C2C12 Myoblast Hücre Hattında Ki Ekstrasellüler Matriks Proteinlerini Kodlayan Genlerin Kararlı Nakavtı Küçük Saç Tokası (sh)RNA

Genetics

Your institution must subscribe to JoVE's Genetics section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

C2C12 miyoblastlarında küçük saç tokası (sh) RNA kullanarak hücre dışı matriks (ECM) proteinlerini kodlayan genleri yere sermek için bir protokol sağlıyoruz. ADAMTSL2'yi örnek olarak hedefleyerek, C2C12 miyoblastı sırasında mRNA, protein ve hücresel düzeydeki nakavt etkinliğinin doğrulanması ve miyotube farklılaşması na yönelik yöntemleri tanımlıyoruz.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Taye, N., Stanley, S., Hubmacher, D. Stable Knockdown of Genes Encoding Extracellular Matrix Proteins in the C2C12 Myoblast Cell Line Using Small-Hairpin (sh)RNA. J. Vis. Exp. (156), e60824, doi:10.3791/60824 (2020).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Ekstrasellüler matriks (ECM) proteinleri iskelet kas gelişimi ve homeostaz için çok önemlidir. C2C12 miyoblastlarında ECM proteinleri için kodlayan genlerin kararlı nakavt iskelet kas gelişiminde bu proteinlerin rolünü incelemek için uygulanabilir. Burada, C2C12 hücrelerinde küçük saç tokası (sh) RNA kullanarak ECM proteini ADAMTSL2'yi bir örnek olarak tüketen bir protokol uyguluyoruz. shRNA plazmidlerinin transfeksiyonundan sonra, kararlı hücreler puromisin kullanılarak toplu olarak seçilmiştir. Bu hücre hatlarının bakımını ve mRNA ekspresyonu, protein ekspresyonu ve C2C12 farklılaşması ile testotipik analizini de tanımlıyoruz. Yöntemin avantajları istikrarlı C2C12 knockdown hücrelerinin nispeten hızlı nesil ve hücre kültürü ortamda serum tükenmesi üzerine multinükleli miyotüpler içine C2C12 hücrelerinin güvenilir farklılaşması vardır. C2C12 hücrelerinin farklılaşması parlak alan mikroskobu ile ve MiyoD, miyojenin veya miyozin ağır zincir (MyHC) gibi kanonik marker genlerin ekspresyon düzeyleri ölçülerek, C2C12 miyoblastiasyonunun miyotüplere doğru ilerlemesini gösteren izlenebilir. Küçük interferans (si) RNA ile genlerin geçici nakavt aksine, daha sonra C2C12 farklılaşma sırasında veya myotube olgunlaşma sırasında ifade edilen genler daha verimli shRNA ifade C2C12 hücreleri üreterek hedeflenebilir. Yöntemin sınırlamaları, CRISPR/Cas9'a dayalı gen nakavt stratejileri kullanılarak aşılabilecek spesifik shRNA'ya bağlı olarak nakavt verimliliğindeki değişkenlik ve shRNA'nın göz önünde bulundurulması gereken potansiyel hedef dışı etkileridir.

Introduction

Hücre dışı matriks (ECM) proteinleri tüm dokular için yapısal destek sağlar, hücre-hücre iletişimine aracılık eder ve hücre kaderini belirler. Oluşumu ve ECM dinamik remodeling böylece doku ve organ homeostaz korumak için önemlidir1,2. ECM proteinleri için kodlayan çeşitli genlerdeki patolojik varyantlar kas distrofilerinden psödomousküler yapıya kadar çeşitli fenotiplerle kas-iskelet sistemi bozukluklarına yol açar3,4. Örneğin, ADAMTSL2 patojenik varyantları son derece nadir kas-iskelet bozukluğu geleofisik displazi neden, hangi psödomus yapı ile ortaya çıkar, yani, iskelet kas kütlesi belirgin bir artış5. Fare ve insanlarda gen ekspresyonu verileri ile birlikte, bu iskelet kas gelişimi veya homeostaz ADAMTSL2 için bir rol göstermektedir6,7.

Burada tanımladığımız protokol, ADAMTSL2'nin hücre kültürü ortamında iskelet kas gelişimini ve/veya homeostazını modüle etme mekanizmasını incelemek için geliştirilmiştir. Murine C2C12 miyoblast hücre hattında ADAMTSL2'yi yere serptik. C2C12 miyoblastlar ve miyotüpler içine farklılaşma iskelet kas farklılaşması ve iskelet kas biyomühendislik için iyi tanımlanmış ve yaygın olarak kullanılan hücre kültürümodeli8,9. C2C12 hücreleri serum çekilmesinden sonra farklı farklılaşma adımlarından geçerek kültürde 3−10 gün sonra çok çekirdekli miyotüplerin oluşmasına neden olur. Bu farklılaşma adımları, MyoD, miyojenin veya miyozin ağır zincir (MyHC) gibi farklı marker genlerinin mRNA düzeylerinin ölçülmesiyle güvenilir bir şekilde izlenebilir. C2C12 hücrelerinde kararlı gen knockdowns üreten bir avantajı C2C12 farklılaşma sonraki aşamalarında ifade edilen genler daha verimli hedeflenebilir, geçici knockdown ile karşılaştırıldığında (si) RNA, genellikle transfeksiyon sonra 5−7 gün sürer, ve transfeksiyon verimliliği etkilenir. Burada açıklandığı gibi protokolün ikinci bir avantajı puromisin seçimi kullanarak C2C12 knockdown hücrelerinin toplu nispeten hızlı nesil. CRISPR/Cas9 aracılı gen nakavtı veya birincil iskelet kas hücresi öncüllerinin insan veya hedef-gen eksikliği olan farelerden izolasyonu gibi alternatifler teknik olarak daha zorludur veya hasta kas biyopsilerinin veya hedef geni eksik farelerin bulunmasını gerektirir. Ancak, diğer hücre kültürü tabanlı yaklaşımlara benzer şekilde, c2C12 hücrelerinin iskelet kas hücresi farklılaşması için model olarak kullanımında sınırlamalar vardır, hücre kültürü kurulumu nun iki boyutlu (2D) doğası ve farklılaşmamış iskelet kas öncül hücrelerinin korunması için kritik olan in vivo mikroortamın eksikliği10gibi.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Escherichia coli shRNA Plazmid DNA hazırlanması

  1. ShRNA plazmidleri taşıyan klonal bakteri kolonilerinin üretimi
    1. Hedefe özgü shRNA plazmidleri taşıyan E. coli gliserol stokları ve ticari kaynaklardan bir kontrol plazmidi elde edin(Malzeme Tablosu).
      NOT: Murine Adamtsl2 mRNA'nın farklı bölgelerini hedef alan üç farklı shRNA plazmid kullanıldı. Bir shRNA 3'-untranslated bölge (3'UTR) Adamtsl2 rekombinant tam uzunlukta ADAMTSL2 veya bireysel ADAMTSL2 protein etki alanları kodlama ifade plazmidler ile kurtarma deneyleri kolaylaştırmak için seçildi. Buna ek olarak, bir şifreli shRNA plazmid negatif kontrol olarak dahil edildi. ShRNA dizilerinin ayrıntıları Şekil 1A'daverilmiştir.
    2. Oda sıcaklığında shRNA bakteriyel gliserol stoku çözültün (RT). 100 μg/mL ampisilin (LB-Amp) ile desteklenen bir Luria-Bertani (LB) agar plakaüzerine bakteriyel gliserol stok10 μL transfer.
      NOT: LB-Amp plakalar 1L LB orta otoklavlama tarafından hazırlanır (1 L: 10 g tripto, maya ekstresi 5 g, NaCl 10 g, 7.0 için pH ayarlamak) birlikte 12 g agar. Orta ~50 °C'ye kadar soğumasını ve ampisilin (stok çözeltisi: steril suda 50 mg/mL) ilave edinve son konsantrasyonu μg/mL (LB-Amp agar). Hemen 10 cm Petri kabına ~ 20 mL LB-Amp agar dökün ve agar kullanmadan önce katılaşmak sağlar. 1 L LB-Amp agar genellikle yaklaşık 40 10 cm Petri yemekleri dökmek için yeterlidir. LB-Amp agar içeren petri kapları, karanlıkta 4 °C'de saklanırsa en az bir ay stabil dir.
    3. Tek bakteri kolonileri elde etmek için steril Drygalski spatula veya başka uygun bir yöntem ile yayılır bakteri. 37 °C'de bir gecede bakteri plakalarını baş aşağı kuluçkaya yatırın.
  2. Plazmid hazırlığı
    1. Ertesi sabah, petri kabını tek tek bakteri kolonileriyle çıkarın ve bakteri kolonilerinin büyümesini ve uydu kolonilerinin oluşumunu önlemek için 4 °C'de saklayın. Bir gece veya daha uzun süre saklanırsa Petri kabını kapatın.
    2. Öğleden sonra, bir polipropilen bakteri kültür tüpü içine LB-Amp orta 5 mL ekleyin. Bir pipet ucu ile bir gecede kültürlenmiş Petri kabından tek bir bakteri kolonisi seçin ve LB-Amp ortamı içeren bakteri kültür tüpünde pipet ucunu çıkararak LB-Amp ortamını aşılayın.
    3. 37 °C'de 250 rpm'de bir çalkalayıcıda bir gecede bakteri kültürünü kuluçkaya yatırın ve kapağı gevşek bir şekilde tıkanarak havalandırmaya izin verin.
    4. Ertesi sabah bakteri kültürü tüpünü çıkarın ve bakteriyel büyümeyi önlemek için 4 °C'de tutun. Öğleden sonra, girdap tarafından bakterileri yeniden askıya ve 250 mL konik bir şişe LB-Amp orta 50 mL gecede bakteri kültürünün 1 mL transfer. 37 °C'de 250 rpm'de bir shaker'da bir gece kuluçkaya yatırın.
    5. Ertesi sabah bakterileri 50 mL'lik tek kullanımlık santrifüj tüpüne ve 15 dk.RT'de 6.000 x g'de santrifüj bakterilere aktarın.
      NOT: Plazmid DNA'sı hemen izole edilemiyorsa, santrifüj adımından sonra LB-Amp ortamını çıkarın ve bakteri peletini -20 °C'de saklayın.
    6. Plazmid hazırlama kiti (midi ölçek) için bakteri plazmid DNA ayıklamak için talimatları izleyin. Plazmid DNA kalitesini spektrofotometre kullanarak A260/A280 oranını ölçerek değerlendirin.
      NOT: A260/A280 oranı >1.8 tercih edilir, plazmid DNA preparatının yüksek saflıkta olduğunu gösterir. Daha düşük A260/A280 oranı protein ile kontaminasyon veya ekstraksiyon reaktiflerinin yetersiz çıkarılmasını göstermektedir. Ek plazmid arınma adımları gerekebilir.

2. C2C12 Hücrelerinin Culturing ve Transfeksiyonu ve Püromisin Seçimi

  1. C2C12 hücre kültürü
    1. 37 °C'lik su banyosunda C2C12 hücrelerini(Malzeme Tablosu)hızlı bir şekilde boşaltın ve hücre kültüründe 100 ünite penisilin ve streptomisin antibiyotikler (serumsuz DMEM) ile birlikte 8 mL Dulbecco modifiye Kartal ortamı (DMEM) içeren steril tek kullanımlık 15 mL santrifüj tüpüne hücreleri dökün. RT'de 160 x g'da 3 dk santrifüj hücreleri.
    2. % 10 fetal sığır serumu (FBS) (komple DMEM) ile birlikte serumsuz DMEM'in 10 mL'lik hücre pelesini aspire etmek ve resuspend. Hücreleri 10 cm doku kültürüne aktarın plastik tabaklar tedavi edilir. %5 CO2 atmosferinde 37 °C'de nemlendirilmiş bir kuluçka makinesinde kuluçka yakan hücreler.
    3. Ertesi gün, ortamı taze tam DMEM ile değiştirin.
    4. 3−4 10 cm'lik tabaklarda düşük geçitli C2C12 hücrelerini genişletin. C2C12 hücreleri %50−60 birleştiğinde orta ve 10 mL fosfat tamponlu salin (PBS) ile C2C12 hücrelerini durular.
    5. 1 mL% 0.25 trypsin-EDTA ekleyin ve 2 dakika rt. Bir mikroskop altında hücre ayırma izlemek ve hücrelerin çoğu ayrışana kadar, gerekirse kuluçka süresini uzatmak için inkübat.
      NOT: Dikkatle çanak dokunarak hücreleri yerinden yardımcı olabilir.
    6. Hücrelerin çoğu ayrıldığında, tabağa 10 mL tam DMEM ekleyin, hacmi birkaç kez yukarı ve aşağı pipetle ve hücre süspansiyonu steril tek kullanımlık 15 mL santrifüj tüpe aktarın. Rt. Aspire supernatant 160 x g 3 dakika için santrifüj hücreleri ve donma ortamının 2 mL hücre pelet resuspend (%10 dimetil sülfoksit [DMSO]/90% FBS).
    7. Cryovials 10 cm çanak başına iki 1 mL aliquots aktarın. -80 °C'lik dondurucuda en az 24 saat RT izopropanol dolu bir hücre dondurucu kabında kuluçkaya yatırın ve buz kristallerinin oluşumunu önlemek için dakikada yaklaşık -1 °C donma hızı elde edin. Hücreleri sıvı nitrojenin buhar fazında uzun süreli kullanım için saklayın.
      NOT: Satıcı, 15 numaralı geçide kadar C2C12 hücreleri kullanılmasını önerir. Yazarların deneyimleri de düşük geçiş sayısı hücrelerinin miyotüplere daha tutarlı ve hızlı bir farklılaşma gösterdiğini göstermiştir. C2C12 hücrelerinin erken farklılaşmanın önlenmesi için düşük hücre yoğunluğunda (<%50 birleşme) tutulması esastır. Farklılaşan veya farklılaştırılmış C2C12 hücreleri orijinal miyoblast durumuna geri döndürülemez ve atılmalıdır.
  2. C2C12 hücrelerinin transfeksiyona hazırlanması
    1. Kültür 10 cm'lik bir kapta farklılaşmamış C2C12 hücreleri %50−60'a ulaşana kadar biraraya geldi. Orta, 10 mL PBS ile C2C12 hücreleri durulayın ve 0.25% trypsin-EDTA 1 mL ekleyin. RT'de 2 dakika kuluçka ya da mikroskop altında hücre ayrıştırmasını izleyin ve gerekirse kuluçka süresini, hücrelerin çoğu ayrılana kadar uzatın.
      NOT: Dikkatle çanak dokunarak hücreleri yerinden yardımcı olabilir.
    2. Hücrelerin çoğu koptuğunda, tabağa 10 mL tam DMEM ekleyin ve hücre süspansiyonu steril tek kullanımlık 15 mL santrifüj tüpe aktarın. Sentrifüj hücreleri 3 dk 160 x g'de RT. Aspire supernatant ve hücre peletini tam DMEM'in 4 mL'sinde yeniden askıya alın.
    3. 10 μL hücre süspansiyonu ile 1,5 mL'lik bir reaksiyon tüpünde 10 μL'lik trypan mavisini birleştirin, yukarı ve aşağı borular oluşturarak ve tepki tüpünü dikkatlice hareket ettirerek karıştırın ve hücreleri sayma slaytına aktarın. Otomatik bir hücre sayacı kullanarak hücre numarasını/mL'yi belirleyin.
    4. C2C12 hücrelerini 50.000 hücre/mL'ye seyreltin ve bir gecede kuluçkadan sonra yaklaşık %40−50 biraraya gelmek için 6 kuyu plakasında kuyu başına 100.000 hücre (2 mL) tohumlayın. %5 CO2 atmosferinde 37 °C'de nemlendirilmiş bir kuluçka makinesinde kuluçka yakan hücreler.
  3. Polietilenin (PEI) ve püromisin seçimi kullanılarak shRNA plazmid ile C2C12 hücrelerinin transfeksiyonu
    1. PEI stok çözeltisinin hazırlanması
      1. 50 mL'lik steril distile su (stok çözeltisinin konsantrasyonu: 0.32 mg/mL) içinde 16 mg PEI'yi vida kapağıolan 50 mL cam ortam şişesinde çözün. Çözeltiyi 65 °C'de 1 saat boyunca kuluçkaya yatırın ve çözeltiyi kuluçka süresi boyunca birkaç kez şiddetle girdapatarak PEI'yi tamamen eritin.
      2. 50 mL başına 15 μL 1N HCl ekleyerek pH 8'e ayarlayın.
        DİkKAT: HCl aşındırıcıdır. Konsantre HCl duman kaputu altında ele alınmalıdır. Müfettişler uygun kişisel koruyucu ekipman giymelidir.
      3. PEI çözeltisini -80 °C'de gevşek bir şekilde bağlanmış bir kapakla 1 saat dondurun ve çözünürlüğü daha da artırmak için 37 °C'de su banyosunda hızla çözülün. Donma-çözülme döngüsünü 3x tekrarlayın.
      4. PEI stok çözeltisini -20 °C'de tek seferlik kullanım için 0,5 mL aliquots olarak saklayın.
    2. C2C12 hücrelerinin transfeksiyonu
      1. PEI stok çözeltisinin 25,5 μL'lik (8,5 μL/μg plazmid DNA'sını) 1,5 mL'lik bir reaksiyon tüpünde 100 μL 25 mM NaCl ile birleştirin ve 37 °C'de 5 dakika kuluçkaya yatırın. Plazmid DNA'sının 3 μg'ını 100 μL 25 mM NaCl ile birleştirin ve 37 °C'de 5 dakika kuluçkaya yatırın.
      2. Seyreltilmiş PEI reaktifinin tüm hacmini seyreltilmiş plazmid ile birleştirin ve hafifçe yukarı ve aşağı borular ekleyerek karıştırın. 37 °C'de 25 dk kuluçka.
      3. Kuluçka süresi boyunca, FBS veya antibiyotik olmadan DMEM transfeksiyon için amaçlanan C2C12 hücrelerinin orta değiştirin.
      4. PeI/DNA transfeksiyon karışımını C2C12 hücrelerine ekleyin ve hücre kültürü yemeğini dikkatlice hareket ettirerek sürekli karıştırın. %5 CO2 atmosferinde 37 °C'de nemlendirilmiş bir kuluçka makinesinde kuluçkaya yatırın. 6 saat sonra dmem tamamlamak için orta değiştirin.
    3. Püromisin seçimi
      1. Transfeksiyondan 24 saat sonra orta ve seçim ortamına geçiş yapın (komple DMEM artı 5 μg/mL puromisin). Puromisin dirençli C2C12 hücreleri elde edilene kadar puromisin seçimine devam edin, bu da genellikle 10−14 gün sürer.
      2. 2.1.4−2.1.7 adımlarında açıklandığı gibi, farklılaşmamış durumu ve 6−10 şişenin kriyokorunu korumak için düşük hücre yoğunluğunda (<50−60% birleşimi) puromisin dirençli C2C12 hücrelerini genişletin.
        NOT: Rutin hücre kültürü ve genişlemesi için 5 μg/mL puromisin varlığında puromisin dirençli C2C12 hücrelerini koruyun. Ancak, püromisin farklılaşma deneylerinde atlandı.

3. C2C12 Farklılaşmasının Henotipik Analizi

NOT: Aşağıda açıklanan yöntemler, Batı lekelemesinde kullanılan spesifik antikorları veya kantitatif polimerazda kullanılan gen spesifik astarları değiştirerek C2C12 miyoblast farklılaşmasının miyotubelara genel henotypik analizi için kolayca uyarlanabilir. zincirleme reaksiyon (qPCR) analizi.

  1. C2C12 farklılaşma protokolü ve brightfield mikroskobu
    1. Tohum 150.000 hücreleri / iyi bir 12 kuyu plaka. Kültür puromisin dirençli C2C12 kararlı hücreler 12 iyi plaka seçim ortamında bir nemlendirilmiş inkübatör 37 °C bir% 5 CO2 atmosferde. Kültür C2C12 hücreleri ~% 95 biraraya ulaşana kadar tam DMEM hücreleri.
    2. C2C12 hücrelerinin farklılaşmasını sağlamak için, tam DMEM'i serumsuz DMEM (gün 0 farklılaşma) ile değiştirin. Her iki günde bir orta yıkın ve kameralı ters parlak alan mikroskobu kullanarak C2C12 miyotube oluşumunu takip edin.
      NOT: Birçok protokol, C2C12 hücrelerini miyotüplere ayırmak için %2 at serumu kullanır. Yazarların elinde, serumun çıkarılması da benzer bir etki yarattı. İnsülin C2C12 farklılaşmasını hızlandırmak için hücre kültürü ortamına bir katkı olarak tanımlanır. Ancak mevcut protokolde C2C12 hücreleri serum yoksunluğu ve insülin eklenmesigereksiz bulunduktan sonraki 3−5 gün içinde güvenilir bir şekilde miyotüplere ayrıldı.
  2. Miyozin ağır zincir (MyHC) immünoboya miyotüpleri görselleştirmek için
    1. Tohum 50.000 puromisin dirençli C2C12 hücreleri oda başına tam DMEM 500 μL bir 8 kuyu odası slayt. Kültür hücreleri tam DMEM 'de %95 biraraya ulaşına kadar (yaklaşık 24 saat).
    2. Farklılaşmayı sağlamak için, tam DMEM'den 500 μL serumsuz DMEM'e (gün 0 farklılaşma) geçin. İstenilen zaman noktasında, orta ve durulama hücreleri 3x pbs 0.5 mL ile aspire.
      NOT: RT'de aşağıdaki tüm adımları gerçekleştirin.
    3. PBS'de seyreltilmiş %4 paraformaldehit (PFA) ile 0,2 mL olan hücreleri 15 dakika boyunca durula.
      DİkKAT: PFA tehlikelidir. Uygun önlemleri alın ve paraformaldehit çözeltisi tehlikeli atık olarak atın.
    4. 5 dk. 0,5 mL PBS 3x pbs 3x her biri için 0,5 mL'lik 0,2 mL glisin ile PFA'yı bastırın.
    5. Hücre zarını permeabilize etmek için PBS'de 0,2 mL%0,1 non-iyonik yüzey aktif/deterjan(Malzeme Tablosu)ile inkübat hücreler. PBS'de 0,2 mL%5 büyükbaş serum albumini 1 h. Durulama hücreleri için 0,5 mL PBS 3x 5 dk için bloke edin.
    6. 0.2 mL MyHC antikor (PBS'de 1:200) olan hücreler için 2 saat. 0,5 mL PBS 3x ile 5 dk boyunca durulama hücreleri için.
    7. 0.2 mL keçi-anti fare rhodamine kırmızı konjuge sekonder antikor (PBS 1:200) ile inkübat hücreleri. 0,5 mL PBS 3x ile hücreleri 5 dk boyunca durula.
    8. Kantitatif PBS çıkardıktan sonra, oda başına 4',6-diamidino-2-fenilindole (DAPI) içeren montaj ortamı bir damla ekleyin. Üreticinin talimatlarına göre kapak kayma ve kür montaj ortamı. Ojeli fok.
    9. Uygun filtre kümesini kullanarak floresan mikroskobu kullanarak C2C12 hücrelerini gözlemleyin.
  3. Kantitatif gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonu (qRT-PCR) ile nakavt verimliliğinin değerlendirilmesi
    1. Kültür C2C12 hücreleri bölüm 3.1'de açıklandığı gibi 12 kuyu plakasında farklılaşma koşulları altında.
    2. İstenilen zaman noktasında, farklılaşma ortamını kaldırın, hücreleri 1 mL PBS ile bir kez durulayın ve kuyu başına 0,5 mL RNA ekstraksiyon reaktifi(Malzeme Tablosu)ekleyin. Hücreleri dikkatlice yukarı ve aşağı borular ile lyse ve steril bir 1,5 mL reaksiyon tüpü hücre lysate aktarın. Üreticinin protokolünü dikkatle izleyerek RNA'yı yalıtın.
      DİkKAT: RNA ekstraksiyon reaktifi fenol içerir. Duman kaputunun altında kullanılmalıdır. RNA çıkarma reaktif atıklarını toplayın ve tehlikeli atık olarak atın. Müfettişler uygun kişisel koruyucu ekipman giymelidir.
    3. Son RNA peletini 20 μL dietil pirokarbonat (DEPC) ile işlenmiş suda çözün. RNA hazırlığının miktarını ve kalitesini bir spektrofotometre kullanarak belirleyin ve kalite ölçüsü olarak A260/A280 oranını belirleyin.
      NOT: 12 kuyu plakasının 1 kuyusundan tipik bir verim, 1,8−2 A260/A280 oranıile toplam RNA'nın 5−7 μg'sidir.
    4. Kalıntı kosaflaştırılmış genomik DNA'yı sindirmek için, pcr tüpte toplam 8 μL DEPC ile işlenmiş su hacminde 1 μg RNA seyreltin. 1 μL 10x reaksiyon tamponu ve 1 μL DNase I (1 birim/μL)(Malzeme Tablosu)ekleyin ve RT.'de 15 dakika kuluçkaya yatırın. 1 μL stop çözeltisi (25 mM EDTA) ekleyin ve 70 °C'de 10 dakika kuluçkaya yatırın.
    5. CDNA oluşturmak için, 10 μL DNa tedavi edilmiş RNA'yı ters transkriptaz, rasgele astarlar, 4 mM dNTP karışımı (her dATP, dTTP, dGTP ve dCTP) içeren 10 μL 2x ters transkriptaz ana karışımı ile birleştirin ve ters transkriptaz reaksiyon tamponu oluşturun. Üretici tarafından tavsiye edilen programı kullanarak bir termocycler reaksiyon kuluçka. CDNA'yı 1:5 oranında su ile seyreltin.
    6. QRT-PCR reaksiyonu hazırlamak için, 5 μL SYBR yeşil qPCR ana karışımını sırasıyla 0,5 μL gen-spesifik ileri ve ters astarlarla (stok: 10 μM) ve reaksiyon başına 2 μL DEPC ile işlenmiş su ile birleştirin. Pipet qPCR reaksiyonbir kuyuda 96 iyi qRT-PCR plaka ve seyreltilmiş cDNA 2 μL ekleyin. Her biyolojik çoğaltma için üç teknik çoğaltma ayarlayın ve Gapdh veya Hprt1gibi bir temizlik geni içerir.
    7. Aşağıdaki programı kullanarak pcr-PCR termocycler ile PCR ürününün yükseltin: 2 dk için 50 °C (urasil-DNA glikozilaz [UDG] aktivasyonu), 2 dk için 95 °C (çift kilitli DNA polimeraz aktivasyonu), 15 s için 95 °C 40 °C, 30 s için 60 °C ve 1 dk için 72 °C.
    8. Gapdh veya Hprt1gibi bir temizlik genine normalleşen DDCt yöntemini kullanarak qRT-PCR sonuçlarını ölçün.
  4. Batı lekeleme ile nakavt verimliliğinin değerlendirilmesi
    1. Tohum 300,000 puromisin dirençli C2C12 hücreleri batı leke analizi için 6 iyi plaka iyi başına. 24 saat sonra, farklılaşma (gün 0 farklılaşma) başlatmak için serumsuz DMEM orta değiştirin.
    2. İstenilen zaman noktasında, 1,5 mL'lik bir reaksiyon tüpünde serumsuz iki mL klimalı ortam ve 5 dakika 5 dakika boyunca 5 dakika boyunca 5 000 x g'de 5 dakika boyunca ayırılmış hücreleri ve hücre enkazını temizlemek için iki mL serumsuz klimalı ortam toplayın.
      NOT: Bu adım, ancak ecm proteinleri veya şartlı ortamdaki diğer salgılanan proteinler incelenirse gereklidir. İlgi proteini sitoplazmada lokalize ise veya membranbağlıysa, hücre kültürü ortamını aspire edin ve hücre lisis adımlarını uygulayın (3.4.7−3.4.12). Hücre lisisi, proteolitik bozulmayı ve hücre tabakasının uzun süreli depolanmasının diğer istenmeyen sonuçlarını en aza indirmek için serumsuz koşullu ortamdan gelen protein çökeltmesine paralel olarak yapılmalıdır.
    3. Santrifüjden sonra, 1 mL'lik klimalı ortamı yeni bir 1,5 mL reaksiyon tüpüne aktarın ve trikloroasetik asit (TCA) ve iyonik olmayan yüzey aktif madde/deterjan karışımından 0,391 mL ekleyerek proteinleri çökeltin. Kısaca karışımı girdap ve buz üzerinde 10 dakika kuluçka.
      NOT: Protein çökeltme karışımını kullanımdan önce %55 TCA'nın 0,252 mL'si ve 0,139 mL'si 0,139 mL'lik iyonik olmayan yüzey aktif/deterjanı mL'de koşullu ortam ve girdap başına kısaca birleştirerek hazırlayın. Çözüm bulanıklaşır.
      DİkKAT: TCA aşındırıcıdır ve uygun şekilde ele alınmalıdır.
    4. 4 °C'de 10 dk için >16.000 x g çökelmiş proteinlerpelet. Supernatant atın.
      DİkKAT: Süpernatant TCA içerir ve ayrı olarak toplanmalı ve tehlikeli madde olarak imha edilmelidir.
    5. Protein peletini buz gibi aseton ve santrifüj ile her seferinde >16.000 x g'de 10 dakika boyunca 4 °C'de yıkayın.
    6. Protein peletini RT'de 3−4 dakika boyunca hava kurutun ve %5 β-mercaptoetan ile desteklenen %5 sodyum dodecyl sülfat poliakrilamid jel elektroforez (SDS-PAGE) örnek tampon (50 mM Tris pH 6.8, %2 SDS, %6 gliserol ve %0.004 bromofenol mavisi) 50 μL'lik 1x sodyum dodecyl sülfat poliakrilamid jel elektroforezinde çözünür. Numuneyi 95 °C'de 5 dk kaynatın ve standart prosedürleri kullanarak istenilen hedef proteini tespit etmek için Batı lekeleme için kullanın.
      DİkKAT: β-Mercaptoethanol kokulu ve toksiktir ve duman kaputunda kullanılmalıdır.
    7. Hücre içi ve membrana bağlı proteinler için hücre tabakasını 2 mL PBS ile bir kez durulayın.
    8. 1 mL PBS ekleyin ve bir hücre kazıyıcı kullanarak kuyudan sıyrılarak hücreleri yerinden çıkarın. 4 °C'de 3 dk için 3.420 x g'de 1,5 mL reaksiyon tüpünde ve santrifüjde hücreleri toplayın. Hücre peletini 3 x 1 mL PBS ve santrifüj 3.420 x g'de 3 dk 4 °C'de yıkayın.
    9. Hücreleri lyse için, 0.2 mL lysis tampon (20 mM Tris-HCl pH 7.5, 150 mM NaCl, 1 mM Na2EDTA, 1 mM EGTA, %1 NP40, %1 sodyum deoksikofat, 2,5 mM sodyum pirofosfat, 1 mM β-glisofosfat ve 1 mM sodyum ortonovaat) 1x EDTA içermeyen proteeaseor kokteyl reaktifi ve inkübate ile birlikte 30 dk buz üzerinde.
    10. Ultrasonicate 15 s buz üzerinde bir güç çıkışı ayarı ile 10 bir çalışma frekansında 23 kHz.
    11. 4 °C'de 20 dk için 13.680 x g'de hücre enkazLarını santrifüj ile çıkarın. Yeni bir 1.5 mL reaksiyon tüpünde supernatant toplayın ve ticari bir Bradford tsay veya başka uygun bir yöntem kullanarak protein konsantrasyonu belirlemek.
    12. Her numune için, 100 μg proteini 5x SDS-PAGE örnek tamponu ile toplam 60 μL hacimde birleştirin ve 95 °C'de 5 dk kaynatın. İstenilen hedef proteinin varlığı için numuneleri standart Batı lekeleme prosedürleri ile analiz edin.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Puromisin dirençli C2C12 seçimi, transfeksiyondan 10-14 gün sonra dirençli olmayan, yani transfeksiyonsuz hücrelerin etkin bir şekilde ortadan kaldırılması nedeniyle elde edilebilir (Şekil 1B). Tipik olarak, hücrelerin % 80'den fazlası hücre kültürü çanamından uzaklaşıyor ve bu hücreler rutin hücre bakımı sırasında çıkarılır. Kontrol (şifreli) shRNA ifade puromisin dirençli C2C12 hücreleri düşük hücre yoğunluğunda mil şeklinde, uzamış hücre morfolojisi ve miyotüpler içine ayırt yeteneği korumak. Serum çekilmesi üzerine C2C12 farklılaşması parlak alan mikroskobu ve miyotube marker miyozin ağır zincir (MyHC) için immünboyama ile izlenebilir (Şekil 2). MyHC-pozitif miyotüpler farklılaşma başlangıcından 3−5 gün sonra gözlenir. Myotubes MyHC-pozitif hücre sınırları içinde birden fazla DAPI-pozitif çekirdeğin varlığı ile gösterildiği gibi multinükleoz edilmiştir. Şekil 3A, tam DMEM'de kültürlenmiş kararlı C2C12 hücrelerinin parlak alan görüntülerini gösterir. Burada sunulan nakavt verimi %40−60 arasında değişmektedir (Şekil 3B). MRNA küçük Adamtsl2 ifade edilir proliferatif durumda hasat olduğundan, nakavt verimliliği düşük görünür, ancak nakavt verimliliği C2C12 farklılaşma sırasında daha sonraki zaman noktalarında daha büyük olması bekleniyor, nerede endojen Adamtsl2 indüklenir ve böylece çok daha yüksek seviyelerde ifade. Batı leke analizi, SHRNA 3086'yı kontrol etmek için shRNA 3086'yı ifade eden C2C12 hücrelerinden elde edilen hücre lysate'sinde ADAMTSL2'nin başarılı bir şekilde yıkıldığını doğrulamıştır (Şekil 3C).

Figure 1
Şekil 1: ShRNA kodlayıcı plazmid DNA ile transfeksiyon sonrası kararlı C2C12 hücrelerinin seçimi. (A) Hedef bölgeyi gösteren tablo (CDS, kodlama sırası; 3'-UTR, 3'-çevrilmemiş bölge), klon kimliği (bundan böyle 1977, 3086 ve 972 olarak anılacaktır) ve Adamtsl2'yihedeflemek için kullanılan shRNA'ların sırası. (B) Paneller kontrol shRNA ve üç Adamtsl2hedefleyen shRNA ile transfected C2C12 hücrelerinin seçimi göstermektedir. C2C12 hücreleri shRNA plazmidleri ile transfekslendi ve puromisin 24 saat sonra ortama eklendi. Buna karşılık, entegre shRNA plazmidleri barındıran puromisin dirençli hücreler iğ şeklinde, hafif uzatılmış, bağlı ve canlı (mavi oklar) görünür. Ölçek çubukları = 100 μm. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 2
Şekil 2: C2C12 miyoblastı miyotube farklılaşmasına. Farklılaşma C2C12 hücrelerinin parlak alan görüntüleri, farklılaşmanın başlangıcındaki hücrelerin yoğun parke taşı görünümünü gösterir (gün 0−1) ve 5.günden sonra multinükleatlı miyotüpler gözlenmiştir (üst sıra). Miyomlar için bir belirteç olan miyozin ağır zincir (MyHC, kırmızı) ile C2C12 hücrelerinin ayırt edilmesinin immünboyami, 3. Çekirdekler DAPI ile boyanmış ve birleştirilmiş görüntü alt panellerde gösterilmiştir. Ölçek çubukları = 50 μm. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 3
Şekil 3: Çoğalan C2C12 hücrelerinde kararlı nakavtın doğrulanması. (A) Tam DMEM'de kültürlenmiş kararlı C2C12 hücrelerinin parlak alan görüntüleri. Kararlı C2C12 hücrelerinde Adamtsl2 mRNA ekspresyonunun ölçek çubukları = 300 μm. (B) qRT-PCR analizi. Ct değerleri temizlik geni Hprt1normalleştirildi. mRNA farklılaşma başlamadan önce hasat edildi. Hata çubukları standart sapmayı temsil ediyor. (C) Batı leke analizi, c2C12 hücrelerinden hücre lysate/ECM fraksiyonundaki azalmış ADAMTSL2 proteinini gösteren shRNA 3086'yı stably ifade eder. Endojen ADAMTSL2 özel yapım poliklonal peptid antikor kullanılarak tespit edildi (istek üzerine kullanılabilir). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Burada C2C12 miyoblastlarında ECM proteinlerinin kararlı bir şekilde yıkılması ve C2C12 miyoblastlarının miyotüplere farklılaşmasının henotik analizi için bir protokol uyguluyoruz. Deney sonucunu çeşitli faktörler belirler ve dikkatle düşünülmeli. C2C12 hücrelerinin çoğalma aşamasında tutulması, C2C12 hücrelerini miyoblast öncül durumunda tutmak için kritik bir adımdır. C2C12 hücrelerinin sürekli miyotüpler içine ayırt etmek için yeteneğini istinat i) hücrelerin geçiş sayısı, ii) rutin bakım sırasında kültürlü hücrelerin yoğunluğu, ve iii) besin durumu, hücre kültürü orta sık ve düzenli ikmal gerektirenbağlıdır 11,12,13. Bazı bilinmeyen mekanizmalar nedeniyle, yüksek geçiş numarası C2C12 hücreleri de daha fazla miyoblast füzyon potansiyelini kaybetmek11. C2C12 hücrelerinin sağlayıcısından gelen talimatlar, bu hücrelerin 15 numaralı geçide kadar korunmasını öneriyor. Bundan sonra, farklılaşma potansiyeli azaltılabilir ve bu tür hücrelerle yapılan deneyler daha az tutarlı miyotube oluşumuna neden olabilir. Öte yandan, bakım sırasında hücre yoğunluğu benzer etkilere neden olabilir9. Rutin hücre kültürü sırasında confluent C2C12 hücre yoğunluklarına ulaşmak C2C12 miyoblast farklılaşmasının başlatılmasını teşvik eder ve böylece hücre popülasyonunun farklılaşma potansiyelini olumsuz etkileyebilir. Bu nedenle, rutin C2C12 hücre bakımı sırasında C2C12 hücrelerinin yüksek hücre yoğunluklarına ulaşmasını önlemek için kritik öneme sahiptir. Bu zaten düşük hücre yoğunluklarında C2C12 hücreleri alt-culturing tarafından elde edilebilir (<50−60% birleştiğinde). Serum açlık miyotüpler içine C2C12 hücre farklılaşması nı neden etmek için kullanılır. Bu nedenle, orta doldurma olmadan daha uzun süre hücreleri korumak ciddi besin ve serum düzeyleri egzoz. En az iki günde bir orta içeren taze serum ile yenilenme, besin ve serum yoksunluğu nedeniyle istenmeyen erken farklılaşmanın başlangıcını önleyebilir.

C2C12 farklılaşması genellikle serum açlık tarafından indüklenir. C2C12 farklılaşmasını sağlamak için kullanılan serum yüzdesi sonuçları büyük ölçüde etkileyebilir, özellikle MyHC pozitif miyotüpler oluşturmak için gereken süre14,15. Çeşitli protokoller çeşitli serum konsantrasyonları altında farklılaşmanın başarılı indüksiyonunu göstermektedir. %2−10 FBS veya at serumu ve komple serum yoksunluğu bildirilmiştir ve tüm koşullar C2C12 miyotube oluşumuna neden olmuştur. Serum yüzdesi veya serum çok değişiklik önemli ölçüde farklılaşma için belirteçleri değiştirebilir. Buna ek olarak, serum kaynağı deneysel sonucu etkileyebilir, çünkü menşe ülke olabilir veya sığır serum üretimi sırasında bazı katkı maddeleri izin olmayabilir8. Serum düzeyi, belirli deneysel gereksinimlere göre farklılaşma oranına ulaşmak için ayarlanabilir. İnsülin farklılaşma ve miyotube oluşumunu hızlandırmak için C2C12 hücrelerinin kültür ortamına eklenebilir16.

Transfeksiyon yoluyla shRNA veya rekombinant proteinleri kodlayan plazmidleri C2C12 hücrelerine ulaştırma yeteneği C2C12 hücrelerinin çekici bir özelliğidir. Çeşitli ticari lipozom bazlı transfeksiyon reaktifler daha önce değişken bildirilen transfeksiyon verimliliği17, 18,19,20,21ile C2C12 hücrelerine plazmid DNA teslim etmek için kullanılmıştır . PEI ayrıca makul transfeksiyon verimliliği gösterir ve lipozom bazlı transfeksiyon reaktifleri için uygun maliyetli bir alternatiftir. Ticari bir lipozom tabanlı transfeksiyon reaktifi ve PEI ile transfeksiyon arasında bir karşılaştırma transfeksiyon verimliliği nde önemli bir değişiklik ve biraz daha yüksek verimlilik PEI22ile bulundu gösterdi. Elimizde, PEI ile transfeksiyon verimliliği kararlı puromisin dirençli C2C12 hücreleri oluşturmak için yeterli oldu. Ancak, bu protokolde kritik bir adım transfeksiyon reaktifinin kuluçka süresini kısa tutmaktır. Yukarıda da belirtildiği gibi, C2C12 hücreleri serum çekilmesine duyarlıdır ve transfeksiyon sırasında düşük serum koşullarına uzun süre maruz kalmak C2C12 hücre farklılaşmasını tercih edebilir. Serum yokluğunda transfeksiyon yapıldığından, transfeksiyon sonrası kuluçka süresi, erken farklılaşmayı önlemek için serum içeren ortamın hızlı bir şekilde ikmali için kısa tutulmuştur. Puromisin puromisin dirençli C2C12 hücrelerinin seçimini başlatmak için transfeksiyon dan sonra kültür ortamına 24 saat eklenmiştir. Farklılaştırılmış miyotüpler içine plazmid DNA tanıtmak için yöntemler transfeksiyon dahil (kadar 85% verimlilik rapor), elektroporasyon, ya da biyolistik yaklaşım23,24,25. Alternatif olarak, indüklenebilir shRNA plazmid barındıran kararlı C2C12 hücreleri miyotube farklılaşma sonraki aşamalarında veya miyotube olgunlaşma sırasında genleri yıkmak için oluşturulabilir26.

Burada açıklanan yöntem, miyotüplere farklılaşma sırasında işlevinin belirlenebildiği C2C12 hücrelerinde ADAMTSL2'nin kararlı bir şekilde yıkılmasıile sonuçlandı. Kararlı knockdown hücrelerinin üretimi miyotube oluşumu veya olgunlaşma sırasında indüklenen proteinlerin işlevini incelemek için özellikle önemli olabilir. Örneğin siRNA ile geçici transfeksiyon bu genleri verimli bir şekilde yıkmak için yeterli olmaz, çünkü siRNA'nın geçici nakavt etkisi 5−7 gün sonra kesilebilir. Alternatif olarak, CRISPR/Cas9 kullanan bir ECM proteininin nakavtedilmesi teknik olarak daha zordur ve istenilen genin nakavt edilmesini sağlamak için bireysel klonların seçilmesi ve sıralanmış olması gerekir. Ancak, gelişen reaktif serisi CRISPR/Cas9'u gelecekte fonksiyon kaybı deneyleri için tercih edilen yöntem haline getirebilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Acknowledgments

D.H. Ulusal Sağlık Enstitüleri (Ulusal Artrit ve Kas İskelet ve Deri Hastalıkları Enstitüsü, NIAMS, hibe numarası AR070748) ve Leni & Peter W. Mayıs Ortopedi Bölümü, Icahn Tıp Fakültesi tohum finansmanı tarafından desteklenir Sina Dağı.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Acetone Fisher Chemical 191784
Agar Fisher Bioreagents BP1423
Ampicillin Fisher Bioreagents BP1760-5
Automated cell counter Countesse II Invitrogen A27977
Bradford Reagent Thermo Scientific P4205987
C2C12 cells ATCC CRL-1772
Chamber slides Invitrogen C10283
Chloroform Fisher Chemical 183172
DMEM GIBCO 11965-092
DMSO Fisher Bioreagents BP231-100
DNase I (Amplification Grade) Invitrogen 18068015
Fetal bovine serum VWR 97068-085
GAPDH EMD Millipore MAB374
Glycine VWR Life Sciences 19C2656013
Goat-anti-mouse secondary antibody (IRDYE 800CW) Li-Cor C90130-02
Goat-anti mouse secondary antibody (Rhodamine-red) Jackson Immune Research 133389
HCl Fisher Chemical A144S
Incubator (Shaker) Denville Scientific Corporation 1704N205BC105
Mercaptoethanol Amresco, VWR Life Sciences 2707C122
Midiprep plasmid extraction kit Qiagen 12643
Myosin 4 (myosin heavy chain) Invitrogen 14-6503-82
Mounting medium Invitrogen 2086310
NaCl VWR Life Sciences 241
non-ionic surfactant/detergent VWR Life Sciences 18D1856500
Paraformaldehyde MP 199983
PBS Fisher Bioreagents BP399-4
PEI Polysciences 23966-1
Penicillin/streptomycin antibiotics GIBCO 15140-122
Petridishes Corning 353003
Polypropylene tubes Fisherbrand 149569C
Protease inhibitor cocktail tablets Roche 33576300
Puromycin Fisher Scientific BP2956100
PCR (Real Time) Applied Biosystems 4359284
Reaction tubes Eppendorf 22364111
Reverse Transcription Master Mix Applied Biosystems 4368814
RIPA buffer Thermo Scientific TK274910
sh control plasmid Sigma-Aldrich 07201820MN
sh 3086 plasmid Sigma-Aldrich TRCN0000092578
sh 972 plasmid Sigma-Aldrich TRCN0000092579
sh 1977 plasmid Sigma-Aldrich TRCN0000092582
Spectrophotometer (Nanodrop) Thermo Scientific NanoDrop One C
SYBR Green Reagent Master Mix Applied Biosystems 743566
Trichloroacetic acid Acros Organics 30145369
Trizol reagent Ambion 254707
Trypan blue GIBCO 15250-061
Tryptone Fisher Bioreagents BP1421
Trypsin EDTA 0.25% Gibco-Life Technology Corporation 2085459
Water (DEPC treated and nuclease free) Fisher Bioreagents 186163
Western blotting apparatus Biorad Mini Protean Tetra Cell
Yeast extract Fisher Bioreagents BP1422

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Tanzer, M. L. Current concepts of extracellular matrix. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11, (3), 326-331 (2006).
  2. Hubmacher, D., Apte, S. S. The biology of the extracellular matrix: novel insights. Current Opinion in Rheumatology. 25, (1), 65-70 (2013).
  3. Sakai, L. Y., Keene, D. R. Fibrillin protein pleiotropy: Acromelic dysplasias. Matrix Biology. 80, 6-13 (2019).
  4. Iozzo, R. V., Gubbiotti, M. A. Extracellular matrix: The driving force of mammalian diseases. Matrix Biology. 71-72, 1-9 (2018).
  5. Le Goff, C., et al. ADAMTSL2 mutations in geleophysic dysplasia demonstrate a role for ADAMTS-like proteins in TGF-beta bioavailability regulation. Nature Genetics. 40, (9), 1119-1123 (2008).
  6. Dubail, J., Apte, S. S. Insights on ADAMTS proteases and ADAMTS-like proteins from mammalian genetics. Matrix Biology. 44-46, 24-37 (2015).
  7. Koo, B. H., et al. ADAMTS-like 2 (ADAMTSL2) is a secreted glycoprotein that is widely expressed during mouse embryogenesis and is regulated during skeletal myogenesis. Matrix Biology. 26, (6), 431-441 (2007).
  8. Khodabukus, A., Baar, K. The effect of serum origin on tissue engineered skeletal muscle function. Journal of Cellular Biochemistry. 115, (12), 2198-2207 (2014).
  9. Bajaj, P., et al. Patterning the differentiation of C2C12 skeletal myoblasts. Integrative Biology. 3, (9), 897-909 (2011).
  10. Mashinchian, O., Pisconti, A., Le Moal, E., Bentzinger, C. F. The Muscle Stem Cell Niche in Health and Disease. Current Topics in Developmental Biology. 126, 23-65 (2018).
  11. Hindi, L., McMillan, J. D., Afroze, D., Hindi, S. M., Kumar, A. Isolation, Culturing, and Differentiation of Primary Myoblasts from Skeletal Muscle of Adult Mice. Bio-protocol. 7, (9), 2248 (2017).
  12. Krauss, R. S., Joseph, G. A., Goel, A. J. Keep Your Friends Close: Cell-Cell Contact and Skeletal Myogenesis. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 9, (2), 029298 (2017).
  13. Lawson, M. A., Purslow, P. P. Differentiation of myoblasts in serum-free media: effects of modified media are cell line-specific. Cells Tissues Organs. 167, (2-3), 130-137 (2000).
  14. Fujita, H., Endo, A., Shimizu, K., Nagamori, E. Evaluation of serum-free differentiation conditions for C2C12 myoblast cells assessed as to active tension generation capability. Biotechnology and Bioengineering. 107, (5), 894-901 (2010).
  15. Cheng, C. S., et al. Conditions that promote primary human skeletal myoblast culture and muscle differentiation in vitro. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 306, (4), 385-395 (2014).
  16. Conejo, R., Valverde, A. M., Benito, M., Lorenzo, M. Insulin produces myogenesis in C2C12 myoblasts by induction of NF-kappaB and downregulation of AP-1 activities. Journal of Cellular Physiology. 186, (1), 82-94 (2001).
  17. Dodds, E., Dunckley, M. G., Naujoks, K., Michaelis, U., Dickson, G. Lipofection of cultured mouse muscle cells: a direct comparison of Lipofectamine and DOSPER. Gene Therapy. 5, (4), 542-551 (1998).
  18. Balcı, B., Dinçer, P. Efficient transfection of mouse-derived C2C12 myoblasts using a matrigel basement membrane matrix. Biotechnology Journal. 4, (7), 1042-1045 (2009).
  19. Xia, D., et al. Overexpression of chemokine-like factor 2 promotes the proliferation and survival of C2C12 skeletal muscle cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Cell Research. 1591, (1), 163-173 (2002).
  20. Tapia, O., Gerace, L. Analysis of Nuclear Lamina Proteins in Myoblast Differentiation by Functional Complementation. Methods in Molecular Biology. 1411, 177-194 (2016).
  21. Yamano, S., Dai, J., Moursi, A. M. Comparison of transfection efficiency of nonviral gene transfer reagents. Molecular Biotechnology. 46, (3), 287-300 (2010).
  22. Luo, J., et al. An efficient method for in vitro gene delivery via regulation of cellular endocytosis pathway. International Journal of Nanomedicine. 10, 1667-1678 (2015).
  23. Sandri, M., Bortoloso, E., Nori, A., Volpe, P. Electrotransfer in differentiated myotubes: a novel, efficient procedure for functional gene transfer. Experimental Cell Research. 286, (1), 87-95 (2003).
  24. Yi, C. E., Bekker, J. M., Miller, G., Hill, K. L., Crosbie, R. H. Specific and potent RNA interference in terminally differentiated myotubes. Journal of Biological Chemistry. 278, (2), 934-939 (2003).
  25. Antolik, C., De Deyne, P. G., Bloch, R. J. Biolistic transfection of cultured myotubes. Science's STKE. 2003, (192), 11 (2003).
  26. Shintaku, J., et al. MyoD Regulates Skeletal Muscle Oxidative Metabolism Cooperatively with Alternative NF-kappaB. Cell Reports. 17, (2), 514-526 (2016).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics