектральных приобретения. Ранее мы решили этот вопрос путем инструментирования микроскопом заказной вертикально, предназначена для получения полного спектра для каждой точки, с помощью массива спектрометр (приобретение скорость ≈ 30 мс на пиксель).

В настоящем докладе, мы описываем подробный протокол на сфере изображений на кусочек фиксированной мозга, которые могут быть выполнены в коммерческих гиперспектрального микроскоп (см. Таблицу материалы). Таким образом протокол может быть дополнено экспериментаторов без опыта в оптических приборов. Мы также охватывать потенциальные проблемы и устранение неполадок для сбора и анализа данных сфере.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Все хирургические процедуры были утверждены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) Университета Сонгюнгван.

1. Пробоподготовка

Примечание: Автоклав всех хирургических инструментов до обработки животных. Проведение всех хирургических производительности в комнате, посвященный хирургических процедур. Стерильные хирургические халаты и перчатки должны носить всем персоналом в хирургическое обслуживание на все времена.

  1. Фиксация ткани
    1. Подготовьте два 10 мл-шприцы, каждый наполнен фосфат амортизированное saline (PBS) и параформальдегида 4% (PFA) в PBS.
    2. Анестезировать 7-12-недельных мышь, (C57BL/6J или любой мыши линии с любого пола) управляющими смесь zoletil и Ксилозин (1:1, 20 мг/кг) или режима альтернативных подходящих анестезии (например, смесь кетамин 80 мг/кг и 10 мг/кг Ксилазина) с внутрибрюшинной инъекции.
    3. Как только мышь достиг хирургические плоскости анестезии (используйте метод Пинч ответ мыс), разоблачить сердце, отрезав кожи и грудная клетка с ножницами.
    4. СНиП правое предсердие с маленькие ножницы для слива крови и perfuse PBS и PFA решение последовательно через левого желудочка с помощью иглы (перфузии ставка = 4 мл/мин, объем = 10 мл для каждого решения).
      Примечание: Мышь становится жесткой, если процедура будет успешно завершена. Использование глазная мазь или стерилизация не является необходимым, как процедура терминала. Фиксация процедура может быть пропущен. Однако этот шаг рекомендуется для сведения к минимуму структурных деформаций, включая повреждение механических тканей и аксональной ишемический отек. Для получения более подробной информации о фиксации ткани обратитесь к статье Гейдж, G. J. et al. 10
  2. Подготовка срез мозга
    1. Обезглавить мышь с Ножницы хирургические через брюшной грудной клетки и живота.
    2. Удалите головы и надкостницы, подходяще небольшой ножницами до полностью обнажая черепной коробки.
    3. Разорвать лобной кости и разрезать вдоль Сагиттальный шов от затылочной кости, используя маленькие ножницы с осторожностью, чтобы не повредить мозг череп.
    4. Аккуратно удалите черепной коробки и твердой мозговой оболочки, последовательно с помощью тонкой щипцами.
    5. Извлечение с помощью мягкой пластиковой ложкой, стараясь не повредить ткани мозга.
    6. Промыть и замочить извлеченные мозга в 4% раствор PFA для 30 мин при 4 ° C.
    7. Slice фиксированной мозга на 100 — 150 мкм секций с помощью vibratome.
      Примечание: Для получения более подробной информации о подготовке ткани, обратитесь к статье, Сегев и др. 11. для последующих процедур, ткани должны быть нарезанный в секции тоньше, чем толщина распорку.
  3. Монтаж на срез мозга
    1. Подготовка 1 стеклянное скольжение и 2 квадратных крышка очки (22 × 22 × 0,17 мм) для каждого среза ткани.
    2. Один из квадратных очках Обложка нарезать половину (две прямоугольные куски) с помощью стеклорез.
    3. Прикрепите два наполовину очки покрытия с помощью супер клей на стекле слайд.
      Примечание: Пространство между двумя наполовину очки должны быть немного больше, чем размер среза ткани.
    4. Урожай срез мозга, используя щетку или пипетки и заложить ткань на слайд стекло между распорку. Заботиться не сложить ткани.
    5. Отказаться от 100 мкл PBS на поверхности ткани.
    6. Место другой квадратных Стекло покровное поверх ткани. Избегайте включения воздушных пузырей во время этой стадии.
    7. Уплотнение вокруг крышки стекла, используя лак (или альтернативно подходящего клея) для предотвращения испарения PBS и загрязнение пылью во время последующей сессии изображений.
      Примечание: На данном этапе может приостановить экспериментатора.

2. Калибровка

  1. Переключение на микроскопе по крайней мере 1 час перед изображений позволяет тепловой стабилизации лазерного источника (см. Таблицу материалы). Затем включите программное обеспечение для спектрального сканирования (см. Таблицу материалы) и нажмите на кнопку получить на вершине GUI (Рисунок 3А).
  2. Включите программное обеспечение затвора для белый свет лазера (WLL) и фотоэлектронный умножитель трубки (ПЛТ) (рис. 3a).
  3. Выберите в xyΛ режим в раскрывающемся списке Режим, а затем, режим ввода лазер автоматически изменяется с постоянной процентов на Постоянной мощности. Снимите флажок Автоматического движения SP. И установите спектральные окна ввода лазерного 470 – 670 нм и размер спектральных шага 4 Нм на Λ-возбуждения лямбда сканирования Параметры (рис. 3b).
  4. Спектральный диапазон ПЛТ значение 450-690 двойным щелчком или перемещении ползунка регулировки для спектрального диапазона (рис. 3 c).
    Примечание: Этот спектральный диапазон должен включать полную пропускную способность источника входного сигнала.
  5. Выбор объектива погружения в воду, надлежащим образом с высоким числовой апертуры (NA > 0,7) и дать любое значение ПЛТ и лазерной энергии для того чтобы активировать кнопку AOBS конфигурации и Жить сканирование . Переключение оптического пути, проверяя отражение в AOBS конфигурации (рис. 3d).
  6. Смонтировать зеркало ссылку (см. Таблицу материалы) на сцене микроскопа. Зеркальная поверхность следует сталкивается против объектива. Если это не просто поставить зеркало на микроскопа, Бонд зеркало на плоской пластине (например слайд стекло).
  7. Управление микроскопа выровнять фокальной плоскости к зеркальной поверхности.
  8. Отрегулируйте ПЛТ усиления и мощности лазера, учитывая динамический диапазон детектора и затем изменить режим ввода лазер с постоянной процента для Постоянной мощности.
    Примечание: Как обычно, PMT получить 500 (V) и относительной лазера мощностью 0,1% используются в 570 Нм.
  9. Подтверждение в псевдо-цветовой режим, чтобы проверить, что есть нет насыщения во всем диапазоне длин волн. Если наблюдается насыщения, снизить мощность лазера (рис. 3a).
  10. Запуск Сканирования лямбда приобретения.
  11. Удаление зеркала из стадии и повторите же приобретения без образца, чтобы получить ссылку на темные (т.е., темный смещение).
  12. Сохраните данные в формате Multistacked TIF .

3. сфере изображения приобретение

  1. Место навесные ткани на микроскопа. Чтобы приблизительно выровняйте ткани в фокальной плоскости объектива, используйте режим флюоресценции поля через глаз кусок.
  2. С Live сканирования на, управления микроскопа выровнять фокальной плоскости для региона интерес в ткани. Чтобы избежать фоновый шум от скольжения обложки, выберите целевой регион по крайней мере 15 мкм глубины из стекла ткани интерфейса.
  3. Приобрести изображения спектральным стека для целевого региона, используя ту же процедуру, как описано в шагах 2.1 – 2.10.
  4. Сохраните данные для ткани и темные смещение в Multistacked TIF формате.
    Примечание: На данном этапе может приостановить экспериментатора.

4. обработка и анализ изображений

  1. Откройте спектральные данные (multistacked TIF) для ссылки зеркало и ткани мозга в ImageJ.
  2. Выберите трансформирования (Регионы интереса) для открытого изображения стеки — Центральная область для ссылки зеркало и сегмент аксона волокна для ткани мозга.
  3. Приобрести сырье спектры для выбранного ROIs работает изображениестекипрофиль участка Z-axis в ImageJ меню.
  4. Открытие Темные смещения данных, один для ссылки зеркало и другие принятые для ткани мозга.
  5. Приобрести спектры для темных смещения работает изображениестекипрофиль участка Z-axis в ImageJ меню.
  6. Сохраните все полученные спектры с помощью копирования и вставки параметров.
    Примечание: Для изображений сфере, рекомендуется использовать Центральный визуализации поля в минимизации аберраций оптической оси. Аксон волокна могут быть структурно гетерогенных вдоль их длины. Следовательно выбор ROI на сегмент малого аксона, обычно < 5 мкм, для сведения к минимуму частичного объем артефакт рекомендуется.

5. базовые коррекции и анализ сфере сигнала

  1. Вычтите смещение спектров от спектров ссылка зеркало и тканей мозга.
  2. Нормализация каждой спектра путем деления максимальная интенсивность спектра.
  3. Разделите нормализованных спектр аксон нормализованных спектр ссылка зеркало и вычесть смещение DC от нормализованной спектра.
  4. Измерения частоты волновое путем установки приобретенного спектра синусоидальной кривой (см. Таблицу материалы), а затем преобразовать приобретенных волновое периодичности, принимая взаимные.
  5. Преобразуйте волновое периодичности аксон диаметр с помощью уравнения в рисунке 4 c.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Согласно протоколу, ломтиком фиксированной мозга был подготовлен с экзогенной окрашивание, Флюорофор ориентации миелина (см. Таблицу материалы). Сфере изображений была исполнена на срез мозга, с использованием коммерческих гиперспектрального конфокального микроскопа в сочетании с конфокальный флуоресценции изображений (рис. 4a). В сфере входной оптической интенсивности было установлено 5 мкВт/мкм2 с пиксель продолжительность ~ 1 мкс. Этот свет дозы находится над на порядок ниже, чем обычные флуоресценции confocal микроскопии12. Он занимает ~ 17 s для спектрального сканирования более 470-670 нм с интервалом 4 Нм (51 фото).

Сфере сигнал был локализован вдоль по центру Миелинизированные аксоны как ожидалось по геометрии оптических отражения. Из спектра отражения сегмент аксона был получен периодичности волновое число, который впоследствии был преобразован в диаметре аксона (рис. 4б, c). Диаметр измеряется сфере было обнаружено в хорошем согласии с на основе флуоресценции измерения (рис. 4 d). Остаточные незначительные ошибки могли происходить либо от резолюции Дифракционный метод на основе флуоресценции или неполной геометрические модели для сфере.

Сфере изображений на основе оптических отражения, таким образом на основе силики coverslip можно ввести значительные фоновый шум. В нашей оптические установки фоновый шум был значительный, когда изображения глубина от coverslip составляет менее 5 мкм, но избегали при визуализации глубина больше, чем 15 мкм (рис. 5).

Figure 1
Рисунок 1 : Принцип сфере. Миелинизированные аксона имеет структуру многослойных тонкопленочных. Падающий свет частично отражается от на интерфейсы, как описано законом Френеля. Это отражение световых волн мешать друг другу; Таким образом полученный отраженный свет кодирует информацию наноструктурных. Спектральные рефлектометрии (сфере) получает информацию о наноструктурных при декодировании отраженный свет от Миелинизированные аксон. Эта цифра была перепечатана из Квон, J. et al. 9 Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2 : Схема системы сфере. Сфере система основана на микроскопе конфокальный отражения. Для спектрального сканирования, три дополнительные компоненты необходимы для возбуждения пути: (1 суперконтинуум лазер, (2) акустооптические перестраиваемый фильтр (AOTF) и (3) акустооптические пучка сплиттер (AOBS). Спектрально широкополосного лазерного источника фильтруется по AOTF для передачи выбранного волны с узкой полосой пропускания. AOBS функционирует как splitter луча для выбранной волны для руководства света возбуждения образца. Затем свет падает на образец через гальванометрическим сканера и объектива. Отраженный свет от образца descanned, пространственно фильтруется конфокальный обскуры и собранные фотоэлектронный умножитель трубки (ПЛТ). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3 : Установка программного обеспечения. () графический интерфейс пользователя (GUI). В главном окне, являются главным образом пять вложенных панелей: визуализации установки, лазерные установки, оптические установки, установки детектора и просмотра изображений. (b) раскрывающееся меню для выбора режима визуализации. Для сфере выбрано xyλ. (c) группа для корректировки спектральные окна для детектора. (d) группа для создания разделителя Акусто оптический луч (AOBS). «Отражение» выбран для руководства отраженный свет детектор. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4 : Сфере на мозговой ткани. () сфере образа мышиных мозговой ткани окрашивали флуоресцентный counterstaining миелина (fluoromyelin). (b) представитель отражения спектр полученных от белой пунктирной коробки в (a). (c) кривой имитируемых ссылку Оценить диаметр аксона от спектральных периодичности. Синий Звездочка является точка данных, полученных от (b). (d) поперечного профиля интенсивности флуоресценции в штучной упаковке региона в (a). Внешний диаметр миелина, оценивается с помощью сигнала флуоресценции составляет ~ 760 Нм, который соглашается также с сфере измерения. Остаточная ошибка является предположительно от дифракционного погрешность измерения на основе флуоресценции. Scalebar, 5 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 5
Рисунок 5 : Эффект скольжения обложки. (, b) Отражение изображения мозговой ткани на той же боковой позиции приобретаются на разных глубинах от ткани coverslip интерфейс: на 3 мкм (а) и 15 мкм (b). Scalebar, 10 мкм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Сфере является новый лейбл бесплатная изображений механизм на основе спектральных интерферометрии, который в первый раз, предлагает наноразмерных информацию в прямом Миелинизированные аксоны. В протоколе текущего приобретения, пространственное разрешение для axon диаметр составляет порядка 10 Нм. Кроме того сфере использует порядков дозу снижают света по сравнению с другими microscopies супер резолюции; Таким образом он свободен от Фототоксичность и Фотообесцвечивание. Сфере обеспечит новые возможности для изучения динамики наноразмерных Миелинизированные аксонов.

Протокол, описываемые на основе спектрального сканирования при посредничестве Акустооптика и точки детектор (т.е., PMT). Этот подход является выгодным для получения спектральных изображений полного поля зрения. Однако время резолюции ограничивается спектрального сканирования, который обычно является > 15 s в нашей текущей конфигурации. В качестве альтернативы высокоскоростной спектроскоп могут быть включены для реального времени наблюдения небольшое поле зрения9. Эта система может просто построены из обычных конфокальный системы путем переключения ПЛТ, спектроскоп и добавив белый свет лазера. Для приобретения программного обеспечения гальванометра позиция должна быть синхронизирована с запуском спектроскоп. В случае одной точки измерения временное разрешение определяется частота кадров спектроскоп, который может быть > 10 кГц для последних сверхскоростной Приборы спектроскопические. Этот подпункт миллисекунды временное разрешение должно быть достаточно для наблюдения за большинство физиологических динамики Миелинизированные аксоны в естественных условиях. Сфере основывается на отражении света; Таким образом обнаруженных свет имеет же волны как входные свет. Напротив флуоресценции включает спектральные сдвига (то есть, Стоксов сдвиг); Таким образом обнаруженных свет спектрально отделено от входного света. Эта функция полезна для одновременного приобретения сфере и флуоресценции на том же образце (как показано на рис. 4). Поглощение света, ввода Флюорофор может повлиять на измерение сфере, но поглощения от типичных флуоресцентные пятнать ничтожно мала (< 1%).

Следует отметить сфере имеет ограниченный угловой обнаружения только диапазон аксоны почти параллельно плоскости изображения могут быть обнаружены. Этот угловой предел сфере составляет около 13,5 ° ± 9. Приобретать конкретную ориентацию интереса, образец может быть наклонена. В случае прозрачный образцов таких zebrafish эмбриона полностью объемный приобретение может быть возможным вращением образца. Дополнительные практические ограничения является coverslip, установленный на образец производит сильное обратно отражение приводит к генерации сигнала высокий фон, как показано на рисунке 5; рекомендуется, что этот поверхностный региона следует избегать. Сфере, основанный на видимый свет имеет длину 1/e ослабления ~ 20 мкм в тканях мозга. Глубина проникновения типичных ткани для приобретения надежные спектральной информации ограничивается ~ 100 µm. глубже изображений может быть возможным, если используется больше входной источник. В конце концов проверки сфере показано, сравнивая его с дифракционный флуоресцентной микроскопии. Видимо это было недостаточно для оценки точности наноразмерных (рис. 4). Последние методы, такие как коррелятивных свет электронная микроскопия и расширения микроскопии, бы предлагают способ для проверки сфере наноразмерных режим13,14.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют конкурирующих финансовых интересов: J. Kwon и Чой м. являются изобретателей запатентованной технологии, описанные в этой статье.

Acknowledgments

Эта работа была поддержку Института фундаментальной науки (IBS-R015-D1) и основные программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством образования (2017R1A6A1A03015642).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Glass cutter - - Can be purchased in a local convenience store or online stores.
Nail polish - - Can be purchased in a local convenience store or online stores.
Apochromat objective 40×, NA 1.1 Leica Microsystems 15506357 Water-immersion type
Fluoromyelin Green Thermo Fisher F34651 Alternatively, Fluoromyelin Red (F34652) can be used.
Leica SP8 TCS microscope Leica Microsystems SP8 Refer to the "Configuration of microscope" in Introduction Section for details.
Imaging software Leica Microsystems LAS-X -
Matlab MathWorks - -
Mirror Thorlabs PF10-03-P01 Coated with protected silver.
Phosphate-buffered saline (PBS) Life technologies 14190-136 -
Paraformaldehyde Biosolution BP031a 4% v/v in PBS
Cover slip Thermo Fisher 3306 Thickness: #1 (0.13 to 0.17 mm)
Slide glass Muto Pure Chemicals 5116-20F Thickness: ~1 mm
Super glue Henkel Loctite 406 Use a dispensing equipment to avoid skin or eye contact.
Syringe pump Brainetree Scientific BS-8000 DUAL -
Vibratome Leica Biosystems VT1200S -
White-light laser NKT photonics EXB-6 EXB-6 was discontinued and replaced by EXU-6.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Fernandez-Moran, H., Finean, J. B. Electron microscope and low-angle x-ray diffraction studies of the nerve myelin sheath. Journal of Cell Biology. 3, (1957).
  2. Blaurock, A. E. The spaces between membrane bilayers within PNS myelin as characterized by X-ray diffraction. Brain Research. 210, 383-387 (1981).
  3. Shim, S. -H., et al. Super-resolution fluorescence imaging of organelles in live cells with photoswitchable membrane probes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 13978-13983 (2012).
  4. Urban, N. T., Willig, K. I., Hell, S. W., Nägerl, U. V. STED nanoscopy of actin dynamics in synapses deep inside living brain slices. Biophysics Journal. 101, 1277-1284 (2011).
  5. Manley, S., et al. High-density mapping of single-molecule trajectories with photoactivated localization microscopy. Nature Methods. 5, 155-157 (2008).
  6. Peters, A., Sethares, C. Is there remyelination during aging of the primate central nervous system? Journal of Comparative Neurology. 460, 238-254 (2003).
  7. De Campos Vidal, B., Silveira Mello, M. L., Caseiro-Filho, A. C., Godo, C. Anisotropic properties of the myelin sheath. Acta Histochemica. 66, 32-39 (1980).
  8. Schain, A. J., Hill, R. A., Grutzendler, J. Label-free in vivo imaging of myelinated axons in health and disease with spectral confocal reflectance microscopy. Nature Medicine. 20, 443-449 (2014).
  9. Kwon, J., et al. Label-free nanoscale optical metrology on myelinated axons in vivo. Nature Communication. 8, 1832 (2017).
  10. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole Animal Perfusion Fixation for Rodents. JoVE. (65), e3564 (2012).
  11. Segev, A., Garcia-Oscos, F., Kourrich, S. Whole-cell Patch-clamp Recordings in Brain Slices. JoVE. (112), e54024 (2016).
  12. Waldchen, S., Lehmann, J., Klein, T., Van De Linde, S., Sauer, M. Light-induced cell damage in live-cell super-resolution microscopy. Scientific Reports. 5, 15348 (2015).
  13. Chang, J. B., et al. Iterative expansion microscopy. Nature Methods. 14, 593-599 (2017).
  14. Polishchuk, R. S., et al. Correlative light-electron microscopy reveals the tubular-saccular ultrastructure of carriers operating between Golgi apparatus and plasma membrane. Journal of Cell Biology. 148, 45-58 (2000).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics