Kwantitatieve onderzoek van antibiotische gevoeligheid van Neisseria gonorrhoeae met behulp van aggregaten ATP-gebruik commerciële testen en Live/Dead vlekken

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

Een eenvoudige ATP-metende assay en leven/dood kleuring methode dienden te kwantificeren en te visualiseren van Neisseria gonorrhoeae voortbestaan na de behandeling met ceftriaxone. Dit protocol kan worden uitgebreid tot de antimicrobiële gevolgen van een antibioticum en kan worden gebruikt voor het definiëren van de minimale remmende concentratie van antibiotica in bacteriële biofilms.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Wang, L. C., Wagner, J., Capino, A., Nesbit, E., Song, W., Stein, D. C. Quantitative Examination of Antibiotic Susceptibility of Neisseria gonorrhoeae Aggregates Using ATP-utilization Commercial Assays and Live/Dead Staining. J. Vis. Exp. (144), e58978, doi:10.3791/58978 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

De opkomst van antibiotica resistente Neisseria gonorrhoeae (GC) is een wereldwijd gezondheidsbedreiging en wijst op de noodzaak om te identificeren van individuen die niet van de behandeling. Deze gram-negatieve bacterie veroorzaakt gonorroe uitsluitend bij mensen. Tijdens de infectie is het kundig voor formulier aggregaten en/of biofilms. De minimale remmende concentratie (MIC) test wordt gebruikt om te bepalen van de gevoeligheid voor antibiotica en definiëren passende behandeling. Het mechanisme van de uitroeiing in vivo en haar relatie tot laboratoriumresultaten zijn echter niet bekend. Een methode die bespreekt hoe de GC aggregatie beïnvloedt antibiotische gevoeligheid en toont de relatie tussen de totale omvang en antibiotische gevoeligheid werd ontwikkeld. Wanneer GC aggregaat, ze meer resistent tegen antibiotica doden zijn, surviving met de bacteriën in het midden ceftriaxone behandeling beter dan die in de periferie. De gegevens wijzen erop dat N. gonorrhoeae aggregatie zijn gevoeligheid voor ceftriaxone, die niet wordt weerspiegeld met behulp van de standaard agar plaat gebaseerde MIC methoden kan verminderen. De methode die wordt gebruikt in deze studie zal de onderzoekers voor het testen van bacteriële gevoeligheid onder klinisch relevante voorwaarden toestaan.

Introduction

Gonorroe is dat een seksueel overdraagbare infecties (SOA)1. Neisseria gonorrhoeae (GC), een gram-negatieve bacterie diplococcal, is de verwekker van de ziekte. Symptomen van genitale infectie kunnen leiden tot pijn tijdens het plassen, gegeneraliseerde genitale pijn en urethrale kwijting. -Infectie is vaak asymptomatisch2,3,4,5, en dit zorgt voor uitgebreide kolonisatie. Deze onbehandelde infecties zijn een belangrijke gezondheids-zorg, zoals ze het potentieel hebben om de transmissie van het organisme en dit kan leiden tot complicaties, zoals pelvic inflammatory disease (PID) en verspreid gonococcal infectie (DGI)6. Antibiotica-resistente gonorroe is een belangrijke volksgezondheid crisis en een toenemende sociaal-economische last7. Verminderde gevoeligheid voor cefalosporines heeft geresulteerd in behandeling regime verandering van een enkel antibioticum naar dual therapie, die azithromycine of doxycycline met ceftriaxone8 combineert. De grotere mislukking van ceftriaxone en azithromycine9,10, in combinatie met asymptomatische infecties, benadrukt de noodzaak voor het begrijpen van gonorroe behandeling mislukkingen.

De minimale remmende concentratie (MIC) test, met inbegrip van agar verdunning en disc diffusie proeven, is gebruikt als de standaard medische test voor het identificeren van de weerstand tegen een antibioticum. Het is echter onduidelijk of de MIC test bacteriële resistentie tegen antibiotica in vivo weerspiegelt. De vorming van bacteriële biofilms draagt bij tot het voortbestaan van de bacteriën in aanwezigheid van de bactericide concentraties van antibiotica: het testen van de MIC is niet in staat om te ontdekken dit effect11. Omdat GC biofilms op mucosal oppervlakken12 vormen kan, we veronderstellen dat antibiotica gevoeligheid binnen aggregaten zou verschillen van die in afzonderlijke GC gezien. Bovendien, hebben studies aangetoond dat drie variabele oppervlakte moleculen, Pili, dekking-geassocieerde proteïne (Opa fasen), en lipooligosaccharides (LOS), die tussen bacterie interacties regelen, tot verschillende formaat aggregaten13, leiden 14 , 15. de bijdrage van deze componenten tot resistentie tegen antibiotica is niet onderzocht vanwege het ontbreken van goede methoden.

Momenteel zijn er verschillende methoden voor het meten van biofilm uitroeiing. De meest gebruikte kwantitatieve methode is door het meten van de veranderingen in de biomassa met behulp van crystal violet kleuring van16. De methode vereist echter aanzienlijke experimentele manipulatie, die mogelijk fouten in experiment herhaald17 genereren kunt. De live/dead kleuringstechniek gebruikt hier kunt visualisatie van levende en dode bacteriën en hun verdeling binnen de biofilm. Echter kan de structuur van de biofilm opleveren als een fysieke barrière die kleurstofpenetratie vermindert. Daarom, om te kwantificeren live/dode bacteriën binnen een groep, de kleuring is beperkt tot kleine biofilms of zijn voorloper-microcolonies of samenvoegingen. Andere methoden, met inbegrip van de agar verdunning en schijf diffusie proeven, kunnen niet voor het meten van de effecten van aggregatie. Te onderzoeken GC gevoeligheid binnen aggregatie na antibiotica blootstelling, een ideale methode zou moeten hebben zowel een kwantitatieve bepaling dat kan meten bacteriën leven en visualiseren van hun distributie.

De hier beschreven procedure combineert een ATP-benutting-meting en een leven/dood kleuring assay aan kwantitatief en visueel onderzoekt de GC gevoeligheid binnen aggregaten in aanwezigheid van antibiotica.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. algemeen onderhoud van GC stammen

  1. Strijk N. gonorrhoeae -stammen op GCK agar met 1% Kellogg18 (tabel 1, tabel 2) uit de vriezer voorraden aanvult en incubeer 37 ° C met 5% CO2 voor 16-18 h. gebruik MS11 uiting van fase-variabele Opa (MS11Opa +), geen Opa (MS11ΔOpa), of een afgekapte LOS (MS11ΔLgtE).
  2. Kies zorgvuldig pili negatieve (kolonie zonder donkere rand) of positieve (kolonie met donkere rand) kolonies van elke stam op basis van de kolonie morfologie19 met behulp van een ontleden lichte Microscoop en streep op een nieuwe GCK bord.
  3. Incubeer bij 37 ° C met 5% CO2 voor 16-18 h vóór gebruik.

2. levensvatbaarheid kwantificering van GC aggregaties

  1. Verzamelen van GC met behulp van een steriele applicator. Doekje GC van de plaat en resuspendeer GC in voorverwarmde Bouillon (GCP, tabel 3) aangevuld met 4,2% NaHCO3 en 1% Kellogg oplossingen18. Spectrofotometrie gebruikt bij een golflengte van 650 nm (een OD650 1 = ~ 1 x 109 kve/mL) om te bepalen van de concentratie van zwevende bacteriën.
  2. Aanpassen van de concentratie van GC op ~ 1 x 108 CFU/mL.
  3. Voeg 99 µL van aangepaste GC schorsing in wells van een 96-wells-plaat.
  4. Incubeer de plaat gedurende 6 uur bij 37 ° C met 5% CO2 zodat de bacteriën tot totaal.
  5. Voeg 1 µL van seriële verdunde ceftriaxone (1000, 100, 50, 25, 12,5, 6.2, 3.1, 1.5, 0.8, 0,4 0,2 µg/mL) in elk putje. Laat enkele wells onbehandeld om te dienen als besturingselementen.
  6. Incubeer de plaat gedurende 24 uur bij 37 ° C met 5% CO2.
  7. Bewerk ultrasone trillingen ten de suspensie 3 keer in elk putje voor 5 s op 144 W en 20 kHz.
  8. Voeg 100 µL van verkrijgbare ATP gebruik gloed reagens in elk putje, Pipetteer omhoog-omlaag voor 3 keer en incubeer gedurende 15 minuten bij 37 ° C met 5% CO2.
  9. Zorgvuldig 150 µL van het mengsel van elk putje overboeken naar een nieuwe goed in een 96-Wells zwarte microplate en Vermijd invoering van bubbels.
  10. Meet de extinctie van elk putje op 560 nm met behulp van de-afleesapparaat.
  11. Bereken de overlevingskans door de verhouding van de lezing verkregen na seriële ceftriaxone behandeling naar de lezing van onbehandelde putten.

3. fluorescentie microscopische analyse van Live/Dead van GC aggregaten

  1. Verzamelen van GC met behulp van een steriele applicator. Doekje GC van de plaat en resuspendeer GC in voorverwarmde GCP media plus 1% Kellogg supplementen.
  2. Bepaal het aantal bacteriën door spectrofotometrie bij een golflengte van 650 nm en aanpassen van de concentratie van GC op ~ 1 x 107 CFU/mL.
  3. Voeg 198 µL van GC schorsing in in 8-well dekglaasje aan-onderste kamers.
  4. Incubeer de kamer voor 6 uur bij 37 ° C met 5% CO2 toe aggregatie vorming.
  5. Voeg 2 µL van ceftriaxone (100 µg/mL of verschillende verdunningen) in elk putje binnen elke voorwaarde aggregatie. Incubeer gedurende de gewenste tijd bij 37 ° C met 5% CO2.
  6. Voeg 0.6 µL van leven/dood kleuring oplossing mengsel in elk putje en incubeer gedurende 20 minuten bij 37 ° C met 5% CO2.
  7. Verwerven van Z-reeksen afbeeldingen met behulp van een confocal microscoop (een gelijkwaardige Microscoop kan worden gebruikt).
  8. Het analyseren van de beelden met behulp van ImageJ software voor het meten van de omvang van de GC aggregaten en de fluorescentie intensiteit ratio (FIR) van het leven-te-dode vlekken in elk aggregaat.

4. de beeldanalyse

  1. Schatting van de grootte van bacteriële aggregaten.
    1. Open ImageJ en een afbeelding door een raw-afbeeldingsbestand naar de ImageJ menubalk te slepen.
    2. Klik op U lijnen in de menubalk ImageJ en cirkel het gebied van elke samenvoeging in de afbeelding.
    3. Klik analyseren | Maatregel in de menubalk ImageJ.
    4. Het nummer in een nieuw venster onder de kolom gebied verkrijgen.
  2. Kwantificering van live-aan-dead verhouding van samenvoegingen
    1. Open ImageJ en een afbeelding door een raw-afbeeldingsbestand naar de ImageJ menubalk te slepen.
    2. Klik analyseren | Instellen van metingen in de menubalk ImageJ.
    3. Controleer de geïntegreerde dichtheid in het pop-upvenster en klik op OK.
    4. Klik op de afbeelding van de | Kleur | Kanalen Tool in de menubalk en selecteer kleur.
    5. Controleer kanaal 1 als de fluorescentie voor levende bacteriën kleuring.
    6. Klik op U lijnen in de menubalk ImageJ en cirkel het gebied van elke aggregatie.
    7. Klik analyseren | Maatregel in de menubalk ImageJ.
    8. Het nummer onder de kolom IntDen verkrijgen.
    9. Channel 2 controleren als de fluorescentie voor dood bacteriële kleuring. Herhaal stappen 4.2.6-4.2.8.
    10. De live-aan-dead-verhouding verkrijgen door te delen getal uit stap 4.2.8 door getal uit stap 4.2.9.
  3. Statistische analyse
    1. GraphPad Prism Open en voer de nummers in ImageJ verkregen aan de gewenste kolom.
    2. Klik op analyseren en selecteer t testen onder kolom analyses.
    3. Controleer de gewenste kolom voor vergelijking en klik op OK.
    4. De P-waarde onder venster analyse te verkrijgen.
    5. Selecteer de Lineaire regressie onder XY analyses uit stap 4.3.3
    6. Het R-plein en de P-waarde onder het venster analyse te verkrijgen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Twee methoden werden gebruikt: een ATP gebruik assay en een kwantitatieve analyse voor de kleuring van leven/dood. De resultaten kunnen worden gecombineerd of afzonderlijk gebruikt voor de behandeling van bacteriële voortbestaan binnen aggregaten na behandeling met antibiotica. De ATP gebruik assay gebleken voor het meten van nauwkeurig levensvatbare bacteriën in S. aureus biofilms20,21. Hier, werd MS11Opa + Pil + spanning gebruikt om de rol van GC aggregatie onderzoeken in de antibiotica gevoeligheid. Niet-geaggregeerde MS11Opa + Pil +, geaggregeerde MS11Opa + Pil +, of samengevoegd en vervolgens met het ultrasoonapparaat MS11Opa + Pil verstoord + werden behandeld met seriële verdunningen van ceftriaxone en de ATP niveau gemeten(Figuur 1). Bij het vergelijken van het percentage overleven met en zonder behandeling met antibiotica, had vooraf geaggregeerde GC aanzienlijk hogere overleving dan niet-geaggregeerde of aggregatie-verstoord GC met gelijke op of boven 0,015 µg/mL ceftriaxone (MIC uit agar verdunning test ( Tabel 4)). MS11Opa + Pil-, MS11ΔOpa of MS11ΔLgtE, die de dezelfde verdunning van de agar MIC (tabel 4), maar de vorm kleiner aggregaten, werd onderzocht en vergeleken met MS11Opa + Pil + (Figuur 1B). MS11Opa + Pil +, vormen grotere aggregaten, had het hogere niveau van de ATP met ceftriaxone behandeling dan de gemuteerde stammen.

Leven/dood kleuring is gebruikt in diverse biofilm/aggregatie-gerelateerde studies22,23. Vaststellen van het effect van aggregatie, vooraf geaggregeerde MS11Opa + Pil + werd behandeld met of zonder ceftriaxone en beeld. Hierdoor zowel visualisatie (die kan worden gekwantificeerd) en de verdeling van levende en dode GC na behandeling met antibiotica (Figuur 2A- links twee panelen). Dode bacteriën (rood) waren grotendeels gelegen in de buitenste lagen terwijl live GC (groen) bevonden zich voornamelijk in de kern van ceftriaxone behandeld aggregaten. Deze procedure werd uitgevoerd met MS11Opa + Pil-, MS11ΔOpa of MS11ΔLgtE, te onderzoeken aggregatie grootte en overleving tarief(Figuur 2). MS11Opa + Pil + werd aangetoond dat de grootste vorm en MS11Opa + Pil-de kleinste aggregaten (Figuur 2A, B). MS11Opa + Pil + aggregaten nog leefden in de kern laag overwegende dat GC in de kleine losse aggregaten van MS11ΔOpaPil +, MS11Opa + Pil-, en MS11ΔLgtEPil + dood waren (Figuur 2A, C). Gebaseerd op de grootte en de overleving, kan een correlatie-grafiek worden uitgezet om te buigen over de relatie van aggregatie grootte en antibioticum overleven (Figuur 2D).

Table 1
Tabel 1: Recept voor 1 liter GCK agarplaat.

Table 2
Tabel 2: Recept voor 1 L van 100 x Kellogg's supplement.

Table 3
Tabel 3: Recept voor 1 L voor GCP bacteriegroei Media.

Table 4
Tabel 4: Minimum remmende concentratie van GC stammen behandeld met ceftriaxone. MS11Opa + Pil +, MS11ΔOpa, MS11ΔLgtE en MS11Opa + Pil - waren gegroeid en in GCP opgeschort. Agar verdunning test vervolgens werd uitgevoerd met seriële concentratie van ceftriaxone uit 0.0016 - 0,25 µg/mL.

Figure 1
Figuur 1 : Representatieve gegevens van overlevingspercentage van geaggregeerde GC onder ceftriaxone behandeling door ATP-benutting assay. (A) Survival rate vergelijking van MS11Opa + Pil + schorsing zonder vooraf aggregeren, vooraf aggregeren voor 6 h of verstoren na vooraf aggregeren voor 6 h. (B) overleving tarief vergelijking van 6 h MS11Opa + Pil geaggregeerde + met MS11ΔOpaPil +, MS11Opa + Pil- of MS11ΔLgtEPil +. Getoond worden de gemiddelde waarden (±SD) verkregen uit drie onafhankelijke experimenten. p < 0.001; p < 0,01; p < 0.05. Dit cijfer was eerder gepubliceerde 24 en wordt gebruikt met toestemming. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2 : Representatieve gegevens van leven/dode bacteriën distributie binnen aggregaten onder ceftriaxone behandeling. (A) pre geaggregeerde MS11Opa + Pil +, MS11ΔOpaPil +, MS11Opa + Pil-, of MS11ΔLgtEPil + was ofwel geïncubeerd in de aanwezigheid of afwezigheid van 1 µg/mL ceftriaxone voor 2 h. aggregaten werden vervolgens gekleurd om te visualiseren levensvatbare (groen) en doden (rood) GC en gevisualiseerd met confocale fluorescentie Microscoop. Schaal bar: 50 µm. beelden werden vervolgens geanalyseerd voor de grootte van de aggregatie van de (B) en (C) verhouding tussen live-aan-dead GC en (D) een correlatie grafiek vervolgens ontstond. Getoond worden de gemiddelde waarden (SD) verkregen > 40 beelden van drie onafhankelijke experimenten. p < 0.001; p < 0,01; p < 0.05. Dit cijfer was eerder gepubliceerde 24en wordt gebruikt met toestemming. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Bacteriën kunnen vormen biofilms tijdens infectie van het menselijk lichaam. Traditionele MIC testen kan niet overeen met de concentratie die nodig zijn voor de uitroeiing van bacteriën in een biofilm. Om te testen antimicrobiële stoffen effecten op een biofilm, kunnen de methoden op basis van biofilm biomassa evenals plating CFUs verkeerde als gevolg van de impact van biofilm structuur. Bijvoorbeeld, werkt de plating-methode alleen als de biofilm kan worden verstoord. Vandaar, de CFU verkregen kan lager zijn dan het werkelijke aantal levensvatbare bacteriën. Visualiseren dode en levende bacteriën binnen de biofilm zijn vastgesteld voor het meten van het voortbestaan van de bacteriën in de biofilm, echter afhankelijk van de structuur en de dichtheid van biofilm, de kleuring kan niet doordringen in de biofilm en resulteren in een onjuist en onderschat overlevingskansen.

De methode hier gebruikt zowel een kwantitatieve als een visualisatie assay voor het meten van bacteriële voortbestaan na de behandeling van aggregaten. Het voordeel van deze methode is dat het meet de bacteriële overleven in een omgeving die zich dichter bij wat wordt gezien in een echte infectie. De overleving tarief verschillen tussen niet-geaggregeerde en geaggregeerde bacteriën zal ons in staat stellen om te bepalen of de in vitro MIC met de in vivo MIC correleert.

De assay voor het gebruik van ATP, die ATP productie meet, kan het voortbestaan van aggregaten kwantitatief meten. De test is gevoeliger en overleving tussen kleine verschillen in de antibioticum concentratie, in vergelijking met andere vergelijkbare tests kan differentiëren. Echter, vanwege de hoge gevoeligheid van deze test, verzekering van lysis van de bacteriële cel is essentieel. Daarom werd een ultrasoonapparaat stap gebruikt. Bovendien is deze methode niet worden gebruikt voor het meten van bacteriële overleven in vivo vanwege de grote hoeveelheid ATP die gastheer cellen produceren die de bacteriële ATP niveau maskeren kan. Bovendien kan de interactie tussen gastheer cellen en bacteriën bacteriële ATP productie beïnvloeden. Met behulp van deze test op bacteriën met pigmenten kan worden beperkt als de pigmenten met de lezing interfereren kunnen.

De live/dode vlek heeft wijd gebruikt in de biofilm studies. De penetratie van de kleuring kleurstoffen kan echter alleen de buitenste bacteriën, vlekken, terwijl de kern kan niet worden gekleurd. Het kan daarom alleen worden gebruikt voor visualisatie, maar niet lenen, te wijten aan de ongelijke verdeling van de kleurstof. We kleine aggregaten voor deze kleuring gebruikt en aangetoond dat deze bepaling kan worden gebruikt om de totale bacteriële overleven binnen de aggregaten te kwantificeren. Bovendien zijn de negatieve en positieve controles nodig voor het aanpassen van de concentratie van de kleurstof voor verschillende bacteriën.

In combinatie met het MIC-protocol, kan de ATP gebruik assay en wonen/dode vlek dienen als een effectieve methode kwantitatief en visueel analyseren isolaat evenals andere bacteriële aggregaties25,26. De toepassing van de gecombineerde protocol zou geven een beter begrip van de vorming van de ziekte samen met de veelzijdige toepassingen in drug screening op basis van bacteriën biofilms. Deze methode kan nauwkeuriger weerspiegelen de in vivo MIC van een antibioticum.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

Dit werk werd gesteund door een subsidie van de National Institute of Health W.S. AI123340 te D.C.S.. L.-C.W., J.W., AC, en E.N. werden ondersteund in het onderdeel/deelname aan "The eerstejaars innovatie & onderzoek Experience"-programma gefinancierd door de Universiteit van Maryland. De financiers had geen rol in de studie ontwerp, gegevensverzameling en analyse, besloten tot bekendmaking van, of de bereiding van het manuscript. Wij erkennen de UMD CBMG Imaging Core voor alle microscopie experimenten.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
100x Kellogg's supplement
Agar United States Biological A0930
BacTiter Assay  Promega G8232
Ceftriaxone TCI C2226
Difco GC medium base  BD 228950
Ferric nitrate, nonahydrate  Sigma-Aldrich 254223-10G
Glucose Thermo Fisher Scientific BP350-1
L-glutamine Crystalline Powder Fisher Scientific BP379-100
BacLight live/dead staining Invitrogen L7012
MS11 Neisseria gonorrhoeae strain kindly provided by Dr. Herman Schneider, Walter Reed Army Institute for Research
Potassium phosphate dibasic (K2HPO4) Fisher Scientific P290-500
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) Fisher Scientific BP329-1
Proteose Peptone  BD Biosciences 211693
Sodium chloride (NaCl) Fisher Scientific S671-10
Soluble Starch Sigma-Aldrich S9765
Thiamine pyrophosphate Sigma-Aldrich C8754-5G
Equipment
Petri Dishes VWR 25384-302
8-well coverslip-bottom chamber  Thermo Fisher Scientific 155411
96-well tissue culture plates  Corning, Falcon 3370
Biosafety Cabinet (NU-425-600 Class II, A2 Laminar Flow Biohazard Hood) Nuaire 32776
CO2 Incubator Fisher Scientific  Model 3530
Confocal microscope equipped with live imaging chamber Leica SP5X
Corning  96 Well Black Polystyrene Microplate  Corning 3904
Glomax Illuminator  Promega E6521
Pipette tips (0.1-10 µL) Thermo Fisher Scientific 02-717-133
Pipette tips (1000 µL) VWR 83007-382
Pipette tips (200 µL) VWR 53509-007
Spectrophotometer Ultrospec 2000 UV Pharmacia Biotech 80-2106-00
Sterile 15 ml conical tubes VWR 21008-216
Sterile Microcentrifuge Tubes (1.7 mL) Sorenson BioScience 16070
Sterile polyester-tipped applicators Fisher Scientific 23-400-122
Sonicator Kontes Equivelent to 9110001

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. CDC STD Facts. Centers for Disease Control and Prevention. Available from: http://www.cdc.gov/std/gonnorrhea/STDFact-gonorrhea-detailed.htm (2017).
  2. den Heijer, C. D., et al. A comprehensive overview of urogenital, anorectal and oropharyngeal Neisseria gonorrhoeae testing and diagnoses among different STI care providers: a cross-sectional study. BMC Infectious Diseases. 17, (1), (2017).
  3. Hein, K., Marks, A., Cohen, M. I. Asymptomatic gonorrhea: prevalence in a population of urban adolescents. The Journal of Pediatrics. 90, (4), 634-635 (1977).
  4. Hananta, I. P., et al. Gonorrhea in Indonesia: High Prevalence of Asymptomatic Urogenital Gonorrhea but No Circulating Extended Spectrum Cephalosporins-Resistant Neisseria gonorrhoeae Strains in Jakarta, Yogyakarta, and Denpasar, Indonesia. Sexually Transmitted Diseases. 43, (10), 608-616 (2016).
  5. Chlamydia, W. H. O. Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, syphilis and Trichomonas vaginalis. Methods and results used by WHO to generate 2005 estimates. World Health Organisation, 2011. Prevalence and incidence of selected sexually transmitted infections. World Health Organisation. accessed Oct 5 (2011).
  6. Mayor, M. T., Roett, M. A., Uduhiri, K. A. Diagnosis and management of gonococcal infections. American Family Physician. 86, (10), 931-938 (2012).
  7. Alirol, E., et al. Multidrug-resistant gonorrhea: A research and development roadmap to discover new medicines. PLOS Medicine. 14, (7), (2017).
  8. Workowski, K. A., Bolan, G. A. Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2015. MMWR Recommendations and Reports. 64, 1-137 (2015).
  9. Lahra, M. M., et al. Cooperative Recognition of Internationally Disseminated Ceftriaxone-Resistant Neisseria gonorrhoeae Strain. Emerging Infectious Diseases. 24, (4), (2018).
  10. Wi, T., et al. Antimicrobial resistance in Neisseria gonorrhoeae: Global surveillance and a call for international collaborative action. PLOS Medicine. 14, (7), 1002344 (2017).
  11. Singh, S., Singh, S. K., Chowdhury, I., Singh, R. Understanding the Mechanism of Bacterial Biofilms Resistance to Antimicrobial Agents. Open Microbiology Journal. 11, 53-62 (2017).
  12. Greiner, L. L., et al. Biofilm Formation by Neisseria gonorrhoeae. Infection and Immunity. 73, (4), 1964-1970 (2005).
  13. Zollner, R., Oldewurtel, E. R., Kouzel, N., Maier, B. Phase and antigenic variation govern competition dynamics through positioning in bacterial colonies. Scientific Reports. 7, (1), (2017).
  14. Stein, D. C., et al. Expression of Opacity Proteins Interferes with the Transmigration of Neisseria gonorrhoeae. across Polarized Epithelial Cells. PLoS One. 10, (8), 0134342 (2015).
  15. LeVan, A., et al. Construction and characterization of a derivative of Neisseria gonorrhoeae strain MS11 devoid of all opa genes. Journal of Bacteriology. 194, (23), 6468-6478 (2012).
  16. Merritt, J. H., Kadouri, D. E., O'Toole, G. A. Growing and analyzing static biofilms. Curr Protoc Microbiol. Chapter 1., Unit 1B.1 (2005).
  17. Peeters, E., Nelis, H. J., Coenye, T. Comparison of multiple methods for quantification of microbial biofilms grown in microtiter plates. Journal of Microbiological Methods. 72, (2), 157-165 (2008).
  18. White, L. A., Kellogg, D. S. Neisseria Gonorrhoeae Identification in Direct Smears by a Fluorescent Antibody-Counterstain Method. Journal of Applied Microbiology. 13, 171-174 (1965).
  19. Swanson, J., Kraus, S. J., Gotschlich, E. C. Studies on gonococcus infection. I. Pili and zones of adhesion: their relation to gonococcal growth patterns. Journal of Experimental Medicine. 134, (4), 886-906 (1971).
  20. Herten, M., et al. Rapid in Vitro Quantification of S. aureus Biofilms on Vascular Graft Surfaces. Frontiers in Microbiology. 8, 2333 (2017).
  21. Gracia, E., et al. In vitro development of Staphylococcus aureus biofilms using slime-producing variants and ATP-bioluminescence for automated bacterial quantification. Luminescence. 14, (1), 23-31 (1999).
  22. Webb, J. S., et al. Cell death in Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Journal of Bacteriology. 185, (15), 4585-4592 (2003).
  23. Jurcisek, J. A., Dickson, A. C., Bruggeman, M. E., Bakaletz, L. O. In vitro biofilm formation in an 8-well chamber slide. Journal of visualized experiments. (47), (2011).
  24. Wang, L. C., Litwin, M., Sahiholnasab, Z., Song, W., Stein, D. C. Neisseria gonorrhoeae Aggregation Reduces Its Ceftriaxone Susceptibility. Antibiotics (Basel). 7, (2), (2018).
  25. Lebeaux, D., Ghigo, J. M., Beloin, C. Biofilm-related infections: bridging the gap between clinical management and fundamental aspects of recalcitrance toward antibiotics. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 78, (3), 510-543 (2014).
  26. Hall-Stoodley, L., et al. Towards diagnostic guidelines for biofilm-associated infections. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 65, (2), 127-145 (2012).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics